Quinze espécies identificadas no presente trabalho apresentaram divergência considerável na análise da sequência dos domínios D1/D2 do gene do RNA ribossomal e representam possíveis espécies novas (Tabela 7). Quatro possíveis espécies novas pertencem ao clado Starmerella. Starmerella sp.1 possui 13 isolados obtidos a partir de amostras de mel e pólen de Scaptotrigona cfr. bipunctata e também de abelhas adultas. Essa espécie é filogeneticamente próxima a S. etchellsii, com seis pares de bases divergentes na comparação de sequências dos domínios D1/D2. Starmerella sp.2 possui dois isolados obtidos a partir de amostras de pólen de S. cfr. bipunctata, e é
53 filogeneticamente próxima a S. davenpotii, com 16 pares de bases de divergência nos domínios D1/D2. Starmerella sp. 3 possui três linhagens obtidas a partir de amostras de mel da abelha T. angustula. Essa espécie é filogeneticamente relacionada a S. lactis- condensi, e a divergência em relação à sequência da linhagem tipo é de seis pares de bases. Starmerella sp. 4 possui apenas 1 isolado obtido a partir de amostra de pólen coletado em colmeia de S. cfr. bipunctata, e é filogeneticamente próxima a S. bombicola, com divergência de 4 pares de bases em relação à linhagem tipo.
Duas possíveis novas espécies pertencentes ao clado Zygosaccharomyces foram obtidas a partir de abelhas adultas e substratos associados a Scaptotrigona cfr. bipunctata. Zygosaccharomyces sp. 1 possui 20 isolados obtidos a partir de mel, pólen e abelhas adultas. Essa espécie é filogeneticamente próxima a Z. rouxii (Figura 14), e apresenta 16 pares de bases divergentes em reação à linhagem tipo (CBS:732) na comparação das sequências dos domínios D1/D2 do gene do RNA ribossomal. Zygosaccharomyces sp. 2 é filogeneticamente próxima a Z. siamensis e possui 3 isolados obtidos a partir de amostras de abelha adulta e mel maduro. Ensaios de esporulação foram realizados e foi possível observar a formação de esporos sexuais pela espécie Zygosaccharomyces sp. 1. (Figura 13). Os esporos observados estão contidos em uma asca permanente, com 2-4 esporos, que apresentam morfologia esferoidal a elipsoidal. Ascas em forma de haltere, típicas do gênero Zygosaccharomyces também foram observadas. A ascosporulação foi observada em meio YM após sete dias de incubação a 25ºC.
Figura 13: Esporos sexuais de Zygosaccharomyces sp.1. Esporo dentro da asca em forma de haltere.
54 Figura 14: Árvore filogenética mostrando o posicionamento da espécie Zygosaccharomyces sp. 1, construída pelo método de ―neighbor-joining‖, baseada em sequências dos domínios D1/D2 do gene do RNAr. Foi utilizado um bootstrap de 1000 interações e a porcentagem é mostrada próxima aos ramos. A distância evolutiva foi calculada pelo método de ―Kimura 2 parâmetros―. A barra de escala mostra a proporção de divergência na sequência. Análise realizada no programa MEGA 7.
Apiotrichum sp.1 foi isolada a partir de abelha adulta e mel imaturo de A. mellifera e é filogeneticamente próxima a A. posorum, com 27 bases divergentes na comparação de sequências dos domínios D1/D2. As outras possíveis espécies novas obtidas possuem apenas um isolado obtido e a designação de possível espécie nova foi baseada na divergência apresentada na comparação de sequencias do domínio D1/D2 do gene do RNA ribossomal. Cyrenella sp. foi isolada de adulto de T. angustula e apresenta 12 pares de bases divergentes em relação a C. elegans. Cystobasidium sp. foi isolado a partir de adulto de S. cfr. bipunctata, com quatro pares de bases diferentes em relação a C. benthicum.
55 Tabela 7: Possíveis novas espécies de leveduras.
Gênero Espécie aproximada/ % identidade/ Acesso GenBank Substrato de isolamento Quantidade
Apiotrichum sp. A. porosum (90%) / (MG707703.1) mel imaturo 1 Cyrenella sp. Cy. elegans (97%) / (KJ708454.1) abelha 1 Cystobasidium sp. Cys. benthicum (99%) /
(KY107427.1) abelha 1 Meyerozyma sp. M. guilliermondii (98%) / (MG707678.1) mel maduro 1 Papiliotrema sp. P. rajasthanensis (98%) / (KY108743.1) abelha 1 Piskurozyma sp. P. taiwanensis (98%) / (KY107271.1) abelha 1 Starmerella sp. 1 S. cf. etchellsii (98% - 99%) / (AY257049.1)
abelha, pólen, mel imaturo, mel maduro
13 Starmerella sp. 2 S. davenportii (95% - 96%) / (EF452219.1) pólen 2 Starmerella sp. 3 S. cf. lactis-condensi (96% - 99%) / (AY257059.1)
mel imaturo, mel maduro 2 Starmerella sp. 4 S. bombicola (99%) / (HQ111045.1) pólen 1 Ustilago sp. 1 U. calamagrostidis (99%) / (AY740119.1) mel imaturo 1 Ustilago sp. 2 U. sporoboli-indici (99%) / (MF716450.1) mel maduro 1 Vishniacozyma sp. V. victoriae (92%) / (MG735809.1) mel imaturo 1
Zygosaccharomyces sp.1 Z. mellis (97%) / (KY110273.1) abelha, mel imaturo, mel maduro, pólen
23 Zygosaccharomyces sp.2 Z. siamensis (99%) /
(KY110251.1)
abelha, mel maduro 3
Total 53
Meyerozyma sp. foi isolada de mel maduro de A. melifera e apresenta seis pares de bases divergentes em relação a M. gulliermondii. Papiliotrema sp. foi obtida a partir de adulto de A. mellifera e apresenta quatro pares de base divergentes em relação a P. rajasthanensis. Piskurozyma sp. foi isolada de adulto de S. cfr. bipunctata e apresenta uma divergência de oito pares de bases em relação a P. taiwanensis. Ustilago sp. 1 foi isolada de mel imaturo de T. angustula e apresenta 14 pares de bases divergentes em
56 relação a U. calamagrostidis. Já Ustilago sp. 2 foi obtida a partir de mel maduro de S. cfr. bipunctata e apresenta 32 pares de bases divergentes em relação a U. sporoboli- indici. Vishiniacozyma sp. foi isolada de mel imaturo de T. angustula e apresenta 30 pares de bases divergentes em relação à sequência de V. victoriae. Futuramente serão realizadas novas análises de sequenciamento utilizando os primers ITS1/ITS4 para confirmação das novas espécies e posterior descrição.
57 7 CONCLUSÃO
As comunidades de leveduras estudadas apresentaram baixo compartilhamento de espécies e elevado número de espécies exclusivas o que indica que possivelmente as abelhas possuem segregação de locais de forrageio, que pode resultar em uma menor competição por alimentos.
O elevado número de espécies de leveduras do gênero Starmerella, aliado ao grande compartilhamento de espécies desse gênero entre as espécies de abelhas, indica forte endemismo de espécies de Starmerella a abelhas e substratos a estas relacionados.
A similaridade apresentada entre as três comunidades de leveduras estudadas apresentou baixos valores. Além disso, a curva de acumulação de espécies não apresentou estabilidade para nenhuma das três comunidades. Esses dados indicam que um maior esforço amostral é necessário para cobrir a riqueza de leveduras das comunidades estudadas.
O isolamento de 15 possíveis espécies novas no presente trabalho mostra o potencial dos substratos estudados para o isolamento de espécies ainda não descritas, além de evidenciar a importância de estudos de biodiversidade de leveduras associadas a abelhas.
58 8 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
AL-WAILI, N. S. Natural Honey Lowers Plasma Glucose, C-Reactive Protein, Homocysteine, and Blood Lipids in Healthy, Diabetic, and Hyperlipidemic Subjects: Comparison with Dextrose and Sucrose. Journal of Medicinal Food, v. 7, n. 1, p. 100– 107, 2004. Disponível em: <All Papers/A/Al-waili 2004 - Comparison with Dextrose and Sucrose.pdf>.
ARRUDA, D. M.; BRANDÃO, D. O.; COSTA, F. V.; TOLENTINO, G. S.; BRASIL, R. D.; D’ÂNGELO NETO, S.; NUNES, Y. R. F. Structural aspects and floristic similarity among tropical dry forest fragments with different management histories in northern Minas Gerais, Brazil. Revista Árvore, v. 35, n. 1, p. 131–142, 2011.
Disponível em: <http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0100- 67622011000100016&lng=en&tlng=en>.
ÁVILA, S.; BEUX, M. R.; RIBANI, R. H.; ZAMBIAZI, R. C. Stingless bee honey: Quality parameters, bioactive compounds, health-promotion properties and modification detection strategies. Trends in Food Science and Technology, v. 81, n. August, p. 37– 50, 2018.
BÁRBARA, M. F. S.; MACHADO, C. S.; SODRÉ, G. D. S.; SILVA, F. de L.; DE CARVALHO, C. A. L. Microbiological and physicochemical characterization of the pollen stored by stingless bees. Braz. J. Food Technol., v. 21, p. 1–9, 2018.
BARBOSA, R.; PONTES, A.; SANTOS, R. O.; MONTANDON, G. G.; PONZZES- GOMES, C. M. De; MORAIS, P. B.; GONÇALVES, P.; ROSA, C. A.; SAMPAIO, J. P. Multiple Rounds of Artificial Selection Promote Microbe Secondary Domestication - The Case of Cachaça Yeasts. Genome Biol. Evol., v. 10, n. 8, p. 1939–1955, 2018. BARDOU, P.; MARIETTE, J.; ESCUDIÉ, F.; DJEMIEL, C.; KLOPP, C. Jvenn: an interactive Venn diagram viewer. BMC Bioinformatics, v. 15, n. 293, 2014. BARNETT, J. A. A history of research on yeasts 1: Work by chemists and biologists 1789–1850. Yeast, v. 14, n. 16, p. 1439–1451, 1998. Disponível em:
<http://doi.wiley.com/10.1002/%28SICI%291097-
0061%28199812%2914%3A16%3C1439%3A%3AAID-YEA339%3E3.0.CO%3B2- Z>.
BILUCA, F. C.; BRAGHINI, F.; GONZAGA, L. V.; COSTA, A. C. O.; FETT, R. Physicochemical profiles, minerals and bioactive compounds of stingless bee honey (Meliponinae). Journal of Food Composition and Analysis, v. 50, p. 61–69, 2016. Disponível em: <http://dx.doi.org/10.1016/j.jfca.2016.05.007>.
BLACKIE, R.; BALDAUF, C.; GAUTIER, D.; GUMBO, D.; KASSA, H.; PARTHASARATHY, N.; PAUMGARTEN, F.; SOLA, P.; WAEBER, S.;
SUNDERLAND, P.; SUNDERLAND, T. Tropical dry forests The state of global knowledge and recommendations for future research. Cifor, p. 38, 2014. Disponível em:
<http://www.cifor.org/publications/pdf_files/WPapers/DPBlackie1401.pdf?_ga=1.5102 5004.45351557.1403802494>.
59 sensu stricto complex. Genetics, v. 199, n. 2, p. 281–291, 2015.
BOYNTON, P. J.; GREIG, D. The ecology and evolution of non-domesticated Saccharomyces species. Yeast, v. 31, p. 449–462, 2014.
BRYSCH-HERZBERG, M. Ecology of yeasts in plant-bumblebee mutualism in Central Europe. FEMS Microbiology Ecology, v. 50, n. 2, p. 87–100, 2004.
BUTINAR, L.; SANTOS, S.; SPENCER-MARTINS, I.; OREN, A.; GUNDE-
CIMERMAN, N. Yeast diversity in hypersaline habitats. FEMS Microbiology Letters, v. 244, n. 2, p. 229–234, 2005. Disponível em: <
https://doi.org/10.1016/j.femsle.2005.01.043>.
CAETANO, S.; PRADO, D.; PENNINGTON, R. T.; BECK, S.; OLIVEIRA-FILHO, A.; SPICHIGER, R.; NACIRI, Y. The history of Seasonally Dry Tropical Forests in eastern South America: Inferences from the genetic structure of the tree Astronium urundeuva (Anacardiaceae). Molecular Ecology, v. 17, n. 13, p. 3147–3159, 2008. COSTA, A. C. V. da; SOUSA, J. M. B.; DA SILVA, M. A. A. P.; GARRUTI, D. dos S.; MADRUGA, M. S. Sensory and volatile profiles of monofloral honeys produced by native stingless bees of the brazilian semiarid region. Food Research International, v. 105, n. August 2017, p. 110–120, 2018. Disponível em:
<https://doi.org/10.1016/j.foodres.2017.10.043>.
DANIEL, H.; ROSA, C. A.; SÃO THIAGO-CALAÇA, P. S.; ANTONINI, Y.; BASTOS, E. M. A. F.; EVRARD, P.; HURET, S.; FIDALGO-JIMÉNEZ, A.;
LACHANCE, M.-A. Starmerella neotropicalis f. a., sp. nov., a yeast species found in bees and pollen. International Journal of Systematic and Evolutionary
Microbiology, v. 63, p. 3896–3903, 2013.
DEMERA, J. H.; ANGERT, E. R. Comparison of the antimicrobial activity of honey produced by Tetragonisca angustula (Meliponinae) and Apis mellifera from different phytogeographic regions of Costa Rica. Apidologie, v. 35, p. 411–417, 2004.
DOUGLAS, A. E. Multiorganismal Insects: Diversity and Function of Resident Microorganisms. Annu Rev Entomol., v. 60, p. 17–34, 2015.
ESTEVINHO, L. M.; FEÁS, X.; SEIJAS, J. A.; PILAR VÁZQUEZ-TATO, M. Organic honey from Trás-Os-Montes region (Portugal): Chemical, palynological,
microbiological and bioactive compounds characterization. Food and Chemical Toxicology, v. 50, n. 2, p. 258–264, 2012. Disponível em:
<http://dx.doi.org/10.1016/j.fct.2011.10.034>.
FELL, J. W.; BOEKHOUT, T.; FONSECA, A.; SCORZETTI, G.; STATZELL- TALLMAN, A. Biodiversity and systematics of basidiomycetous yeasts as determined by large-subunit rDNA D1/D2 domain sequence analysis. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 50, n. 3, p. 1351–1371, 2000. FERNANDEZ, A.; DIAZ, O. R. Plant diversity patterns in neotropical dry forests and their conservation implications. Science, v. 353, n. 6306, p. 1383–1387, 2016.
FURMAN, R. M.; AHEARN, DONALD G. Candida ciferrii and Candida
chiropterorum isolated from clinical specimens. Journal of clinical microbiology, v. 18, n. 5, p. 1252-1255, 1983.
60 GILLESPIE, T. W.; LIPKIN, B.; SULLIVAN, L.; BENOWITZ, D. R.; PAU, S.;
KEPPEL, G. The rarest and least protected forests in biodiversity hotspots. Biodiversity and Conservation, v. 21, n. 14, p. 3597–3611, 2012.
GILLIAM, M. Microbiology of pollen and bee bread: The yeasts. Apidologie, v. 10, n. 1, p. 43–53, 1979.
GOFFEAU, A.; BARRELL, B. G.; BUSSEY, H.; DAVIS, R. W.; DUJON, B.; FELDMANN, H.; GALIBERT, F.; HOHEISEL, J. D.; JACQ, C.; JOHNSTON, M.; LOUIS, E. J.; MEWES, H. W.; MURAKAMI, Y.; PHILIPPSEN, P.; TETTELIN, H.; OLIVER, S. G. Life with 6000 Genes. Science, v. 274, p. 562–567, 1996.
GONZÁLEZ-TEUBER, M.; HEIL, M. Nectar chemistry is tailored for both attraction of mutualists and protection from exploiters. Plant Signaling and Behavior, v. 4, n. 9, p. 809–813, 2009.
GOTELLI, N. J.; CHAO, A.; LEVIN, S. Measuring and estimating species richness, species diversity, and biotic similarity from sampling data. Encyclopedia of
biodiversity, v. 5, p. 195- 211, 2013.
GROSE, ELIZABETH S.; MARINKELLE, C. J. A new species of Candida from Colombian bats. Mycopathologia, v. 36, n. 3, p. 225-227, 1968.
HARRISON, S., ROSS, S. J. & LAWTON, J. H. Beta diversity on geographic gradients in Britain. Journal of Animal Ecology, v. 61, p. 151-158, 1992.
HEIL, M. Nectar: Generation, regulation and ecological functions. Trends in Plant Science, v. 16, n. 4, p. 191–200, 2011. Disponível em:
<http://dx.doi.org/10.1016/j.tplants.2011.01.003>.
HERRERA, C. M.; DE VEGA, C.; CANTO, A.; POZO, M. I. Yeasts in floral nectar: A quantitative survey. Annals of Botany, v. 103, n. 9, p. 1415–1423, 2009.
HOEKSTRA, J. M.; BOUCHER, T. M.; RICKETTS, T. H.; ROBERTS, C. Confronting a biome crisis: Global disparities of habitat loss and protection. Ecology Letters, v. 8, n. 1, p. 23–29, 2005.
HRNCIR, M.; JARAU, S.; BARTH, F. G. Stingless bees (Meliponini): senses and behavior. Journal of Comparative Physiology A, v. 202, n. 9–10, p. 597–601, 2016. KAEWWICHIAN, RUNGLUK et al. Yamadazyma siamensis sp. nov., Yamadazyma phyllophila sp. nov. and Yamadazyma paraphyllophila sp. nov., three novel yeast species isolated from phylloplane in Thailand and Taiwan. Antonie van Leeuwenhoek, v. 103, n. 4, p. 777-788, 2013.
KNOP, M. Evolution of the hemiascomycete yeasts : on life styles and the importance of inbreeding. BioEssays, v. 28, p. 696–708, 2006.
KUMAR, SUDHIR; STECHER, GLEN; TAMURA, KOICHIRO. MEGA7: molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular biology and evolution, v. 33, n. 7, p. 1870-1874, 2016.
KUNTHIPHUN, S., CHOKREANSUKCHAI, P., HONDEE, P. et al. World J
61 7>.
KURTZMAN, C. P. Use of gene sequence analyses and genome comparisons for yeast systematics. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 64, n. PART 2, p. 325–332, 2014.
KURTZMAN, C. P.; FELL, J. W.; BOEKHOUT, T. Definition, classification and nomenclature of the yeasts. In: KURTZMAN, C. P.; FELL, J. W.; BOEKHOUT, T. (Ed.). The Yeasts. Fifth ed. [s.l.] Elsevier B.V., 2011a. 1p. 3–5.
KURTZMAN, C. P.; FELL, J. W.; BOEKHOUT, T. Gene sequence analyses and other dna-based methods for yeast species recognition. In: KURTZMAN, C. P.; FELL, J. W.; BOEKHOUT, T. (Ed.). The Yeasts. Fifth ed. [s.l.] Elsevier B.V., 2011b. 1p. 137–144. KURTZMAN, C. P.; FELL, J. W.; BOEKHOUT, T.; ROBERT, V. Methods for
Isolation , Phenotypic Characterization and Maintenance of Yeasts. In: KURTZMAN, C. P.; FELL, J. W.; BOEKHOUT, T. (Ed.). The Yeasts. Fifth ed. [s.l.] Elsevier B.V., 2011. p. 87–110.
KURTZMAN, C. P.; ROBNETT, C. J. Identification and phylogeny of ascomycetous yeasts from analysis of nuclear large subunit (26S) ribosomal DNA partial sequences. Antonie van Leeuwenhoek, International Journal of General and Molecular Microbiology, v. 73, n. 4, p. 331–371, 1998.
LACHANCE, MARC-ANDRÉ et al. Candida cleridarum, Candida tilneyi and Candida powellii, three new yeast species isolated from insects associated with flowers.
International journal of systematic and evolutionary microbiology, v. 51, n. 3, p. 1201-1207, 2001a.
LACHANCE, MARC-ANDRÉ et al. Biogeography of the yeasts of ephemeral flowers and their insects. FEMS yeast research, v. 1, n. 1, p. 1-8, 2001b.
LIBKIND, D.; TODD, C.; VALÉRIO, E.; GONÇALVES, C.; DOVER, J.;
JOHNSTON, M. Microbe domestication and the identi fi cation of the wild genetic stock of lager-brewing yeast. PNAS, v. 108, n. 35, p. 14539–14544, 2011.
LINS, A. C. S.; SILVA, T. M. S.; CÂMARA, C. A.; SILVA, E. M. S.; FREITAS, B. M. Flavonóides isolados do pólen coletado pela abelha Scaptotrigona bipunctata (canudo). Revista Brasileira de Farmacognosia, v. 13, n. 2, p. 40–41, 2003.
LITI, G. The fascinating and secret wild life of the budding yeast S. cerevisiae. eLife, v. 4, p. 1–9, 2015.
LITI, G.; CARTER, D. M.; MOSES, A. M.; WARRINGER, J.; PARTS, L.; JAMES, S. A.; DAVEY, R. P.; ROBERTS, I. N.; BURT, A.; KOUFOPANOU, V.; TSAI, I. J.; BERGMAN, C. M.; BENSASSON, D.; KELLY, M. J. T. O.; OUDENAARDEN, A. Van; BARTON, D. B. H.; BAILES, E.; BA, A. N. N.; JONES, M.; QUAIL, M. A.; GOODHEAD, I.; SIMS, S.; SMITH, F.; BLOMBERG, A.; DURBIN, R.; LOUIS, E. J. Population genomics of domestic and wild yeasts. Nature, v. 458, n. 7236, p. 337–341, 2009. Disponível em: <http://dx.doi.org/10.1038/nature07743>.
LUNA-LUCENA, D.; RABICO, F.; SIMOES, Z. L. Reproductive capacity and castes in eusocial stingless bees (Hymenoptera: Apidae). Current Opinion in Insect Science, v. 31, p. 20–28, 2019.
62 MAGURRAN, A. E. Measuring Biological Diversity. Oxford, Blackwell Science Ltd., p.256, 2004.
MCLAREN, K. P.; MCDONALD, M. A.; HALL, J. B.; HEALEY, J. R. Predicting species response to disturbance from size class distributions of adults and saplings in a Jamaican tropical dry forest. Plant Ecology, v. 181, n. 1, p. 69–84, 2005.
MENEZES, C.; VOLLET-NETO, A.; CONTRERA, F.; VENTURIERI, G. C.;
IMPERATRIZ-FONSECA, V. L. The Role of Useful Microorganisms to Stingless Bees and Stingless Beekeeping. In: Pot-Honey: A legacy of stingless bees. 1. ed. New York 2013: Springer Science and Business Media, p. 153–171, 2013.
MICHENER, C. D. Comparative Social Behavior of Bees. Annual Review of Entomology, v. 14, n. 1, p. 299–342, 1969. Disponível em:
<http://www.annualreviews.org/doi/10.1146/annurev.en.14.010169.001503>. MICHENER, C. D. The bees of the world. 2nd. ed. [s.l.] The Johns Hopkins University Press, 2007.
MICHENER, C. D. The Meliponini. In: VIT, P.; PEDRO, S. R. M.; ROUBIK, D. Pot- honey: a legacy of stinglees bees. Springer, New York, p. 3–17, 2013.
MILES, L.; NEWTON, A. C.; DEFRIES, R. S.; RAVILIOUS, C.; MAY, I.; BLYTH, S.; KAPOS, V.; GORDON, J. E. A global overview of the conservation status of tropical dry forests. Journal of Biogeography, v. 33, n. 3, p. 491–505, 2006.
MIORIN, P. L.; LEVY, N. C.; CUSTODIO, A. R.; BRETZ, W. A.; MARCUCCI, M. C. Antibacterial activity of honey and propolis from Apis mellifera and Tetragonisca angustula against Staphylococcus aureus. Journal of Applied Microbiology, v. 95, n. 5, p. 913–920, 2003.
MURPHY, P. G.; LUGO, A. E. Ecology of Tropical Dry Forest. Annual Review of Ecology and Systematics, v. 17, n. 1, p. 67–88, 1986. Disponível em:
<http://www.annualreviews.org/doi/10.1146/annurev.es.17.110186.000435>. MUSTAFA, M. Z.; YAACOB, N. S.; SULAIMAN, S. A. Reinventing the honey industry: Opportunities of the stingless bee. Malaysian Journal of Medical Sciences, v. 25, n. 4, p. 1–5, 2018.
NAGATSUKA, YUKA et al. Citeromyces siamensis sp. nov., a novel halotolerant yeast isolated in Thailand. International journal of systematic and evolutionary
microbiology, v. 52, n. 6, p. 2315-2319, 2002.
NORDIN, A.; OMAR, N.; SAINIK, N. Q. A. V.; CHOWDHURY, S. R.; OMAR, E.; BIN SAIM, A.; BT HJ IDRUS, R. Low dose stingless bee honey increases viability of human dermal fibroblasts that could potentially promote wound healing. Wound Medicine, v. 23, p. 22–27, 2018.
NOTARO, K. A.; DE MEDEIROS, E. V.; DUDA, G. P.; MOREIRA, K. A.; DE BARROS, J. A.; DOS SANTOS, U. J.; LIMA, J. R. S.; MORAES, W. S. Enzymatic activity, microbial biomass, and organic carbon of entisols from brazilian tropical dry forest and annual and perennial crops. Chilean Journal of Agricultural Research, v. 78, n. 1, p. 68–77, 2018.
63 OLIVEIRA-FILHO, A. T. de. Definição e delimitação de domínios e subdomínios das paisagens naturais do estado de Minas Gerais. In: SCOLFORO, J. R.; CARVALHO, L. M. T. (Ed.). Mapeamento e Inventário da Flora e dos Reflorestamentos de Minas Gerais. Lavras: UFLA, 2006. p. 21–35.
OTHMAN, N. H. Honey and cancer: Sustainable inverse relationship particularly for developing nations-a review. Evidence-based Complementary and Alternative Medicine, v. 2012, p. 1–10, 2012.
OTHMAN, Z.; ZAKARIA, R.; HUSSAIN, N.; HASSAN, A.; SHAFIN, N.; AL- PALUDO, C. R.; MENEZES, C.; SILVA-JUNIOR, E. A.; VOLLET-NETO, A.; ANDRADE-DOMINGUEZ, A.; PISHCHANY, G.; KHADEMPOUR, L.; FABIO, S.; CURRIE, C. R.; KOLTER, R.; CLARDY, J.; PUPO, M. T. Stingless Bee Larvae Require Fungal Steroid to Pupate. Scientific Reports, v. 8, n. 1122, p. 1–10, 2018. PATRICIA, V.; OLIVERIO, V.; TRINY, L.; FAVIÁN, M. Meliponini biodiversity and medicinal uses of pot-honey from El Oro province in Ecuador. Emirates Journal of Food and Agriculture, v. 27, n. 6, p. 502–506, 2015.
PEDRO, S. R. D. M. The stingless bee fauna in Brazil (Hymenoptera: Apidae). Sociobiology, v. 61, n. 4, p. 348–354, 2014.
PORTILLO-QUINTERO, C. A.; SÁNCHEZ-AZOFEIFA, G. A. Extent and
conservation of tropical dry forests in the Americas. Biological Conservation, v. 143, n. 1, p. 144–155, 2010. Disponível em:
<http://dx.doi.org/10.1016/j.biocon.2009.09.020>.
POZO, M. I.; HERRERA, C. M.; BAZAGA, P. Species richness of yeast communities in floral nectar of southern Spanish plants. Microb Ecol, v.61, p. 82-91, 2011.
PRETORIUS, S. I. Tailoring wine yeast for the new millennium: novel approaches to the ancient art of winemaking. Yeast, v. 16, n. 8, p. 675–729, 2000. Disponível em: <http://dx.doi.org/10.1002/1097-0061(20000615)16:8%3C675::AID-
YEA585%3E3.0.CO;2-B>.
PRIETO-TORRES, D. A.; NAVARRO-SIGÜENZA, A. G.; SANTIAGO-ALARCON, D.; ROJAS-SOTO, O. R. Response of the endangered tropical dry forests to climate change and the role of Mexican Protected Areas for their conservation. Global Change Biology, v. 22, n. 1, p. 364–379, 2016.
QUEZADA-EUÁN, J.; NATES-PARRA, G.; MAUÉS, M. M.; IMPERATRIZ- FONSECA, V. L.; ROUBIK, D. Economic and cultural value of stingless bees
(Hymenoptera: Meliponini) among ethnic groups of tropical Ameica. Sociobiology, v. 65, n. 4, p. 534–557, 2018.
QUINTAL, R. B.; ROUBIK, D. W. Melipona bees in the scientific world: western cultural views. In: VIT, P.; PEDRO, S. R. M.; ROUBIK, D. Pot-honey: a legacy of stinglees bees. Springer, New York, p. 247–259, 2013.
RAHBI, B.; AHMAD, A. Potential Role of Honey in Learning and Memory. Medical Sciences, v. 3, n. 2, p. 3–15, 2015. Disponível em: <http://www.mdpi.com/2076- 3271/3/2/3/>.
64 RAMALHO, M. Foraging by stingless bees of the genus, scaptotrigona (Apidae,
meliponinae). Journal of Apicultural Research, v. 29, n. 2, p. 61–61, 1990.
RAO, P. V.; KRISHNAN, K. T.; SALLEH, N.; GAN, S. H. Biological and therapeutic effects of honey produced by honey bees and stingless bees: A comparative review. Brazilian Journal of Pharmacognosy, v. 26, n. 5, p. 657–664, 2016. Disponível em: <http://dx.doi.org/10.1016/j.bjp.2016.01.012>.
RASPOR, P. et al. Yeasts isolated from three varieties of grapes cultivated in different locations of the Dolenjska vine-growing region, Slovenia. International Journal of Food Microbiology. v. 109, n. 1-2, p. 97-102, 2006.
RODRIGUES, P. M. S.; SILVA, J. O.; EISENLOHR, P. V; SCHAEFER, C. Climate change effects on the geographic distribution of specialist tree species of the Brazilian tropical dry forests. Brazilian Journal of Biology, v. 75, n. 3, p. 679–684, 2015. Disponível em: <https://www.scopus.com/inward/record.uri?eid=2-s2.0-
84943559136&partnerID=40&md5=a8470f31eb6238f60637dcb36210c5b2>.
ROSA, C. A.; LACHANCE, M. A.; SILVA, J. O. C.; TEIXEIRA, A. C. P.; MARINI, M. M.; ANTONINI, Y.; MARTINS, R. P. Yeast communities associated with stingless bees. FEMS Yeast Research, v. 4, n. 3, p. 271–275, 2003.
ROUBIK, D. W. Stingless bee nesting biology. Apidologie, v. 37, n. 2, p. 124–143, 2006.
RÓZAŃSKA, H.; OSEK, J. Effect of storage on microbiological quality of honey. Bulletin of the Veterinary Institute in Pulawy, v. 56, n. 2, p. 161–163, 2012. SAKAGAMI, SHÔICHI F.; ZUCCHI, R. Behavior studies of the stingless bees , with special reference to the oviposition process: VI. Trigona (Tetragona) clavipes. Journal of the Faculty of Science Hokkaido University, v. 16, n. 2, p. 292–313, 1967. SAKSINCHAI, S.; SUZUKI, M.; CHANTAWANNAKUL, P.; OHKUMA, M.; LUMYONG, S. A novel ascosporogenous yeast species, Zygosaccharomyces siamensis, and the sugar tolerant yeasts associated with raw honey collected in Thailand. Fungal Diversity, v. 52, p. 123–139, 2012.
SALVADÓ, Z.; ARROYO-LÓPEZ, F. N.; GUILLAMO, J. M.; SALAZAR, G.; QUEROL, A.; BARRIO, E. Temperature Adaptation Markedly Determines Evolution within the Genus Saccharomyces. Applied and Environmental Microbiology, v. 77, n. 7, p. 2292–2302, 2011.
SAMPAIO, J. P.; GONÇALVES, P. Natural Populations of Saccharomyces
kudriavzevii in Portugal Are Associated with Oak Bark and Are Sympatric with S . cerevisiae and S. paradoxus. Applied and Environmental Microbiology, v. 74, n. 7, p. 2144–2152, 2008.
SEIJO, M. C.; ESCUREDO, O.; FERNÁNDEZ-GONZÁLEZ, M. Fungal diversity in honeys from northwest Spain and their relationship to the ecological origin of the product. Grana, v. 50, n. 1, p. 55–62, 2011.
SICARD, D.; LEGRAS, J. L. Bread, beer and wine: Yeast domestication in the Saccharomyces sensu stricto complex. Comptes Rendus - Biologies, v. 334, n. 3, p. 229–236, 2011. Disponível em: <http://dx.doi.org/10.1016/j.crvi.2010.12.016>.
65 SLAA, E. J.; SÁNCHEZ CHAVES, L. A.; MALAGODI-BRAGA, K. S.; HOFSTEDE, F. E. Stingless bees in applied pollination : practice and perspectives To cite this
version : Review article Stingless bees in applied pollination : practice and perspectives OF POLLINATION IN COMMERCIALLY GROWN. Apidologie, v. 37, p. 293–315, 2006.
STARMER, WILLIAM T; LACHANCE, M.-A. Yeast Ecology. In: KURTZMAN, C. P.; FELL, J. W.; BOEKHOUT, T. (Ed.). The Yeasts. Fifth ed. [s.l.] Elsevier B.V., 2011. p. 65–83.
STEFANINI, I. Yeast ‐ insect associations : It takes guts. Yeast, v. 35, p. 315–330, 2018.
STRATFORD, M., BOND, C. J., JAMES, S. A., ROBERTS, I. N. & STEELS, H. Candida davenportii sp. nov., a potential soft-drinks spoilage yeast isolated from a wasp. Int J Syst Evol Microbiol, v. 52, p. 1369–1375, 2002.
TEIXEIRA, A. C. P.; MARINI, M. M.; NICOLI, J. R.; ANTONINI, Y.; MARTINS, R. P.; ROSA, C. A.; ROSA, C. A. Starmerella meliponinorum sp . nov ., a novel
ascomycetous yeast species associated with stingless bees. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 53, p. 339–343, 2003.
TIEN, CHIH-JEN; CHANG, CHING-WEN; WANG, PI-HAN. Rhodotorula
calyptogenae, a new record yeast for Taiwan. Fungal Science, v. 23, p. 55-56, 2008. TORRES, A. R.; SANDJO, L. P.; FRIEDEMANN, M. T.; TOMAZZOLI, M. M.; MARASCHIN, M.; MELLO, C. F. Chemical characterization, antioxidant and
antimicrobial activity of propolis obtained from Melipona quadrifasciata quadrifasciata and Tetragonisca angustula stingless bees. Brazilian Journal of Medical and
Biological Research, v. 51, n. 6, p. 1–10, 2018.
VALENTE, PATRICIA et al. Bandoniozyma gen. nov., a genus of fermentative and non-fermentative tremellaceous yeast species. PLoS One, v. 7, n. 10, p. e46060, 2012. VALENTIN, J. L. Agrupamento e Ordenação. in: Peres-Neto, P.R., Valentin, J.L., Fernandez, F.A.S. (Eds.). O ecologia brasiliensis, v. 2, p. 27-55, 1995.
VAUGHAN-MARTINI, A.; MARTINI, A. Saccharomyces Meyen ex Reess ( 1870 ).