Avaliação da atividade antioxidante in vitro do EEP e EEM

4.2.4.1 Atividade de sequestro do radical DPPH•

A atividade sequestrante do radical DPPH• (1,1-difenil-2-picrilidrazina) foi realizada de acordo com a metodologia descrita por Brand-Williams; Cuvelier e Berset (1995) com modificações por Mensor et al. (2001), em triplicata. A medida da capacidade sequestrante por este método se baseia no princípio de que o DPPH, sendo um radical estável de coloração violeta, aceita um elétron ou um radical hidrogênio para tornar-se uma molécula estável, sendo reduzido na presença de um antioxidante e adquirindo uma coloração amarela. Na forma de radical, o DPPH• possui uma absorção característica a 517 nm, que desaparece à medida que ele vai sendo reduzido pelo hidrogênio doado por um antioxidante (MENSOR et al., 2001). Para avaliação da atividade antioxidante, o EEP e o EEM foram reagidos com o radical estável DPPH• em uma solução de etanol.

A mistura de reação foi constituída da adição de 0,5 mL das diluições dos extratos etanólicos das amostras, 3 mL de etanol 80% e 0,3 mL da solução do radical DPPH em solução de etanol 0,5mM. Para cada amostra foi realizado teste em branco, substituindo-se o volume da solução de DPPH por igual volume de solvente. O controle negativo consistiu na substituição do volume do extrato por igual volume do solvente utilizado na extração (etanol 80%).

Fez-se uma curva cinética de cada amostra e das substâncias de referência ou controles positivos (BHT, BHA e α-tocoferol), para determinar o tempo necessário para chegar à estabilização das absorbâncias. A redução do radical DPPH• foi medida por meio de um monitoramento contínuo do declínio da absorbância a 517nm, a cada 20 minutos até valores estáveis de absorção.

Os resultados foram expressos de duas formas distintas: IC50 e porcentagem de inibição. Uma das formas de se expressar a atividade antioxidante pelo método do DPPH é através do coeficiente de inibição (IC50), ou seja, a concentração mínima necessária para os extratos reduzirem em 50% o DPPH inicial da reação. Quanto

menor o IC50, melhor é a atividade antioxidante (KULISIC, DRAGOVIC-UZELAC; MILOS, 2006).

Os valores de IC50 foram calculados por regressão linear de gráficos onde o eixo das abscissas (X) representa a concentração em μg/mL e o eixo das ordenadas (Y) a % média da atividade antioxidante das triplicatas, segundo a fórmula de Mensor et al. (2001) (Equação 1).

%AA=100 - {[(Absa – Absb) x 100]/Absc} (Eq. 1) Onde: Absa = Absorbância da amostra; Absb = Absorbância do branco, e Absc = Absorbância do controle negativo.

4.2.4.2 Atividade antioxidante pelo método ABTS•+

Para a determinação da atividade antioxidante utilizou-se o método ABTS•+ (2,2-azino-bis-(3-etil-benzotiazolina-6-ácido sulfônico)) conforme metodologia descrita por Re et al. (1999) e Rufino et al. (2007). O radical ABTS•+ foi formado pela reação da solução ABTS 7mM com persulfato de potássio 140 mM, incubados à temperatura de 25 ºC ao abrigo da luz, durante 12-16 h. Uma vez formado, o radical foi diluído em etanol absoluto até a obtenção do valor de absorbância de 0,700 a 734nm. Em ambiente escuro, transferiu-se uma alíquota de 30 µL dos EEM e EEP diluídos 1:20 (v/v) e 1:10 (v/v) em etanol 80% (v/v), respectivamente. Os antioxidantes comerciais (BHT, BHA e α-tocoferol) em concentrações de 100 ppm foram transferidos para tubos de ensaio com 3 mL da solução do radical ABTS•+. A leitura foi feita após 6 minutos da reação a 734 nm, utilizando etanol P.A. como branco. Foi utilizado como referência o Trolox, um antioxidante sintético análogo à vitamina E, nas concentrações de 50-1500 µM. Os resultados da atividade antioxidante foram expressos em µmol TEAC/g de amostra (TEAC - atividade antioxidante equivalente ao Trolox).

4.2.4.3 Atividade antioxidante pelo método de redução do ferro - FRAP

Para a determinação da atividade antioxidante, por meio da redução do ferro - FRAP (Ferric Reducing Antioxidant Power), utilizou-se a metodologia descrita por Rufino et al. (2006) e Kukic et al. (2008), com algumas modificações. Este método se baseia na medida direta da habilidade dos antioxidantes (redutores) da amostra reduzirem, em meio ácido (pH 3,6), o complexo Fe3+/tripiridiltriazina (TPTZ), para formar Fe2+, de intensa cor azul e absorção máxima a 593 nm. O reagente FRAP foi preparado no momento da análise, através da mistura de 25 mL de tampão acetato (300 mM, pH 3,6), 2,5mL de solução TPTZ (10 mM TPTZ em 40 mM HCl) e 2,5 mL de FeCl3 (20 mM) em solução aquosa. Uma alíquota de 100 µL das diluições dos extratos de manjerona 1:200 (v/v) e de pólen 1:100 (v/v), e os antioxidantes comerciais BHT, BHA e α-tocoferol (100 µg/mL), foram adicionados a 3 mL do reagente FRAP e incubado a 37 ºC em banho-maria por 30 min. As absorbâncias foram medidas após esse tempo e o espectrofotômetro foi zerado com a solução FRAP. A curva de calibração foi feita com sulfato ferroso (100-2000 µM), e os resultados foram expressos em µmol Fe2+_{/g de amostra.}

4.2.4.4 Autoxidação do sistema β-caroteno/ácido linoleico

A medida da atividade antioxidante pela oxidação acoplada do β-caroteno e do ácido linoleico foi realizada de acordo com o método de Emmons, Peterson e Paul (1999) e Ahn et al. (2004). Foram pesados 10 mg de β-caroteno, os quais foram dissolvidos em 100 mL de clorofórmio. Alíquotas de 3 mL da solução clorofórmio/β-caroteno foram adicionadas a 40 mg de ácido linoleico e 400 mg de Tween 40. Em seguida, o clorofórmio foi removido com a utilização de uma corrente de gás nitrogênio e o resíduo obtido redissolvido em 100 mL de água aerada por 30 min. Alíquotas de 3 mL da emulsão β-caroteno/ácido linoleico foram misturadas com 300 μL do EEM diluídos 1:20 (v/v) e EEP diluídos 1:10 (v/v) em etanol a 80% (v/v). A leitura da absorbância foi feita em espectrofotômetro a 470 nm, no tempo inicial e em intervalos de 20 minutos com incubação em banho-maria a 50 ºC, até o tempo

de estabilização final. A amostra controle consistiu de 300 μL de etanol a 80%. Foram utilizados padrões de referência (BHT, BHA e α-tocoferol) em concentrações de 100 ppm. A atividade antioxidante foi expressa pela porcentagem de inibição relativa em relação ao controle depois de 100 min de incubação, usando a Equação 2:

AA(%)=(DRC - DRS)/DRC x 100 (Eq. 2) Onde: DRC = taxa de degradação do controle (= ln(a/b)/100); DRS = taxa de degradação da amostra contento a substância teste (= ln(a/b)/100); “a” e “b” são as absorbâncias no tempo inicial (0 min) e no tempo final (100 min), respectivamente.