i UNIVERSIDADE FEDERAL DA PARAÍBA
CENTRO DE CIÊNCIAS AGRÁRIAS
DEPARTAMENTO DE FITOTECNIA E CIÊNCIAS AMBIENTAIS CAMPUS II – AREIA – PB
CURSO DE AGRONOMIA
CONTROLE ALTERNATIVO DA ANTRACNOSE EM FRUTOS DE MAMOEIRO E QUALIDADE PÓS-COLHEITA
JULIANA DE MACEDO VIDAL
AREIA-PB ABRIL-2013
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JULIANA DE MACEDO VIDAL
CONTROLE ALTERNATIVO DA ANTRACNOSE EM FRUTOS DE MAMOEIRO E QUALIDADE PÓS-COLHEITA
Trabalho de graduação apresentado à coordenação do Curso de Agronomia da Universidade Federal da Paraíba, Centro de Ciências Agrárias para a obtenção do Título de Engenheira Agrônoma.
ORIENTADORA: Profª. Dra. Luciana Cordeiro do Nascimento
AREIA – PB ABRIL-2013
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JULIANA DE MACEDO VIDAL
CONTROLE ALTERNATIVO DA ANTRACNOSE EM FRUTOS DE MAMOEIRO E QUALIDADE PÓS-COLHEITA
MONOGRAFIA APROVADA EM: ________/____________________/________
BANCA EXAMINADORA
Profª. Dra. Luciana Cordeiro do Nascimento Orientadora - UFPB/CCA
MSc. Wilza Carla Oliveira de Souza 1a Examinadora -UFPB/PPGA
MSc. Carmem Valdenia da Silva Santana 2a Examinadora – UFPB/PPGA
AREIA – PB ABRIL-2013
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AGRADECIMENTOS
À Deus por tudo que ele tem feito em minha vida, pela sua fidelidade em todos os momentos na minha formação acadêmica.
Aos meus pais João Vidal e Josefa de Macedo, por todo amor, apesar das dificuldades, por todos os esforços que sempre fizeram para que eu pudesse estudar, porque sempre me ajudaram, e sempre me apoiaram, agradeço a Deus, por eles existirem em minha vida. Agradeço a eles, por tudo, a minha irmã, Mariana Vidal, pela amizade e apoio.
A todos os meus familiares, tios, primos e amigos que sempre acreditaram e oraram por mim.
À professora Dra. Luciana Cordeiro do Nascimento.
A Ms. Wilza Carla Oliveira de Souza, por ter sempre me orientado, por ter dedicado grande parte do seu tempo para me ajudar, para realização deste trabalho, pela sua amizade e dedicação, e conhecimentos que me passou de forma clara e paciente.
A todos os grandes mestres que passaram na minha vida até aqui. Em especial aos CCA/UFPB professores, amigos e todos os funcionários.
Aos meus melhores amigos Tarciana Silva, por toda amizade e carinho. Aninha Pedroza, Fernando, Zé, Daiane, aos amigos de turma: Idaline (Bomberona), João Quintans, Berna, Marcolino, as meninas da casinha pelo apoio em todas as horas.
A minha grande amiga Sayonara,(maga do gado) por todas as aventuras vividas nessa nossa jornada, e por toda amizade.
A Neto Braga, por toda compreensão e carinho.
E a todos aqueles que não foram citados, mas que de alguma forma contribuíram para minha formação acadêmica, o meu muito obrigado.
v A minha avó materna, Maria Sebastiana de Macedo (Avó marinha), por tudo que ela foi, e por tudo que ela sempre representará em minha vida.
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O que darei ao Senhor por todos os seus benefícios para comigo?
Salmos116,12.
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SUMÁRIO
LISTA DE TABELAS RESUMO ABSTRACT 1. INTRODUÇÃO ... 11 2. OBJETIVOS ... 12 2.1. Objetivo Geral ... 12 2.2. Objetivos Específicos: ... 12 3. REVISÃO DE LITERATURA ... 12 3.1. A cultura do mamoeiro ... 12 3.2. Antracnose ... 143.3. Perdas pós-colheita em frutos de mamoeiro ... 15
3.4. Controle alternativo de doença de planta ... 16
3.5. Melão-de- são-caetano (Mormodica charantia) ... 17
4. MATERIAL E MÉTODOS ... 18
4.1 Isolamento e cultivo do patógeno ... 18
4.2 Obtenção do extrato de folhas de melão-de-são-caetano, indutor de resistência e fungicida. ... 18
4.3 Fungitoxicidade em placas - Bioensaio com extrato etanólico ... 19
4.4 Avaliação do desenvolvimento de C. gloeosporioides em frutos previamente tratados ... 19
4.5. Análise pós-colheita de frutos de mamoeiro tratados com extrato vegetal, fungicida e indutor de resistência ... 20
5. RESULTADOS E DISCUSSÃO ... 21
6. CONCLUSÃO ... 28
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LISTA DE TABELAS
Tabela 1- Toxidade do extrato vegetal, fungicida e indutor de resistência acibenzolar -S-methyl ao fungo Colletotrichum gloesporioides in vitro, isolado de frutos de mamoeiro.. ... 21
Tabela 2- Severidade da antracnose do mamão em frutos inoculados, tratados com extratos vegetais, fungicida e indutor de resistência Bion, utilizando-se escala de notas ... 23
Tabela 3-Avaliação da firmeza no 1º e 5º dia de armazenamento de frutos de mamoeiro tratados com extrato vegetal, fungicida e indutor de resistência Bion® e inoculados com Colletotrichum gloesporioides. ... 25
Tabela 4-Avaliação de sólidos solúveis (°Brix) no 1º e 5º dia de armazenamento de frutos de mamoeiro tratados com extrato vegetal, fungicida e indutor de resistência Bion® e inoculados com Colletotrichum gloesporioides ... 26
Tabela 5-Acidez total (g. ácido Cítrico 100 g-1) no 1º e 5º dia de armazenamento de frutos de mamoeiro tratados com extrato vegetal, fungicida e indutor de resistência Bion® e inoculados com Colletotrichum gloesporioides ... 27
LISTA DE FIGURAS
Figura 1. Perda de massa em frutos de mamoeiro tratados com extrato de melão de são caetano nas concentrações de 500, 1000, 1500 ppm, indutor de resistência e fungicida, durante cinco dias de avaliação...24
ix VIDAL, J. M; Controle alternativo da antracnose em frutos de mamoeiro e
qualidade pós-colheita, 2013. Areia-PB, 36f Trabalho de conclusão de curso
(Graduação em Agronomia). Universidade Federal da Paraíba. Orientação: Luciana Cordeiro do Nascimento.
RESUMO - Dentre as doenças de pós-colheita em mamoeiro (Carica papaya L.), a
antracnose causada pelo fungo Colletotrichum gloeosporioides, é uma das mais importantes. O uso de produtos naturais para o manejo tem sido uma alternativa eficaz para prolongar a sanidade e vida útil pós-colheita dos frutos. Assim, o trabalho teve como objetivo avaliar a influência do extrato vegetal de melão-de-são-caetano (Momordica charantia), do indutor de resistência acibenzolar-S-methil e do fungicida químico visando o controle da antracnose causada por C. gloesporioides e sua influência na qualidade pós-colheita dos frutos de mamoeiro. Os testes in vitro foram conduzidos através da inoculação de um disco de colônia fúngica no centro de placas de Petri contendo o meio BDA adicionado de extrato de M. charantia nas concentrações de 500, 1000 e 1500 ppm, do indutor acibenzolar-S-methil, fungicida (Dithane/Mancozebe) na dosagem recomendada pelo fabricante e água destilada (testemunha). Frutos de mamoeiro sadios, do grupo solo, com maturidade comercial foram lavados e pulverizados com os respectivos tratamentos com auxílio de borrifadores. O delineamento foi inteiramente casualisado com seis tratamentos e cinco repetições, sendo cada repetição representada por duas placas de Petri. Foi avaliado o crescimento micelial de C. gloeosporioides diariamente, medindo-se o mesmo em dois sentidos diametralmente opostos durante cinco dias e a severidade da podridão peduncular em frutos de mamoeiro, durante sete dias, através de escala de notas. A influência dos tratamentos sobre as características pós-colheita foi avaliada pela medição de pH, teores de sólidos solúveis totais, acidez titulável, e firmeza. Observou-se que os tratamentos com melão-de-são-caetano nas maiores concentrações apresentaram maiores efeitos inibitórios no crescimento micelial do patógeno. Na pós-colheita os resultados demonstraram que não houve diferença significativa na avaliação do pH nos frutos. O extrato de M. charantia influenciou positivamente na diminuição da perda de peso dos frutos enquanto o tratamento com acibenzolar-S-metil apresentou menor perda de massa.
Palavras chave: Carica papaya L., Mormodica charantia, acibenzolar-S-metil,
x VIDAL, J. M. Alternative control of anthracnose in papaya fruits and
post-harvest quality. 2013. Areia-PB, 36f. Completion of course work (graduate of
Agronomy). Centro de Ciências, Universidade Federal da Paraiba. Orientation: Luciana Cordeiro do Nascimento.
ABSTRACT - Among the post-harvest diseases in papaya fruits (Carica papaya L.),
anthracnose caused by Colletotrichum gloeosporioides, is one of the most important. The use of natural products for management has been an effective alternative to prolong sanity and post-harvest fruit. This disease has caused losses, and considerable damage to the economy, lack of appropriate measures, and disease management in fruits in most planting. Thus, the study had as objective to evaluate the influence of plant extract Momordica charantia, the resistance inducer Acibenzolar-S-methyl and, chemical fungicide for rot control caused by C. gloesporioides and its influence on postharvest quality of papaya fruits. In vitro tests were conducted by inoculating a disc of fungal colony in the center of Petri dishes containing PDA medium added extract of M. charantia at levels of 500, 1000 and 1500 ppm, acibenzolar-S-methyl, fungicide (Mancozeb) at the dosage recommended by the manufacturer and distilled water (control). Healthy papaya fruits of soil group, with commercial maturity were washed and sprayed with the respective treatments. The experimental design was completely randomized with six treatments and five replicates, being each replicate represented by two Petri dishes. It was evaluated the mycelial growth of C. gloeosporioides daily by measuring the same in two diametrically opposite directions for five days and disease severity through disease index. The influence of treatments on post-harvest characteristics was evaluated by measuring pH, total soluble solids, titratable acidity, and firmness. It was observed that the treatment with M. charantia are-the highest concentrations showed higher inhibitory effects on pathogen growth in vitro. In post-harvest results showed no significant difference in the evaluation of pH in fruit. The extract of M. charantia had positive influence in reducing the weight loss of the fruit while treatment with acibenzolar-S-methyl showed less mass loss.
Key words: Carica papaya L., Mormodica charantia, acybenzolar-S-methil, alternative
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1. INTRODUÇÃO
O mamão (Carica papaya L.) é uma fruta muito apreciada sendo uma das mais consumidas no Brasil. Originária da América tropical, a mesma se distribuiu por várias regiões do mundo (GOMES, 2007).
O Brasil em 2012 produziu quase 40 milhões de toneladas de frutas, em uma área cultivada de 2,44 milhões de hectares se constituindo em um dos principais distribuidor de produtos hortícolas no mundo. Neste cenário o mamão destaca-se como um dos principais produtos comercializados nacionalmente e produzidos para exportação, encontrando-se entre as frutas de maior preferência do consumidor (ANUÁRIO BRASILEIRO DE FUTICULTURA, 2012).
Na comercialização de frutos de mamoeiro um dos fatores limitantes são as doenças fúngicas como a antracnose, por Colletrotrichum gloeosporiodes Penz. A podridão causada por este fungo pode acarretar perda total da produção (DANTAS et al., 2003).
A antracnose é considerada a doença mais importante na pós-colheita do mamão e ocorre em todos os países produtores, embora ocorra em frutos em qualquer estágio de desenvolvimento, tendo preferência pelos frutos maduros. Os frutos infectados tornam-se impróprios para o consumo e inaceitáveis para a comercialização. Ainda que frutos colhidos não apresentem sintomas da doença, ela se manifesta na fase de pós-colheita, causando grandes perdas (CAPDEVILLE et al., 2005). A penetração do fungo ocorre por ferimentos causados na superfície dos frutos por insetos ou injúrias mecânicas. O seu controle tem sido alcançado por meio de um contínuo programa de pulverização química (KIMATI et al., 2005).
O uso de fungicidas durante a formação do fruto é uma das maneiras mais efetivas de controle da antracnose (LIBERATO; ZAMBOLIM, 2002), porém é considerado um problema visto que alguns tratamentos afetam o processo de amadurecimento natural dos frutos e, além disso, o uso permanente de fungicidas pode levar ao aparecimento de variações resistentes do fungo (GOMES et al., 2011).
A aplicação de extratos vegetais, como o extrato de melão-de-são-caetano (Mormodica charantia L.), vem se mostrando uma alternativa eficiente no controle de doenças causadas por fungos na pós-colheita de frutos e vegetais (SIQUEIRA et al., 2011).
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2. OBJETIVOS
2.1. Objetivo Geral
- Avaliar os efeitos de tratamentos alternativos no manejo da severidade da antracnose do mamoeiro causada por C. gloeosporiodes, bem como avaliar sua influência sobre a qualidade pós-colheita dos frutos.
2.2. Objetivos Específicos:
- Analisar crescimento micelial e esporulação de C. gloeosporiodes in vitro sob influência de extrato vegetal de melão-de-são-caetano, indutor de resistência e fungicida;
- Avaliar a severidade da antracnose em frutos de mamoeiro tratados com extrato vegetal de melão-de-são-caetano, indutor de resistência e fungicida;
- Observar a influência de extrato vegetal de melão-de-são-caetano, indutor de resistência e fungicida na qualidade pós-colheita e perda de massa de frutos de mamoeiro.
3. REVISÃO DE LITERATURA
3.1. A cultura do mamoeiro
A produção de mamoeiro representa 10% da produção mundial de frutas tropicais, girando em torno de oito milhões de toneladas, das quais 39% são produzidas na América Latina e Caribe. Os principais produtores mundiais são o Brasil, México, Nigéria, Índia e Indonésia, enquanto os maiores exportadores são o México e a Malásia (FAOSTAT, 2010). Quanto à produção nacional de frutos de mamão, os principais produtores são os Estados da Bahia, Espírito Santo, Rio Grande do Norte e Ceará. No quesito exportações, o estado do Espírito Santo responde por 50% do total dos frutos exportados (IBGE, 2010).
13 No Brasil a fruticultura é uma atividade que vem crescendo nos últimos anos, esse crescimento tem gerado emprego e renda e conquistado diferentes mercados de comercialização (ANUÁRIO BRASILEIRO DE FUTICULTURA, 2012). O Brasil produz quase 40 milhões de toneladas de frutas, em uma área cultivada de 2,44 milhões de hectares (FAOSTAT, 2012), apenas atrás da Índia e China, se destacando como um dos principais países produtores e distribuidores de produtos hortícolas. Neste cenário o mamão destaca-se como um dos principais produtos comercializados nacionalmente e produzidos para exportação, encontrando-se entre as frutas de maior preferência do consumidor (ANUÁRIO BRASILEIRO DE FRUTICULTURA, 2012).
No Estado da Paraíba a produção vem crescendo a cada ano, tendo como seu maior produtor o município de Mamanguape o qual produziu no ano de 2010, 8.800 toneladas anuais da fruta seguidos pelos municípios de Conde e Pitimbú ao quais produziram 3.400 e 2.800 toneladas anuais, respectivamente (IBGE, 2010).
Por ser uma cultura que produz durante todo o ano, sendo necessária renovação do pomar em média um ano e meio após o plantio, é uma atividade agrícola de grande importância social, e econômica, responsável pela geração de emprego e renda, absorvendo mão de obra por longos períodos do ano (SILVA et al., 2001).
O mamoeiro pertence à classe Dicotyledoneae, subclasse Archichlamydeae, ordem Violales, subordem Caricaceae, família Caricaceae e gênero Carica (MARIN et al., 2004). Apresenta sistema radicular pivotante, com a raiz principal bem desenvolvida, de coloração esbranquiçada com grande ramificação nos primeiros 30 cm do solo. Pode atingir de 3 a 8 metros de altura com caule cilíndrico, reto, herbáceo, com 10 a 30 cm de diâmetro (KIMATI et al., 2005). Suas folhas são alternas, grandes com 20 a 60 cm de comprimento e até 70 cm de diâmetro com pecíolos longos verde-pálidos com comprimento que varia de 50 a 70 cm. O fruto é uma baga, dependendo do tipo de flor pode ter as seguintes formas: arredondado, oblongo, alongado, cilíndrico e piriforme, a casca é fina com coloração que varia de amarelo clara a laranja que protege a polpa com espessura que varia de 2,5 a 5,0 cm. O fruto pode atingir 50 cm de comprimento e pesar até 5 kg. As sementes são pequenas, redondas e rugosas (CHAIM et al., 2007).
As cultivares de mamoeiro mais explorados no Brasil são classificadas em dois grupos: Solo e Formosa. As cultivares do grupo Solo apresentam frutos de menor tamanho (≈ 350 a 700 g). As principais cultivares do grupo ‘Formosa’ são híbridos importadas que produzem frutos de maior tamanho (>1,0 kg), esse grupo são adequadas
14 somente à comercialização no mercado interno, enquanto que as do grupo Solo são comercializadas nos mercados interno e externo (BRAPEX, 2010).
3.2. Antracnose do mamoeiro
Um dos principais fatores que afetam a qualidade pós-colheita do mamão é a ocorrência de podridões, destacando-se a antracnose, considerada a principal doença na fase de comercialização deste fruto.
A doença é causada pelo fungo C. gloeosporioides e caracteriza-se pela formação de estruturas denominadas acérvulos, em forma de disco achatado, subepidérmico, com espinhos ou setas, conidióforos simples e alongados, conídios hialinos unicelulares, geralmente em forma de bastonete, que permanecem nos acérvulos aderidos por uma massa mucilaginosa de polissacarídeos, solúveis em água. Apesar destes esporos não serem estruturas de resistência, os micélios do fungo podem permanecer viáveis por longo período de tempo, em sementes, restos culturais, ou em infecções latentes em frutos. (CAPDEVILLE et al., 2005).
A penetração do fungo dá-se pelo estigma da flor, pelas cicatrizes deixadas pelas pétalas e principalmente por ferimentos na superfície dos tecidos. A infecção permanece latente com atividade nos pecíolos e nas folhas, nos frutos os sintomas ocorrem na época de maturação principalmente em épocas de chuvas e altas umidade (FREIRE, 2006). O fungo permanece em estado saprofítico frutificando abundantemente de um ano para o outro, tanto nas folhas mais velhas quanto nos frutos mumificados que caem no solo (OLIVEIRA; SANTOS, 2000).
A frutificação do fungo concentra-se na parte central da lesão, que toma um aspecto gelatinoso de coloração rósea. Nos pecíolos, formam-se manchas deprimidas escuras onde se desenvolvem peritécios. Nas folhas, as lesões são circulares, de bordos irregulares com centro acinzentado e pontuações negras que correspondem a frutificação do fungo, A infecção nas folhas novas começa com lesões quase imperceptíveis, circulares, isoladas, translúcidas que envolvem, coalescem e tornam-se marrons, causando deformações nos tecidos com o amarelecimento das folhas (OLIVEIRA; SANTOS 2000).
Os frutos jovens quando atacados cessam o seu desenvolvimento, mumificam e caem. Nos frutos em fase de maturação mais avançada, ao aumentar a precipitação e a umidade relativa, aparecem na casca do fruto pequenos pontos pretos, os quais
15 aumentam de tamanho, formando manchas deprimidas, que podem medir até 5 cm. Em torno dessas manchas formam-se halos de tecido aquoso com coloração diferente da central, em grande quantidade as manchas podem coalescer, espalhando-se pela superfície do fruto penetram e aprofundam-se na polpa, ocasionando podridão-mole (FREIRE; CARDOSO, 2003).
Embora ocorra em frutos em qualquer estágio de desenvolvimento, apresenta-se com maior frequência nos maduros. Sua nocividade para a economia é muito grande, pois os frutos atacados tornam-se impróprios para o consumo, e inaceitáveis para a comercialização. Ainda que frutos recém-colhidos não apresentem sintomas da doença, ela se manifesta na fase de pós-colheita, causando grandes perdas (CAPDEVILLE et al., 2005).
3.3 Perdas pós-colheita em frutos de mamoeiro
As perdas pós-colheita do mamão atingem grandes proporções na economia brasileira e são responsáveis pelo principal retardador do desenvolvimento da indústria do mamoeiro, podendo chegar a alguns casos a 75%, estando associadas a efeitos físicos ou danos mecânicos, ou a causas de origem fisiológica e bioquímica, e a ação de agentes microbianos (ZAMBOLIM et al., 2006). Entretanto, as perdas em pós-colheita são expressivas, em função da alta vulnerabilidade dos frutos à perda de umidade e ao ataque de fungos, principalmente o C. gloeosporioides (ANUÁRIO DA AGRICULTURA BRASILEIRA, 2005).
Os prejuízos são de 10% a 40% em embarques terrestres e de 5% a 30% em aéreos comuns, sendo que tais perdas podem apresentar variações dependendo do manejo pós-colheita adotado, bem como os processos de acondicionamento. Devido a essas perdas, a cultura do mamoeiro requer cuidado aos detalhes no manejo da produção, visto que esses frutos são susceptíveis a uma série de fatores que podem depreciá-los comercialmente, dentre esses se destacam as extremas flutuações de temperatura e umidade, danos mecânicos e doenças causadas por fitopatógenos (OLIVEIRA; SANTOS 2000).
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3.4. Controle alternativo de doença de plantas
Para o controle de patógenos, é essencial o uso de defensivos agrícolas com menor poder residual; entretanto, dificilmente isso é possível com a aplicação de produtos químicos em frutas após a colheita. Havendo uma preocupação com a qualidade físico-química dos alimentos produzidos, visando a um sistema produtivo em conformidade com os requisitos da sustentabilidade ambiental, segurança alimentar e viabilidade econômica, de maneira que se disponha de técnicas menos agressivas ao meio ambiente e à saúde humana (SILVEIRA et al., 2005).
O uso do controle alternativo tendo com finalidade a redução dessas perdas como o uso de extrato vegetal, tem se mostrado uma alternativa eficiente no controle dessas doenças (JAMAL et al., 2008).
Entre os métodos de controle alternativo de doenças em plantas encontram-se os defensivos preparados a partir de substância não prejudicial à saúde humana e ao meio ambiente destinados ao controle de pragas e doenças da agricultura. O uso desses favorece a obtenção de produtos com menos ou nenhum resíduo químico, sendo os mesmos mais saudáveis para o ambiente e consumidor. Estão incluídos na categoria de defensivos naturais os agentes de biocontrole, os diversos biofertilizantes líquidos, as caldas sulfocácia, os feromônios e os extratos vegetais de plantas (SILVEIRA et al., 2005).
Vários estudos têm comprovado o efeito de extratos e óleos essenciais de plantas medicinais na capacidade de controlar doenças, tanto por sua atividade antimicrobiana direta quanto indireta. Bastos e Albuquerque (2004) avaliaram extratos de alho (Allium sativum), hortelã (Mentha piperita L), mamona (Ricinus communis) e pimenta (Capsicum spp.) no crescimento micelial e esporulação de C. gloeosporioides. O uso de extrato de camomila (Matricaria chamomilla L). inibiu o desenvolvimento de C. musae causador em frutos de bananeira (Musa spp.).
3.5 Melão-de- são-caetano (Momordica charantia)
O melão-de-são-caetano (Momordica charantia) pertence a família Cucurbitaceae é conhecida por melãozinho, erva-de-são-caetano, erva-de-lavadeira, fruto-de-cobra, fruto-de-negro e erva-de-são-vicente, é uma planta daninha trepadeira, anual, herbácea, muito ramificada, com caules verdes e pubescentes, medindo 2-3 m de
17 comprimento, com reprodução por sementes, as folhas são simples e alternas, membranáceas, com 5-7 lobos ovalado-oblongos, longo pecioladas, face superior levemente pubescente e a inferior mais densamente pilosa ao longo das nervuras (LORENZI, 2000).
Visando um aumento da vida de útil de frutos, pesquisas em pós-colheita buscam estudar técnicas de armazenamento que prolonguem sua vida útil, incluindo o controle de patógenos que constituem uma das principais causas de perdas na fase de pós-colheita (CRUZ et al., 2011).
O fruto, mesmo após a colheita, tem continuidade no seu metabolismo, portanto o uso de produtos nesta fase pode acarretar em mudanças na sua qualidade O conhecimento da fisiologia pós-colheita dos frutos é de grande importância para que se tenham subsídios técnicos que visem à ampliação do tempo de armazenamento desses frutos, sem, contudo, alterar suas características pós-colheita, podendo garantir uma maior vida útil (CHITARRA; CHITARRA, 2005).
No controle de fitopatógenos, alguns trabalhos comprovam efeito do extrato da M. charantia. Em frutos de bananeira, Celoto et al., (2011) avaliando os extratos metanólico e aquoso de M. charantia obtiveram inibição em até 80% no desenvolvimento das lesões da antracnose quando aplicados até dois dias antes da inoculação do fungo.
Jamal et al. (2008) observaram que diferentes concentrações de extratos de melão-de-são-caetano apresentaram atividade antifúngica sobre C. musae em todos os ensaios in vitro realizados. Martins et al., (2009) observaram que extrato de melão-de-são-caetano e alho promoveram efeitos significativos no controle de podridões em frutos de mamoeiro.
Além disso, as inibições do crescimento micelial ocorreram significativamente mais na fase líquida do que na sólida. O uso de extrato como o de melão- de-são-caetano vem sendo explorado, como controle alternativo e suas propriedades antifúngicas no combate dessas doenças.
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4. MATERIAL E MÉTODOS
Os experimentos foram conduzidos no Laboratório de Fitopatologia, Centro de Ciências Agrárias - CCA, Campus II da Universidade Federal da Paraíba – UFPB. No ano de 2012.
Foram utilizados mamões do grupo Solo, em estágio de maturidade colhidos em um pomar comercial na cidade de Rio Tinto (latitude 6.80594 ,longitude -35.0757,6° 48’ 21’’Sul, 35° 4’ 33’oeste), localizado no litoral norte da Paraíba,
4.1 Isolamento e cultivo do patógeno
O meio de cultivo utilizado para o isolamento do patógeno foi o BDA (batata-dextrose-ágar). O fungo C. gloeosporioides foi isolado a partir de frutos de mamoeiro com sintomas da doença.
Foram retirados fragmentos de 5 mm da região limítrofe da lesão os quais foram desinfestados com álcool etílico 70% seguido de hipoclorito de sódio 1,5%, ambos por um minuto. Em seguida, foram transferidos para placas de Petri contendo BDA e incubados durante sete dias, sob fotoperíodo de 12h com lâmpadas fluorescentes (40W) e temperatura de ± 25 °C.
4.2 Obtenção do extrato de folhas de melão-de-são-caetano, indutor de resistência e fungicida
Folhas de M. charantia foram coletadas em plantas nativas do município de Areia, PB. Para preparação dos extratos, as folhas foram transportadas para Laboratório de Fitopatologia, Centro de Ciências Agrárias, Universidade Federal da Paraíba para secagem em estufa à temperatura constante de 40 ºC até a obtenção de peso constante (≈ 72h). Posteriormente, o material vegetal foi triturado em moinho de faca e armazenado em sacos de polietileno à temperatura ambiente (25 ºC ± 5).
Os triturados foram levados ao Laboratório de Química Orgânica e Bioquímica Vegetal da Universidade Federal do Vale do São Francisco (UNIVASF), colocados em recipientes de 5 L e macerados em etanol absoluto durante 72 horas, repetindo o
19 procedimento por três vezes. Após a extração, o líquido extrator foi colocado em evaporador rotativo com pressão reduzida para retirada do solvente, em temperatura menor que 45 °C. O extrato bruto etanólico (EB) foi transferido para recipientes de vidro e deixado em capela até completa eliminação do solvente. Após esse período foram transferidos para dessecadores para eliminação da umidade. O indutor de resistência acibenzolar-S-metil, e fungicida mancozebe foram diluídos de acordo com as recomendações do fabricante, sendo as soluções devidamente homogeneizadas e acondicionadas em recipientes vedados.
4 .3 Fungitoxicidade em placas - Bioensaio com extrato etanólico
Para o ensaio com C. gloeosporioides in vitro, os tratamentos foram compostos pelo extrato de M. charantia nas concentrações de 500, 1000 e 1500 ppm, indutor acibenzolar-S-methil - ASM, fungicida (Mancozebe) na dosagem recomendada pelo fabricante e água destilada (controle). As placas foram vertidas com o meio de cultura BDA e 500 L dos tratamentos anteriormente descritos foram transferidos e distribuídos sobre a superfície do meio de cultura, sendo, um disco de 5 mm da colônia pura do fungo depositado no centro de cada placa.
As placas foram incubadas em um período de cinco dias à 25 °C e diariamente mediu-se o crescimento micelial em dois sentidos perpendicularmente opostos, com paquímetro digital. Ao 5° dia obteve-se o crescimento miceial e o número de esporos.
O delineamento foi inteiramente casualizado com seis tratamentos e cinco repetições, sendo cada repetição representada por duas placas de Petri. Os dados foram analisados no programa estatístico SISVAR utilizando o teste de Sckott-Knott ao nível de 5% de probabilidade.
4.4 Avaliação do desenvolvimento de C. gloeosporioides em frutos previamente tratados
Frutos de mamoeiro sadios do grupo Solo, em maturidade comercial, foram lavados em água corrente, secos em condições ambientais e pulverizados com os tratamentos previamente descritos no item 4.3, sendo acondicionados em bandejas plásticas.
20 Os frutos foram feridos com um perfurador flambado próximo ao pendúnculo a uma profundidade de aproximadamente 2 cm, em três locais equidistantes. Sobre a superfície da área ferida foram depositados discos do fungo contendo estruturas jovens. Em seguida os frutos foram colocados em câmara úmida, composta por sacos de polietileno por um período de 24h.
A avaliação da infecção foi realizada diariamente empregando uma escala de notas adaptada (Nery Silva et al., 2001) onde 1= Sem sintomas visíveis; 2 = presença de pequenas pontuações (até 3 mm) aquosas superficiais; 3 = presença de lesões aquosas ou mumificadas, não coalescentes; 4 = presença de lesões aquosas ou mumificadas, não coalescentes e 5 = presença de lesões aquosas ou mumificadas, não coalescentes, mais abrangendo maior região, descendo pela polpa do fruto, podendo chegar até a cavidade das sementes; o tecido desta região pode apresentar excessivo amaciamento.
Foram utilizados quatro repetições por tratamento, sendo cada repetição constituída por três frutos. Os dados foram analisados no programa estatístico SISVAR utilizando o teste de Sckott-Knott ao nível de 5% de probabilidade.
4.5. Análise pós-colheita de frutos de mamoeiro tratados com extrato vegetal, fungicida e indutor de resistência
As avaliações pós-colheita foram realizadas no dia da colheita dos frutos de mamoeiro, em pomar comercial no município de Rio Tinto - PB, e, passados cinco dias após a colheita sendo do 1º ao 5º dia, avaliada a perda de peso. Foi utilizado apenas o extrato de melão-de-são-caetano na concentração de 1000 ppm, uma vez que verificou-se não haver diferença significativa da maior concentração (1500 ppm).
Nas análises pós-colheita foram realizadas avaliações de pH determinado por potenciometria em eletrodo de vidro;
teores de sólidos solúveis totais, determinado por refratometria, utilizando-se refratômetro digital, com compensação de temperatura automática;
acidez total titulável, determinada por titulação com NAOH 0,1N, expressa em porcentagem de ácido cítrico;
firmeza, determinada individualmente em dois pontos distintos com penetrômetro na região de inserção.
21
5. RESULTADOS E DISCUSSÃO
Ao avaliar o crescimento micelial, os resultados apresentadas na Tabela 1 demonstram que houve diferença significativa entre todos os tratamentos em relação a testemunha. O tratamento com extrato de melão-de-são-caetano, apresentou maior efeito inibitório no crescimento de C. gloesporioides in vitro, quando utilizado a maior concentração do extrato.
Tabela 1: Crescimento micelial de Colletotrichum gloesporioides in vitro, tratado com extrato vegetal, fungicida e acibenzolar-S-methyl
Médias seguidas pela mesma letra, na coluna não diferem significativamente entre si pelo teste de Scott- knot (P≤ 0,05). ** EMSC (ppm): Diluição do extrato de melão-de-são-caetano em partes por milhão (ppm); ASM: acibenzolar-S-methyl; Fungicida: Dhitane/ Mancozebe.
Celoto et al., (2008) observaram que extrato aquoso de M. charantia, inibiu 91,6% do crescimento micelial de C. gloeosporioides. Outros trabalhos com uso de produtos alternativos no controle do crescimento in vitro de patógenos demostram a eficiência deste controle (ALVES et al., 2003; ROZWALKA et al., 2003; PEREIRA et al., 2006);
Alves et al., (2003) observaram a eficiência dos óleos de Cymbopogon citratus, C. nardus e E. citriodora no controle in vitro de C. gloeosporioides, onde as maiores concentrações apresentaram maior eficiência, colaborando com os resultados obtidos na presente pesquisa.
Trabalhos com extratos de alho, mamona e hortelã verificaram a inibição total ou parcial do crescimento micelial de Glomerella cingulata usando extratos aquosos e óleos essenciais (ROZWALKA et al., 2000). Rozwalka et al., (2003) avaliaram a concentração de 10% do extrato de pitombeira (Talisia esculenta) e constataram a inibição do crescimento micelial de C. gloeosporioides. Pereira et al., (2006)
Tratamentos Crescimento (mm) Esporulação (mm)
**EMSC 500 ppm 66.77 b 136.20 b EMSC 1000 ppm 43.55 c 168.00 b EMSC 1500 ppm 22.36 e 107.60 b acibenzolar-S-methil 29.82 d 258.20 a Fungicida 33.21 d 124.80 b Testemunha 87.71 a 272.60 a CV (%) 10.31 21.27
22 observaram que óleo de Artemisia dracunculus, Mentha arvensis e Eucalyptus citriodora apresentaram maiores valores na inibição do crescimento in vitro de C. gloeosporioides e C. musae.
Na esporulação não foi observada diferença entre os tratamentos com extrato de melão-de-são-caetano, onde os mesmos não apresentaram diferença significativa em relação ao fungicida. O tratamento com acibenzolar-S-metil não inibiu a esporulação comportando-se de forma semelhante a testemunha. Tal fato pode ser explicado uma vez que os indutores de resistência atuam ativando os mecanismos latentes de resistência das plantas hospedeiras, sem, no entanto, apresentar ação fungitóxica ou fungicida (DANTAS et al., 2004).
O uso de indutor de resistência pode ser considerado uma alternativa ao controle convencional de doenças, possibilitando a redução ou a substituição dos fungicidas empregados no controle de fitopatógenos. Em virtude desta ação, vários trabalhos desenvolvidos tem demonstrado a eficiência na indução de resistência nas plantas (DANTAS et al., 2004; RODRIGUES et al., 2006).
Com relação a severidade da doença, observou-se que a antracnose em frutos inoculados (Tabela 2), ao 3° dia, não apresentou redução de severidade entre as concentrações do extrato de melão-de-são-caetano. No 4°dia houve diferença entre todos os tratamentos onde as maiores concentrações usadas do extrato apresentaram os maior inibição da esporulação.
23 Tabela 2 Severidade da antracnose do mamoeiro em frutos inoculados tratados com extratos vegetais, fungicida e indutor de resistência acibenzolar-S-metil, utilizando escala de notas.
*Escala de severidade da doença em que: 1- Ausência de sintomas, 2- Presença de pequenas pontuações (até 3 mm), aquosas superficiais, 3- Presença de lesões aquosas ou mumificadas, não coalescentes, , 4- Presença de lesões coalescentes, com aspecto translúcido ou mumificado e 5- Lesões semelhantes às descritas para a nota 4, abrangendo maior extensão na polpa do fruto, podendo chegar até a cavidade das sementes, com o tecido dessa região podendo apresentar excessivo amaciamento (Nery-Silva, 2001 adaptada).
** EMSC (ppm): Diluição do extrato de Melão de São Caetano em partes por milhão (ppm)
Médias seguidas pela mesma letra, nas colunas, não diferem entre si pelo Teste de Tukey a 5% de probabilidade.
Observou-se a partir do 4°dia após inoculação, os menores índices de severidade da doença foram observados nas maiores concentrações do extrato, obtendo-se diferença significativa em relação ao fungicida. No 5º dia de avaliação, todas as concentrações do extrato de M. charantia, apresentaram redução de severidade da doença superior ao fungicida e indutor.
Passos et al., (2006) verificaram em frutos de mangueira que o extrato vegetal apresentou viabilidade no controle da antracnose da mangueira, com eficiência superior aos fungicidas químicos e recomenda o seu uso para o controle de C. gloeosporioides dentro de um programa de manejo integrado da doença. Deve-se ressaltar que o controle de podridões em frutos é mais eficiente, quando realizado na pré-colheita (IPPOLITO; NIGRO, 2000).
Bonaldo et. al., (2004) concluíram que os compostos secundários presentes em plantas medicinais, podem ainda desempenhar funções importantes em interações planta
Tratamentos Dias após a inoculação
1 2 3 4 5 EMSC 500 ppm** *1,00 a 1,00 a 2.20b 2.60 c 2.60 c EMSC 1000 ppm 1,00 a 1,00 a 2,20 b 2.20 d 2.20 c EMSC 1500 ppm 1,00 a 1,00 a 2,00 b 2.00 d 2.00 c Acibenzolar-S-metil 1,00 a 1,00 a 2,80 a 3.00 b 3.20 b Fungicida 1,00 a 1,00 a 3,00 a 3.00 b 3.20 b Testemunha 1,00 a 3,00 b 3,40 a 3.80 a 4.80 a CV (%) - 11,09 14,90 12,35 14,27
24 patógenos, através de ação antimicrobiana direta ou ativando mecanismos de defesa de outras plantas que venham a ser tratadas com esses compostos.
Ao avaliar a perda de massa dos frutos (Figura 1), previamente tratados observou-se que, o uso de extrato vegetal na concentração de 1000 ppm, influenciou positivamente permitindo uma menor perda de peso no período avaliado.
As perdas de massa fresca em frutos armazenados ocorrem em decorrência da água eliminada por transpiração causada pela diferença de pressão de vapor entre o fruto e o ar no ambiente e dos processos metabólicos de respiração (SOUSA et al., 2000).
Figura 1. Perda de massa em frutos de mamoeiro tratados com extrato de melão de são caetano nas concentrações de 500, 1000, 1500 ppm, indutor de resistência e fungicida, durante cinco dias de avaliação
As maiores perdas de massa foram verificadas nos tratamentos com extrato de melão-de-são-caetano nas concentrações de 1500 e 500 ppm.
Sendo o mamão um fruto com uma epiderme pouco densa, este apresenta uma elevada perda de massa pela transpiração, principalmente quando armazenado sobre baixa umidade relativa (COSTA et al.; 2002).
25 BRAGA (2004) observou que a perda de massa fresca de frutos, foi crescente à medida que os frutos foram amadurecendo, devido um aumento da atividade metabólica desses frutos avaliados. Segundo Chitarra e Chitarra, (2005), perdas de massa em frutos da ordem de 3 a 6% são suficientes para causar um marcante declínio na qualidade de frutos, sendo alguns frutos ainda comercializáveis com até 10% de perdas e de umidade, comprometendo a qualidade dos mesmos ao consumidor.
As perdas de massa fresca em frutos ocorrem em decorrência da água eliminada por transpiração (SOUZA et al., 2000). O uso de produtos naturais é uma alternativa eficiente no controle dessa perda de massa em função do tempo de armazenamento sendo, em alguns casos, mais eficientes para prolongar a vida útil das frutas. Chiumarelli e Ferreira (2006) relataram que houve também a redução na incidência de podridões e perdas de massa em frutos de goiabeira (Psidium guajava L.) com o uso de produtos alternativos.
Ao se avaliar a firmeza dos frutos de mamoeiro (Tabela 3), observou-se que no 1° dia de avaliação, não houve diferença significativa na firmeza dos frutos, independente do tratamento utilizado.
Tabela 3. Avaliação da firmeza no 1º e 5º dia de armazenamento de frutos de mamoeiro tratados com extrato vegetal, fungicida e indutor de resistência acibenzolar-S-metil e inoculados com Colletotrichum gloesporioides.
Tratamentos Firmeza (N) Firmeza (N)
Periodos 1º 5º
EMSC 1000 ppm 76.05aA 6.62 bA
Acibenzolar-S-metil 66.24aA 13.98bA
Fungicida 78.51aA 1.96 bA
Testemunha 73.60aA 0.00 bB
CV (%) 17.76
*Letras minúsculas distintas na linha diferem significativamente entre si, assim como letras maiúsculas distintas na coluna, pelo teste de Scott- knot, ao nível de 5 % de probabilidade.
26 No 5° dia de avaliação todos os tratamentos avaliados se diferenciaram da testemunha apresentando maior firmeza. Houve diferença significativa entre o 1° e o 5º dia de avaliação, em todos os tratamentos ocorrendo perda da firmeza em função do tempo. Dentre as causas principais da perda da firmeza da polpa do mamoeiro está a degradação de protopectina da lamela média e da parede celular primária, o aumento da pectina solúvel e a perda de açúcares (JACOMINO et al., 2002).
Em relação aos teores de sólidos solúveis, os tratamentos testemunha e fungicida mostraram-se com menores teores no 1º dia de avaliação. O indutor acibenzolar-S-metil apresentou uma redução significativa no teor de sólidos solúveis durante o período de avaliação. O aumento de sólidos solúveis nos frutos ocorre devido transformação das reservas acumuladas durante a formação e o desenvolvimento desses sólidos em açúcares solúveis.
Tabela 4. Avaliação de sólidos solúveis (°Brix) no 1º e 5º dia de armazenamento de frutos de mamoeiro tratados com extrato vegetal, fungicida e indutor de resistência Bion® e inoculados com Colletotrichumgloesporioides.
Tratamentos Sólidos solúveis (°Brix) Sólidos solúveis (°Brix)
Periodos 1º dia 5º dia
EMSC1000ppm 4.12aA 3.05aA
Acibenzolar-S-metil 5.47aA 2.10bA
Fungicida 2.37aB 3.22aA
Testemunha 3.32aB 4.22aA
CV (%) 27.05
*Letras minúsculas distintas na linha diferem significativamente entre si, assim como letras maiúsculas distintas na coluna, pelo teste de Scott- knot, ao nível de 5 % de probabilidade.
De acordo com Carmo et al., (2004), os processos metabólicos relacionados com o avanço do amadurecimento de compostos solúveis, influenciando diretamente nos teores de sólidos solúveis, frutos em avançados estádios de amadurecimento, provocado pela dissociação de algumas moléculas e enzimas estruturais, tem influência direta nos teores de sólidos solúveis.
Em função de modificações bioquímicas, o conteúdo de açúcares no fruto de mamoeiro é variável em seus diferentes estádios de maturação do fruto.
27 Não foi observada diferença significativa na avaliação do pH nos frutos, no 1° e 5 °dia, em todos os tratamentos avaliados.
Em relação a acidez, no 1° dia de avaliação, observou-se que os tratamentos com extrato vegetal e indutor de resistência diferiram da testemuna, apresentando maiores teores de acidez titulável. O uso de extrato de melão-de-são-caetano e o indutor de resistência apresentaram redução no teor de acidez do 1º ao 5º dia de avaliação em relação aos demais tratamentos (Tabela 4).
Tabela 5. Acidez titulável (g. ácido Cítrico 100 g-1) no 1º e 5º dia de armazenamento de frutos de mamoeiro tratados com extrato vegetal, fungicida e indutor de resistência e inoculados com Colletotrichum gloesporioides
Tratamentos Acidez total
(g ác. Cítrico 100 g-1)
Acidez total (g ác. Cítrico 100 g-1)
Periodos 1º dia 5º dia
EMSC1000ppm 0.18aA 0.11bA
Acibenzolar-S-metil 0.18aA 0.09bA
Fungicida 0.11aB 0.09aA
Testemunha 0.12aB 0.12aA
CV (%) 24.67
*Letras minúsculas distintas na linha diferem significativamente entre si, assim como letras maiúsculas distintas na coluna, pelo teste de Scott- knot, ao nível de 5 % de probabilidade.
O mamão é um fruto com baixos teores de acidez , podendo sua acidez aumentar com início do amadurecimento e ser reduzida com a maturação completa do fruto. Costa e Balbino (2002) verificaram redução da acidez titulável dos frutos ao longo do período de armazenamento, indicando uma possível síntese de ácidos orgânicos, o aumento da acidez dos frutos pode se atribuído ao processo de degradação da parede celular.
28
6. CONCLUSÃO
O uso do extrato vegetal de M. charantia na concentração de 1500 ppm, inibiu o crescimento micelial e esporulação de C. gloeosporioides in vitro.
O extrato vegetal de M. charantia nas maiores concentrações diminuiu a severidade da antracnose.
O tratamento com o uso de extrato vegetal na concentração de 1500 ppm, proporcionou menor perda de massa.
Os tratamentos em frutos de mamoeiro com extrato de M. charantia e indutor de resistência interferiram na firmeza, acidez titulável e sólidos solúveis
29
7. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ARAÚJO, E. C., Controle biológico da antracnose no mamão utilizando-se
leveduras antagonistas ao colletrotrichum gloeosporioides. Instituto de ciências
biológicas, Minas Gerais, 2007.
ANTUNES. L.E.; FILHO, J.D., Conservação pós-colheita de frutos de
amoreira-preta,(Rubus spp.) Pesq. agropec. bras., Brasília, v. 38, n. 3, p. 413-419, mar. 2003.
ANUÁRIO BRASILEIRO DA FRUTICULTURA 2012; – Santa Cruz do Sul, Editora Gazeta. Santa Cruz, 2012.
ANUÁRIO DE AGRICULTURA BRASILEIRA 2005; - São Paulo, Editora Gazeta, 2005.
BASTOS, C. N.; ALBUQUERQUE, P. S. B. Efeito de óleo de Piper aduncumno
controle em pós-colheita de Colletotrichum musae em banana. Fitopatologia
Brasileira. V. 29, n.5, 2004.
BARBIERI, A.;Fitoterápicos: Conheça as alternativas existentes. Curitiba: Publicação do Herbarium Laboratório Botânico, ano 4, n.18, 2000.
BENATO, E. A. Principais doenças em frutas pós-colheita e métodos alternativos
de controle com potencial de indução de resistência. simpósio de controle de doenças
de plantas, 2002, Lavras – MG.
BENATO, E. A. A indução de resistência no controle de doenças pós-colheita:
frutos e hortaliças. 1ª reunião brasileira sobre indução de resistência em plantas contra
30 BRAGA, R.;Plantas do nordeste – especialmente do Ceará. 3.ed., v. XLII comemorativado II congresso Brasileiro de florestas tropicais – Mossoró: Escola superior de agricultura de Mossoró, 1976.
BRAGA, L. R.; Características químicas e físicas de mamões dogrupo Solo
submetidos a diferentes injúrias mecânicas. 2004. Dissertação (Mestrado em
Fitotecnia) – Universidade Federal de Viçosa, Viçosa. 2004.
BLUM, J.; HOFFMANN, F.B.; AYUB, R.A.; JUNG, D.L.; MALGARIM, M.B. Uso de cera na conservação pós-colheita do caqui cv. Giombo. Revista Brasileira de
Fruticultura, Jaboticabal, v.30, n.3, set. 2008
BRAPEX, CADAGRO Elaboração do diagnóstico da cadeia produtiva do papaya. SÃO PAULO 2010.
BONALDO, S. M .; A Fungitoxidade, atividade elicitora de fitoalexinas e proteção
de pepino contra Colletotrichumlagenarium, pelo extrato aquoso de Eucalyptuscitriodora. Fitopatologi aBrasileira. Março. 2004.
CARMO,S. A.;Conservação pós-colheita em pimentão amarelo.TESE. Faculdade de engenharia Universidade estadual de campinas. São paulo.2004.
CARRÉ, V.; STANGARLIN, J. R.; ZANELLA, A. L.;Controle pós-colheita de
Colletotrichum musae em bananas (Musa sp.) por cânfora (Artemisiacamphorata) e quitosana. Scientia Agraria Paranaensis. 2006.
CARNELOSSI, P.R.; SCHWAN-ESTRADA, K.R.F; CRUZ, M.E.S.; ITAKO, A.T.; MESQUINI, R.M.Óleos essenciais no controle pós-colheita de Colletotrichum gloeosporioidesem mamão Rev. Bras. Pl. Med., Botucatu, 2009.
CAPDEVILLE, G.; SANTOS, J. R. P. Metodologia para seleção e teste de
31
contra Colletotrichum gloeosporioides. Boletim de Pesquisas e desenvolvimento-
Embrapa, 21p., 2005.
CELOTO, M.I.B.; PAPA, M.F.S.; SACRAMENTO, L.V.S.; CELOTO, F.J. Atividade antifúngica de extratos de Momordica charantia L. sobre Colletotrichum musae Revista
Brasileira de Plantas Medicinais, Botucatu, v.13, n.3.
CORDEIRO, Z. J. M.; MATOS, A. P. Doenças de fruteiras tropicais de interesse
agroindustrial. Brasília: EMBRAPA Informação Tecnológica, 2003. p.323-390.
CHAIM, A.; SANTOS,A., Fruteiras tropicais de interesse comercial. Embrapa,Brasília, DF 2007.
CHITARRA, M. I. F.; CHITARRA, A. B. Pós-colheita de frutos e hortaliças fisiologia e manuseio. Lavras: UFLA, 2005..
CRUZ, M.E.S.; SCHWANESTRADA, K.R.F.; Extratos vegetais na conservação de
frutos de banana e no controle de antracnose em pós-colheita. Fortaleza. Revista Brasileira de Horticultura, Fortaleza, v.23 2005.
CRUZ, M.E.S. Produtos alternativos no controle de doenças de pós-colheita de
banana (MusaparadisiacaL.), maçã (Malus domestica Borkh) e laranja (Citrussinensis(L.) Osbeck). 2003. Tese (Doutorado em Agronomia)-Universidade
Estadual de Maringá, Maringá, 2003.
CRUZ, M. E. S.; JARDINETTI, V. A.; RYCHE, A. G. G.; S., J. M.; CRUZ, M. J. S..
Efeito de Moringa oleifera na qualidade de frutos de manga Cadernos de Agroecologia – V. 6, N. 2, 2011.
DANTAS,S.A.F. Doenças fúngicas pós-colheita em frutas de mamão e laranja:
32 (Doutorado em Fitopatologia) -Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife, 2003.
FREIRE, F. C. O. Doenças atuais e Potenciais das principais fruteiras e flores
ornamentais do Nordeste. Fitopatologia Brasileira, Lavras, v. 31, suplemento,2006.
FREIRE, F. C. O, CARDOSO, J.E. Doenças de fruteiras tropicais de interesse
agroindustrial p394-396 Brasilia 2003 Ed Embrapa agroindústria tropical. .2003.
GOMES,P.;Fruticultura brasileira, São Paulo Ed Nobel 2007, p304.
GOMES, E. C. S. Extrato de allamanda blanchetti na indução de fitoalexinas em
sorgo e resistência em videira ‘superior seedless’ contra uncinula necator (Tese-
Doutorado). UFPB 2011.
IBGE - INSTITUTO BRASILEIRO DE GEOGRAFIA E ESTATÍSTICA 2010. Banco
de dados agregados. Disponível em: <http://www.sidra.ibge.gov.br>. Acesso em: 20
Mar. 2013.
JACOMINO, A.P.; OJEDA, R.M.; KLUGE, R.A.; SCARPARE FILHO, J.A.
Conservação de goiabas tratadas com emulsões de cera de carnaúba. Revista
Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal, v.25, n.3, 2003.
JERONIMO, R. F.; KANESIRO, M. A. B. Efeito da associação de armazenamento
sob refrigeração e atmosfera modificada na qualidade de mangas ‘Palmer’. Revista
Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal, v. 22, n. 2, p. 237- 243, 2000.
.
JAMAL,C.M., SILVEIRA,D,RONCHI,R., uso de extrato vegetal no controle da
podridão pós-colheita da banana. SÃO PAULO 2008.vol.20 no.2 são paulo. 2008.
JUNQUEIRA, N. T. V.; COSTA, H. Controle das doenças da goiabeira. Controle de
Doenças de Plantas: Fruteiras. Viçosa: Universidade Federal de Viçosa, 2002. v.2, p
33 KIMATI, H. AMORIM, L.; REZENDE, J. A. M.; BERGAMIM FILHO, A.; CAMARGO, L E. A. (Eds.). Manual de Fitopatologia: doenças das plantas cultivadas. 4 ed. São Paulo: Agronômica Ceres, 2005. v. 2, p. 10-11.
LEITE, R. P. Extrato de melão-de-são-caetano no controle da queima das folhas e
métodos de inoculacão em plantas de inhame. Mestrado em Agronomia-UFPB. 2012.
LORENZI, H.. Plantas daninhas do Brasil: terrestres, aquáticas, parasitas e
tóxicas. Istituto Plantarum, Nova Odessa, São Paulo, 2000.
LIBERATO, J.R. e ZAMBOLIM, L. Controle das doenças causadas por fungos,
bactérias e fitonematóides em mamoeiro. Viçosa. p. 1023-1169. 2002.
MARTINS, S. L. D. Mamão Papaya: produção, pós-colheita e mercado Fortaleza:Instituto Frutal, 2004.
MARIN,S.L. D..; Mamão Papaya: produção, pós-colheita e mercado Sérgio Lúcio
David Marin – Fortaleza: Instituto Frutal , 2004.
MARIN,S.L.D.;(Tese Doutorado em produção vegetal). Melhoramento genético do
mamoeiro, Habilidades combinatórias do grupo Solo e Formosa.
UENF Rio de Janeiro, 2001.
NEVES, L.C.; MANZIONE, R.L.; VIEITES, R.L Radiação gama na conservação
pós-colheita da nectarina. Revista Brasileira de Fruticultura. Jaboticabal, v.24,
2002.
OLIEVEIRA, A.;SANTOS,H,P.; Frutas do Brasil Mamão Fitossanidade. Embrapa
Mandioca e Fruticultura Tropical; Cruz das Almas, BA 2000.
PASCHOAL, S. F. et al.; O fenômeno da indução de resistência e o controle de
doença pós-colheita. REUNIÃO BRASILEIRA SOBRE INDUÇÃODRESISTÊNCIA
34 RODRIGUES, E.; SCHWAN-ESTRADA, K. R. F.; STANGARLIN, J. R.; CRUZ, M. E. S.;Avaliação da atividade antifúngica de extratos de gengibre e eucalipto in vitro
e em fibras de bananeira infectadas com Helminthosporiumv.28, n.1, 2006.
SOUZA, B.C.A. PONTIM,F.R., Inibição do crescimento in vitro de fitopatógenos
sobdiferentes concentrações de extratos de plantas medicinais. São Paulo, 2011.
SILVA, Flavia.;MACHADO, José.Controle químico da podridão peduncular de
mamão causada por Colletotrichumgloeosporioides. LARVAS 2001.
SILVEIRA, N. S. S. et al. Hongos fitopatogenos associados a frutos comercializados en Recife, Pernambuco (Brasil). Boletín Micológico, Valparaiso, v.16, p.41-47, 2001.
SIQUEIRA,C.L.S.; MORAES,T.C; MARTINS, J.A.D.,controle da antracnose em
mamão por extratos vegetais. Ciências biológicas e da saúde vol 1 2011.
TAVARES, G,M.; SOUZA,P.E.; Efeito de fungicidas no controle in vitro de colletotrichumgloeosporioides, agente etiológico da antracnose do mamoeiro
(caricapapayal.) Lavras, MG. 2004.
TAVELLA,L. B.; SILVA,Í. N.; Fontes, L. O.; Dias, J. R..; M.;. O uso de agrotóxicos
na agricultura e suas consequências toxicológicas e ambientais. Patos. v.07, n 02. p.
06 – 12. 2011.
VENTURA. J.; COSTA.,H.,controle e condições climáticas favoráveis à antracnose
De mamoeiro. Fitopatol. bras. vol.27 no.2 Brasília Mar./Apr. 2002
ZAMBOLIM, L.; COSTA, H.; VENTURA, J.A.; VALE, F.X.R. controle de doenças
pós-colheita de frutas tropicais ( manejo integrado fruteiras tropicais – doenças e pragas. Viçosa: Universidade Federal de Viçosa, 2006. cap. 12, p.443-511.
