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O câncer é um problema de saúde pública. Oíndice de pessoas acometidas por esta doençacresce a cada ano, o que exige maiores gastos do dinheiro público com diagnósticos e tratamentos. As estimativas indicam uma realidade preocupante: no ano de 2012, estimou-seaproximadamente 14,1 mi de casos novos e 8,2 mi de mortes por câncer no mundo, sendo as estimativas para o ano de 2030 de 21,4 mi de casos novos e 13,2 mi de mortes por câncer no mundo (INCA, 2014). As leucemias e linfomas contribuem com o aumento da carga

global de câncer no Brasil e no mundo atingindo mais fortemente crianças e idosos. Sabendo que os cânceres estão relacionando tanto com fatores endógenos (genético) quanto com fatores exógenos (ambiente), investir em medidas de prevenção para esta doença é a melhor opção para diminuir a carga mundial do câncer e tem sido o foco de vários órgãos nacionais e internacionais nos últimos anos.O Ensaio Cometa e o Teste do Micronúcleo contribuem para a prevenção e a optimização do tratamento do câncer quando aplicados no estudo da carcinogênese e no desenvolvimento de fármacos antineoplásicos mais eficientes e seletivos, podendo utilizar diversas linhagens de leucemias e linfomas,sendo a padronização de ambos os testes importante para garantir resultados reprodutíveis e confiáveis.

Assim, o objetivo deste Trabalho de Conclusão de Curso foi investigar e analisar a relevância do Ensaio Cometa e do Teste do Micronúcleo in vitro no estudo da carcinogênese hematopoiética por meio de linhagens celulares de leucemias e linfomas, assim como analisar as divergências e convergências entre os protocolos utilizados nesses estudosem virtude das dificuldades encontradas na padronização destas técnicas por esta acadêmica. Por meio da revisão bibliográfica, reuniu-se 38 artigos acerca do tema com ano de publicação entre 2005 e 2015 e constatou-se que:

A maioria dos estudos empregou o Ensaio Cometa in vitro em meio alcalino sozinho (20 artigos), seguido do Ensaio Cometa in vitro em meio alcalino em conjunto com o Teste do Micronúcleo/Teste do CBMN in vitro (12 artigos), sendo menos utilizado o Teste do Micronúcleo/Teste do CBMN in vitro sozinho (seis artigos) para as linhagens celulares de leucemias e linfomas;

• As linhagens mais utilizadas pelos artigos coletados foram a L5178Y de linfoma de rato, a HL-60 de leucemia promielocítica humana, a K562 de leucemia mieloide aguda e a Jurkat T de leucemia de células T humana para o Ensaio Cometa in vitro e as linhagens L5178Y e Hl-60 para o Teste do Micronúcleo/ Teste do CBMN in vitro, as demais linhagensforam utilizadas esporadicamente;

• O Ensaio Cometa eTeste do CBMN/Teste do Micronúcleo in vitro com linhagens celulares de leucemia e linfoma são constantementeempregados na investigação da genotoxicidade e damutagenicidade de novos fármacos (principalmente para investigação de seu potencial

antineoplásico) e de substâncias químicas de interesse comercial (usadas em alimentos, processos industriais, produtos finais, entre outros), na investigação dos mecanismos pelos quais esses fármacos atuam nas células malignas e mais raramente nos mecanismos envolvidos na transformação das células malignas e na padronização do Teste do Micronúcleo in vitro sem o bloqueio da citocinese;

Apesar do Teste do CBMN in vitro proporcionar diversas vantagens além da detecçãodo aumento da frequência dos micronúcleos em células binucleadas, o Teste do Micronúcleo (sem o bloqueio da citocinese) in vitro tem sido testado e defendido por vários autores como reprodutível e confiável quando empregado com linhagens celulares estáveis e de ciclos de divisão bem estabelecidos (como a L5178Y). Os artigos coletados defenderam o uso deste teste sem o bloqueio demonstrando a sua capacidade para detectar o aumento da frequência dos micronúcleos em células mononucleadas, com a justificativa de corresponder melhor ao sistema encontrado in vivo;

• Quanto à comparação dos protocolos utilizados nos artigos, foi possível notar diferençasao compará-los entre os artigos que utilizaram a mesma linhagem celular no Ensaio Cometa e no Teste do Micronúcleo/CBMN in vitro, apesar dos esforços investidos nas suas padronizaçõespara testes toxicológicos. As divergências encontradas entre os protocolos para a mesma linhagem celular dificultam a padronização em laboratório, uma vez que muitas variáveis devem ser consideradas quando há falha na obtenção de resultados confiáveis. A padronização dependerá de testesconsecutivos por meio do método “erro e acerto” dos diversos protocolos existentes, acarretando em gastos desnecessários de materiais.

• Os protocolos utilizados para a linhagem HL- 60 variaram menos em comparação aos protocolos das outras linhagens em ambas as técnicas, demonstrando uma melhor padronização para esta linhagem e sugerindo-se sua utilizaçãono Ensaio Cometa e no Teste do CBMN in vitro;

• Um fato interessante observado durante a revisão bibliográfica foi a falta de informações detalhadas sobre as técnicas em vários artigos. Alguns citaram outras publicações como protocolo para a técnica, porém estas

publicações não estão disponíveis para consulta em nenhum portal ou base de dados, impossibilitando a sua comparação com outros artigos ea reprodução daquele protocolo. Outros utilizaram kits prontos para o Ensaio Cometa, como o Trevigen, que não fornece a fórmula detalhada das soluções, impossibilitando a comparação com os demais protocolos. Outros ainda não forneceram os tempos de execução (como o da neutralização ou da fixação das amostras) das etapas, o que também dificulta a padronização.

Portanto, a revisão bibliográfica evidenciou a falta de padronização do Ensaio Cometa e do Teste do Micronúcleo/Teste do CBMN in vitro entre os laboratórios quando utilizadas linhagens celulares de leucemia e linfoma, sugerindo-se o uso de protocolos mais detalhados para ambos os testese a padronização destes paracada tipo de linhagem celular.

REFERÊNCIAS

ABRALE, Associação Brasileira de linfoma e leucemia. Manuais ABRALE. Os linfomas, Linfoma de Hodgkin e Linfoma Não-

Hodgkin. 2012. Disponível em:

http://www.abrale.org.br/uploads/files/Os%20Linfomas%20Fase5(2012 )_Pd.pdf. Acessado em: 10/08/2015.

ALAM-ESCAMILLA, D.; ESTRADA-MUNIZ, E.; SOLÍS- VILLEGAS, E. Genotoxic and cytostatic effects of 6-pentadecyl salicylic anacardic acid in transformed cell lines and peripheral blood mononuclear cells. Mut. Research/genetic Toxicol. Environ. Mutag., v. 777, 43-53p, 2015.

ALBERTS, B.; JOHNSON, A.; LEWIS, J.; RAFF, M.; ROBERTS, K.; WALTER, P. Biologia Molecular da Célula. 5ª ed. Porto Alegre: ArtMed, 2010. 1205-1256p.

ALMEIDA, V.L.; LEITÃO, A.; REINA, L.C.B.; MONTANARI, C.A.; DONNICI, C.L.; LOPES, M.T.P. Câncer e agentes antineoplásicos ciclo-celular específicos e ciclo-celular não específicos que interagem com o dna: uma introdução.Quim. Nova,v. 28, n. 1, 118-129p., 2005.

ALVES, E.A.; GUIMARÃES, A.C.R. CULTIVO CELULAR. IN: MOLINARO, E.M.; CAPUTO, L.F.G.; AMENDOEIRA,

M.R.R.Conceitos e métodos para a formação de profissionais em laboratórios de saúde: volume 2.Rio de Janeiro: EPSJV; IOC, 2010. 215-253p.

ANDERSSON, M.A.; GRAWE´, K.V.P.; KARLSSON, O.M.; ABRAMSSON-ZETTERBERG, L.A.G.; HELLMAN, B. Evaluation of the potential genotoxicity of chromium picolinate in mammalian cells in vivo and in vitro. Food And Chemical Toxicol.v. 45, n. 7, 1097-1106p., 2007.

APOSTOLOU, P.; TOLOUDI, M.; KOURTIDOU, E.; MIMIKAKOU, G.; VLACHOU, I.; CHATZIIOANNOU, M.; PAPASOTIRIOU, I. Use of the comet assay technique for quick and reliable prediction of in vitro response to chemotherapeutics in breast and colon cancer. J. Biolog. Research, v. 21. n. 14, 2014.

AROUTIOUNIAN, R.M.; HOVHANNISYAN, G.G.; GASPARYAN, G.H.; MARGARYAN, K.S.; AROUTIOUNIAN, D.N.; SARKISSYAN, N.K.; GALOYAN, A.A. Proline-rich Polypeptide-1 Protects the Cells In Vitro from Genotoxic Effects of Mitomycin C. Neurochem. Res., v. 35, n.4, 598-602p., 2010.

AZQUETA, A.; COLLINS, A.R. The essential comet assay: a comprehensive guide to measuring DNA damage and repair. Arch. Toxicol., v. 87, n. 6, 949-968p., 2013.

BARBOSA, B.S.; SANTOS, F.A.; PIMENTEL, M.M.L; FERNANDES, D.P; PREXEDES, E.A; BEZERRA, M.B.Histórico do desenvolvimento do cultivo de células animais. Uma Revisão. Rev. Bras. Higiene e Sanidade Animal, v. 9, nº 2, 334-347p., 2015.

BAYDOUN, H.H.; BAI, X.T.; SHELTON, S.; NICOT, C. HTLV-I Tax Increases Genetic Instability by Inducing DNA Double Strand Breaks during DNA Replication and Switching Repair to NHEJ. PLOS ONE, v. 7, n. 8, 2012.

BENITES, L.M.; DONCATO, K.B.; MINHO, T.S.; PERAZZO, G.X. Avaliação do potencial mutagênico de cobre da água do rio Uruguai. Ciência e Natura. Santa Maria, v. 36, n. 2, 107–113p., 2014. BIRTWISTLE, J.; HAYDENA, R.E.; KHANIMA, F.L.; GREENA, R.M.; PEARCEA, C.; DAVIESA, N.J.; WAKEA, N.; SCHREWEB, H.;

RIDEA, J.P.; CHIPMANA, J.K.; BUNCEA, C.M. The aldo-keto

reductase AKR1C3 contributes to 7,12-dimethylbenz(a)anthracene- 3,4-dihydrodiol mediated oxidative DNA damage in myeloid cells: Implications for leukemogenesis. Mut. Research/fundam. Molec. Mechan. Mutag.,v. 662, n. 1-2, 67-74p., 2009.

BOGLIOLO, L.; BRASILEIRO FILHO, G. Patologia. 8ª ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2011.

BONASSI, S.; ZNAOR, A.; CEPPI1, M.; LANDO, C.; CHANG, W.P.; HOLLAND, N.; KIRSCH-VOLDERS, M.; ZEIGER, E.; BAN, S.; BARALE, R.; BIGATTI, M.P.; BOLOGNESI, C.; CEBULSKA- WASILEWSKA, A.; FABIANOVA, E.; FUCIC, A.; HAGMAR, L.; JOKSIC, G.; MARTELLI, A.; MIGLIORE, L.; MIRKOVA, E.; SCARFI, M.R.; ZIJNO, A.; NORPPA, H.; FENECH, M. An increased

micronucleus frequency in peripheral blood lymphocytes predicts the risk of cancer in humans. Carcinogenesis, v. 28, n. 3, 625-631p.,

2007.

BORTOLHEIRO T.C.; CHIATTONE, C.S.Leucemia Mielóide Crônica: história natural e classificação. Rev. Bras. Hematol. Hemoter., v. 30, n. 1, 3-7p., 2008.

BRAMBILLA, G.; MATTIOLI, F.; ROBBIANO, L.; MARTELLI, A. Genotoxicity and carcinogenicity testing of pharmaceuticals: Correlations between induction of DNA lesions and carcinogenic activity. Mut. Research/reviews In Mut. Research, v. 705, n. 1, 20-39p., 2010.

BRANDÃO, H.N.; DAVID, J.P.; COUTO, R.D.; NASCIMENTO, J.A.P.; DAVID, J.M. Química E Farmacologia De Quimioterápicos Antineoplásicos Derivados De Plantas.Quim. Nova,v. 33, n. 6, 1359- 1369p., 2010.

BRASILEIRO FILHO, G.; PEREIRA, F. E. L.; GUIMARÃES, R. C. Distúrbios da Proliferação e da Diferenciação Celular. IN: Bogliolo, L.; Brasileiro Filho, G. Patologia. 8ª ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2011. 219-276p.

BRINK, A.; SCHULZ, B.; STOPPER, H.; LUTZ, W.K. Biological significance of DNA adducts investigated by simultaneous analysis of different endpoints of genotoxicity in L5178Y mouse lymphoma

cells treated with methyl methanesulfonate. Mut. Research/fundamen. Molec. Mechan. Mutag., v. 625, n. 1-2, 94-101p., 2007.

BÜCKER, A.; CARVALHO, W.; ALVES-GOMES, J.A. Avaliação da mutagênese e genotoxicidade em eigenmannia virescens (teleostei: gymnotiformes) expostos ao benzeno.Acta Amazon. v. 36, n. 3, 357 – 364p., 2006.

CAMARGO, J.L.V.; OLIVEIRA, D. E. Patologia geral: abordagem multidisciplinar. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2013. 93p.

CARVALHO, Q.G.S.; PEDROSA, W.A.; SEBASTIÃO, Q.P. Leucemia mieloide aguda versus ocupação profissional: perfil dos trabalhadores atendidos no Hospital de Hematologia de Recife. Rev. Esc. Enferm USP, v. 45, n. 6, 1446-1451p., 2011.

CAVALCANTI, B.C.; COSTA, P.M.; CARVALHO, A.A.; RODRIGUES, F.A.R.; AMORIM, R.C.N.; SILVA, E.E.C.; POHLIT, A.M.; COSTA-LOTUFO, L.V.; MORAES, M.O.; PEESOA, C. Involvement of intrinsic mitochondrial pathway in neosergeolide- induced apoptosis of human HL-60 leukemia cells: The role of mitochondrial permeability transition pore and DNA damage. Pharmaceutical Biology, v. 50, n. 8, 980-993p., 2012.

CAZARIN, G.; AUGUSTO, L.G.S.; MELO, A.R.M. Doenças hematológicas e situações de risco ambiental. Rev. Bras. Epidemiol., v. 10, n. 3, 380-90p., 2007.

CESTARI, M.E.W.; ZAGO, M.M.F. A prevenção do câncer e a promoção da saúde: um desafio para o Século XXI.Rev. Bras. Enferm., v. 58, n. 2, . 218-221p., 2005.

CHAKRABARTI, A.; GUPTA, K.; SHARMA, J.P.; YANG, J.; AGARWAL, A.; GLICK, A.; ZHANG, Y.; AGARWAL, M.; AGARWAL, M.K.; WALD, D.N. ATP Depletion Triggers Acute Myeloid Leukemia Differentiation through an ATR/Chk1 Protein- dependent and p53 Protein-independent Pathway. J. Biolog. Chem., v. 287, n. 28, 23635-23643p., 2012.

CHAUFFAILLE, M.L.L.F. IN: Maluf, S.W; Riegel, M. Citogenética humana.1ª ed. Porto Alegre: Artmed, 2011. 203-223p.

CHAUFFAILLE, M.L.L.F. Leucemia mieloide crônica: tratamento baseado em evidências. Diagn. Tratamento, v. 14, n. 2, 62-65p., 2009. CHIATTONE, C.S. Horizontes terapêuticos da leucemia linfocítica crônica. Res. Onco&hemato, 2014.

COLIS, L.C.; HEGAN, D.C.; KANEKO, M.; GLAZER, P.M.; HERZON, S.B. Mechanism of Action Studies of Lomaiviticin A and the Monomeric Lomaiviticin Aglycon. Selective and Potent Activity Toward DNA Double-Strand Break Repair-Deficient Cell Lines. J. Am. Chem. Soc.,v. 137, n. 17, 5741-5747p., 2015.

COLLINS, A.R.; AZQUETA, A. DNA repair as a biomarker in human biomonitoring studies; further applications of the comet assay. Mut. Research/fund. Molec. Mech. Mutag., v. 736, n. 1-2, 122- 129p., 2012.

CONITEC, Comissão Nacional de Incorporação de Tecnologias no SUS. Ministério da Saúde. Secretaria de Ciência, Tecnologia e Insumos Estratégicos (Brasil). 2013. Relatório de recomendação: Ritumaxibe para o tratamento de linfoma Não-Hodgkin de células B, foliculares,

CD20 positivo. 2013. Disponível em:

http://conitec.gov.br/images/Incorporados/Relat%C3%B3rio_RTX_linf omafolicular_81-FINAL.pdf. Acessado em: 07/05/2015.

DASH, S.K.; GHOSHB, T.; ROYC, S.; CHATTOPADHYAYA, S.; DASB, D. Zinc sulfide nanoparticles selectively induce cytotoxic and genotoxic effects on leukemic cells: involvement of reactive oxygen species and tumor necrosis factor alpha. J. Appl. Toxicol., v. 34, n. 11, 1130-1144p., 2014.

DOHERTY, A.T.; WILSON, A.; CHOCIAN, K.; MOLLOY, J.; CLATWORTHY, M.; DOAK, S.; JENKINS, J.; O’DONOVAN, M. Genotoxins induce binucleation in L5178Y and TK6 cells. Mut. Research/genetic Toxicol. Environ. Mutag., v. 770, 29-34p., 2014. DUARTE, E.C.; BARRETO, S.M. Transição demográfica e epidemiológica: a Epidemiologia e Serviços de Saúde revisita e atualiza o tema. Epidemiol. Serv. Saúde. v. 21, n. 4, 529-532p., 2012.

DUENSING, S.; MÜNGER, K. Mechanisms of genomic instability in

human cancer: Insights from studies with human papillomavirus oncoproteins. Intern. J. of Cancer, v. 109, n.2, 157-162p., 2004.

ECKHARDT, S.G.; DAI, A.; DAVIDSON, K.K.; FORSETH, B.J.; WAHL, G.M.; VON HOFF, D.D. Induction of differentiation in HL60 cells by the reduction of extrachromosomally amplified c- myc. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A, n. 91, 6674–6678p., 1994.

ESTRELLA-PARRA, E.A.; GOMEZ-VERJANA, J.C.; GONZALEZ- SANCHEZAB, I.; VAZQUEZ-MARTINEZB, E.R.; VERGARA- CASTANEDAB, E.; CERBONB, M.A.; ALAVEZ-SOLANOC, D.; REYES-CHILPA, R. Rotenone isolated from Pachyrhizus erosus displays cytotoxicity and genotoxicity in K562 cells. Nat. Prod. Res., v. 28, n. 20, 1780-1785p., 2014.

FABIANI, R.; ROSIGNOLI, P.; BARTOLOMEO, A.; FUCCELLI, R.; MOROZZI, G. Genotoxicity of alkene epoxides in human peripheral blood mononuclear cells and HL60 leukaemia cells evaluated with the comet assay. Mut. Research/genetic Toxicol. Environ. Mutag., v. 747, n. 1, 1-6p., 2012.

FACHIN, O. Fundamentos de metodologia. 5ª ed. São Paulo: Saraiva, 2006. 119-137p.

FAHEINA-MARTINS, G.V.; SILVEIRA, A.L.; CAVALCANTI, B.C.; RAMOS, M.V.; MORAES, M.O.; PESSOA, C.; ARAÚJO, D.A.M. Antiproliferative effects of lectins from Canavalia ensiformis and Canavalia brasiliensis in human leukemia cell lines. Toxicol. In Vitro, v. 26, n. 7, 1161-1169p., 2012.

FAIRBAIRN, D.W.; OLIVE, P.L.; O’NEIL, K.L. The comet assay: a comprehensive review. Mut. Research, v. 339, 37-59p., 1995.

FANG, Z.; ZHAO, M.; ZHEN, H.; CHEN, L.; SHI, P.; HUANG, Z.Genotoxicity of Tri- and Hexavalent Chromium Compounds In Vivo and Their Modes of Action on DNA Damage In Vitro. Plos One. v. 9. n. 8, 2014.

FARIAS, M.G.; CASTRO, S.M. Diagnóstico laboratorial das leucemias linfóides agudas.Bras. Patol. Med. Lab., v. 20, n.2, 91-98p., 2004.

FELLOWS, M.D.; O’DONOVAN, M.R. Etoposide, cadmium chloride, benzo[a]pyrene, cyclophosphamide and colchicine tested in the in vitro mammalian cell micronucleus test (MNvit) in the presence and absence of cytokinesis block using L5178Y mouse lymphoma cells and 2-aminoanthracene tested in MNvit in the absence of cytokinesis block using TK6 cells at AstraZeneca UK, in support of OECD draft Test Guideline 487. Mut. Research/genetic Toxicol. Environ. Mutag., v. 702, n. 2, 163-170p., 2010.

FENECH, M. Cytokinesis-block micronucleus cytome assay. Nature Protoc., v. 2, n. 5, 1084-1104p., 2007.

FENECH, M. The advantages and disadvantages of the cytokinesis- block micronucleus method. Mut. Research/genetic Toxicol. Environ. Mutag., v. 392, n. 1-2, 11-18p., 1997.

FENECH, M.; KIRSCH-VOLDERS, M.; NATARAJAN, A.T.; SURRALLES, J.; CROTT, J.W.; PARRY, J.; NORPPA, H.; EASTMOND, D.A.; TUCKER, J.D.; THOMAS, P. Molecular mechanisms of micronucleus, nucleoplasmic bridge and nuclear bud formation in mammalian and human cells. Mutagenesis, v. 26, n. 1, 125–132p., 2011.

FENECH, M.; MORLEY, A. Solutions to the kinetic problem in the micronucleus assay. Mut. Research,v. 148, 99-105p., 1985.

FENECH, M.; MORLEY, A.A. Measurement of micronuclei in lymphocytes.Mut. Research, v.147, 29-36p., 1985.

FLORES, M.; YAMAGUCHI, M.U. Teste do Micronúcleo: Uma triagem para avaliação genotóxica. Rev. Saúde e Pesq., v. 1, n. 3, 337- 340p., 2008.

FONSECA, L.A.M.; ELUF-NETO, J.; WUNSCH FILHO,V.Tendências da mortalidade por câncer nas capitais dos estados do Brasil, 1980-2004. Rev. Assoc. Medicina Bras., v. 56, n. 3, 309-312p., 2010.

FRANCO, M. Patologia: processos gerais. 5ª ed. São Paulo: Atheneu, 2010.

GAILLARD, H.; GARCÍA-MUSE, T.; AGUILERA, A. Replication

stress and cancer. Nat. Reviews Cancer, v. 15, n. 5, . 276-289p., 2015.

GETER, D.R; ZHANG, F.; SCHISLER, M.R.; WOOD, M.A.; KAN, H.L.; JEONG, Y.; BARTELS, M.J.; MCFADDEN, L.; GOLLAPUDI, B.B. Genetic damage, but limited evidence of oxidative stress markers in diethyl maleate-induced glutathione depleted mouse lymphoma L5178Y (TK+/-) cell cultures. Toxicol. Mechan. Methods, v. 22, n. 7, 547–554p., 2012.

GHOSAL, G.; CHEN, J. DNA damage tolerance: a double-edged sword guarding the genome. Transl. Cancer Res., v. 2, n. 3, 107-129p., 2013.

GIL, A. C. Como elaborar projetos de pesquisa. 5ª ed. São Paulo: Atlas, 2010. 45-64p.

GONTIJO, A.M.M.C; TICE, R. Teste do cometa para a detecção de dano no DNA e reparo em células individualizadas. IN: Ribeiro, L.R.; Salvadori, D.M.F.; Marques, E.K. Mutagênese ambiental. 1ª ed. Canoas: Editora ULBRA, 2003. 247-271p.

GUEMBAROVSKI, R.L.; CÓLUS, I.M.S. Câncer: uma doença genética. Genética na Escola, v. 3, n. 1, 4-7p., 2008.

HOVHANNISYAN, G.G.Fluorescence in situ hybridization in combination with the comet assay and micronucleus test in genetic toxicology. Molec. Cytogen., v. 3, n. 17, 1-11p., 2010.

ILIN, A.; KULMANOV, M.; NERSESYAN, N.; STOPPER, H. Genotoxic activity of the new pharmaceutical FS-1 in Salmonella/microsome test and mouse lymphoma L5178Y cells.J. Buon, v. 20, n. 2, 595-601p., 2015.

INCA, Instituto Nacional de Câncer José Alencar Gomes da Silva. Coordenação de Prevenção e Vigilância. Estimativa 2014: Incidência de Câncer no Brasil. Rio de Janeiro: INCA, 2014. Disponivel em: http://www.inca.gov.br/rbc/n_60/v01/pdf/11-resenha-estimativa-2014- incidencia-de-cancer-no-brasil.pdf. Acessado em: 20/04/2015.

JÜLIGER, S.; GOENAGA-INFANTE, H.; LISTER, T.A.; FITZGIBBON, J.; JOEL, S.P. Chemosensitization of B-Cell Lymphomas by Methylseleninic Acid Involves Nuclear Factor-KB

Inhibition and the Rapid Generation of Other Selenium Species. Cancer Res., v. 67, n. 22, 10984-10992p., 2007.

KELLERT, M.; BRINK, A.; RICHTER, I.; SCHLATTER, J.; LUTZ, W.K. Tests for genotoxicity and mutagenicity of furan and its metabolite cis-2-butene-1,4-dial in L5178Y tk+/− mouse lymphoma cells. Mut. Research/genetic Toxicol. Environ. Mutag., v. 657, n. 2,127- 132p., 2008.

KIM, J.S.; CHO, E.W.; CHUNG, H.W.; KIM, I.G. Effects of Tiron, 4,5-dihydroxy-1,3-benzene disulfonic acid, on human promyelotic HL-60 leukemia cell differentiation and death. Toxicology, v. 223, n. 1-2, 36-45p., 2006.

KIM, KC.; JUN, H.J.; KIM, J.S.; KIM, I.G. Enhancement of radiation response with combined Ganoderma lucidum and Duchesnea chrysantha extracts in human leukemia HL-60 cells. Int. J. Molec. Medicine, v. 21, 489-498p., 2008.

KIRCHNER, S.; ZELLER, A. Comparison of different cytotoxicity measures for the in vitro micronucleus test (MNVit) in L5178Y tk+/− cells: Summary of 4 compounds (Mitomycin C, Cyclophosphamide, Colchicine and Diethylstilboestrol) with clastogenic and aneugenic mode of action. Mut. Research/genetic Toxicol. Environ. Mutag., v. 702., n. 2, 193-198p., 2010.

KIRSCH-VOLDERS, M.; PLAS, G.; ELHAJOUJI, A.; LUKAMOWICZ, M.; GONZALEZ, L.; LOOK, K.V.; DECORDIER, I. The in vitro MN assay in 2011: origin and fate, biological significance, protocols, high throughput methodologies and toxicological relevance. Arch. Toxicol.,v. 85, n.8, 873-899p., 2011.

KLAASSEN, C.; WATKINS, B.J.; CASARETT, L.J.; DOULL, J. Fundamentos em Toxicologia de Casarett e Doull. 2ª ed, Porto Alegre: AMGH, 2012.

KLAUNIG, J. E.; KAMENDULIS, L. M. CARCINOGÊNESE QUÍMICA. IN: KLAASSEN, C.; WATKINS, B.J.; CASARETT, L.J.; DOULL, J. Fundamentos em Toxicologia de Casarett e Doull. 2ª ed, Porto Alegre: AMGH, 2012. 109-121p.

KUMAR, V.; ABBAS, A. K.; FAUSTO, N.; MITCHELL, R. N. Robbins: Patologiabásica. 9ª ed. Rio de Janeiro: Elsevier, 2013.

LEE, S.; LEE, Y.; CHOI, Y.J.; HAN, K.; CHUNG, H.W. Cyto- /genotoxic effects of the ethanol extract of Chan Su, a traditional Chinese medicine, in human cancer cell lines. J. Ethnopharmacology, v. 152, n.2, 372-376p., 2014.

LI, Y.; SHAO, J.; SHEN, K.; XU, Y.; LIU, J.; QIAN, X. E2F1- dependent pathways are involved in amonafide analogue 7-d- induced DNA damage, G2/M arrest, and apoptosis in p53-deficient K562 cells. J. Cel. Biochem., v. 113, n. 10, 3165-3177p., 2012.

LICÍNIO, M.A.; SILVA, M.C.S. Importance of detecting FLT3 and NPM1 gene mutations in acute myeloid leukemia - World Health Organization Classification 2008. Rev. Bras. Hematol. Hemoter., v. 32, n. 6, 476-481p., 2010.

LITTLE, J. Epidemiology of childhood cancer. Lyon, France: IARC, WHO, 1999.

LOPES, J.C.B.; MOREIRA, W.B.; SOARES, A.N. Avaliação dos resultados do tratamento de pacientes portadores de linfoma de Hodgkin com esquema ABVD em primeira linha. Rev. Bras. Oncol. Clínica, v. 8, n. 29, 112-121p., 2012.

LOPES, L.F.; CAMARGO, B.; BIANCHI, A. Os efeitos tardios do tratamento do câncer infantil.Rev. Ass. Med. Brasileira, v. 46, n.3, 277-284p., 2000.

LORGE, E. Comparison of different cytotoxicity measurements for the in vitro micronucleus assay using L5178Y and TK6 cells in support of OECD draft Test Guideline 487. Mut. Research/genetic Toxicol. Environ. Mutag., v. 702, n. 2, 199-207p., 2010.

LORGE, E.; LAMBERT, C.; GERVAIS, V.; BECOURT-LHOTE, N.; DELONGEAS, J.; CLAUDE, N. Genetic Toxicity Assessment: Employing the Best Science for Human Safety Evaluation Part II. Toxicol. Science, v. 96, n.2, 214-217p., 2007.

LUOTO, K.R.; KUMARESWARAN, R.; BRISTOW, R.G. Tumor

hypoxia as a driving force in genetic instability.Gen. Integrity, v. 4, n.

5, 2-15p., 2013.

MAISANABA, S.; PRIETO, A.I.; PUERTO, M.; GUTIÉRREZ- PRAENA, D.; DEMIR, E.; MARCOS, R.; CAMEÁN,A.M..In vitro genotoxicity testing of carvacrol and thymol using the micronucleus and mouse lymphoma assays. Mut. Research/genetic Toxicol. Environ. Mutag.,v. 784-785, 37-44p., 2015.

MAITRA, A. Neoplasias. IN: Kumar, V.; Abbas, A. K.; Fausto, N.; Mitchell, R. N. Robbins: Patologiabásica. 9ª ed. Rio de Janeiro: Elsevier, 2013. 161-214p.

MALTA, D.C.; CEZÁRIO, A.C.; MOURA, L.; MORAIS NETO, O.L.; SILVA JUNIOR, J.B. A construção da vigilância e prevenção das doenças crônicas não transmissíveis no contexto do Sistema Único de Saúde. Epidemiol. Serv. Saúde, v. 15, n. 1, 47 – 65p., 2006.

MALUF, S.W.; RIEGEL, M. Citogenética humana. 1ª ed. Porto Alegre: Artmed, 2011.

MANSUR, A.P.; FAVARATO, D. Mortalidade por Doenças Cardiovasculares no Brasil e na Região Metropolitana de São Paulo: Atualização 2011. Arq. Bras. Cardiologia, 2012.Disponível em: http://www.arquivosonline.com.br. Acessado em: 10/03/2015.

MEHTA, R. K.; VERMA, S.; PATI, R.; SENGUPTA, M.; KHATUA, B.; JENA, R.K.; SETHY, S.; KAR, S.K.; MANDAL, C.; ROEHM, K.H.; SONAWANE, A. Mutations In Subunit Interface And B-Cell Epitopes Improve Antileukemic Activities Of Escherichia Coli Asparaginase-II: Evaluation Of Immunogenicity In Mice. J.Biolog. Chem.,v. 289, n. 6, 3555-3570p., 2014.

MOCHE, H.; CHEVALIER, D.; BAROIS, N.; LORGE, E.; CLAUDE, N.; NESSLANY, F.Tungsten Carbide-Cobalt as a Nanoparticulate Reference Positive Control in In Vitro Genotoxicity Assays. Toxicol. Sci., v. 137, n. 1, 125-134p., 2014.

NJOYA, E.M.; MOUNDIPA, P. F.; STOPPER, H. In vitro genotoxic and mutagenic evaluation of the aqueous extract of Codiaeum

variegatum and its amoebicidal sub-fraction. J. Ethnopharmacol., v. 155, n. 1, 823-829p., 2014.

OAKES, D.J.; RITCHIE, H.E. WOODMAN, P.D.C. NARUP, E.; MOSCOVA, M.; PICKER, K.; WEBSTER, W.S. Genotoxicity studies of a desealant solvent mixture, SR-51. Toxicol. Indust. Health., v. 25, 5–13p., 2009.

OECD, OECD Guideline for Testing of Chemicals 487: In Vitro Mammalian Cell Micronucleus Test (MNvit).2007. Disponível em: http://www.oecd.org/document/55/0,3343, en 2649 34377 23496871111,00.html. Acessado: 10/08/2015.

OKUNO, E. Epidemiologia do câncer devido a radiações e a

elaboração de recomendações. Rev. Bras. Física Médica. vol. 3. nº 1,

2009. 43-55p.

OLIVE, P.L.; BANÁTH, J.P. The comet assay: a method to measure DNA damage in individual cells. NatureProtoc., v. 1, n. 1, . 23-29p., 2006.

OLIVE, P.L.; DURAND, R.E. Heterogeneity in DNA damage using the comet assay. Cytometry., v. 66, n. 1, 1-8p., 2005.

OLIVEIRA, R.B.; ALVES, R.J. Agentes antineoplásicos biorredutíveis: uma nova alternativa para tumores sólidos. Química Nova, v. 25, n. 6, 876-984p., 2002.

ONCIU, M. Acute Lymphoblastic Leukemia. Hematol. Oncol. Clin. N.Am., v. 23, n. 4, 655-674p., 2009.

PASKULIN, G.A.; ROSA, R.F.M.; ZEN, P.R.G. IN: Maluf, S.W.; Riegel, M. Citogenética humana.1ª ed. Porto Alegre: Artmed, 2011. 234-242p.

PHFULER, S.; ALBERTINI, S.; FAUTZ, R.; HERBOLD, B.; MADLE, S.; UTESCH, D.; POTHJK, A. Forum Series: Genetic Toxicity Assessment: Employing the Best Science for Human Safety Evaluation Part IV:Recommendation of a Working Group of the Gesellschaft fuer Umwelt-Mutationsforschung (GUM) for a Simple and Straightforward Approach to Genotoxicity Testing. Toxicol. Scien., v. 97, n. 2, 237–240p., 2007.

PHILLIPS, D.H.; ARLT, V.M. Genotoxicity: damage to DNA and its consequences.Molec., Clin. e Env. Toxicol., v. 1, 84-110p., 2009.

PINHEIRO, R.F.; CHAUFFAILLE, M.L.L.F. Síndrome mielodisplásica secundária à quimio ou radioterapia – SMD relacionada a tratamento. Rev. Bras. Hematol. Hemoter., v. 28, n. 3, 201-203p., 2006.

PINTO, L.F.R.; FELZENSZWALB, I. Genética do câncer humano. IN: Ribeiro, L.R.; Salvadori, D.M.F.; Marques, E.K. Mutagênese ambiental. 1ª ed. Canoas: Editora ULBRA, 2003. 29-44p.

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