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Academic year: 2021

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TÍTULO: CLONAGEM E EXPRESSÃO DE UM POTENCIAL INIBIDOR DE AGREGAÇÃO PLAQUETÁRIA RECOMBINANTE DOS COMPLEXOS SALIVARES DE SANGUESSUGAS HAEMENTERIA DEPRESSA TÍTULO:

CATEGORIA: EM ANDAMENTO CATEGORIA:

ÁREA: CIÊNCIAS BIOLÓGICAS E SAÚDE ÁREA:

SUBÁREA: CIÊNCIAS BIOLÓGICAS SUBÁREA:

INSTITUIÇÃO: CENTRO UNIVERSITÁRIO DAS FACULDADES METROPOLITANAS UNIDAS INSTITUIÇÃO:

AUTOR(ES): ANA MARA FONSECA DA SILVA SOUZA AUTOR(ES):

ORIENTADOR(ES): FERNANDA FARIA ORIENTADOR(ES):

COLABORADOR(ES): JAFIA LACERDA ALVES COLABORADOR(ES):

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1 RESUMO: Animais hematófagos precisam manter o sangue fluido para o sucesso de sua alimentação, assim, estes animais produzem em suas glândulas salivares um rol de substâncias capazes de promover a fluidez sanguínea. Haementeria depressa é uma espécie de sanguessuga brasileira e o perfil transcriptômico dos seus complexos salivares demonstrou que dentre os transcritos mais abundantes, alguns eram similares ao LAPP, um inibidor de agregação plaquetária, conhecido na literatura, proveniente da sanguessuga H. officinalis. Tendo em vista que o clone L02F02 apresenta sua sequência primaria predita com 94% de similaridade com o LAPP, acredita-se que também aja sobre plaquetas. Sendo assim, pretendemos expressar esta nova proteína recombinante proveniente de sanguessugas H. depressa, e para isso, foi necessário desenhar uma estratégia de clonagem para expressão do transcrito L02F02, originalmente clonado em pGEM11Zf. Assim, a sequencia de nucleotídeos foi submetida a analise de Mapa de Restrição. Através deste resultado, primers foram desenhados e após reação de PCR o amplicon gerado foi digerido com enzimas de restrição SnaBI e NotI, e então este material foi clonado direcionalmente em plasmídeo pPIC9K, e utilizado para transformação de leveduras Pichia pastoris GS115, por eletroporação. Um lote semente foi criado para que possa ser utilizado na expressão para obtenção da nova molécula recombinante que deverá futuramente ser purificada e caracterizada quanto a sua possível atividade sobre plaquetas.

INTRODUÇÃO: As sanguessugas possuem em sua saliva um extenso repertório de fatores bioquímicos capazes de interferir no processo de hemostasia, sendo assim, durante sua alimentação, mantém o sangue ingerido no estado líquido, processo este indispensável para benefício de sua alimentação. A hemostasia está dividida entre os mecanismos de coagulação, fibrinólise e agregação plaquetária e diversos componentes provenientes de sanguessugas já foram estudados e caracterizados nas diferentes etapas desses processos (SALZET, 2001).

O LAPP (leech antiplatelet protein) é um conhecido inibidor de agregação plaquetária induzida por colágeno, proveniente da sanguessuga H. officinalis (CONNOLLY et al., 1992). Sua molécula já foi amplamente estudada, inclusive sua cristalografia definida (HUIZINGA et al, 2001). A molécula recombinante (rLAPP) já foi expressa em leveduras e foi verificado que ele é capaz de inibir a adesão de plaquetas via diferentes tipos de colágeno, mostrou-se um potente inibidor de

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2 adesão plaquetária tanto em condições estáticas como em fluxo, capaz de ligar-se ao colágeno inibindo a sua ligação ao FvW (VAN ZANTEN et al., 1995).

Análise transcriptômica dos complexos salivares de H. depressa verificou que entre os transcritos mais abundantes cerca de 10% são isoformas similares ao LAPP (FARIA et al, 2005). Recentemente o transcrito H06A09 foi expresso em leveduras P. pastoris (GS115). A proteína recombinante (45% similar ao LAPP) foi isolada e caracterizada como um novo inibidor de agregação plaquetária, porém apesar de agir pela via do colágeno, assim como o LAPP, age na plaqueta via um receptor diferente (LACERDA-ALVES, 2011).

OBJETIVOS: Obter a proteína recombinante a partir do transcrito L02F02. Sendo assim, na presente etapa do Projeto, tivemos como objetivo desenhar uma estratégia para clonagem do transcrito L02F02 em pPIC9K, clonar e transformar linhagens de leveduras P.pastoris GS115 com o plasmídeo recombinante, além do preparo de um lote semente para futuras expressões da proteína.

METODOLOGIA E DESENVOLVIMENTO: O DNA plasmidial L02F02_ pGEM11Zf proveniente da biblioteca de cDNA construída previamente (FARIA et al, 2005) foi extraído através de protocolo de miniprep (Kit Concert Rapid Plasmid – Promega). Para traçar a estratégia de clonagem do transcrito de interesse foi realizada uma análise do mapa de restrição da seqüência do cDNA de interesse utilizando o programa Nebcutter. Assim, foram desenhados primers direto e reverso do transcrito contendo sítios específicos para enzimas de restrição para posterior clonagem em vetor de expressão pPIC9K.

O material proveniente da miniprep foi utilizado como DNA molde para uma reação de PCR utilizando os primers sintetizados. O DNA proveniente da eluição do gel do produto de PCR e também do vetor pPIC9K vazio foram digeridos com as enzimas SnaBI e Not I (Promega®) e ambos foram ligados com T4 DNA Ligase por 18 horas entre 4-8°C. O plasmídeo recombinante foi utilizado para transformação de bactérias cálcio-competentes da linhagem DH5α. Os transformantes positivos foram certificados por reação de PCR utilizando primers AOX (Invitrogen) e um deles foi eleito para linearização e transformação de células P. pastoris, por eletroporação.

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3 RESULTADOS PRELIMINARES: Através do Mapa de Restrição foi definida a estratégia de clonagem no pPIC9K entre os sítios SnaBI e NotI. A reação de PCR com os primers desenhados e sintetizados produziu um amplicon com o tamanho esperado (Figura 1A). A digestão enzimática do amplicon eluído do gel e do pPIC9K foram digeridos (Figura 1B) e ligados com sucesso. A linearização foi realizada através da digestão com enzima SacI (Figura 1C). O recombinante teve sua sequencia confirmada e foi introduzida ao genoma da levedura P. pastoris GS115.

Figura 1. Gel de Agarose 1% corado com Brometo de Etidio: (A) PCR do clone eleito: (1)

padrão ג DNA/Hind III com os fragmentos indicados na figura. (2) Produto de PCR (~500pb); (3) controle negativo da PCR. (C) Digestão do produto de PCR do clone L02F02 e do vetor pPIC9K: (1) Ladder DNA (250, 500 (altura da banda de interesse), 750, 1000, 1500, 2000, 2500, 3000, 4000, 5000, 6000, 8000 e 10000 pares de bases); (2) Digestão do produto de PCR do inserto L02F02 com as enzimas SnaBI e NotI; (3) Digestão do vetor pPIC9K com as enzimas SnaBI e NotI. (D)Perfil eletroforético do produto da linearização do clone L02F02_ pPIC9K com a enzima Sac I: (1) Ladder DNA (idem C); (2) L02F02 linearizado com Sac I.

O vetor recombinante linearizado foi utilizado para transformação das leveduras P. pastoris GS115. As colônias positivas para a transformação de P. pastoris foram certificadas por PCR utilizando primers AOX. Dentre 14 colônias selecionadas para a reação de PCR elegemos um clone para dar continuidade ao processo de expressão.

Tendo em vista estarmos trabalhando na tentativa da obtenção de um novo recombinante proveniente dos complexos salivares de sanguessugas H. depressa, partindo de um novo transcrito, a avaliação da sequencia deste clone e a definição do processo de clonagem seria necessária para sua execução, sendo assim, foi o objetivo desta etapa do projeto que deverá ser continuado.

Agora, temos como perspectiva obter uma molécula recombinante, bastante similar ao LAPP (94%), que provavelmente poderá nos servir ou como um objeto para ser utilizado em estudos comparativos com demais transcritos que temos em mãos, ou

~10.000pb 1 2 3 5 ~500pb B A C A 1 2 3 1 2

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4 ainda, como uma nova molécula com características diferentes que poderá ser mais bem estudada. Precisamos ressaltar a importância na descoberta de agentes antiplaquetários para estudos que futuramente poderão visar a clinica médica, pois plaquetas estão diretamente envolvidas em diversas patologias importantes, sejam estas síndromes ou quadros trombóticos graves como a trombose arterial, por exemplo.

FONTES:

Connolly TM, et al. J Biol Chem. 267(10):6893-8, 1992. Depraetere H, et al.Thromb Haemost. 82(3):1160-3, 1999. Faria, F et al. Gene 349:173-85, 2005.

Huizinga EG, et al. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr. 57(8):1071-8, 2001.

Lacerda-Alves J. Dissertação de Mestrado, Interunidades em Biotecnologia - USP, 2011.

Salzet, M. FEBS Letters. 492, 187-192, 2001.

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