A espécie Aloe vera (L.) Burm. f., nome científico desta espécie e Aloe barbadensis Miller sua sinonímia, é considerada como planta medicinal, pertence à família Asphodelaceae (Liliaceae), é perene, xerofítica e suculenta, podendo variar de pequenos arbustos a grandes formas semelhantes a árvores. Por ser uma planta de clima tropical e resistente a baixa disponibilidade de água, adaptou-se muito bem a essa condição, fechando os estômatos durante o dia e abrindo durante a noite. Nesta condição realiza Metabolismo do Ácido das Crassuláceas (CAM) sendo classificada como uma planta CAM (NI et al., 2004).
Esta espécie é conhecida e utilizada desde a antiguidade por conter propriedades que promovem a saúde e beleza. Os egípcios a denominavam como planta da imortalidade. Seu nome tem origem árabe e latim, deriva da palavra Alloeh que quer dizer “solução amarga brilhante”, e “vera” que tem o significado de “verdadeiro”.
Em relação ao aspecto morfológico da planta, devido as folhas longas saírem do caule dispostas em forma de roseta são classificadas como da família Aloaceae, por mais que tenha aparência de cacto. Podem reunir até 20 folhas por planta, medindo em média de 50 a 60 cm de comprimento, 6 a 9 cm de largura e 3 cm de espessura em sua base, sua massa pode chegar a 1500 g (CHOW et al., 2005; WHO, 1999; SILVA et al., 2010).
Figura 2 – Planta de Aloe vera L. com folhas em roseta (Franziska Ingold, 2017).
O A. vera trata-se de uma monocotiledônea, dioica, com folhas triangulares ou lanceoladas, côncavas em sua face superior e convexas na face inferior, carnosas com bordas serrilhadas, possuem uma epiderme espessa, recoberta por cutículas que envolvem o mesofilo, que se divide em células do clorênquima e parênquima. A variação da cor vai do verde com manchas brancas quando estas são jovens, até glauco - esverdeadas quando se apresentam adultas. Apresenta porte que varia de 50 a 120 cm de comprimento na parte aérea (SILVA, 2010; SERRANO, 2015).
A polpa, que é utilizada para formulação dos extratos medicinais, é um filete intacto do interior da folha, com estruturas como parede celular, organelas e líquido interior. O gel portanto, ocorre no parênquima tissular, apresenta pH entre 4,0 e 5,0, possui sabor adstringente e amargo, porém refrescante e forte, sua composição é rica em componentes ativos, sendo que 98,5% é de água e 1,5% de extrato propriamente dito. A seiva que circula nos canais condutores subepidérmicos é denominado de látex, que é produzido e secretado por células do mesófilo, apresenta cor amarela, aroma rançoso, sabor amargo e consistência leitosa. As flores são amarelas em formato tubular e os frutos contêm numerosa quantidade se sementes (GRINDLAY; REYNOLDS, 1986; CAMPESTRINI, 2007).
Figura 3 – Corte transversal da folha de Aloe vera L. apresentando a polpa. (Franziska Ingold, 2017)
O extrato do A. vera é composto principalmente por vitaminas como vitamina A, C e E, antioxidantes, vitamina B12, ácido fólico e colina, enzimas como fosfatase alcalina, amilase, bradicinase, carboxipeptidase, catalase, celulase, lipase e peroxidase, fornece minerais como cálcio, cromo, cobre, selênio, magnésio, manganês, potássio, sódio e zinco, contém açúcares como manose-6-fosfato, e os polissacarídeos mais comuns denominados glucomananos, lignina, saponinas, ácidos salicílicos, antraquinonas, estilbenos e aminoácidos (LIU, 2007;
BOUDREAU, 2006; HAMMAN, 2008; VALVERDE, 2005; AHLAWAT, 2011).
O A. vera é uma importante alternativa aos tratamentos pós-colheita convencionais, por apresentar em sua composição compostos antibacterianos e antifúngicos e que podem realizar o controle de microrganismos responsáveis por doenças desenvolvidas nesse período (SERRANO, 2015).
Chrysargyris et al., (2016) verificaram o efeito da cobertura de A. vera, nas concentrações 0%, 5%, 10%, 15% e 20% em tomates cv. Dafni e observaram a redução na produção de etileno, aumento da concentração de ácido ascórbico e de compostos fenólicos.
Ortega-toro et al., (2017) testaram o gel de A. vera in vitro no controle de vários fungos, tais como: Fusarium oxysporum, Alternaria alternata, Colletrotrichum gloesporoides, Bipolaris spicifera, Curvularia hawaiiensis e Botryotinia fuckeliana, onde o extrato controlou a evolução dos patógenos. Além disso, revestiram tomates cereja com solução de A. vera 1:1, e o resultado observado foi o controle do fungo Fusarium oxysporium.
Além disso, o gel de A. vera possui compostos bioativos (acemanana, emodina-aloe, polissacarídeos, aloína, alantoína, antraquinonas) que lhe conferem a capacidade de conservação de frutos na pós-colheita, o que foi observado por Martinez-Romero et al., (2017) com a aplicação de gel de A. vera adicionado ou não de óleo essencial de Rosa mosqueta (Rosa
rubiginosa), planta com propriedades medicinais, em ameixas cv. President. Os frutos apresentaram menor taxa de respiração e de produção de etileno, além de retardar a mudança de coloração e a maturação dos mesmos.
O Aloe vera também é composto por alcalóides, flavonóides, esteróides, triterpenos, taninos e compostos fenólicos, conferindo propriedades antioxidantes e antimicrobianas.
Portanto, pode ser usado contra agentes fitopatogênicos. Além disso, possui em sua composição indutores de resistência, como os ácidos linolênico e salicílico Por exemplo, reduz o crescimento micelial de Colletrotrichum musa, que causa a antracnose da banana (KHALIQ, RAMZAN E BOLOCH, 2019).
Atualmente, o mercado têm apresentado um nicho de alimentos que facilitam a vida do consumidor, é o caso dos frutos minimamente processados e esses requerem cuidados especiais, por estarem mais expostos a perdas. Nesse sentido, Benitez et al., (2013) aplicaram gel de A.
vera em kiwi cv. Hayward fatiados, nas concentrações 1%, 5%, e 15% e observaram que este produto minimamente processado, quando revestido, apresentou melhora das qualidades de cor, textura, acidez e sólidos solúveis, redução da despolimerização da pectina, redução da incidência de doenças, redução da taxa de respiração. Além disso, verificaram que em análise sensorial, os kiwis revestidos na concentração de 5% foram os preferidos.
5. REFERÊNCIAS
AHLAWAT, K. S.; KHATKAR B. S. Processing, food applications and safety of A. vera product: a review. J Food Sci Technol; 48(5): 525-533, 2011.
ALMEIDA, G. K.; MAGRIN, F. P.; SOLDATELLI, P.; FIORAVANCO, J. Fenologia e produtividade de cultivares de pessegueiro. Revista de Ciências Agroveterinárias, v. 13, n. 3, p. 255-265, 2015.
AMIRI, S., AKHAVAN, H., ZARE, N., RADI, M. Effect of gelatin-based edible coatings incorporated with aloe vera and green tea extracts on the shelf-life of fresh-cut apple. Italian Journal of Food Science, 30(1), 2017.
BALKE, M. E. Desidratação de pêssego em diferentes processos: modelagem matemática e análise empreendedora. Tese (Doutorado) — Tese (Doutorado em Engenharia de
Alimentos) - Universidade Regional Integrada do Alto Uruguai e das Missões, Erechin, 2016.
BARRETO, C. F., MORENO, B. M., DA SILVA, P. S., MALGARIM, M. B., &
FACHINELLO, J. C. Ácido salicílico na pós-colheita para redução de podridão parda e manutenção qualidade de pêssego ‘CHIRIPÁ’. Revista Iberoamericana de Tecnología Postcosecha, 17(1), 50-57, 2016.
BIGGS, A. R.; NORTHOVER, J. Inoculum sources for Monilinia fructicola in Ontario peach orchards. Canadian Journal of plant pathology, 7.3: 302-307, 1985.
BONORA, E. Modeling systems and vis / NIR device to improve peach and nectarine pre and post-harvest fruit maturity management. Università di Bologna, 2013.
BOUDREAU, M. D,; BELAND F. A. An evaluation of the biological and toxicological properties of Aloe barbadensis (Miller), Aloe vera. Journal of Environmental Science and Health Part C 24, p.103-15, 2006.
BOURTOOM, T. Review Article Edible films and coatings : characteristics and properties.
International Food Research Journal, v. 15, n. 3, p. 237–248, 2008.
BURG, S. P., BURG, E. A. Molecular requirements for the biological activity of ethylene.
Plant physiology, 42(1), 144-152, 1967.
CÁCERES, D., DÍAZ, M., SHINYA, P., INFANTE, R. Assessment of peach internal flesh browning through colorimetric measures. Postharvest Biology and Technology, 111, 48–52, 2016.
CAI, J.H.; CHEN, J.; LU, G.B.; ZHAO, M.; TIAN, S.P.; QIN, G.Z. Control of brown rot on jujube and peach fruits by trisodium phosphate. Postharvest Biology and Technology, v.99, p.93-98, 2015.
CAMPESTRINI, L. H. Aloe barbadensis Miller: análise do perfil metabólico e estudos dos efeitos vasculogênicos e angiogênicos do extrato do parênquima de reserva, da fração polissacarídica (fp) e da acemanana. 2007. 205f. Dissertação (Mestre em Biotecnologia) - Universidade Federal de Florianópolis, março de 2007.
CHALFUN JÚNIOR, A. Armazenamento de caroços de pessegueiro cv. Okinawa e seus efeitos na produção de porta-enxerto. 1999. 113 f. Dissertação (Fitotecnia) Universidade Federal de Lavras, Lavras, 1999.
CHITARRA M. I. F.; CHITARRA A. B. (2005). Pós-colheita de frutas e hortaliças:
Fisiologia e Manuseio. 2. Ed. Lavras: UFLA. p. 785.
CHITARRA, M. I. F.; CHITARRA, A. B. Pós-colheita de frutos e hortaliças: fisiologia e
manuseio. Lavras: ESAL; FAEPE, 1990, 320 P.
CHIUMARELLI, M., FERREIRA, M. D. Qualidade pós-colheita de tomates' Débora'com utilização de diferentes coberturas comestíveis e temperaturas de armazenamento.
Horticultura Brasileira, 2006.
CHOW, J. T.; WILLIAMSON, D. A.; YATES, K. M.; GOUXA, W. J. Chemical characterization of the immunomodulating polysaccharide of Aloe vera L. I. Carbohydrate Research, v.340, p.1131–1142, 2005.
CHRYSARGYRIS, A.; NIKOU, A.; TZORTZAKIS, N. Effectiveness of Aloe vera gel coating for maintaining tomato fruit quality. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science, v. 44, n. 3, p. 203-217, 2016.
CITADIN, I. O cultivo do pessegueiro no Paraná. In: RASERIA, M.C.B.; PEREIRA, J.F.M.;
CONTE, R. I.; RIBEIRO, R. T. da S. Controle de Colletotrichum gloeosporioides (Penzig), causador da antracnose na cultura do pêssego, com o óleo essencial de Eucalyptus globulus Labill., Cinnamomum camphora Nees & Eberm var. linaloolífera fujita e Cimbopogum citratus (DC) stapf. In: Encontro de Jovens Pesquisadores, 8, Caxias do Sul, RS. Anais...
Caxias do Sul, RS: Universidade de Caxias do Sul, 2010.
CRISOSTO, C. H.; CRISOSTO, G. M. Relationship between ripe soluble solids concentration (RSSC) and consumer acceptance of high and low acid melting flesh peach and nectarine (Prunus persica (L.) Batsch) cultivars. Postharvest Biology and Technology, v. 38, n. 3, p.
239-246, 2005.
CRISOSTO, C. H.; VALERO, D. Harvesting and Postharvest Handling of Peaches for the Fresh Market. In: LAYNE, D.; BASSI, D. The Peach: Botany, Production and Uses. Oxford:
CAB International, cap. 22, p. 575-596, 2008.
CRISOSTO, C.H. Peach quality and postharvest technology. Acta Horticulturae, v. 713, p.
479-488, 2006.
EMERY, K. M., MICHAILIDES, T. J., SCHERM, H. Incidence of latent infection of immature peach fruit by Monilinia fructicola and relationship to brown rot in Georgia. Plant Disease, 84(8), 853-857, 2000.
FABIANE, K. C. Reação de pessegueiros a Monilinia fructicola (wint.) Honey e sua relação com os componentes bioquímicos. 2011. 139p. Dissertação (Mestrado em Produção Vegetal) – Universidade Tecnológica Federal do Paraná, Pato Branco, PR, 2011.
FALGUERA, V., QUINTERO, J. P., JIMÉNEZ, A., MUÑOZ, J. A., IBARZ, A. Edible films and coatings: Structures, active functions and trends in their use. Trends in Food Science &
Technology, 22(6), 292-303, 2011.
FORTES, J. F., & MARTINS, O. M. Sintomatologia e controle das principais doenças. In:
MEDEIROS, C. A. B.; RASEIRA, M. C. B. A cultura do pessegueiro. Brasília: Embrapa-SPI, p. 243-264, 1998.
GUILBERT, S.; GONTARD, N.; GORRIS, L. G. M. Prolongation of the Shelf-life of Perishable Food Products using Biodegradable Films and Coatings. LWT - Food Science and Technology, v. 29, n. 1–2, p. 10–17, 1996.
HAMMAN J. H. Composition and applications of Aloe vera leaf gel. Molecules, v. 13, p. 1599-1616, 2008.
IBGE, Censo. "Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística-IBGE." (2016).
IBGE, Censo. "Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística-IBGE." (2015).
JACOMINO, A. P., KLUGE, R. A., BRACKMANN, A., CASTRO, P. R. D. C.
Amadurecimento e senescência de mamão com 1-metilciclopropeno. Scientia Agricola, 59(2), 303-308, 2002.
KADER, A. A. Postharvest technology of horticultural crops. University of California Agriculture and Natural Resources, 2002.
KHALIQ, G., RAMZAN, M., & BALOCH, A. H. Effect of Aloe vera gel coating enriched with Fagonia indica plant extract on physicochemical and antioxidant activity of sapodilla fruit during postharvest storage. Food chemistry, 2019.
KASAT, G. F., MATTIUZ, B. H., OGASSAVARA, F. O., BIANCO, M. S., MORGADO, C.
M. A., CUNHA JUNIOR, L. C. Injúrias mecânicas e seus efeitos em pêssegos' Aurora-1'.
Revista Brasileira de Fruticultura, p. 318-322, 2007.
KERBAUY, G. B. Frutificação e amadurecimento. Fisiologia Vegetal. 2nd ed. Guanabara Koogan, Rio de Janeiro, 2012.
KESTER, J. J., FENNEMA, O. An edible film of lipids and cellulose ethers: Performance in a model frozen‐food system. Journal of Food Science, 54(6), 1390-1392, 1989.
KESTER, J.J.; FENNEMA, O.R. Edible films and coatings: a review. Food Technology, v. 40, n. 12, p. 47-59, 1986.
KOVALESKI, A.; SUGAYAMA, R.I.; URAMOTO, K.; MALAVASI, A. Moscas-das-frutas nos estados brasileiros. Rio Grande do Sul. In: MALAVASI, A.; ZUCCHI, R.A. (Ed.). Moscas-dasfrutas de importância econômica no Brasil: conhecimento básico e aplicado. Ribeirão Preto: Holos, 2000. 327p.
LI, X. Y., DU, X. L., LIU, Y., TONG, L. J., WANG, Q., LI, J. L. Rhubarb extract incorporated into an alginate-based edible coating for peach preservation. Scientia Horticulturae, 257,
108685, 2019.
LIU, S.; WANG, J.; HAN, Z.; GONG, X.; ZHANG, H.; CHAI, J. Molecular mechanism for fungal cell wall recognition by rice chitin receptor OsCEBiP. Structure, v. 24, n. 7, p. 1192-1200, 2016.
LOPES, A. R., DRAGUNSKI, D. C., CAETANO, J., FRANCISCO, C. B., JÚNIOR, L. F. B.
conservação de goiabas com revestimentos comestíveis de amido e caseína com extrato de barbatimão. Revista Engenharia na Agricultura, 26(4), 295-305, 2018.
MARTINS, M. C., LOURENÇO, S. A., GUTIERREZ, A. S., JACOMINO, A. P., AMORIM, L. Quantificação de danos pós-colheita em pêssegos no mercado atacadista de São Paulo.
Fitopatologia Brasileira, 31(1), 5-10, 2006.
MARTÍNEZ-ROMERO, D., ZAPATA, P. J., GUILLÉN, F., PALADINES, D., CASTILLO, S., VALERO, D., SERRANO, M. The addition of rosehip oil to Aloe gels improves their properties as postharvest coatings for maintaining quality in plum. Food Chemistry, 217, 585-592, 2017.
MEHRABI, R.; BAHKALI, A. H.; ABD-ELSALAM, K. A.; MOSLEM, M.; BEM M’BAREK, S.; GOHARI, A. M.; WIT, P. J. Horizontal gene and chromosome transfer in plant pathogenic fungi affecting host range. FEMS Microbiology Reviews, v. 35, n. 3, p. 542-554, 2011.
MENG, X., HAN, J., WANG, Q., TIAN, S. Changes in physiology and quality of peach fruits treated by methyl jasmonate under low temperature stress. Food Chemistry, 114(3), 1028–
1035, 2009.
MIRANDA, J., DE ANDRADE, S. B., SCHIAVON, A. V., LEMOS, P. L. P. K., LIMA, C. S.
M., & MALGARIM, M. B. Pre-harvest application of salicylic acid influence physicochemical and quality characteristics of ‘Chimarrita’peaches during cold storage. Emirates Journal of Food and Agriculture, 2019.
NAVA, G. A. Desenvolvimento floral e frutificação de pessegueiros (Prunus persica (L.) Bastch) cv. Granada, submetidos a distintas condições térmicas durante o período de pré-floração e pré-floração. 2007. 175p. Tese (Doutorado em Fitotecnia) – Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, 2007.
NEGRI, G. Controle da podridão parda em pessegueiro conduzido em sistema orgânico e produção do antagonista Trichothecium roseum. 2007. 147p. Tese (Doutorado em Produção Vegetal) – Universidade Federal do Paraná, Curitiba PR, 2007.
Ni, Y., Turner, D., Yates, K. M., E Tizard, I. Isolation and characterization of structural
components of Aloe vera L. leaf pulp. International Immunopharmacology, 4, 1745-1755, 2004.
NUNES, M. C. do N. Color atlas of postharvest quality of fruits and vegetables. 1 ed.
Hoboken: John Wiley & Sons, 2009. 480p.
OGAWA, J. M., ZEHR, E. I., BIGGS, A. R. Brown Rot. In M. OGAWA, E. I. ZEHR, G. W.
BIRD, D. F. RITCHIE, K. URIU, J. K. UYEMOTO (Eds.), Compendium of stone fruit diseases (pp. 7–10). St. Paul, Minnesota: APS Press, 1995.
OLIVEIRA, M.A.; CEREDA, M.P. Pós-colheita de pêssegos (Prunus pérsica L. Bastshc) revestidos com filmes a base de amido como alternativa à cera comercial. Ciência e Tecnologia de Alimentos, v.23, p.28-33, 2003.
ORTEGA-TORO, R., COLLAZO-BIGLIARDI, S., ROSELLÓ, J., SANTAMARINA, P., CHIRALT, A. Antifungal starch-based edible films containing Aloe vera. Food Hydrocolloids, 72, 1-10, 2017.
PAN, L., ZHANG, Q., ZHANG, W., SUN, Y., HU, P., TU, K. Detection of cold injury in peaches by hyperspectral reflectance imaging and artificial neural network. Food Chemistry, 192, 134–141, 2016.
PAVANELLO, E. P. Silício no manejo pré e pós-colheita da podridão parda (Monilinia fructicola) no pessegueiro. 2016. 155p. Tese (Doutorado em Produção Vegetal) – Universidade Federal de Santa Maria, Santa Maria, RS, 2016.
PAVLATH, A.E.; ORTS, W. Edible Films and Coatings: Why, What and How?. In K.C. Huber, M.E.Embuscado (Eds.), Edible Films and Coatings for Food Applications, New York:
Springer: p. 1-23. 2009.
PEREIRA, J.F.M.; CONTE, R. I.; RIBEIRO, R. T. da S. Controle de Colletotrichum gloeosporioides (Penzig), causador da antracnose na cultura do pêssego, com o óleo essencial de Eucalyptus globulus Labill., Cinnamomum camphora Nees & Eberm var. linaloolífera fujita e Cimbopogum citratus (DC) stapf. In: Encontro de Jovens Pesquisadores, 8, Caxias do Sul, RS. Anais... Caxias do Sul, RS: Universidade de Caxias do Sul, 2010.
PEREIRA, L. D., DE SOUZA, L. K. F., FERREIRA, K. B., DO VALLE, K. D., & DA SILVA, D. F. P. Nota técnica: biofilmes comestíveis na conservação pós-colheita de cajá. Revista Engenharia na Agricultura, 27(4), 285-292, 2019.
PINTO, P. M. Z., & MORAIS, A. M. M. B. DE. Boas Práticas para a Conservação de Produtos Hortofrutícolas. AESBUB - Associação Para a Escola Superior de Biotecnologia Da Universidade Católica, 33, 2000.
Pragas, P. (2003). EMBRAPA. Sistema de produção de pêssego de mesa na região da Serra Gaúcha. Sistema.
QUEIROZ, H. T. Caracterização de genótipos de pessegueiros e ameixeiras na Depressão Central do Estado do Rio Grande do Sul. 2014. 82p. Dissertação (Mestrado em Fitotecnia) – Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, 2014.
RASEIRA, A., NAKASU, B. H., FREIRE, C. D. S., FLORES-CANTILLANO, F., FORTES, J. F., MAGNANI, M., OSORIO, V. A. A cultura do pêssego. Brasília, DF: Embrapa-SPI;
Pelotas: Embrapa-CPACT, 1993.
RASEIRA, M. do C. B. Pêssego cultivar BRS Libra. Revista Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal , v. 32, n. 4, p. 1-2, dez. 2010.
RASEIRA, M. do C. B.; NAKASU, B. H. Pessegueiro. Brasília: Embrapa, 2014.
RODRIGUEZ‐GARCIA, I., CRUZ‐VALENZUELA, M. R., SILVA‐ESPINOZA, B. A., GONZALEZ‐AGUILAR, G. A., MOCTEZUMA, E., GUTIERREZ‐PACHECO, M. M., AYALA‐ZAVALA, J. F. Oregano (Lippia graveolens) essential oil added within pectin edible coatings prevents fungal decay and increases the antioxidant capacity of treated tomatoes.
Journal of the Science of Food and Agriculture, 96(11), 3772-3778, 2016.
SALVIA-TRUJILLO, L., ROJAS-GRAÜ, M. A., SOLIVA-FORTUNY, R., & MARTÍN-BELLOSO, O. Use of antimicrobial nanoemulsions as edible coatings: Impact on safety and quality attributes of fresh-cut Fuji apples. Postharvest Biology and Technology, 105, 8-16, 2015.
SANTOS, C. A. A., CASTRO, J. V. D., PICOLI, A. A., & ROLIM, G. D. S. Uso de quitosana e embalagem plástica na conservação pós-colheita de pêssegos' Douradão'. Revista Brasileira de Fruticultura, 2008, 30.1: 88-93.
SERRANO, M.; VALVERDE J. M.; GUILLÉN F.; CASTILLO, S.; MARTÍNEZ-ROMERO, D.; VALERO, D. Use of Aloe vera gel coating preserves the functional properties of table grapes. Journal of agricultural and food chemistry. v.54, n.11, p.3882-3886, 2006.
SHULAEV, V.; KORBAN, S. S.; SOSINSKI, B.; ABBOTT, A. G.; ALDWINCKLE, H. S.;
FOLTA, K. M.; LEWERS, K. Multiple models for Rosaceae genomics. Plant Physiology, v.
147, n. 3, p. 985-1003, jul. 2008.
SILVA, C. F. Efeito de diferentes biopolímeros no revestimento de mamão (Caricapapaya L) minimamente processado. Revista Varia Scientia Agrárias, v. 1, n. 1, p.131-142, 2010.
SIMÕES, M. P. (2016). +Pêssego, Guia prático da Produção.
SIMÕES, M. P. A. F. A fertilização azotada em pessegueiros : influência no estado de nutrição , produção e susceptibilidade a Phomopsis amygdali, 2008.
SIMÕES, M.P. E FERREIRA, D. Qualidade dos frutos. In SIMÕES, M.P. (coord). +pêssego – Guia prático da produção. Centro Operativo e Tecnológico Hortofrutícola Nacional, 2016.
SOUZA de E SILVA, J. & FINGUER F. CORRÊA, P. Capítulo 18 - Armazenamento de Frutas e Hortaliças. Pós-Colheita de Frutos e Hortaliças: Fisiologia e Manuseio, 2, 469–
502, 2005.
SOUZA, D. C. de. Progresso temporal e padrão espacial de epidemias da podridão parda do pessegueiro. 2006. 64p. Dissertação (Mestrado em Fitopatologia) – Universidade de São Paulo, Piracicaba, SP, 2006.
TIMM, C. R. F. Propagação de porta-enxertos de pessegueiro por miniestacas herbáceas.
2011. 65p. Dissertação (Mestrado em Fruticultura de Clima Temperado) – Universidade Federal de Pelotas, Pelotas, RS. 2011.
USDA, NRCS. "The plantss database (http://plants. usda. gov, May 2011). National Plant Data Team, Greensboro." (2015): 27401-4901.
VALVERDE, J.M.; VALERO, D.; MARTÍNEZ-ROMERO, D.; GUILLÉN, F.; CASTILLO, S.; SERRANO, M. Novel Edible Coating Based on Aloe vera Gel To Maintain Table Grape Quality and Safety. J. Agric. Food Chem. v.53, p.7807–7813, 2005.
VARGAS, M.; PASTOR, C.; CHIRALT, A.; MCCLEMENTS, D. J.; GONZÁLEZ-MARTÍNEZ, C. Recent Advances in Edible Coatings for Fresh and Minimally Processed Fruits. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, v. 48, p. 496–511. 2008.
WHO. Aloe and Aloe vera gel. WHO Monographs on selected medicinal plants. Vol.1.
Geneva, Switzerland: World Health Organization; p.33-49, 1999.
WILCOCK, A.; PUN, M.; KHANONA, J.; AUNG, M. Consumer attitudes, knowledge and behaviour: a review of food safety issues. Trends Food Sci Technol 15:56–66, 2004.
ZHANG, M.; LENG, P.; ZHANG, G.; LI, X. Cloning and functional analysis of 9-cisepoxycarotenoid dioxygenase (NCED) genes encoding a key enzyme during abscisic acid biosynthesis from peach and grape fruits. Journal of Plant Physiology, v. 166, n. 12, p.1241-1252, 2009.
ZHANG, Q.; ZHOU, W.; TAN, H.; YANG, M.; LIU, X. Effects of coating and heat treatments on energy levels and physiological indexes and qualities of grape fruits during storage.
Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering, v. 2, n. 9, p. 255-263, 2016
CAPÍTULO 1
Aloe vera inibe Monilinia fructicola em pêssegos cv. Della Nona RESUMO
Apesar de sua importância econômica, os pêssegos são frutos muito perecíveis e podem apresentar significante perdas pós-colheita, principalmente aquelas ocasionadas pela podridão parda (Monilinia fructicola). Assim, o objetivo deste trabalho foi verificar o efeito antifúngico e indutor de resistência de Aloe vera em pêssegos cv. Della Nona. Para o experimento in vitro.
os tratamentos foram compostos pelas doses de 0, 50, 100, 150, 200, 250 e 300 mL L-1 de gel de A. vera. Foram analisados o efeito dos tratamentos sobre o crescimento micelial, esporulação e germinação de M. fruticola. No experimento in vivo o delineamento experimental foi realizado em esquema fatorial 2 x 5 (formulações de A. vera x concentrações). Realizou-se teste de média e regressão das doses de A. vera e após avaliados o índice de infecção de podridão parda, atividade específica da enzima peroxidase de guaiacol (POD) e a peroxidação lipídica (PL). Verificou-se que nos experimentos in vitro as doses do gel de A. vera apresentaram efeito fungitóxico sobre o patógeno de acordo com o aumento da concentração dos tratamentos. Para o controle da podridão parda observou-se que a dose de 200 mL L-1 reduziu em 70,3% e 56,4%
a incidência da doença, para as formulações em gel e extrato, respectivamente. As doses de 200 e 100 mL L-1 de gel e extrato induziram a atividade da POD, respectivamente. Assim, destaca-se que o A. vera possui atividade direta sobre M. fruticola e induz mecanismos de resistência de pêssegos ‘Della Nona’ contra à podridão parda.
Palavras-chave: pós-colheita, peroxidase, elicitor.
INTRODUÇÃO
A produção de pêssegos possui ampla abrangência no mundo, incluindo áreas de clima temperado e subtropical. Em 2016, a produção mundial foi de 20 milhões de toneladas, ocupando o 8º lugar na produção mundial de frutas (USDA, 2017). De acordo com os dados do IBGE (2019) o Brasil apresentou área colhida de 15.995 ha com produção de 183,132 toneladas de pêssego.
Dentre as cultivares de pêssego produzidas no Brasil, destaca-se a ‘Della Nona’
destinada ao consumo ‘in natura’. Apresenta como principais características vigor médio, com boa produtividade, ciclo tardio e necessita de, aproximadamente, 400 horas de frio (≤7,2 ºC). Os frutos são de formato ovalado, tamanho médio, com massa de cerca de 100 g, epiderme de cor creme com percentual que varia de 30 à 80% avermelhada, polpa com coloração branca e em torno do caroço avermelhada (Embrapa, 2003, Almeida et al. 2015).
Essa cultivar pode apresentar elevadas perdas pós-colheita devido à podridão parda (Monilinia fructicola (Wint) Honey). No período de pré-colheita, os frutos contaminados apresentam lesões escuras que evoluem para manchas marrons, podendo permanecer o fungo quiescente em frutos verdes e manifestar somente na pós-colheita (Embrapa, 2003).
Para o controle dessa doença, são necessários produtos químicos que, apesar de eficazes, deixam resíduos nos frutos, afetando negativamente a saúde humana e o meio ambiente (Friedrich et al., 2021). Dessa forma, alternativas tecnológicas têm sido buscadas, como a aplicação de coberturas comestíveis, a fim de minimizar os problemas mencionados e reduzir a perda pós-colheita dos frutos de pêssego (Spadoni et al., 2015; Sapelli, Faria e Botelho, 2020).
Um dos produtos que podem ser utilizados como revestimento comestível é o Aloe vera, pois é composto por alcalóides, flavonóides, esteróides, triterpenos, taninos e
Um dos produtos que podem ser utilizados como revestimento comestível é o Aloe vera, pois é composto por alcalóides, flavonóides, esteróides, triterpenos, taninos e