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No presente trabalho estudaram-se as propriedades antioxidantes e a composição em fenóis e tocoferóis de 19 espécies de cogumelos silvestres de Portugal (Clitocybe

alexandri, Cortinarius glaucopus, Fistulina hepatica, Hydnum repandum,

Hygrophoropsis aurantiaca, Hypholoma capnoides, Laccaria amethystina, Laccaria laccata, Lactarius aurantiacus, Lactarius salmonicolor, Lepista inversa, Lepista sordida, Mycena rosea, Russula delica, Russula vesca, Suillus collinitus, Suillus

mediterraneensis, Tricholoma sulphureum, Tricholoma imbricatum). As espécies

Hygrophoropsis aurantiaca e Suillus mediterraneensis apresentaram os valores mais

elevados de fenóis totais (superiores a 7 mg/g), ao contrário das espécies Lactarius

aurantiacus e Hydnum repandum que revelaram os valores mais baixos (inferiores a 0,6

mg/g).

Foram detectadas as quatro formas de vitamina E (tocoferóis α, β, γ e δ) e a amostra de

Laccaria Laccata revelou o maior valor de tocoferóis (8,04 µg/g). A espécie Lepista

inversa mostrou ter a maior concentração de α-tocoferol (0,28 µg/g). β-Tocoferol foi a

forma de vitamina E mais abundante em todas as espécies analisadas, sendo os maiores valores encontrados na espécie Laccaria laccata (7,06 µg/g). A amostra de Clitocybe

alexandri apresentou a maior concentração de γ -tocoferol (1,34 µg/g). δ-Tocoferol foi

encontrado apenas em 3 espécies (Lepista inversa, Hygrophoropsis aurantiaca e

Laccaria laccata).

Hygrophoropsis aurantiaca, Suillus mediterraneensis, Russula vesca e Tricholoma

sulphureum apresentaram uma actividade bloqueadora de radicais DPPH (ABR)

superior a 85% a 20 mg/ml com valores de EC50 inferiores a 5 mg/ml. Russula delica,

Hypholoma capnoides, Laccaria laccata, Clitocybe alexandri, Lactarius aurantiacus e

Hydnum repandum apresentaram valores elevados de EC50 (superiores a 20 mg/ml) com

percentagens de ABR inferiores a 48% a 20 mg/ml. As espécies Hygrophoropsis

aurantiaca, Suillus mediterraneensis e Russula vesca foram as que revelaram maior

poder redutor (absorvância superior a 2,5 a 10 mg/ml). Pelo contrário, as espécies

Clitocybe alexandri, Lactarius aurantiacus e Hydnum repandum apresentaram o menor

poder redutor com absorvâncias inferiores a 0,7 a 10 mg/ml. Considerando os resultados obtidos para a inibição da peroxidação lipídica, Hygrophoropsis aurantiaca, Suillus

mediterraneensis, Russula vesca, Tricholoma sulphureum e Fistulina hepatica foram as

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inferiores a 1 mg/ml. A espécie Hydnum repandum apresentou o maior valor de EC50 (29 mg/ml) com 33% de capacidade de inibição da peroxidação lipídica a 20 mg/ml. Em suma, a amostra de Hygrophoropsis aurantiaca foi a espécie mais promissora apresentando o valor mais elevado de fenóis bem como a maior actividade antioxidante (menores valores de EC50). Esta espécie apresentou também todas as isoformas do tocoferol.

No estudo da composição nutricional, a humidade variou entre 82,42 g/100 g (Tricholoma Imbricatum) e 91,67 g/100 g (Cortinarius glaucopus). A quantidade de proteínas encontrada foi elevada e variou entre 24,32 g/100 g de massa seca (Suillus

mediterraneensis) e 76,63 g/100 g (Lepista inversa). A quantidade de lípidos variou

entre 0,36 g/100 g em Hypholoma capnoides e 3,76 g/100 g em Laccaria laccata. Os glícidos, calculados por diferença, foram também encontrados em elevadas concentrações e variaram entre 10,35 g/100 g (Lepista inversa) e 55,48 g /100 g (Hygrophoropsis aurantiaca). O teor em cinzas variou entre 5,92 g/100 g em

Hygrophoropsis aurantiaca e 28,29 g/100 g em Hypholoma capnoides. Foi ainda

calculada a contribuição energética das diferentes espécies e, os valores mais elevados, foram obtidos para Hygrophoropsis aurantiaca, enquanto que Hypholoma capnoides apresentou a menor contribuição energética.

Relativamente à composição em açúcares, manitol e trealose foram detectados em todas as amostras. Para as espécies Russula delica (18,41 g/100 g), Lactarius salmonicolor (13,48 g/100 g) e Tricholoma imbricatus (10,53 g/100 g), o manitol foi o açúcar mais abundante. A trealose predominou nas espécies Cortinarius glaucopus, Hygrophoropsis

aurantiaca, Laccaria laccata, Lepista inversa e Hypholoma capnoides, variando entre

1,58 g/100 g e 18,66 g/100 g. A arabinose foi o principal açúcar encontrado nas espécies

Fistulina hepatica (7,76 g/100 g) e Suillus mediterraneensis (4,03 g/100 g), e foi

descrita pela primeira vez em amostras de cogumelos. A amostra de Cortinarius

glaucopus revelou a maior concentração de açúcares (19,72 g / 100 g), ao contrário da

espécie Hypholoma capnoides que revelou a menor concentração (1,96 g/100 g).

Quanto à composição em ácidos gordos, o ácido linoleico (C18:2) foi o maioritário nas amostras estudadas, seguindo-se o ácido oleico (C18:1) e o ácido palmítico (C16:0). Para a espécie Lactarius salmonicolor o ácido gordo mais abundante foi o ácido esteárico (C18:0). Para além dos quatro já referidos, foram identificados e quantificados mais 21 ácidos gordos. Os PUFA foram o principal grupo de ácidos gordos encontrado nas espécies Cortinarius glaucopus, Fistulina hepatica, Hygrophoropsis aurantiaca,

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Lepista inversa e Suillus mediterraneensis, enquanto que os MUFA foram o principal

grupo em Laccaria lacata, Russula delica e Tricholoma imbricatum. Para as espécies

Hypholoma capnoides e Lacatrius salmonicolor os SFA foram o grupo principal

(Tabela 8). Os UFA predominaram sobre os SFA em todas as espécies estudadas, com excepção de Lactarius salmonicolor (devido à presença de quantidades elevadas de ácido esteárico), e variaram entre 56% e 85%. Hygrophoropsis aurantiaca apresentou o valor mais elevado de PUFA devido à contribuição do ácido linoleico. Laccaria laccata apresentou o maior valor de MUFA devido à contribuição do ácido oleico.

Em suma, a valiosa composição nutricional (teor elevado em proteínas e glícidos, baixos teor em lípidos, com o contributo precioso de ácidos gordos insaturados, e ausência de ácidos gordos trans), torna os cogumelos silvestres muito especiais.

Este estudo contribui para o aumento da proporção de cogumelos estudados e demonstra o potencial nutracêutico de espécies silvestres, devido à sua actividade bloqueadora de radicais livres e capacidade de inibição da peroxidação lipídica. As espécies estudadas são fontes importantes de antioxidantes tais como fenóis e tocoferóis, que podem ser utilizados no combate a doenças relacionadas com o stress oxidativo, em aplicações dermatológicas, na cosmética, assim como em suplementos na indústria alimentar. Muitas indústrias, nomeadamente aquelas relacionadas com a produção de aditivos alimentares, cosméticos e produtos farmacêuticos têm aumentado os seus esforços no sentido de obterem compostos bioactivos após extracção e purificação de produtos naturais. Este estudo contribui ainda para a documentação da composição nutricional de cogumelos silvestres, que são altamente consumidos e apreciados.

Futuramente deveriam testar-se as espécies de cogumelos com maior potencial antioxidante em linhas celulares tumorais. Com os melhores extractos, poderiam estudar-se alterações a nível do ciclo celular, proliferação e apoptose celular, assim como analisar possíveis danos no DNA ou capacidade antioxidante protectora do DNA. Seria também relevante identificar e quantificar compostos responsáveis pelas propriedades bioactivas, em particular antioxidantes, tais como compostos fenólicos, tocoferóis, ácido ascórbico, carotenóides, ácidos gordos e açúcares uma vez que os cogumelos são uma fonte promissora de compostos capazes de melhorar a qualidade de vida da humanidade.

Cogumelos silvestres como fonte de moléculas bioactivas 43 REFERÊNCIAS

AOAC. 1995. Official Methods of Analysis. 16th Ed. Association of Official Analytical Chemists. Arlington VA, USA.

Agahar-Murugkar, D., Subbulakshmi, G. 2005. Nutritional value of edible wild mushrooms collected from the Khasi hills of Meghalaya. Food Chemistry, 89, 599– 603.

Aletor, V.A. 1995. Compositional studies on edible tropical species of mushrooms. Food Chemistry, 54, 265–268.

Alexopoulos, C.J., Mims, C.W., Blackwell, M. 1996. Introductory Mycology. John Wiley and Sons editors, 4th ed., New York, USA, 868.

Arora, D. 1986. Mushrooms demystified: A comprehensive guide to the fleshy fungi. Ten Speed Press, Berkeley, 2 nd ed., 959.

Barros, L., Baptista, P., Correia, D.M., Casal, S., Oliveira, B., Ferreira, I.C.F.R. 2007a. Fatty acid and sugar compositions, and nutritional value of five wild edible mushrooms from Northeast Portugal. Food Chemistry, 105, 140–145.

Barros, L., Baptista, P., Correia, D.M., Morais, J.S., Ferreira, I.C.F.R. 2007b. Effects of conservation treatment and cooking on the chemical composition and antioxidant activity of Portuguese wild edible mushrooms. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 55, 4781–4788.

Barros, L., Baptista, P., Estevinho, L.M., Ferreira, I.C.F.R. 2007c. Effect of fruiting body maturity stage on chemical composition and antimicrobial activity of Lactarius sp. mushrooms. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 55, 8766–8771.

Barros, L., Correia, D.M., Ferreira, I.C.F.R., Baptista, P., Santos-Buelga, C. 2008a. Optimization of the determination of tocopherols in Agaricus sp. Edible mushrooms by a normal phase liquid chromatographic method. Food Chemistry, 110, 1046–1050. Barros, L., Cruz, T., Baptista, P., Estevinho, L.M., Ferreira, I.C.F.R. 2008c. Wild and commercial mushrooms as source of nutrients and nutraceuticals. Food Chemistry Toxicology, 46, 2742–2747.

Barros, L., Venturini, B.A., Baptista, P., Estevinho, L.M., Ferreira, I.C.F.R. 2008b. Chemical composition and biological properties of portuguese wild mushrooms: A comprehensive study. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 56, 3856–3862.

Cogumelos silvestres como fonte de moléculas bioactivas 44

Bravo, L. 1998. Polyphenols: Chemistry, dietary sources, metabolism, and nutritional significance. Nutrition Reviews, 56, 317–333.

Brower, V. 1988. Nutraceuticals: poised for a healthy slice of the health market? Nature Biotechnology, 16, 728-731.

Burton, G.W., Traber, M.G. 1990. Vitamin E: Antioxidant activity, biokinetics, and bioavailability. Annual Review of Nutrition, 10, 357–382.

Butler, M.S. 2004. The role of natural product chemistry in drug discovery. Journal of Natural Products, 67, 2141-2153.

Chang, S.T., Buswel, J.A. 1996. Mushrooms nutraceuticals. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 12, 473-476.

Chang, S.T., Buswell, J.A. 1999. Guanoderma lucidum (Curt.: Fr.) P. Karst. (Aphyllophoromycetideae) – a mushrooming medicinal mushroom. International Journal of Medicinal Mushrooms, 1, 139-146.

Chang, S.T., Miles, P.G. 1992. Mushrooms biology – a new discipline. Mycologist, 6, 64-65.

Chang, S.T., Miles P.G. 2004. Mushrooms: Cultivation, Nutritional Value, Medicinal Effect, and Environmental Impact –2nd ed., 2.

Chihara, G., Hamuro, J., Maeda, Y., Arai, Y., Fukuoka, F. 1970. Fractionation and purification of the polysaccharides with marked antitumor activity especially Lentinan, from Lentinus edodes. Cancer Research, 30, 2776-2781.

Courtcuisse, R., Duhem, B. 2005. Guía de los hongos de la Península Ibérica, Europa y norte de África. Omega, Barcelona, Espanha.

Díez, V.A., Alvarez, A. 2001. Compositional and nutritional studies on two wild edible mushrooms from northwest Spain. Food Chemistry, 75, 417–422.

Elmastas, M., Isildak, O., Turkekul, I., Temur, N. 2007. Determination of antioxidant activity and antioxidant compounds in wild edible mushrooms. Journal of Food Composition and Analysis, 20, 337–345.

Faria, A., Calhau, C., Freitas, V., Mateus, N. 2006. Procyanidins as antioxidants and tumor cell growth modulators. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 54, 2392– 2397.

Fasidi, I.O. 1996. Studies on Volvariella esculenta (Mass) Singer: cultivation on agricultural wastes and proximate composition of stored mushrooms. Food Chemistry, 55, 161–163.

Cogumelos silvestres como fonte de moléculas bioactivas 45

Ferreira, I.C.F.R., Barros, L., Abreu, R.M.V. 2009. Antioxidants in wild mushrooms. Current Medicinal Chemistry, 16, 1543–1560.

Fink, H., Hoppenhaus, K.W. 1958. Peculiar observations in the estimation of biological quality of the proteins of edible boletus (Boletus edulis) and mushroom (Psalliato

biospora) with reference to dietetics and therapeutics. Nutricional Abstracts and

Reviews, 28, Abs. 4886.

George, S., Brat, P., Alter, P., Amiot, M. J. 2005. Rapid determination of polyphenols and vitamin C in plant-derived products. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53, 1370–1373.

Grabey, S., Thiericke, R. 1999. Bioactive agents from natural sources: trends in descovery and application. Advances in Biochemical Engineering/Biotechnology, 64, 101-54.

Griffin, D.H. 1994. Fungal Physiology. Wiley-Liss, 2nd ed., New York, 485.

Gruen, E.H., Wong, M.W. 1982. Distribution of cellular amino acids, protein and total inorganic nitrogen during fruit body development in Flammulina veluptipes. Canadian Journal of Botany, 601330–1341.

Guo, L.Q., Lin, J.Y., Lin, J.F. 2007. Non-volatile components of several novel species of edible fungi in China. Food Chemistry, 100, 643–649.

Halliwell, B. 1996. Antioxidants in human health and disease. Annual Review of Nutrition, 16, 33–50.

Hatano, T., Kagawa, H., Yasuhara, T., Okuda, T. 1988. Two new flavonoids and other constituents in licorice root: their relative astringency and radical scavenging effects. Chemical and Pharmaceutical Bulletin, 36, 2090-2097.

Hobbs, C. 1995. Medicinal Mushrooms. Interweave Press, Loveland, CO.

Ikekawa, T. 2001. Beneficial effects of edible and medicinal mushrooms on health care. International Journal of Medicinal Mushrooms, 3, 291-298.

James, T.Y., Kauff, F., Schoch, C. et al. 2006a. Reconstructing the early evolution of the fungi using a six gene phylogeny. Nat, 443, 818-822.

James, T.Y., Letcher, P.M., Longcore, J.E., Mozley-Standridge, S.E., Porter, D., Powell, M.J., Griffith, G.W., Vilgalys, R. 2006b. A molecular phylogeny of the flagellated Fungi (Chytridiomycota) and a proposal for a new phylum (Blastocladiomycota). Mycologia, 98, 860-871.

Cogumelos silvestres como fonte de moléculas bioactivas 46

Jayakumar, T., Thomas, P.A., Geraldine, P. 2009. In-vitro antioxidant activities of an ethanolic extract of the oyster mushroom, Pleurotus ostreatus. Innovative Food Science and Emerging Technologies, 10, 228–234.

Kalač, P. 2009. Chemical composition and nutritional value of European species of wild growing mushrooms: A review. Food Chemistry, 113, 9–16.

Kamal-Eldin, A., Appelqvist, L.A. 1996. The chemistry and antioxidant properties of tocopherols and tocotrienols. Lipids, 31, 671–701.

Kavishree, S., Hemavathy, J., Lokesh, B.R., Shashirekha, M.N., Rajarathnam, S. 2008. Fat and fatty acids of Indian edible mushrooms. Food Chemistry, 106, 597–602. Kikumoto, S., Miyajima, T., Kimura, K., Okubo, S., Komatsu, N. 971. Polysaccharide

produced by Schizophyllum commune. Part. II: Chemical structure of an extracellular polysaccharide. Nogei Kagaku, 45, 162-168.

Kirk, P.M., Cannon, P.F., David, J.C., Stalpers, J.A. 2001. Dictionary of the fungi, 9th ed. CABI Bioscience, Wallinford, UK.

Komatsu, N., Okubo, S., Kikumoto, S., Kimura, K., Saito, G., Sakai, S. 1969. Host- mediated antitumor action of Schizophyllan a glucan produced by Schizophyllum

commune. Gann, 60, 137-144.

Kosaka, A. Yamashita, A. 1993. Lentinan as an effective immunomodulator against breast cancer, with special reference to clinical applications. International Journal of Immunotherapy, 9, 111-116.

Lampi, A.M., Kataja, L., Kamal-Eldin, A., Vieno, P. 1999. Antioxidant activities of alpha- and gamma-tocopherols in the oxidation of rapeseed oil triacylglycerols. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 76, 749–755.

Lee, I.K., Kim, Y.S., Jang, Y.W., Jung, J.Y., Yun, B.S. 2007. Antioxidant properties of various extracts from Hypsizigus marmoreus. Food Chemistry, 104, 1–9.

Lee, Y.L., Jian, S.Y., Lian, P.Y., Mau, J.L. 2008. Antioxidant properties of extracts from a white mutant of the mushroom Hypsizigus marmoreus. Journal of Food Composition and Analysis, 21, 116–124.

Léon-Guzmán, M.F., Silva, I., López, M.G. 1997. Proximate chemical composition, free amino acid contents, and free fatty acids contents of some wild edible mushrooms from Queretaro, México. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 89, 533–539.

Lindequist, U., Niedermeyer, T.H.J, Julich, W.D. 2005. The pharmacological potential of mushrooms. eCAM, 2, 285-299.

Cogumelos silvestres como fonte de moléculas bioactivas 47

Liu, Y., Hodson, M.C., Hall, B.D. 2006. Loss of the flagellum happened only once in the fungal lineage: phylogenetic structure of Kingdom Fungi in ferred from RNA polymerase II subunit genes. BMC Evolutionary Biology, 6, 74.

Longvah, T., Deosthale, Y.G. 1998. Compositional and nutritional studies on edible wild mushroom from northeast India. Food Chemistry, 63, 331–334.

Margulis, L., Schwartz, K.V. 1988. Five Kingdoms: An illustrated guide to the phyla of life on Earth. WH. Freeman and company, 2nd ed., New York.

Martins, X.F. 2004. Cogumelos – Património Natural Transmontano. João Azevedo Editor, Portugal, Vol 1, 19-101.

Manzi, P., Aguzzi, A., Pizzoferrato, L. 2001. Nutritional value of mushrooms widely consumed in Italy. Food Chemistry, 73, 321–325.

Manzi, P., Gambelli, L., Marconi, S., Vivanti, V., Pizzoferrato, L. 1999. Nutrients in edible mushrooms: an interspecies comparative study. Food Chemistry, 65, 477–482. Maga, J.A. 1981. Mushroom flavor. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 29, 1–

4.

Mau, J.L., Chang, C.N., Huang, S.J., Chen, C.C. 2004. Antioxidant properties of methanolic extracts from Grifola frondosa, Morchella esculenta and Termitomyces

albuminosus mycelia. Food Chemistry, 87, 111–118.

Mau, J.L., Chao, G.R., Wu, K.T. 2001. Antioxidant properties of methanolic extracts from several ear mushrooms. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 49, 5461– 5467.

Mau, J.L., Lin, H.C., Chen, C.C. 2002a. Antioxidant properties of several medicinal mushrooms. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 50, 6072–6077.

Mau, J.L., Lin, H.C., Song, S.F. 2002b. Antioxidant properties of several specialty mushrooms. Food Research International, 35, 519–526.

Mi-Yae, S., Tae-Hun, K., Nak-ju, S. 2003. Antioxidants and free radical scavenging activity of Phellinus baumii (Phellinus of Hymenochaetaceae) extracts. Food Chemistry, 82, 593-597.

Mdachi, S.J.M., Nkunya, M.H.H., Vitus, V.A., Nyigo, A., Urasa, I.T. 2004. Amino acid composition of some Tanzanian wild mushrooms. Food Chemistry, 86, 179–182. Mizuno, T. 1995. Bioactive biomolecules and mushrooms: food function and medicinal

effects of mushroom fungi. Food Reviwes International, 11, 7-21.

Mizuno, T., Saito, H., Nishitoba, T., Kawagishi, H. 1995. Antitumour-active substances from mushrooms, Food Reviews International, 11, 23-61.

Cogumelos silvestres como fonte de moléculas bioactivas 48

Murcia, M.A., Martinez-Tome, M., Jimenez, A.M., Vera, A.M., Honrubia, M., Parras, P. 2002. Antioxidant activity of edible fungi (truffles and mushrooms): Losses during industrial processing. Food Protection, 65, 1614–1622.

Newman, D.J., Cragg, G.M., Snader, K.M. 2000. The influence of natural products upon drug discovery. Natural Product Reports, 17, 215-234.

Ogundana, S.K., Fagade, O.E. 1982. Nutritive value of some Nigerian edible mushrooms. Food Chemistry, 8 , 263–268.

Ouzouni, P.K., Petridis, D., Koller, W.D., Riganakos, K.A. 2009. Nutritional value and metal content of wild edible mushrooms collected from West Macedonia and Epirus, Greece. Food Chemistry, 115, 1575–1580.

Oyaizu, M. 1986. Studies on products of browning reactions: Antioxidative activities of products of browning reaction prepared from glucosamine. Japanese Journal of Nutrition, 44: 307-315.

Prior, R.L. 2003. Fruits and vegetables in the prevention of cellular oxidative damage. American Journal of Clinical Nutrition, 78, 570S–578S.

Rodrígues, J.A.S., Domínguez, E.R., Fernández, D.R. 2008. Habitats de las setas: protección y conservación. IRMA, S.L., 11-29, Léon, Espanha.

Schwenke, D.C. 2002. Does lack of tocopherols and tocotrienols put women at increased risk of breast cancer? Journal of Nutritional Biochemistry, 13, 2–20.

Seif, E., Leigh, J., Liu, Y., Roewer, I., Forget, L., Lang, B.F. 2005. Comparative mitochondrial genomics in zygomycetes: bacteria-like RNase P RNAs, mobile elements and a close source of the group I intron invasion in angiosperms. Nucleic Acids Research, 33, 734-744.

Senatore, F., Dini, A., Marino, A. 1988. Chemical constituents of some Basidiomycetes. Journal of the science of food and agriculture, 45, 337–345.

Shepherd, C.J., Totterdell, C.J. 1988. Mushrooms and Toadstools of Australia. Inkata Press, Sydney, Australia, 19-21.

Singleton, V.L., Rossi, J.A. 1965. Colorimetric of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture, 16, 144-158.

Snyder, Kirkland, Glajch. 1997. Pratical HPLC Method Development, 2nd edition. Steenkamp, E.T, Wrigth, J., Baldauf, S.L. 2006. The prostitan origins of animals and

Cogumelos silvestres como fonte de moléculas bioactivas 49

Thimmel, R., Kluthe, R. 1982. The nutritional database for edible mushrooms. Ernahrung, 22, 63–65.

Traber, M.G. 1999. Vitamin E. In: Modern nutrition in health and disease (10th ed). M.E. Shils, J.A. Olson, M. Shike, A.C. Ross (Eds.), Baltimore: Williams and Wilkins, 347–362.

Tsai, S.Y., Tsai, H.L., Mau, J.L. 2007. Antioxidant properties of Agaricus blazei,

Agrocybe cylindracea, and Boletus edulis. Lwt-Food Science and Technology, 40,

1392–1402.

Tsukagoshi, S., Hashimoto, Y., Fujii, G., Kobayashi, H., Nomoto, K., Orita, K. 1984. Krestin (PSK). Cancer Treatment Reviews, 11, 131-155.

Wasser, S.P. 2002. Medicinal mushrooms as a source of antitumor and immunomodulatory polysaccharides. Applied Microbiology and Biotechnology, 60, 258-274.

Wasser, S.P., Weis, A.L. 1999. Therapeutic effects of substances occurring in higher Basidiomycetes mushrooms: a modern perspective. Critical Reviews in Immunology, 19, 65-96.

Whittaker, R.H. 1969. New concepts of Kingdoms or organisms. Evolutionary relations are better better represented by new classifications than by the traditional two Kingdoms. Science, 163, 150-160.

Wright, J.S., Johnson, E.R., DiLabio, G.A. 2001. Predicting the activity of phenolic antioxidants: theoretical method, analysis of substituent effects, and application to major families of antioxidants. Journal of the American Chemical Society, 123, 1173–1183.

Yang, J.H., Lin, H.C., Mau, J.L. 2002. Antioxidant properties of several commercial mushrooms. Food Chemistry, 77, 229–235.

Yildiz, A., Karakaplan, M., Aydin, F. 1998. Studies on Pleurotus ostreatus (Jacq. Ex Fr.) Kum. Var. Salignus (Pers. Ex Fr.) Konr. et. Maubl.: cultivation, proximate composition, orgenaic and mineral composition of carpophores. Food Chemistry, 61, 127–130.

Zeisel, S.H. (1999. Regulation of “nutraceuticals”. Science, 285, 1853-1855.

Zhou, S., Gao, Y. 2002. The immunomodulating effects of Ganoderma Lucidum (Curt.: Fr.) P. Karst. (Ling Zhi, Reishi mushroom) (Aphyllophoromycetideae). International Journal of Medicinal Mushrooms, 4, 1-11.

Cogumelos silvestres como fonte de moléculas bioactivas 50 WEBSITES http://commons.wikimedia.org/wiki/File:LepistaSordida_03.jpg http://en.wikipedia.org/wiki/File:Russ.ves.jpg http://it.wikipedia.org/wiki/File:Lepista_inversa01.jpg http://www.eol.org/pages/188278 http://en.wikipedia.org/wiki/File:Amanita_phalloides_1.JPG http://en.wikipedia.org/wiki/File:Champignons_Agaricus.jpg http://en.wikipedia.org/wiki/File:Hygrophoropsis_aurantiaca.jpg http://en.wikipedia.org/wiki/File:Hypholoma_capnoides.jpg http://en.wikipedia.org/wiki/File:Lactarius_aurantiacus_060924b.jpg http://en.wikipedia.org/wiki/File:Lactarius_salmonicolor.jpg http://en.wikipedia.org/wiki/File:Tricholoma_sulphureum_031123w.jpg http://it.wikipedia.org/wiki/File:Suillus_mediterraneensis.jpg http://jlcheype.free.fr/images/Agaricomycetes/Volvariella_volvacea2.jpg http://pms.wikipedia.org/wiki/Figura:Clitocybe_alexandrii.jpg http://pt.wikipedia.org/wiki/Ficheiro:Lentinula_edodes.jpg http://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/b/b7/Suillus_collinitus_20080828w.JPG http://www.mushroomexpert.com/ http://www.mycodb.fr/fiche.php?genre=Cortinarius&espece=glaucopus&source=search http://www.mycokey.com/

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