4.3 Doenças bacterianas e agentes etiológicos
4.3.3 Inoculação de isolados de Xanthomonas spp em diferentes hospedeiros
O teste de patogenicidade cruzada revelou a capacidade de
Xanthomonas CB02 (antúrio) e CB01 (copo-de-leite) em causar lesões em
antúrio, copo-de-leite, lírio-da-paz e singônio, mas não nas mudas de tomate (Família solanaceae) (Tabela 6). Estes resultados comprovam a especificidade patogênica dos isolados testados a plantas da Família Araceae. Dessa forma, estima-se que antúrio, copo-de-leite, lírio-da-paz e singônio possam ser fontes de inóculo para outras aráceas, mas não para plantas da família Solanaceae.
De forma semelhante, X. vesicatoria, isolada de tomateiro, causou lesões apenas no tomate e no copo-de-leite. A lesão em copo-de-leite não era esperada, pois X. vesicatoria ocorre naturalmente apenas em tomate e pimentão (Tabela 6).
TABELA 6 Patogenicidade cruzada de isolados de Xanthomonas, avaliada por meio do diâmetro das lesões (cm) em diferentes hospedeiros. UFLA, Lavras, MG, 2005.
Hospedeiros Isolados
Tomate Antúrio Copo-de-leite Lírio-da-paz Singônio
Controle* 0,0b A 0,0b A 0,0c A 0,0b A 0,0b A
Xv 0,72a
AB 0,0b B 0,95b A 0,0b B 0,0b B
CB01 0,0b B 2,80a A 3,82a A 0,67ab B 0,60ab B
CB02 0,0b C 3,70a A 3,70a A 1,42a B 1,25a B
As médias com a mesma letra minúscula nas linhas e letra maiúscula nas colunas não diferem entre si, pelo teste de Tukey (P≤0,05).
*Controle= mudas não inoculadas; Xv = Xanthomonas vesicatoria (Tomate); CB01 = Xanthomonas (Copo-de-leite); CB02 = Xanthomonas (Antúrio).
Embora as maiores lesões tenham sido produzidas pelos isolados em seus hospedeiros de origem, houve também a produção de lesões nos outros hospedeiros da família Araceae (Tabela 6). Resultados semelhantes foram observados por Chase et al. (1992) e Khoodoo et al. (2005), em que isolados de
Xantomonas campestris pv. dieffenbachiae foram mais agressivos a seus
hospedeiros de origem.
4.3.4 Características moleculares
O produto da reação de amplificação com os primers 16S 1330/23S 322anti gerou um fragmento único de, aproximadamente, 1.100 pb, para os isolados de Xanthomonas do antúrio (Figura 16, colunas 4-7), de Xanthomonas do copo-de-leite (Figura 16, colunas 14-15) e Xanthomonas axonopodis pv.
leite (Figura 16, colunas 10-13 e colunas 16 a 19) e Erwinia carotovora subs.
carotovora (Figura 16, colunas 8-9), foram gerados dois fragmentos. Estes
agrupamentos comprovam que os isolados CB01 e CB02 pertencem ao gênero
Xanthomonas e CB03, CB04, CB05 e CB06 ao gênero Erwinia.
FIGURA 16. Produtos da PCR dos isolados de Xanthomonas de Anthurium sp. e
Zantedeschia aethiopica e Erwinia de Zantedeschia aethiopica e
alguns isolados referência das espécies de Xanthomonas e Erwinia amplificados pelos primers 16Suni1330 e 23Suni322anti. M 1Kb DNA ladder. Linhas 1-3 Xanthomonas axonopodis pv. malvacearum. Colunas 4-5 CB02 (A), 6-7 CB02 (C). Colunas 8-9 Erwinia
carotovora subs. carotovora. Colunas 10-11 CB03, 12-13 CB04, 14-
15 CB01, 16-17 CB05 e 18-19 CB06.
A região ITS entre o gene ribossomal 16S e 23S rRNA é considerada ideal para a identificação de bactérias, por conter extensa seqüência variada (Khoodoo et al., 2005). Esta seqüência está descrita em vários trabalhos, tanto de identificação de fitobactérias quanto em estudo de filogenia (Maes, 1993; DeParasis & Roth, 1990; Sahin et al., 2003). Gutler & Stanisich (1996) sugeriram as regiões 16S e 23S rRNA para a construção de primers específicos na identificação de bactérias.
Maes (1993) identificou diferenças entre fitobactérias do gênero
Xanthomonas na amplificação por PCR de um único fragmento do gene 16S
rDNA de 480 b. DeParasis e Roth (1990) sequenciaram parcialmente a molécula
16S rRNA de fitobactérias e encontraram variação na seqüência entre os gêneros
Xanthomonas, Pseudomonas e Erwinia, na região entre as bases 1064-1090.
A amplificação de um único produto de PCR (aproximadamente 680 bp) da região espaçadora 16S-23S rDNA, de isolados representando seis diferentes patovares de X. campestris, inclusive X. campestris pv. zinniae, também foi observada por Sahin et al. (2003). A análise da seqüência do fragmento do DNA dos produtos amplificados por PCR da região 16S-23S rDNA revelaram semelhança entre as seqüências (aproximadamente 89% a 97%) entre os isolados de X. campestris pv. campestris, X. axonopodis pv. vesicatoria, X. vesicatoria,
X. hortorum pv. vitians e X. campestris pv. zinniae. Porém, essas seqüências
diferiram entre isolados de forma significativa, separando a espécie X.
campestris pv. zinniae dos outros isolados testados.
4.4 Outras doenças
Durante a realização deste trabalho, não foram observadas doenças, como ferrugens, murchas vasculares, podridão de hastes e raízes causadas por
Pythium, Phytophthora, Rhizoctonia e Sclerotium, bem como manchas foliares
5 CONCLUSÕES
Nas condições em que foi realizado este trabalho, concluiu-se que: 1 Colletotrichum gloeosporioides e Glomerella cingulata foram isolados de antúrio e singônio, sendo o primeiro relato de Glomerela cingulata causando antracnose nestas duas plantas, no Brasil;
2 Este foi o primeiro relato de Colletotrichum falcatum em lírio-da-paz e singônio, no Brasil;
3 Cercospora richardiaecola foi observado apenas em copo-de-leite;
4 Xanthomonas axonopodis pv. dieffenbachiae e Xanthomonas campestris pv.
zantedeschiae foram isoladas de antúrio e copo-de-leite, respectivamente;
5 Este foi o primeiro relato de Xanthomonas campestris pv. zantedeschiae em copo-de-leite, no Brasil.
6 Erwinia carotovora subsp. carotovora foi observada apenas em copo-de-leite. 7 Antúrio, lírio-da-paz e singônio podem ser fontes de inóculo de
Colletotrichum gloeosporioides, C. falcatum e Glomerella cingulata ente si,
bem como o pimentão, da família Solanaceae.
8 Antúrio, copo-de-leite, lírio-da-paz e singônio podem ser fontes de inóculo de
Xanthomonas axonopodis pv. dieffenbachiae e X. campestris pv. zantedeschiae
para outras aráceas, mas não são fontes de inóculo para tomate, da Família Solanaceae.
6 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
AKI, A.; PEROSA, M.Y. Aspectos da produção e consumo de flores e plantas ornamentais no Brasil. Revista Brasileira de Horticultura Ornamental, Campinas, v.8, n.1/2, p.13-23, 2002.
ALEXOPOULOS, C.J.; MIMS, C.W.; BLACKWELL, M. Introductory
mycology. 4.ed. New Cork: J. Wiley, 1996. 869p.
ALMEIDA, I.M.G.; MALAVOLTA, JR. V.A.; R. NETO, J. Caracterização de bactérias do gênero Erwinia causando podridões em plantas ornamentais no Brasil. Revista Brasileira de Horticultura Ornamental, Campinas, v.2, n.1, p.52-60, 1996.
ALMEIDA, I.M.G.; MALAVOLTA, JR. V.A.; R. NETO, J. Novas ocorrências de Erwinia carotovora subsp. carotovora e de E. chrysanthemi em plantas ornamentais no Brasil. Revista Brasileira de Horticultura Ornamental, v.3, n.2, p.80-84, 1997.
ALMEIDA, I.M.G.; MALAVOLTA, JR. V.A. Podridão mole em copo-de-leite causada por Erwinia carotovora subsp. carotovora. Summa Phytopathologica, v.24, n.1, p.66, 1998.
ALMEIDA, E.F.A.; PAIVA, P.D.de O. Floricultura 2: cultivo de copo-de- leite. Lavras: UFLA, 2004. 28p. (Textos Acadêmicos, 40).
ALVAREZ, C.M.G.; ALVAREZ, R.E. First report of Colletotrichum dematium on Aglaonema and of C. gloeosporioides on Syngonium in the northeast of Argentina. Investigation Agraria, v.16, n.1, p.131-134, 2001.
ANN, P.J. Phytophthora diseases of ornamental plants in Araceae in Taiwan.
Plant Pathology Bulletin, v.1, n.2, p.79-89, 1992.
APONTE, A.; MARIN, A.; DEBROT, E. Leaf blight of tail flower (Anthurium
andreanum) caused by Phytophthora nicotianae var parasitica in Venezuela.
ARX, J.A.Von; MULLER, E. Die gattugen der amerosporen pyrenomyceten: Beitrage zur Kryptogamenflora der Schweiz, Bern: Kommissionsverlag
Buchdruckerei Buchler, v. 11, 1954, 434p.
AUSUBEL, F.M. et al. (Ed.). Short protocols in molecular biology. 2.ed. London: J. Wiley, 1994.
AYSAN, Y.; SAHIN, F. First report of bacterial blight of Anthurium caused by
Xanthomonas axonopodis pv. dieffenbachiae in Turkey. Plant Pathology, v.52,
n.6, p.783, 2003. Abstr.
BONNER, R.L. et al. Monoclonal antibodies used to characterize Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae. Phytopathology, v.77, p.1725, 1987. Abstract BRIENDIS, G.S.; PALACIOS, M. Enfermedades fungicas del cultivo de la dália (Dalia pinnata Cav.) em la region central de Venezuela. Agronomia
Tropical, v.49, n.3, p.339-348, 1999.
BUSHE, B.C. et al. Identifying anthurium flower injuries. Plant Disease, 2004. Disponível em: < http://www.ctahr.hawaii.edu/freepubs>. Acesso em: 15 dez. 2006.
CANNON, P.F. Colletotrichum: international course on the identification of fungi of agricultural importance. CAB International, 1991.
CEREZINE, P.C. et al. Mancha foliar de Phyllosticta em gengibre. Pesquisa
Agropecuária Brasileira, Brasília, v.30, p.477-487, 1995.
CETINKAYA, Y.R. et al. An outbreak of bacterial stem rot of Dieffenbachia
amoena caused by Erwinia carotovora subsp. carotovora in the Eastern
Mediterranean region of Turkey. Plant Disease, v.88, n.3, p.310, 2004. Abstract.
CHASE, A.R.; EL-GHOLL, N.E. Stem rot, cutting rot, and leaf spot of
Dieffenbachia maculata ‘Perfection’ incited by Fusarium solani. Plant Disease,
v.66, p.595-598, 1982.
CHASE, A.R. et al. Charaterization of Xanthomonas campestris strains from aroids using physiological, pathological and fatty acid analyses.
CHEN, J. et al. Genetic relationships of Aglaonema species and cultivars inferred from AFLP masrkers. Annals of Botany, v.93, p.157-166, 2004 CHO, H.R. et al. Virulence variation in 20 isolates of Erwinia carotovora subsp. carotovora on Zantedeschia cultivars in Korea. Acta Horticulturae, v.2, n.673, p.653-659, 2005.
CLARO, D.P.; SANTOS, A.C.; CLARO, P.B.O.; Um diagnóstico do agregado da produção de flores do Brasil. Revista Brasileira de Horticultura
Ornamental, Campinas, v.7, n.1, p.9-15, 2001.
COELHO, M.A.N. Philodendron Schott (Araceae): morfologia e taxonomia das espécies da Reserva Ecológica de Macaé de Cima – Nova Friburgo, Rio de Janeiro, Brasil. Rodriguésia, v.51, p.21-68, 2000.
COOKSEY, D.A. Xanthomonas blight of Anthurium andraeanum in California.
Plant Disease, v.69, p.727, 1985.
CORRÊA, M.G.S; SILVA, J.B.; ÁVILA, P.F.V.;BUSATO, G.R.; LEMES, J.S. Meiose e viabilidade polínica na Família Araceae. Acta Botânica Brasilica, v.19, n.2, p.295-303, 2005.
CORTES, M.A. Leaf blight of Syngonium podophyllum Schott "white butterfly" in Puerto Rico. Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico, v.75, n.1, p.97-99, 1991.
CROAT, T.B. Revision of Dieffenbachia (Araceae) of Mexico, Central
America, and the west indies. Annals of the Missouri Botanical Garden, v.91, n.4, p.668-772, 2004.
DEPARASIS, J.; ROTH, D.A. Nucleic acid probes for identification of phytobacteria: Identification of genus specific 16S rRNA sequences.
Phytopathology, v.80, p.618-621, 1990.
DESHMUKH, H.V.; PAWAR, D.R.; JOSHI, M.S. Symptomatology and host range studies of anthracnose disease of Anthurium incited by Colletotrichum
gloeosporioides. Orissa Journal of Horticulture, v.27, n.1, p.26-28, 1999.
DIAS, R.C. Estudo exploratório do setor de floricultura no Ceará. Disponível em: <http://www.floresdoceara.com.br/files/CEARA.zip>. Acesso em: 1 fev. 2005.
DICKEY, R.S. Erwinia chrysanthemi: a comparative study of phenotypic properties of strains from several hosts and other Erwinia species.
Phytopathology, v.69, n.4, p.324-329, 1979.
D. NETO, H. de O. et al. Doenças de plantas ornamentais da coleção Roberto Burle Marx. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE FLORICULTURA E PLANTAS ORNAMENTAIS, 14.; CONGRESSO BRASILEIRO DE CULTURA DE TECIDOS DE PLANTAS, 1., 2003, Anais..., 2003.
FISCHER, I.H. et al. Ocorrência de Phytophthora paraditica em lírio-da-paz no Brasil. Fitopatologia Brasileira, Brasília, v.29, n.6, p.690, 2004.
FUKUI, R. et al. Relationship between symptom development and actual sites of infection in leaves of Anthurium inoculated with a bioluminescent strain of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae. Applied and Enviromental
Microbiology, v.62, n.3, p.1021-1028, 1996.
GRAHAM, S.O.; STROBEL, J.W. Incidence of antracnose fungi on ornamental foliage in Washington state greenhouses. Plant Disease Reporter, Beltsville, v.42, n.11, p.1294-1296, 1958.
GUAN, X.F. et al. Studies on biological characteristics of Xanthomonas
axonopodis pv. dieffenbachiae. Plant Protection, v.30, n.6, p.43-45, 2004.
GUTLER, V.; STANISICH, V. A. New approaches to typing and identification of bacteria using the 16S-23S rDNA spacer region. Microbiology, v.142, p.3- 16, 1996.
HANLIN, R.T. Illustrated genera of ascomycetes. Saint Paul: American Phytopathological Society, 1990. v.1, 263p.
HAYGOOD,R.A.; STRIDER, D.L.; ECHANDI, E. Survival of Erwinia
chrysanthemi in association with Philodendron selloum, other greenhouse
ornamentals, and in potting media. Phytopathology, v.72, n.7, p.853-859, 1982. HAYWARD, A.C. Preliminary diagnosis of plant diseases caused by bacteria. In: FAHY, P.C.; PERSLEY, G.L. (Ed.). Plant bacterial disease: a diagnostic guide, 1983. p.1-12.
HODGES, C.S.; FERREIRA, F.A. Korunomyces, a new genus of fungi imperfecti from Brazil. Mycologia, New York, v.73, n.2, p.334-342, 1981.
HONEYCUTT, R.J.; SOBRAL, B.W.S.; Mc CLELLAND, M. t-RNA intergenic spacers reveal polymorphisms diagnostic for Xanthomonas albilineans, Microbiology, v.141, p.3229-3239, 1995.
JI, G.H. et al. Preliminary identification of bacterial strain causing Anthurium bacterial blight. Acta Phytopathologica Sinica, v.34, n.2, p.107-111, 2004. JONES, R.K.; AVERRE, C.W. Damping-off in flower and vegetable seedlings.
Ornamental Disease Note, n.14, 2000. Disponível em:
<http://www.ces.ncsu.edu/depts/pp/notes/oldnotes/od14.htm>. Acesso em 15
dez. 2005.
JUNQUEIRA, A.H.; PEETZ, M.S. da. Análise conjuntural das exportações
de flores e plantas ornamentais do Brasil, janeiro a novembro de 2004.
Mensagem recebida por <hortica@uol. com.br> em: 10 jan. 2005.
KADO, C.I.; HESKETT, M.G. Selective media for isolation of Agrobacterium, Corynebacterium, Erwinia, Pseudomonas e Xanthomonas. Phytopathology, St Paul, v.60, n.6, p.969-976, 1970.
KELEMU, S.; BADEL, J.L.; MORENO, C.X. Virulence spectrum of South American Isolates of Colletotrichum gloeosporioides on selected Stylosanthes
guianensis genotypes. Plant Disease, v.80, n.12, p.1355-1358, 1996.
KELEMU, S. et al. Genetic diversity in South American Colletotrichum
gloeosporioides isolates from Stylosanthes guianensis, a tropical forage legume.
European Journal of Plant Pathology, v.105, p.261-272, 1999.
KIYUNA, I. et al. A floricultura brasileira no início do século XXI: o perfil do produtor. Revista Brasileira de Horticultura Ornamental, Campinas, v.8, n.1/2, p.57-76, 2002.
KHOODOO, M.H.R. et al. Molecular characterisation of Xanthomonas strains isolated from aroids in Mauritius. Systematic and Applied Microbiology, v.28, p.366-380, 2005.
KRIEG, Z.; HOLT, J.G. Bergey’s manual of systematic gbacteriology. (Ed.). Baltimore/London, Williams & Wilkins, 1984. v.1, 660p.
KUBOTA, M.; HIRANO, T. Occurrence of leaf spot on Monstera deliciosa caused by Phoma exigua. Proceedings of the Kanto Tosan Plant Protection
LAI, M.; SHAFFER, S.; SIMS, K. Bacterial blight of Syngonium podophyllum caused by Erwinia chrysanthemi in California. Plant Disease Reporter. v.62, n.4, p.298-302, 1978.
LEE, Y.A.; CHEN, K.P.; CHANG, Y.C. First report of bacterial leaf blight of white flowered calla lily caused by Xanthomonas campestris pv. Zantedeschiae in Taiwan. Plant Pathology, v.54, n.2, p.239, 2004.
LONG, L.C.; LIU, K.M. Colocasia lihengiae (Araceae: Colocasieae), a new species from Yunnan, China. Botanical Bulletin of Academia Sinica, v.42, p.313-317, 2001.
LIYANAGE, H.D.; MCMILLAN Jr., R.T.; KISTLER, H.C. Two genetically distinct populations of Colletotrichum gloeosporioides from citrus.
Phytopathology, v.82, n.11, p.1371-1376, 1992.
LUZ, P. B. da. Cultivo de flores tropicais. Informe Agropecuário, Belo Horizonte, v.26, n.227, p.62-72, 2005.
MAES, M. Fast classification of plant-associated bacteria in the Xanthomonas genus. FEMS Microbiology Letters, v.113, p.161-166, 1993.
MALAVOLTA, Jr. V.A. et al. Bactérias patogênicas a plantas ornamentais ocorrendo no Brasil: uma atualização. Revista Brasileira de Horticultura
Ornamental, Campinas, v.1, n.1, p.56-63, 1995.
MALAVOLTA, Jr. V.A.; ALMEIDA, I.M.G.; NETO, J.R. Crestamento
bacteriano em filodendro causado por Pseudomonas cichorii. Revista Brasileira
de Horticultura Ornamental, Campinas, v.7, n.1, p.63-66, 2001 .
MARIANO, R. de L. R.; SILVEIRA, E.B. da. Manual de práticas em
fitobacteriologia. Recife: Universidade Federal Rural de Pernambuco, 2005.
184p.
MELTON, T.A.; MORRIS, P.; SHEW, H.D. Brown spot. 2000. Disponível em: <http://www.ces.ncsu.edu/depts/pp/notes/oldnotes/tb3.htm#causal>. Acesso em: 10 mar. 2006.
MILLER, H.N.; MCFADDEN, L.A. A bacterial disease of philodendron.
MUNIZ, M. de F.S., SANTOS, R.de C.R. dos & BARBOSA, G.V.de S. Patogenicidade de isolados de Colletotrichum gloeosporioides sobre algumas plantas frutíferas. Summa Phytopathologica, v.24, p.177-179, 1998. NATURAL, M.P.; ALVAREZ, A.M. (Ed.). Anthurium blight in the philippines. In: ANTHURIUM BLIGHT CONFERENCE, 3., 1990, Hawai.
Proceedings... Hawai: University of Hawaii at Hilo, 1990.
NORMAN, D.; ALVAREZ, A. A rapid method for presumptive identification of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae and other xanthomonads. Plant
Disease, v.73, p.654-658, 1989.
PEPPARD, T.L. Volatile flavor constituents of Monstera deliciosa. Journal of
Agricultural Food Chem, v.40, p.257-262, 1992.
PERES, N.A.R. et al. Identification and characterization of Colletotrichum spp. Affecting fruit after harvest in Brazil. Journal of Phytopathology, v.150, p.128-134, 2002.
PERNEZNY, K.; KUCHAREK, T. Rust diseases of several legumes and corn
in Florida. 2003. Disponível em: <http://edis.ifas.ufl.edu>. Acesso em: 10
mar.2006.
PITTA, G.P.B.; CARDOSO, R.M.G.; CARDOSO, E.J.B.N. Doenças de
plantas ornamentais. São Paulo: Instituto Brasileiro do Livro Científico, 1989.
174p.
POZZA, E.A. Ocorrência de doenças da parte aérea de plantas na região de
Lavras – MG. 1994. 97p. Dissertação (Mestrado em Fitopatologia)-
Universidade Federal de Lavras, Lavras, MG.
PITTA, G.P.B. Flores e plantas ornamentais para exportação: aspectos fitossanitários. Brasília: EMBRAPA-SPI, 1995. 50p. (Série Publicações Técnicas FRUPEX, 17).
POZZA, E.A. et al. Ocorrência de fungos e bactérias associados a doenças em plantas ornamentais em Lavras – MG. Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v.20, n.1, p.39-44, 1996.
REIS, A. et al. Cylindrocladium spathiphilli agente causal de podridão de colo e raiz do lírio-da-paz no Distrito Federal. Fitopatologia Brasileria, Brasília, v.29, n.1, p.102, 2004.
R. FILHO, M.L.; OLIVEIRA, S.M.A.; MENEZES M. Caracterização enzimática e patogenicidade cruzada de Colletotrichum spp. associados a doenças de pós-colheita. Fitopatologia Brasileira, Brasília, v.28, p.620-625, 2003.
ROBBS, C.F.; CARVALHO, A. de O.; AKIBA, F. Crestamento bacteriano das folhas de Philodendron spp. causado por Pseudomonas fluorescens.
Fitopatologia Brasileira, Brasília, v.8, n.3, p.631, 1983.
ROMEIRO, R. da S. Métodos em bacteriologia de plantas. Viçosa: Universidade Federal de Viçosa, 2001. 279p.
ROMEIRO, R.S. et al. Bacterial sudden yellow death and soft rot of
Coriandrum sativum. Plant Pathology, v.43, p.944-946, 1994.
REPORT ON PLANT DISEASE. Fungal leaf spot diseases of shade and
ornamental trees in the Midwest, 1998.
SAHIN, F., KOTAN, R., ABBASI, P.A. e MILLER, S.A. Phenotypic and genotypic characterization of Xanthomonas campestris pv. zinniae strains.
European Journal of Plant Pathology, v.109, p.165–172, 2003.
SCHAAD, J.J.; JONES, J.B.; CHUN, W. Laboratory guide for identification
of plant pathogenic bacteria. 3.ed. St. Paul: The American Phytopathology
Society, 2001. 373p.
SCHOTT, H.W.; ENDLICHER, S. Spathiphyllum Schott. 1999. Disponível em:
<http://facultystaff.vwc.edu/~presslar/greenhouse/spathiphyllum/genus_spath.ht
m>. Acesso em: 10 jan. 2006.
SHAW, D.E. Rust of Monstera deliciosa in Austrália. Mycological-Research, v.95, n.6, p.665-678, 1991.
SHAW, D.E. Reaction of aroids to Puccinia paullula f. sp. monsterae.
Australian Plant Pathology, v.24, n.1, p.15-21, 1995.
SNIJDER, R.C. et al. Genetic variation in Zantedeschia spp. (Araceae) for resistance to soft rot caused by Erwinia carotovora subsp. carotovora.
SOUZA, R.M.; NAVES, R.L.; BOARI, A.J. Doenças de plantas ornamentais. Lavras: UFLA/FAEPE, 2001. 84p.
SOUZA, N.A.; JASMIM, J. Crescimento de singônio com diferentes tutores e substratos à base de mesocarpo de coco. Horticultura Brasileira, v.22, n.1, p.39-44, 2004.
SUGIMORI, M.H.; RODRIGUES N. J; ISHIMURA, I. Nova doença bacteriana do antúrio, causada por Pseudomonas sp. no Brasil. Fitopatologia Brasileira, Brasília, v.5, n.3, p.460, 1980.
SUTTON, B.C. The Coelomycetes. Kew: Commonwealth Mycological Institute, 1980. 696p.
TAKATSU, A. Erwinias do grupo carotovora no Brasil. Fitopatologia
Brasileira, Brasília, v.8, p.535-536, 1983.
THOMSON, S.V.; HILDEBRAND, D.C.; SCHROTH, M.N. Identification and nutritional differentiation of the Erwinia sugar beet pathogen from members of
Erwinia carotovora and Erwinia chrysanthemi. Phytopatohology, v.71, n.10,
p.1037-1042, 1981.
TOMBOLATO, A.F.C. Cultivo comercial de plantas ornamentais. Campinas: Instituto Agronômico, 2004 211 p.
TOMBOLATO, A.F.C. et al. Recursos genéticos e melhoramento do antúrio (Anthurium andraeanum Linden) no IAC-APTA. Revista Brasileira de
Horticultura Ornamental, Campinas, v.10, n.1/2, p.1-4, 2004.
UNITED STATES DEPARTMENT OF AGRICULTURE. Index of fungi on
plants: fungal diseases occurrence databases. Beltsville, 2005. Disponível em:
<http://nt.ars-grin.gov/>. Acesso em: 10 dez. 2005.
VIÉGAS, A.P. Alguns fungos do Brasil 2: Ascomicetos. Bragantia, Campinas, v.4, n.1, 1944.
VIEIRA, B.S.; BARRETO, R.W. First Record of Cercospora richardiaecola causing leaf spots on Zantedeschia aethiopica in Brazil. Plant Pathology, v.53, n.6, p.813, 2004.
VIVEKANDA, C.A. et al. Avaliação preliminar de cultivares de antúrio para o Paraná. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE FLORICULTURA E PLANTAS
ORNAMENTAIS, 14.; CONGRESSO BRASILEIRO DE CULTURA DE TECIDOS DE PLANTAS, 1., 2003, Lavras. Anais... Estratégias para novos rumos. Lavras: UFLA, 2003.
WRIGHT, P.J. A soft rot of calla (Zantedeschia spp.) caused by Erwinia
carotovora subsp. carotovora. New Zealand Journal of Crop and
Horticultural Science, v.26, p.331-334, 1998.
YOUNG, J.M. et al. A proposed nomenclature and classification for plant pathogenic bacteria. New Zealand Journal of agricultural Research, v.21, p.153-157, 1978.
YOUNG, H.J. Beetle pollination of Dieffenbachia longispatha (Araceae).
ANEXO A
TABELA 1A Resumo da análise de variância dos dados referentes ao diâmetro das lesões (cm) causadas pelos isolados CM02 e CM55 de Glomerella cingulata, CM08 e CML620 de Colletotrichum gloeosporioides, CM52 e CM58 de Colletotrichum falcatum, em mudas de antúrio, lírio-da-paz, pimentão e singônio. UFLA, Lavras,MG, 2005...
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78 TABELA 2A Resumo da análise de variância dos dados referentes
ao diâmetro das lesões (cm) causadas pelos isolados CB01, CB02 e Xv de Xanthomonas, em mudas de antúrio, copo-de-leite, lírio-da-paz, tomate e singônio. UFLA, Lavras, MG, 2005... 78
TABELA 1A – Resumo da análise de variância dos dados referentes ao diâmetro das lesões (cm) causadas pelos isolados CM02 e CM55 de
Glomerella cingulata, CM08 e CML620 de Colletotrichum gloeosporioides, CM52 e CM58 de Colletotrichum falcatum, em
mudas de antúrio, lírio-da-paz, pimentão e singônio. UFLA, Lavras, MG, 2005.
ns = teste F não significativo a 5%
/1 = dados transformados para (Y + 1)½
TABELA 2A – Resumo da análise de variância dos dados referentes ao diâmetro das lesões (cm) causadas pelos isolados CB01 e CB02 de
Xanthomonas, em mudas de antúrio, copo-de-leite, lírio-da-paz,
tomate e singônio. UFLA, Lavras, MG, 2005.
ns = teste F não significativo a 5%
/1 = dados transformados para (Y + 1)½
FV GL QMs e significância Diâmetro (cm)/1 Isolado 6 3,9869 ns Muda 3 0,1179 ns Isolado x Muda 18 0,1790 ns Erro 164 0,0434 CV (%) 15,55 FV GL QMs e significância Diâmetro (cm)/1 Isolado 3 2,8605 ns Muda 4 0,7154 ns Isolado x Muda 12 0,4925 ns Erro 100 0,0322 CV (%) 14,73