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A diversidade genética para D. caryophyllaceum foi de 0,266 e o índice de Shannon de 0,389.

A análise de agrupamento da similaridade genética mostrou, em um nível de 79% de similaridade genética, a divisão dos indivíduos amostrados em três grupos distintos de genótipos.

Foi detectada estrutura genética espacial dos indivíduos distanciados entre si a 21 m.

A população de D. caryophyllaceum passou por uma recente redução no tamanho populacional (gargalo genético).

69 REFERÊNCIAS

ÁLVARES-CARVALHO, S. V. et al. Schinus terebinthifolius: populations structure and implications for its conservation. Biochemical Systematics and Ecology, Oxford, v. 58, p. 120-125, Feb. 2015.

BERCHIN, I. I. et al. Energy production and sustainability: a study of Belo Monte hydroelectric power plant. Natural Resources Forum, Hoboken, v. 39, n. 3/4, p. 224-237, Aug./Nov. 2015.

BRANDÃO, M. M. Diversidade genética e filogeografia de Ceiba pubiflora (A.St.-Hil.) K. Schum. (Malvaceae). 2012. 115 p. Tese (Doutorado em Ecologia Aplicada)-Universidade Federal de Lavras, Lavras, 2012.

BRANDÃO, M. M.; VIEIRA, F. de A.; CARVALHO, D. de. Estrutura genética em microescala especial de Myrcia splendens (Myrtaceae). Revista Árvore, Viçosa, MG, v. 35, n. 5, p. 957-964, set./out. 2011.

BRASIL. Ministério do Meio Ambiente. Instrução normativa n° 6, de 23 de setembro de 2008. Lista oficial das espécies da flora brasileira ameaçadas de extinção. Diário Oficial [da] República Federativa do Brasil, Brasília, DF, 24 set. 2008. Disponível em:

<http://www.mma.gov.br/estruturas/179/_arquivos/179_05122008033615.pdf>. Acesso em: 19 maio 2016.

CORNUET, J. M.; LUIKART, G. Description and power analysis of two tests for detecting recent population bottlenecks from allele frequency data. Genetics, Baltimore, v. 144, n. 4, p. 2001-2014, Dec. 1996.

CRUZ, C. D. Genes: software for experimental statistics in genetics. Genetics and Molecular Biology, Ribeirão Preto, v. 21, n. 1, p. 135-138, 1998.

DUARTE, J. F.; CARVALHO, D. de; VIEIRA, F. de A. Genetic conservation of

Ficus bonijesulapensis R. M. Castro in a dry forest on limestone outcrops.

Biochemical Systematics and Ecology, Oxford, v. 59, p. 54-62, Apr. 2015. ELETROBRÁS; MINISTÉRIO DE MINAS E ENERGIA. Relatório de impacto ambiental: aproveitamento hidrelétrico Belo Monte. Brasília, DF, 2009. Disponível em: <http://norteenergiasa.com.br/site/wp-

70 EMPRESA DE PESQUISA ENERGÉTICA. Balanço energético nacional. 2015. Disponível em:

<https://ben.epe.gov.br/downloads/Relatorio_Final_BEN_2015.pdf>. Acesso em: 17 maio 2016.

FRANKHAM, R. Genetics and conservation biology. Comptes Rendus Biologies, Paris, v. 326, p. S22-S29, Aug. 2003.

GONÇALVES, A. C. et al. Estrutura genética espacial em populações naturais de Dimorphandra mollis (Fabaceae) na região norte de Minas Gerais, Brasil. Revista Brasileira de Botânica, São Paulo, v. 33, n. 2, p. 325-332, abr./jun. 2010.

GONÇALVES, L. O. et al. Caracterização genética de mulungu (Erythrina

velutina Willd.) em áreas de baixa ocorrência. Revista Ciência Agronômica,

Fortaleza, v. 45, n. 2, p. 290-298, jun. 2014.

HARDY, O. J. Estimation of pairwise relatedness between individuals and characterization of isolation by distance processes using dominant genetic markers. Molecular Ecology, Malden, v. 12, n. 6, p. 1577-1588, June 2003. HARDY, O. J.; VEKEMANS, X. SPAGeDi: a versatile computer program to analyse spatial genetic structure at the individual or population levels. Molecular Ecology Notes, Oxford, v. 2, n. 4, p. 618-620, 2002.

HU, Z. Y. et al. Genetic diversity and differentiation among populations of

Bretschneidera sinensis (Bretschneideraceae), a narrowly distributed and

endemic species in China, detected by inter-simple sequence repeat (ISSR). Biochemical Systematics and Ecology, Oxford, v. 56, p. 104-110, Oct. 2014. INTERNATIONAL UNION FOR CONSERVATION OF NATURE AND NATURAL RESOURCES. The IUCN red list of threatened species. Version 2015-4. Disponível em: <http://www.iucnredlist.org>. Acesso em: 11 maio 2016.

IVANAUSKAS, N. M.; MONTEIRO, R.; RODRIGUES, R. R. Classificação fitogeográfica das florestas do Alto Rio Xingu. Acta Amazônica, Manaus, v. 38, n. 3, p. 387-402, 2008.

KARRON, J. D. Patterns of genetic variation and breeding systems in rare plant species. In: FALK, D. A.; HOLSINGER, K. E. (Ed.). Genetics and

71 conservation of rare plants. New York: Oxford University Press, 1991. p. 87- 98.

KIMURA, M.; CROW, J. F. The number of alleles that can be maintained in a finite population. Genetics, Baltimore, v. 49, n. 4, p. 725-738, 1964.

KIMURA, M.; OHTA, T. Stepwise mutation model and distribution of allelic frequencies in a finite population. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA, Washington, v. 75, n. 6, p. 2868-2872, 1978.

LEE, S. L. et al. Population genetics of Intsia palembanica (Leguminosae) and genetic conservation of virgin jungle reserves in peninsular Malaysia. American Journal of Botany, Saint Louis, v. 89, n. 3, p. 447-459, Mar. 2002.

LEMOS, D. A. N. et al. Floristic and phytosociology in dense “terra firme” rainforest in the Belo Monte Hydroelectric Plant influence area, Pará, Brazil. Brazilian Journal of Biology, São Carlos, v. 75, n. 3, p. S257-S276, Aug. 2015. LISTA de espécies da flora do Brasil. Rio de Janeiro: Jardim Botânico, 2016. Disponível em:

<http://floradobrasil.jbrj.gov.br/jabot/FichaPublicaTaxonUC/FichaPublicaTaxon UC.do?id=FB17928>. Acesso em: 10 mar. 2016.

LIU, J. et al. Genetic diversity of natural populations of Machilus thunbergii, an endangered tree species in eastern China, determined with ISSR analysis. Genetics and Molecular Research, Ribeirão Preto, v. 12, n. 3, p. 3689-3697, 2013.

LOPES, S. de F. et al. Landscape changes and habitat fragmentation associated with hydroelectric plants reservoirs: insights and perspectives from a Central Brazilian case history. Bioscience Journal, Uberlândia, v. 30, n. 4, p. 1205- 1212, July/Aug. 2014.

MARTINELLI, G.; MORAES, M. D. (Org.). Livro vermelho da flora do Brasil. Rio de Janeiro: A. Jakobsson; Instituto de Pesquisas “Jardim Botânico do Rio de Janeiro”, 2013. 1100 p.

MELO JÜNIOR, A. F. et al. Spatial genetic structure of Cavanillesia arborea K. Schum. (Malvaceae) in seasonally dry Tropical forest: implications for

conservation. Biochemical Systematics and Ecology, Oxford, v. 58, p. 114- 119, Feb. 2015.

72 MOGG, R. J.; BOND, J. M. A cheap, reliable and rapid method of extracting high-quality DNA from plants. Molecular Ecology Notes, Oxford, v. 3, n. 4, p. 666-668, Dec. 2003.

MORAES, M. L. T. de; KAGEYAMA, P. Y.; SEBBENN, A. M. Diversidade e estrutura genética espacial em duas populações de Myracrodruon urundeuva Fr. All. sob diferentes condições antrópicas. Revista Árvore, Viçosa, MG, v. 29, n. 2, p. 281-289, abr. 2005.

NEI, M. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals. Genetics, Austin, v. 87, n. 3, p. 583-590, July 1978. NYBOM, H. Comparison of different nuclear DNA markers for estimating intraspecific genetic diversity in plants. Molecular Ecology, Oxford, v. 13, n. 5, p. 1143-1155, May 2004.

PEAKALL, R.; SMOUSE, P. E. Genalex 6: genetic analysis in Excel: population genetic software for teaching and research. Molecular Ecology Notes, Malden, v. 6, n. 1, p. 288-295, Mar. 2006.

PIRY, S.; LUIKART, G.; CORNUET, J. M. BOTTLENECK: a computer program for detecting recent reductions in the effective population size using allele frequency data. Journal of Heredity, Cary, v. 90, p. 502-503, July/Aug. 1999.

ROHLF, F. J. Ntsys-Pc: numerical taxonomy and multivariate analysis system. New York: Exeter, 2000. 38 p.

SALOMÃO, R. de P.; ROSA, N. de A. Pau-cravo: ‘droga do sertão’ em risco de extinção. Ciência Hoje, Rio de Janeiro, v. 49, n. 289, p. 46-50, jan./fev. 2012. SOUSA JUNIOR, W. C. de; REID, J. Uncertainties in Amazon hydropower development: risk scenarios and environmental issues around the Belo Monte dam. Water Alternatives, Washington, v. 3, n. 2, p. 249-268, June 2010. SUJII, P. S. et al. Genetic structure of Bertholletia excelsa populations from the Amazon at different spatial scales. Conservation Genetics, Dordrecht, v. 16, n. 4, p. 955-964, Aug. 2015.

VEKEMANS, X.; HARDY, O. J. New insights from fine-scale spatial genetic structure analysis in plant populations. Molecular Ecology, Oxford, v. 13, n. 4, p. 921-935, Apr. 2004.

73

VIEIRA, F. de A.; CARVALHO, D. de. Genetic structure of an insect-pollinated and bird-dispersed tropical tree in vegetation fragments and corridors:

implications for conservation. Biodiversity and Conservation, Dordrecht, v. 17, n. 10, p. 2305-2321, Sept. 2008.

WU, F. Q. et al. Genetic diversity and population structure of an extremely endangered species: the world’s largest Rhododendron. AOB Plants, Oxford, v. 7, n. 82, p. 1-9, 2015.

YEH, F. C.; YANG, R. C.; BOYLE, T. B. J. Popgene. Version 1.21. Alberta: University of Alberta, 1997. Software Microsoft Window-based freeware for population genetic analysis University of Alberta, Canada.

ZHANG, R. et al. Genetic diversity and differentiation within three species of the family Lauraceae in southeast China. Biochemical Systematics and Ecology, Oxford, v. 44, p. 317-324, Oct. 2012.

ZHOU, T. H. et al. Genetic diversity of the threatened Chinese endemic plant,

Sinowilsonia henryi Hensi. (Hamamelidaceae), reveled by inter-simple sequence

repeat (ISSR) markers. Biochemical Systematics and Ecology, Oxford, v. 56, p. 171-177, Oct. 2014.

ZOGHBI, M. G. B.; SALOMÃO, R. P.; GUILHON, G. M. S. P. Leaf essential oils of Dicypellyum caryophyllaceum (Mart.) Ness (Lauraceae): an almost extinct species in the Amazon. American Journal of Essential Oils and Natural Products, New Delhi, v. 1, n. 2, p. 19-21, 2013.

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