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Efeito da colheita fracionada sobre a cinética e viabilidade espermáticas do sêmen refrigerado e congelado de garanhões

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Atendendo solicitação d

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UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA “JÚLIO DE MESQUITA FILHO”

FACULDADE DE MEDICINA VETERINÁRIA E ZOOTECNIA PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM BIOTECNOLOGIA ANIMAL

DEFESA DE DISSERTAÇÃO

EFEITO DA COLHEITA FRACIONADA SOBRE A CINÉTICA E VIABILIDADE ESPERMÁTICAS DO SÊMEN REFRIGERADO E

CONGELADO DE GARANHÕES.

Sidnei Nunes de Oliveira

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UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA “JÚLIODE MESQUITA FILHO”

FACULDADE DE MEDICINA VETERINÁRIA E ZOOTECNIA PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM BIOTECNOLOGIA ANIMAL

EFEITO DA COLHEITA FRACIONADA SOBRE A CINÉTICA E VIABILIDADE ESPERMÁTICAS DO SÊMEN REFRIGERADO E

CONGELADO DE GARANHÕES.

Sidnei Nunes de Oliveira

Dissertação apresentada à Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia da

Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho” - UNESP, Campus de Botucatu, para obtenção do título de Mestre em Biotecnologia Animal, Área de Reprodução Animal.

Orientador: Prof. Dr. Frederico Ozanam Papa

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Nome do autor: Sidnei Nunes de Oliveira

Título: EFEITO DA COLHEITA FRACIONADA SOBRE A CINÉTICA E

VIABILIDADE ESPERMÁTICAS DO SÊMEN REFRIGERADO E CONGELADO

DE GARANHÕES.

BANCA EXAMINADORA

Prof. Dr. Frederico Ozanam Papa

Presidente e orientador

Departamento de Reprodução Animal e Radiologia Veterinária FMVZ – UNESP – Botucatu /SP

Prof. Dr. Marco Antonio Alvarenga

Membro

Departamento de Reprodução Animal e Radiologia Veterinária FMVZ – UNESP – Botucatu/SP

Dr. Marcio Teoro do Carmo

Membro

Veterinário Autônomo, Botucatu/SP

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SUMÁRIO

CAPÍTULO I

1. INTRODUÇÃO... 12

2. REVISÃO DE LITERATURA... 13

2.1. Anatomia e fisiologia do sistema genital do garanhão... 13

2.2. Espermatogênese... 16

2.3. Fisiologia da ejaculação... 16

2.4. Produção e composição do plasma seminal... 19

2.4.1. Enzimas... 20

2.4.2. Proteínas... 21

2.4.3. Eletrólitos... 22

2.4.4. Hormônios... 23

2.5. Efeito do plasma seminal na criopreservação do sêmen equino... 24

2.6. Principais métodos de colheita do sêmen equino... 29

2.7. Colheita fracionada do sêmen equino... 30

2.8. Benefício da colheita fracionada do sêmen equino... 32

REFERÊNCIAS... 35

HIPÓTESE... 46

OBJETIVOS ESPECÍFICOS... 46

CAPÍTULO II ARTIGO I - COLHEITA FRACIONADA E SEUS PRINCIPAIS BENEFÍCIOS NA CRIOPRESERVAÇÃO DO SÊMEN DE GARANHÕES... 48

ARTIGO II - INFLUÊNCIA DE DIFERENTES TÉCNICAS DE COLHEITA FRACIONADA DO SÊMEN EQUINO NA RECUPERAÇÃO ESPERMÁTICA: DESCRIÇÃO E MODIFICAÇÃO DE UM MÉTODO... 57

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AGRADECIMENTO

Ao grande Deus pela força espiritual que me rege e por iluminar os meus caminhos.

A minha família, meu porto seguro, meu pai Sebastião, minha mãe Angelita, minha

irmã Alane Kelly, a minha avó Mariazinha, meus Tios Alex, Amarildo, Sônia, Norma e

Sonilde “in memoria”, mesmo estando distantes suportando as saudades, são eles meus

grandes incentivadores, sem eles todas as minhas conquistas não fariam sentido.

Ao grande mestre idealizador e incentivador deste projeto, o Prof. Papa que me acolheu

durante todo o mestrado e juntos desenvolvemos um trabalho em equipe.

Aos professores Nereu “Néris” pelos ensinamentos e pelos abraços de apoio durante esta etapa, Marco Alvarenga pelas oportunidades, considerações e conselhos, ao Zé

Dell’Aqua pelas horas de discussão e incentivo e a todos os outros professores do

Departamento de Reprodução Animal e Radiologia Veterinária.

Sou grato aos funcionários do departamento pelo apoio no dia a dia a Camila

Dell’Aqua, Edvaldo, D. Raquel, Edilson, Felipe, meu muito obrigado.

Aos velhos amigos de longas jornadas Luis, Endrigo, Bertiny e aos outros que aqui

ganhei durante a residência e no mestrado em especial ao Felipe Dalanezi, Luiz Roberto

Jr, Felipe Hartwig, João Alexandre, Rafaella Hayashi, Patricia Papa, Marcio Teoro.

À Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia da Universidade estadual Paulista

“Júlio de Mesquita Filho”– Botucatu-SP, pela oportunidade de cursar o Mestrado.

À Fundação de Apoio à Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP) pela bolsa de

estudo concedida para a realização do projeto (Processo FAPESP: 2014/00354-0).

Agradeço também aos Haras parceiro que contribuíram para a realização deste projeto:

Haras Itapuã, Haras Ogar, Equicenter Central de Reprodução e a Central Lub Breeding.

Assim finalizo agradecendo a todos aqueles que de alguma forma contribuíram em mais

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LISTA DE ABREVIAÇÕES

AST aspartato amino transferase PS plasma seminal

BG -glucuronidase RAP espermatozoides rápido

cm Centímetro SPTZ espermatozoides

Ca++ Cálcio VA vagina artificial

Cl- Cloretos VAP velocidade de trajeto

CRIP proteína rica em cisteína VCL velocidade curvilínea

Cu+ Cobre VSL velocidade linear

DNA ácido desoxirribonucleico UFC unidade formadora de colônias

ERO espécie reativa de oxigênio UI unidades internacionais

FA fosfatase alcalina Zn+ zinco

FAC fosfatase ácida [ ] concentração

Fe+ Ferro

Fn-2 fibronectína tipo II

GGT -glutamil transferase

G1 grupo 1

G2 grupo 2

HSP proteína do plasma seminal equino

IM integridade de membrana

K+ Potássio kDa kilo Dalton

LDH lactato desidrogenase

Mg+ Magnésio mL Mililitro

MP motilidade espermática progressiva

MT motilidade espermática total

Na+ Sódio

PGE2 prostaglandina E2

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RESUMO

OLIVEIRA, S.N. EFEITO DA COLHEITA FRACIONADA SOBRE A CINÉTICA E

VIABILIDADE ESPERMÁTICAS DO SÊMEN REFRIGERADO E CONGELADO

DE GARANHÕES. Botucatu – SP. 2016, p.103. Dissertação (Mestrado) – Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia, Campus Botucatu, Universidade Estadual Paulista

“Júlio de Mesquita Filho”.

O pênis é o órgão copulador e no garanhão é classificado como sendo músculo

cavernoso, em que os espaços cavernosos são preenchidos de sangue durante a ereção.

Nos testículos que ocorre a produção espermática, que são transportados pela rete testis

até o epidídimo, onde sofrerão maturação, capacidade fertilizante e armazenados até a

ejaculação. As glândulas sexuais acessórias são responsáveis pelos fluidos expelidos

durante a ejaculação, denominado de plasma seminal, que se misturam às células

espermáticas e formam o ejaculado. Cada uma dessas glândulas são responsáveis por

uma determinada secreção que vai direcionar o ejaculado equino a ser dividido em três

distintas frações: fração pré-espermática, produzida pelas glândulas bulbouretrais e

próstata; fração rica em espermatozoides, produzida pelas secreções do epidídimo e por

líquidos das ampolas dos ductos deferentes; fração pós-espermática ou fração pobre,

formada por espermatozoides remanescentes no canal uretral e líquidos produzidos

pelas vesículas seminais, o gel. Durante o processo fisiológico de cópula, ocorrem

vários eventos denominados de ereção, em que o garanhão se excita por estímulos,

emissão que caracteriza-se pela liberação de espermatozoides dentro da uretra pélvica,

seguido da ejaculação com a expulsão do sêmen, o relaxamento e recolhimento do

pênis. Normalmente, as colheitas de sêmen equino são realizadas de forma

convencional, com vagina artificial fechada, em que todas as frações se misturam. Cada

garanhão possui características individuais com relação à manutenção das células

espermáticas durante a criopreservação, essas características podem estar relacionadas à

produção do plasma seminal, assim como os vários componentes que os compõem.

Sabe-se que existe um efeito deletério desempenhado pelos componentes do plasma

seminal produzido principalmente pelas vesículas seminais, aos espermatozoides

durante o processo de criopreservação, porém, esses fatores ainda são desconhecidos.

(10)

de proteínas e íons presentes em cada uma das frações do ejaculado. Sabendo disso, a

colheita fracionada pode trazer benefícios aos espermatozoides, de forma que as

primeiras frações não tenham contato com o plasma seminal produzido pelas vesículas

seminais. O presente trabalho objetiva revisar a colheita fracionada de sêmen em

garanhões, assim como, seus benefícios para as células espermáticas que serão

submetidas à criopreservação.

(11)

ABSTRACT

OLIVEIRA, S.N. EFFECT THE FRACTIONATED COLLECTION ABOUT

KINETIC AND SPERM VIABILITY THE SPERM COOLED AND FROZEN STALLION. Botucatu – SP. 2016 p.103. Dissertação (Mestrado) – Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia, Campus Botucatu, Universidade Estadual Paulista

“Júlio de Mesquita Filho”.

The penis is the copulatory organ and in the stallion it is classified as cavernous muscle and the cavernous spaces are filled with blood during erection. In the testicles occurs sperm production, that are transported through the rete testis to the epididymis, where they will suffer maturation, fertilizer capacity and will be stored until ejaculation. The accessory sex glands are responsible for the expelled fluids during ejaculation, named seminal plasma that are mixed with sperm cells and form the ejaculate. Each of these glands are responsible for a certain secretion that will divide equine semen into three distinct fractions: pre-sperm fraction, produced by the prostate and bulbourethral glands; rich fraction in sperm, produced by epididymal secretions and liquids from ampoules of the vas deferens; post-sperm fraction or poor fraction, consisting of sperm remaining in the urethral canal and liquids produced by the seminal vesicles, the gel. During the physiological process of mating, several events occur named erection, in which the stud is excited by stimuli emission which is characterized by the release of sperm into the pelvic urethra followed by ejaculation with the expulsion of semen, relaxation and gathering the penis. Typically, horse semen collections are performed in the conventional way, with a closed artificial vagina, where all the fractions are mixed. Each stud has individual characteristics related to the maintenance of sperm cells during the cryopreservation, these characteristics may be related to production of seminal plasma and to the components that form it as well. What is known is that there is a negative effect played by the seminal plasma components mainly produced by the seminal vesicles, to the sperm during cryopreservation process, however, these factors are still unknown. Several hypotheses are suggested such as the production’s reduction of lipids and proteins and the types of ions present in each fraction of the ejaculate. Knowing this, the fractional collection may be beneficial to sperm, considering that the first fractions do not have contact with seminal plasma produced by the seminal vesicles. This work aims to review the semen fraction harvest in stallions, as well as its benefits for the sperm cells to be submitted to cryopreservation.

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1. INTRODUÇÃO

A equinocultura brasileira possui o quarto maior rebanho mundial, com 5,8

milhões de cabeças, ficando atrás dos Estados Unidos, China e México, seu faturamento

anual fica em torno de R$ 7,5 bilhões, gerando 642,5 mil empregos diretos e US$ 27,4

milhões em exportação (GUERRA, 2010). Tendo em vista este crescente mercado,

faz-se necessário o uso das biotecnologias reprodutivas relacionadas a fêmeas e também aos

machos: inseminação artificial, transferência de embrião, transferência intrafalopiana de

gametas, injeção intracitoplasmática de espermatozoides e refrigeração de sêmen e

congelação de sêmen. Dentre as biotécnicas citadas, a inseminação artificial vem se

tornando um pilar de sustentação e evolução na criação de equinos, tendo em vista que

seu uso traz grandes benefícios na difusão do material genético de animais classificados

como superiores, dentre eles, campeões em diversas modalidades de competição

equestre.

Apesar do avanço no uso das biotécnicas reprodutivas, ainda há grandes desafios

para melhorar os índices reprodutivos na equinocultura, principalmente quando estão

relacionadas à criopreservação das células espermáticas em garanhões.

Estudos realizados indicam que em alguns garanhões, o plasma seminal (PS)

acarreta danos aos espermatozoides, culminando em prejuízos na qualidade espermática

durante a refrigeração e a congelação (KARESKOSKI; KATILA, 2008), podendo

diminuir os índices de fertilidade. Embora o plasma seminal possua um efeito negativo

durante a criopreservação, existem também evidências do seu papel protetor às células

espermáticas (KARESKOSKI et al., 2006), dentre elas a prevenção da capacitação

prematura que pode ser induzida durante o processo de congelação e descongelação

(SCHEMBRI et al., 2002), afirmando que, a presença de pequenas quantidades de PS

parece ser necessária. Segundo Alghamdi et al. (2002), a motilidade espermática é

maior quando a proporção de PS é ≤ 5% antes da refrigeração e congelação, quando comparada a amostras com proporções entre 10-30% no volume do ejaculado. Por outro

lado, Jasko et al. (1992) demonstram que a proporção ideal de PS no ejaculado seja em

torno de 5 a 20%, sem que haja um efeito prejudicial durante a criopreservação.

(14)

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aqueles garanhões cujos ejaculados possuem baixa tolerância à criopreservação

(KARESKOSKI; KATILA, 2008).

Assim, pressupõe-se que exista uma variação individual do efeito do PS entre

garanhões (AKCAY et al., 2006) e da sua produção, existindo variações na composição

do PS nas diferentes frações do ejaculado (KATILA et al., 2004). Contudo, em estudos

realizados, demonstrou-se que a fração rica em espermatozoides do ejaculado possui

uma tolerância maior a criopreservação quando comparada às demais frações (SIEME

et al., 2004; KARESKOSKI et al., 2006).

Durante a colheita de sêmen de forma convencional, utilizando-se as vaginas

artificiais modelo Missouri, Nishikawa, Hannover, Colorado ou Botucatu, todas as

frações do ejaculado se misturam e não há possibilidade de separação destas. Diante

disto, Varner et al. (1987) sugerem que a colheita fracionada poderá reduzir o efeito

deletério do PS ao colher apenas a fração rica em espermatozoides do ejaculado,

correspondente a 75% do total de espermatozoides.

Desta forma, uma alternativa para minimizar as injúrias provocadas pelo PS em

garanhões que produzem sêmen com tolerância limitada à criopreservação, seria a

colheita de sêmen fracionada, possibilitando, com isso, identificar as diferentes frações

e separar a fração espermática com maior percentual de espermatozoides em menor

contato com o PS. O presente trabalho tem por objetivo revisar a colheita fracionada de

sêmen em garanhões, assim como, seus benefícios para as células espermáticas que

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REFERÊNCIAS

AITKEN, R. J.; BAKER, M. A. Oxidative stress and male reproductive biology.

Reproduction Fertility and Development, v.16, p.581–588, 2004.

AKCAY, E.; REILAS, T.; ANDERSSON, M.; KATILA, T. Effect of seminal plasma

fractions on sperm survival after cooled storage. Journal of Veterinary Medicine, v.53

p.481-485, 2006.

ALGHAMDI, A. S.; TROEDSSON, M. H.; XUE, J. L.; CRABO, B. G. Effect of

seminal plasma concentration and various extenders on postthaw motility and glass

wool-Sephadex filtration of cryopreserved stallion semen. American Journal of

Veterinary Research, v.63, p.880-885, 2002.

ALMEIDA, J. L. Efeito de diferentes concentrações de plasma seminal na

criopreservação do sêmen equino [dissertação]. Brasília: Faculdade de Agronomia e

Medicina Veterinária, Universidade de Brasília; 2006.

AMANN, R. P.; GRAHAM, J. K. Spermatozoal function. In: McKinnon AO, Voss JL.

Equine reproduction. Philadelphia: Saunders. 1993:715-745.

AURICH, J. E.; KÜHNE, J. A.; HOPPE H.; AURICH, C. Seminal plasma affects

membrane integrity and motility of equine spermatozoa after cryopreservation

Theriogenology, v.46, p.791-797, 1996.

AURICH, C. Factors affecting the plasma membrane function of cooled-stored stallion

spermatozoa. Animal Reproduction Science, v.89, p.65–75, 2005.

BALL, B. A.; GRAVANCE, C. G.; MEDINA, V.; BAUMBER, J.; LIU, I. K. Catalase

activity in equine semen. American Journal of Veterinary Research, v.61, p.1026-69,

(16)

36

BERLINER, V. Horses and Jackstock, In: Perry, E.J. (ed.): The Artificial

Insemination of Farm Animals. Rutgers University Press, New Brunswick, NJ, 1960,

p.221.

BEYLER, S. A.; ZANEVELD, L. J. D. 1982: The male accessory sex glands. In:

Biochemistry of mammalian reproduction. Eds: Zaneveld LJD, Chatterton RT. John

Wiley & Sons, NY, USA. pp. 65-88.

BITTMAR, A.; KOSINIAK, K. The role of selected biochemical components of equine

seminal plasma in determining suitability for deep-freezing. Archivum Veterinarium

Polonicum, v.35, p.17–29, 1992.

BRANDONL, C. I.; HEUSNES, G. L.; CAUDLE, A. B.; FAYRER-HOSKEN, R. A.

Two-dimensional polyacrylamlde gel electrophoresis of equine seminal plasma proteins

and their correlation with fertility. Theriogenology, v.52, p.863-873, 1999.

BRINSKO, S. P.; CROCKETT, E. C.; SQUIRES, E. L. Effect of centrifugation and

partial removal of seminal plasma on equine spermatozoal motility after cooling and

storage. Theriogenology, v.54, p.129–36, 2000.

CALVETE, J. J.; NESSAU, S.; MANN, K.; SANZ, L.; SIEME, H.; KLUG, E.;

TÖPFER-PETERSEN, E. Isolation and Biochemical characterization of stallion

seminal-plasma proteins. Reproduction in Domestic Animals, v.29, p.411–426, 1994.

CLAUS, R.; DIMMICK, M. A.; GIMENE, Z. T.; HUDSON, L. W. Estrogens and

prostaglandin f2a in the semen and blood plasma of stallions. Theriogenology, v.38,

p.687-693, 1992.

CRUMP Jr, J.; CRUMP, J. Stallion Ejaculation Induced by Manual Stimulation of the

Penis. The Journal of Theriogenology, v.31, n.2, p.341-346, 1989.

EKHLASI-HUNDRIESER, M.; SCHÄFER, B.; KIRCHHOFF, C.; HESS, O.;

(17)

37

characterization of equine sperm-binding fibronectin-II module proteins. Molecular

Reproduction and Development, v.70, p.45–57, 2005.

ENGLAND, G. C. (2005): The normal stallion. In.: Fertility & Obstetrics in the Horse.

Blackwell, Oxford, p.200- 225.

FONSECA, C. W. Efeito de uma nova técnica de coleta fracionada sobre a composição

do plasma seminal e qualidade do sêmen equino pós-descongelamento [dissertação].

Campos dos Goytacazes: Universidade estadual do norte fluminense Darcy Ribeiro:

2006.

GADELLA, B. M.; LOMBARDO, F.; PAOLI, D.; CAPONECCHIA, L.; FAMILIARI,

G.; VERLENGIA, C.; DONDERO, F.; LENZI, A. Capacitacion and the acrosome

reaction in equine sperm. Animal Reproduction Science, v.68, p.249–265, 2001.

GREUBE, A.; MÜLLER, K.; TÖPFER-PETERSEN, E.; HERRMANN, A.; MÜLLER,

P. Interaction of fibronectin type II proteins with membranes: the stallion seminal

plasma protein SP-1 ⁄ 2. Biochemistry, v.43, p.464–472, 2004.

GUERRA, P. J. Brasil tem o quarto maior rebanho equino do mundo, com 5,8 milhões

de cabeça. Notícia 16/03/2010. Conselho Federal de Medicina Veterinária. Disponível

em: http://www.cfmv.org.br/portal/noticia.php?cod=606. Acesso em: 01 de outubro de

2015, 00:03 hr.

HAFEZ, E. S. Reprodução Animal, 7.ed., São Paulo: Manole, 2004. 513p.

HEISE, A.; THOMPSON, P. N.; GERBER, D. Influence of seminal plasma on fresh

and post-thaw parameters of stallion epididymal spermatozoa. Animal Reproduction

Science, v.123, p.192–201, 2011.

JAEGER, J. R.; DELCURTO, T. Endogenous prostaglandin F2 concentrations in

bovine whole semen, seminal plasma, and extended semen. Theriogenology, v.78,

(18)

38

JASKO, D. J.; MORAN, D. M.; FARLIN, M. E.; SQUIRES, E. L. Effect of seminal

plasma dilution or removal on spermatozoal motion characteristics of cooled stallion

semen. Theriogenology, v.35, n.6, p.1059–1067, 1991.

JASKO, D. J.; HATHAWAY, J. A.; SCHALTENBRAND, V. L.; SIMPER, W. D.;

SQUIRES, E. L. Effect of seminal plasma and egg yolk on motion characteristics of

cooled stallion spermatozoa. Theriogenology, v.37, p.1241–1252, 1992.

KACZMAREK, M. M.; KRAWCZYNSKI, K.; BLITEK, A.; KIEWISZ, J.; SCHAMS,

D.; ZIECIK, A. J. Seminal plasma affects prostaglandin synthesis in the porcine

oviduct. Theriogenology, v.74, p.1207-1220, 2010.

KARESKOSKI, A. M.; REILAS, T.; CALVETE, J. J.; SANZ, L.;

RODRIGUEZ-MARTINEZ, H.; KATILA, T. Proteins in fractionated stallion seminal plasma.

Reproduction in Domestic Animals, v.40, p.255–414. 2005a.

KARESKOSKI, A. M.; REILAS, T.; SANKARI, S.; ANDERSSON, M.; KATILA, T.

Composition of fractionated stallion ejaculates. Animal Reproduction Science, v.89,

p.228–230. 2005b.

KARESKOSKI, A. M.; REILAS, T.; ANDERSSON, M.; KATILA, T. Motility and

plasma membrane integrity of spermatozoa in fractionated stallion ejaculates after

storage. Reproduction in Domestic Animals, v.41, p.33-38, 2006.

KARESKOSKI, A. M.; KATILA, T. Components of stallion seminal plasma and the

effects of seminal plasma on sperm longevity. Animal Reproduction Science, v.10,

p.249-256, 2008.

KARESKOSKI, A. M.; REILAS, T.; SANKARI, S.; ANDERSSON, M.; GUVENC,

K.; KATILA, T. Alkaline and Acid Phosphatase, b-Glucuronidase and Electrolyte

Levels in Fractionated Stallion Ejaculates. Reproduction in Domestic Animals, v.45,

(19)

39

KARESKOSKI, A. M. Components of fractionated stallion seminal plasma and the

effects of seminal plasma on sperm longevity [Dissertação]. Faculty of Veterinary

Medicine University of Helsinki Finland. 2011, 86p

KARESKOSKI, A. M.; RIVERA DEL ALAMO, M. M.; GUVENC, K.; REILAS, T.;

CALVETE, J. J.; RODRIGUEZ-MARTINEZ, H.; ANDERSSON, M.; KATILA, T.

Protein Composition of Seminal Plasma in Fractionated Stallion Ejaculates.

Reproduction in Domestic Animals, v.46, p.79–84, 2011a.

KARESKOSKI, A. M.; SANKARI, S.; JOHANNISSON, A.; KINDAHL, H.;

ANDERSSON, M.; KATILA, T. The Association of the Presence of Seminal Plasma

and Its Components with Sperm Longevity in Fractionated Stallion Ejaculates.

Reproduction in Domestic Animals, v.46, p.1073–1081, 2011b.

KATILA, T.; REILAS, T.; GUVENC, K.; ALM, K.; ANDERSSON, M. 2004: The

effect of seminal plasma on motility characteristics and viability of spermatozoa after cooled storage. In: Muller, J., Z. Muller, and J. F. Wade (eds), Proceedings of the

3rd Meeting of the EEGG, Have meyer Foundation Monograph Series No. 13pp. 3–5. R & W Publications Limited, Suffolk, UK.

KATILA, T.; KARESKOSKI, M.; AKCAY, E.; REILAS, T.; KOSKINEN, E.;

CALVETE, J. J. 2005. Seminal plasma studies in stallions.In: Alm, H., Torner, H.,

Wade, J.F. (Eds.), Havemeyer Foundation Monograph Series, vol. 18, pp. 3–5.

KLEIN, B. G. Cunningham Tratado de Fisiologia Veterinária. 5. Ed. Rio de Janeiro:

Elsevier, 2014, 451p.

KOSINIAK, K. Characteristics of the successive jets of ejaculated semen of stallions.

Journal of Reproduction and Fertility, Suppl. v.23, p.59–61, 1975.

LEWIS, S. E. M.; SAMANTHA, E.; STERLING, L.; YOUNG, I. S.; THOMPSON, W.

Comparison of individual antioxidants of sperm and seminal plasma in fertile and

(20)

40

LINDEBERG, H.; KARJALAINEN, H.; KOSKINEN, E.; KATILA, T. Quality of

stallion semen obtained by a new semen collection phantom (equidame®) versus a

missouri® artificial vagina. Theriogenology, v.51, p.1157-1173, 1999.

LOPES, M. D.; PAPA, F. O.; MARTINO, A. P.; BICUDO, S. D.; ALVARENGA, M.

A. Efeito do tipo de mucosa de vagina artificial sobre a qualidade espermática de

garanhões. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v.21, n.4, p.29-34, 1997.

MAGISTRINI, M.; LINDEBERG, H.; KOSKINEN, E.; BEAU, P.; SEGUIN, F.

Biophysical and H magnetic resonance spectroscopy characteristics of fractionated

stallion ejaculates. Journal of Reproduction and Fertility, Suppl. v.56, p.101-110,

2000.

MANN, T.; SHORT, R. V.; WALTON, A. The 'tail-end sample' of stallion semen.

Journal of agricultural Science Cambridge, v.49, p.301, 1957.

MANN, T.; MINOTAKIS, C. S.; POLGE, C. Semen composition and metabolism in

the stallion and jackass. Journal of Reproduction and Fertility, v.5, p.109-122, 1963.

McDONNELL, S. M.; GARCIA, M. C.; KENNEY, R. M. Imipramine-Induced

Erection, Masturbation, and Ejaculation in Male Horses. Pharmacology Biochemistry

& Behavior, v.27, p.187-191, 1987.

McDONNELL, S. M.; LOVE, C. C. Manual stimulation collection of semen from

stallions: training time, sexual behavior and semen Theriogenology, v.33 n.6, 1990.

McDONNELL, S. M. Ejaculation physiology and dysfunction. Veterinary Clinics of

North America: Equine Practice, v.81, n.11, 1992.

McDONNELL, S. M. Oral imipramine and intravenous xylazine for

pharmacologically-induced ex copula ejaculation in stallions. Animal Reproduction Science, v.68, p.153– 159, 2001.

McDONNELL, S. M. Techniques for Extending the Breeding Career of Aging and

(21)

41

McKINNON, A. O.; VOSS, J. L. (1992) Equine Reproduction, Lea and Febiger,

Philadelphia, London.

MONTEIRO, G. A.; PAPA, F. O.; ZAHN, F. S.; DELLAQUA Jr., J. A.; MELO, C. M.;

MAZIERO, R. R. D.; AVANZI, B. R.; ALVARENGA, M. A.; GUASTI, P. N.

Cryopreservation and fertility of ejaculated and epididymal stallion Sperm. Animal

Reproduction Science, v.127, p.197–201, 2011.

MONTEIRO, G. A.; GUASTI, P. N.; ROCHA, A. S.; MARTIN, I.; SANCLER-SILVA,

Y. F. R.; FREITAS DELL’AQUA, C. P.; DELL’AQUA Jr., J. A.; PAPA, F. O. Effect

of Storage Time and Temperature of Equine Epididymis on the Viability, Motion

Parameters, and Freezability of Epididymal Sperm. Journal of Equine Veterinary

Science, v.33, p.169-173, 2013.

MOORE, A. I.; SQUIRES, E. L.; GRAHAM, J. K. Effect of seminal plasma on the

cryopreservation of equine spermatozoa. Theriogenology, v.63, p.2372–2381, 2005.

MUNGAN, N. A.; MUNGAN, G.; BASAR, M. M.; BAYKAM, M.; ATAN, A. Effect

of seminal plasma calcitonin levels on sperm mobility. Archives of Andrology, v.47,

p.113–117, 2001.

MUIÑO-BLANCO, T.; PÉREZ-PÉ, R.; CEBRIÁN-PÉREZ J.A. Review Adticle:

Seminal plasma proteins and sperm resistence to stress. Reproduction in Domestic

Animals, v.43 (suppl. 4), p.18-31, 2008.

NELSON, D. L.; COX, M. M. Lehninger Princípios da Bioquímica. 6.ed. Porto Alegre:

Artmed, 2014, 1298p.

OLIVEIRA, S. N.; ARAUJO, E. A. B.; CHAVES-SILVA, L. F. M.; ANDRADE Jr, L.

R. P.; DALANEZI, F. M.; PINTO, B. M.; CARNEIRO, J. A. M.; DELLAQUA Jr., J.

A.; ALVARENGA, M. A.; PAPA, F. O. Eficiência de uma nova técnica de coleta de

sêmen para diagnóstico e controle de piospermia em garanhões: Relato de caso. In: XVI

(22)

42

OLIVEIRA, S. N.; CHAVES-SILVA, L. F. M.; ARAUJO, E. A. B.; DALANEZI, F.

M.; PINTO, B. M.; HARTWIG, F. P.; SEGABINAZZI, L.; HAYASHI, R. M.;

DELLAQUA Jr., J. A.; ALVARENGA, M. A.; PAPA, F. O. Inovação e funcionalidade

prática na coleta fracionada de sêmen equino. In: XVI Conferência Anual da

ABRAVEQ, Águas de Lindóia - SP. p.215-216, 2015.

PADILLA, A. W.; FOOTE, R. H. Extender and centrifugation effects on the motility

patterns of slow-cooled stallion spermatozoa. Journal Animal Science, v.69,3 p.308-

3313, 1991.

PAPA, F. O.; MELO, C. M.; FIORATTI, E. G.; DELL’AQUA Jr. J. A.; ZAHN, F. S.;

ALVARENGA, M. A. Freezing of stallion epididymal sperm. Animal Reproduction

Science, v.107, p.293-301, 2008.

PESCH, S.; BERGMANN, M.; BOSTEDT, H. Determination of some enzymes and

macro- and microelements in stallion seminal plasma and their correlations to semen

quality. Theriogenology, v.66, p.307–313, 2006.

PICKETT, B. W.; SULLIVAN, J. J.; BYERS, W. W.; PACE, M. M.; REMMENGA, E.

E."Effect of centrifugation and seminal plasma on motility and fertility of stallion and

bull spermatozoa. Fertility and Sterility, v.26, p.167-174, 1975.

REINERT, M.; CALVETE, J. J.; SANZ, L.; MANN, K.; TÖPFER-PETERSEN, E.

Primary structure of stallion seminal plasma protein HSP-7, a zona-pellucida binding

protein of the spermadhesin family. European Journal Biochemistry, v.242,

p.636-640, 1996.

RODGER, J. C. Seminal plasma, an unnecessary evil?. Theriogenology, v.2, n.6,

p.237–247, 1975.

RODRÍGUEZ-MARTÍNEZ, H.; KVIST, U.; ERNERUDH, J.; SANZ, L.; CALVETE,

J.J. Seminal Plasma Proteins: What Role Do They Play?. American Journal of

(23)

43

RUFO, G. A.; SINGH, J. P.; BABCOCK, D. F.; LARDY, H. A. Purification and

characterization of a calcium transport inhibitor protein from bovine seminal plasma.

Journal of Biological Chemistry, v.257, p.4627-4632, 1982.

SAMPER, J. C. Equine Breeding Management adnd Artificial Insemination. 2. Ed.

Missouri: Saunders, 2009, 212p.

SCHEMBRI, M. A.; MAJOR, D. A.; SUTTIE, J. J.; MAXWELL, W. M.; EVANS, G.

Capacitation-like changes in equine spermatozoa throughout the cryopreservation

process. Reproduction Fertility and Development. v.14, p.225–233, 2002.

SCHUMACHER, J.; RIDDELL, M. G. Collection of stallion semen without a mount .

Theriogenology, v.26 n.2, 1986.

SCHAMBONY, A.; GENTZEL, M.; WOLFES, H.; RAIDA, M.; NEUMANN, U.;

TÖPFER-PETERSEN, E. Equine CRISP-3: Primary structure and expression in the

male genital tract. Biochimica et Biophysica Acta, v.1387, p.206–216, 1998.

SENGER, P.L. Pathways to Pregnancy and parturition. 2. ed. Pullman: Current

Conceptions, 2005. 373 p.

SHORE, L.; YEHUDA, R. MARCUS, S.; BARTOOV, B.; SHEMESH, M. Effect of

hCG injection on prostaglandin E concentrations in ram seminal plasma. Protaglandins

& other Lipid Mediators, v.70, p.291–301, 2003.

SIEME, H.; KATILA, T.; KLUG, E. Effect of semen collection practices on sperm

characteristics before and after storage and on fertility of stallions. Theriogenology, v.

61, p.769- 784, 2004.

SILVA, K. M. G.; PAPA, F. O.; GABALDI, S. H. CROCCI, A. J. Efeito dos

antibióticos gentamicina e cefalotina e do aminoácido taurina em meio de gema de ovo

(Baken), sobre a longevidade e fertilidade do sêmen resfriado de equino. Revista

(24)

44

TISCHNER, M.; KOSINIAK, K.; BIELANSKI, W. Analysis of the pattern of

ejaculation in stallions. Journal of Reproduction and Fertility, v.41, p.329-335, 1974.

TRISCHNER, M. Evaluation of deep-frozen semen in stallions. Journal of

Reproduction and Fertility, Suppl, v.27, p.53-59, 1979.

TISCHNER, M.; KOSINIAK, K. Techniques for collection and storage of stallion

semen with minimal secondary contamination. Acta Veterinaria Scandinavica,

(Suppl), v.88, p.83-90, 1992.

TÖPFER-PETERSEN, E.; EKHLASI-HUNDRIESER, M.; KIRCHHOFF, C.; LEEB,

T.; SIEME, H. The role of stallion seminal proteins in fertilization. Animal

Reproduction Science, v.89, p.159–170, 2005.

TROEDSSON, M. H. T.; DESVOUSGES, A. S.; ALGHAMDI, A. S.; DAHMS, B.;

DOW, C. A.; HAYNA, J.; VALESCO, R.; COLLAHAN, P. T.; MACPHERSON, M.

L.; POZOR, M.; BUHI, W. C. Components in seminal plasma regulating sperm

transport and elimination. Animal Reproduction Science, v.89, p.171-186, 2005.

TURNER, R. M. O.; McDONNELL, S. M. Alkaline phosphatase in stallion semen:

characterization and clinical applications. Theriogenology, v.60, p.1-10, 2003.

VALSA, J.; SKANDHAN, K. P.; KHAN, P. S.; SUMANGALA, B.; GONDALIA, M.

Split ejaculation study: semen parameters and calcium and magnesium in seminal

plasma. Central European Journal of Urology, v.65, n.4, p.216-218, 2012.

VARNER, D. D.; BLANCHARD, T. L.; LOVE, C. L.; GARCIA, M. C.; KENNEY, R.

M. Effects of semen fractionation and dilution ratio on equine spermatozoal motility

parameters. Theriogenology, v.28, p.709–718, 1987.

WEBER, J. A.; WOODS, G. L. A technique for transrectal ultrasonography of stallions

(25)

45

YANAGIMACHI, R.; USUI, N. Calcium dependence of the acrosome reaction and

activation of guinea pig spermatozoa. Experimental Cell Research, v.89, p.161–174, 1974.

YANAGIMACHI, R. Fertility of mammalian spermatozoa: its development and

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