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Avaliação da citotoxicidade em células Vero

H. Toxinas

H.3. Toxinas Citotoxinas ou Enterotoxinas

IV. RESULTADOS E DISCUSSÃO

4. Avaliação da citotoxicidade em células Vero

A citotoxicidade in vitro é uma propriedade importante nas espécies mesofílicas móveis de Aeromonas, como é o caso de A. hydrophila. A utilização das células VERO para este tipo de ensaios, em relação a outras linhas celulares, tem apresentado vantagens, nomeadamente por ser mais sensível aos extractos celulares microbianos de Aeromonas spp. (Ghatak et al., 2006).

Neste sentido, foi estabelecida a cultura e o crescimento celular foi permitido até atingir uma confluência de cerca de 80%. As células em cultura foram posteriormente expostas a diluições sucessivas (1:2) de sobrenadante filtrados de culturas frescas de Aeromonas hydrophila até 48 horas. Procedeu-se ao estudo das alterações morfológicas das culturas, por microscopia de transmissão. Na figura 14 é possível visualizar o efeito de destacamento das células da superfície de crescimento e a perda da forma característica das células desta linha celular.

Figura 14 – Aspecto morfológico de células Vero em cultura:

A) Controlo – células mantidas em meio DMEM; B) e C) Células Vero expostas a diluições sucessivas de A. hydrophila numa diluição de 1/2 e 1/64, respectivamente. Barra de escala=150µm.

Durante o tempo de exposição, foi possível verificar, progressivamente, que as células vão ficando redondas e de tamanho mais reduzido, acabando por se desprender da superfície de crescimento (característcas da perda de viabilidade). Com o aumento gradual da concentração dos produtos extracelulares de A. hydrophila, verificou-se claramente o decréscimo do número de células aderentes e o aumento do número de células em suspensão (Fig. 14). Paralelamente, a viabilidade foi avaliada pelo método da resazurina (DeWitte-Orr e Bols, 2005) e os resultados estão representados no gráfico da Fig. 15. Pode verificar-se uma diminuição da actividade metabólica das células que é proporcional ao aumento da concentração dos produtos extracelulares da A. hydrophila. Do mesmo modo, foi avaliado o efeito dos produtos de E. coli BL21 (DE3) sobre as células Vero e os resultados podem ser analisados no gráfico da Fig. 15.

Figura 15 – Viabilidade de células Vero expostas a sobrenadantes de culturas frescas de A. hydrophila (diluições 1/2 , 1/32 e 1/64) e E. coli BL21(DE3) (diluições 1/2 , 1/32 e 1/64).

As células foram incubadas com resazurina, tal como descrito no ponto 17 do Material e Métodos. Os resultados demonstraram que para além da análise da morfologia das culturas, a monitorização da viabilidade celular através de testes metabólicos constitui uma ferramenta fundamental para avaliar o efeito dos extractos das células transformadas ou mesmo para testar a citotoxicidade da colagenase recombinante, futuramente obtida.

V.

CONCLUSÕES

93 Os resultados obtidos com o desenvolvimento deste trabalho permitiram concluir:

1. A actividade colagenolítica de A. hydrophila CECT 839T, sugerida pelos estudos in silico, foi confirmada in vitro.

2. A abordagem utilizada permitiu a clonagem e expressão do gene AHA_0517. No entanto, o sistema de expressão utilizado não foi adequado para os objectivos propostos. Nas condições testadas, a proteína recombinante foi expressa em quantidades inferiores ao esperado e nem sempre foi detectada actividade.

3. Foram estabelecidas com sucesso as condições de cultura de células Vero para testar a citotoxicidade de extractos de A. hydrophila CECT 839T e E. coli

VI.

PERSPECTIVAS FUTURAS

Os resultados obtidos durante a execução deste trabalho permitem abrir algumas perspectivas para o trabalho futuro:

 Proceder a nova clonagem do gene AHA_0517, tendo em conta a purificação da proteína recombinante;

 Avaliar a citotoxicidade da proteína codificada pelo gene AHA_0517, de modo a verificar se esta poderá contribuir para a virulência A. hydrophila;

 Aplicação do método estabelecido neste trabalho, na caracterização do potencial de virulência de outras colagenases microbianas em isolados clínicos ou ambientais.

Todas estas linhas de investigação permitirão um melhor conhecimento dos mecanismos de virulência de microrganismos do género Aeromonas, que podem, eventualmente, contribuir para a clarificação dos mecanismos de patogénese em geral.

VII.

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VIII.

ANEXOS

Tabela 2: Genoespécies e Fenoespécies Actuais do género Aeromonas Grupo de

Hibridação de DNA (HG)

Estirpe tipo Genoespecies Fenoespécies Observações

1 ATCC 7966 A. hydrophila A. hydrophila Isolado a partir de

uma lata de leite estragado 1 BCCM/LMG 19562 A. hydrophila subsp. dhakensis A. hydrophila subsp. dhakensis Isolado a partir de amostras clinicas 1 BCCM/LMG 19707 A. hydrophila subsp. ranae A. hydrophila subsp. ranae Patogéncio de sapos

2 ATCC 14715 A. bestiarum A. hydrophila-like Isolado a partir de amostras clinicas

3 ATCC 33658 A. salmonicida A. salmonicida

subsp. salmonicida

Patogénico imóvel de peixe

3 ATCC 33659 A. salmonicida A. salmonicida

subsp. achromogenes

Patogénico imóvel de peixe

3 ATCC 27013 A. salmonicida A. salmonicida

subsp. masoucida

Patogénico imóvel de peixe

3 ATCC 49393 A. salmonicida A. salmonicida

subsp. smithia

Patogénico imóvel de peixe

3 CDC 0434-84, Popoff

C316

unnamed A. hydrophila-like Isolados a partir de amostras clínicas

4 ATCC 15468 A. caviae A. caviae Isolados a partir de

amostras clínicas

5A CDC 0862-83 A. media A. caviae-like Isolados a partir de

amostras clínicas

5B CDC 0435-84 A. media A. media

6 ATCC 23309 A. eucrenophila A. eucrenophila

7 CIP 7433, NCMB

12065

A. sobria A. sobria

8X CDC 0437-84 A. veronii A. sobria

8Y ATCC 9071 A. veronii A. veronii biovar

sobria

Isolados a partir de amostras clínicas

9 ATCC 49568 A. jandaei A. jandaei Isolados a partir de

amostras clínicas

10 ATCC 35624 A. veronii biovar

veronii A. veronii biovar veronii Isolados a partir de amostras clínicas ornitina decarboxilase positiva

11 ATCC 35941 unnamed Aeromonas spp.

amostras clínicas

13 ATCC 43946 Aeromonas Group

501

A. schubertii-like Isolados a partir de amostras clínicas

14 ATCC 49657 A. trota A. trota Isolados de

amostras clínicas, susceptíveis a ampicilina 15 ATCC 51208, CECT 4199 A. allosaccharophila A. allosaccharophila

16 ATCC 51020, A. encheleia A. encheleia Patogéncio de

enguias

17 BCCM/LMG 1754 A. popoffii A. popoffii

Unassegned MTCC 3249, NCIM 5147

A. culicicola A. culicicola Isolado a partir de mosquitos

ATCC- Colecção Americana de Culturas Tipo, Rockford, MD; BCCM/LGM – Colecção Bactéria, Ghent University, Belgium; CDC- Centro de Prevenção e Controlo de Doenças; CIP – Colecção do Instituto Pasteur, Paris, França; NCMB – Colecção Nacional de Bactérias Marinhas, Aberdeen, Escócia; CECT – Colecção Espanhola de Culturas Tipo, Universidade de Valencia, Valencia, Espanha; CCUG – Colecção Cultura, Universidade de Gotenborg, Gotenborg, Suécia; MTCC – Colecção Microbiológica de Culturas Tipo , Instituto de Tecnologia Microbiológica, Chandigarh, Índia; NCIM – Laboratório Químico Nacional, Pune, Índia

Tabela 3: Factores de Virulência de espécies de Aeromonas spp.

Factores de Virulência estruturais Factores de Virulência extracelulares

Pili (fimbrías) Hemolisinas

Flagelos Enterotoxinas

Proteínas membranares externas (OMP) Citotoxinas

Camada A ou S Proteases

Lipopolissacarídeos Glicerofosfolipido colesterol acetiltransferase (GCAT)

Cápsula Outras enzimas hidrolíticas

Tabela 4 :Enzimas Extracelulares secretadas por Aeromonas spp.

Enzima Actividade Abreviatura Tamanho (kDa) Fonte

Aminopeptidase Prolil Pap 48 A .veronii br sobria

α-amilase AmyA 49 A. hydrophila

α-amilase AmyA 48 A. hydrophila

Amilase

α-amilase AmyB 72 A. hydrophila

metalo-β- lactamase CphA 28 A. hydrophila

metalo-β- lactamase CphA2 28 A. hydrophila

metalo-β- lactamase ImiS 28 A. veronii br sobria

Cefalosporinase CepS 38 A. veronii br sobria

β-lactamase

Penicilinase AmpS 27 A. veronii br sobria

Toxina celular prolongada

70 A. hydrophila

Grupo A ChiA 94 A. caviae

Grupo B ChiIII 53 A. hydrophila

Grupo B ORF-3 57 10S-24

Quitinase

Grupo C ChiIII 5 10S-24

Citolitica Ahh1 52 A.hydrophila

Enterotoxina

Citotonica 35 A.hydrophila

α-hemolisina Ahh5 54 A. hydrophila

α-hemolisina Asa1 54 A. veronii br sobria

Aerolisina AerA 57 A. hydrophila

Aerolisina Ahh3 54 A. hydrophila

Aerolisina 54 A. salmonicida

Aerolisina 62 A. salmonicida

Hemolisina

Aerolisina 65 A. salmonicida

acetilcoline esterase 15-5 A. hydrophila

Glicerofosfolipido colesterol acetiltransferase GCAT 31 A. hydrophila Glicerofosfolipido colesterol acetiltransferase GCAT 26 A. salmonicida Lipase H3 72 A. hydrophila Lípase

Fosfolipase Apl1 73 A. hydrophila

DNAse Dns 25 A. hydrophila

DNAse Nuch 110 A. hydrophila

Nuclease

RNAse RNAse A 24 A. hydrophila

Carbohidrate reactivo CROMP 40 A. hydrophila Carbohidrate reactivo CROMP 43 A. hydrophila

Maltoporina LamB 49 A. salmonicida

Porina 28 A. salmonicida

Porina OmpA1 36 A. salmonicida

proteína I 47 A. hydrophila

Porina

proteína IV 27 A. hydrophila Protease

fibrinolitica

87,5 A. salmonicida

metalo caseinase AsaP1 20 A. salmonicida

metalo proteases P2 20 A. salmonicida

protease serínica P1 70 A. salmonicida

protease serinica AspA 67 A. salmonicida

Protease

protease de zinco Ahp 19 A. hydrophila

Receptor siderosforo

Siderosforo férrico FstA 86 A. salmonicida

Ferro 50 A. salmonicida

Superóxido

dismutase Magnésio 46 A. salmonicida

xilanase I XynA 23 A. caviae

Xilanase

xilanase II 41 A. caviae

Marcadores de Peso Molecular para DNA

Na figura seguinte apresenta-se o tamanho correspondente a cada uma das bandas existentes nos marcadores de peso molecular para DNA utilizados neste trabalho.

ANEXO 5:

Sequência nucleotídica completa do gene AHA_0517 de A. hydrophila ATCC, depositada no NCBI (NC_008570), com a respectiva sequência peptídica.

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