• Nenhum resultado encontrado

4. MATERIAL E MÉTODOS

6.3 Interação entre Trichogramma pretiosum e Bacillus thuringiensis

Os graves prejuízios econômicos causados por P. xylostella em cultivos comerciais de brasicáceas e as dificuldades de controle com o uso de inseticidas organo-sintéticos, devido a resistência gerada por esta espécie para inúmeras moléculas inseticidas, levaram à busca de alternativas de controle baseado no manejo integrado de pragas.Assim, a utilização conjunta de agentes de controle biológico, como por exemplo, Trichogramma spp. e Bacillus thuringiensis parece altamente viável, devido a que ejercem controle complementar ao atuar sobre ovos e lagartas da praga alvo.

Estudos desenvolvidos por Polanczyk et al. (2006) onde suspensões de 6 isolados de B. thuringiensis e B. thuringiensissubespécie kurstaki foram misturadas com mel (1:1), como fonte de alimento, e cartelas com ovos de Anagasta kuehniella (Zeller) (Lepidoptera, Pyralidae) foram fornecidas para o parasitismo, indicaram que o uso desse bioinseticida não é prejudicial para as espécies T. pratisolii Querino & Zucchi eT. pretiosum. Essesresultados são também coincidentes com os obtidos por Azizoglu et al. (2015) onde foi avaliada o efeito potencial de Bacillus thuringiensissubespeciekurstaki no desempenho parasítico de fêmeas de Trichogramma evanescens Westwood sobre ovos de Ephestia kuehniella (Lepidoptera: Pyralidae).

Em contrapartida os trabalhos de Vaez, Iranipour e Hejazi (2013) afirmaram que a aplicação de B. thuringiensis em ovos de H. armigera afetou negativamente a taxa de parasitismo de T. brassicae, o que coincide com os nossos resultados onde a dose comercial de Bac-Control (B. thuringiensis subsp. aizawai), em condiciones de laboratório, interferiu negativamente nas taxas de parasitismo e na emergência de T. pretiosum (Tabela 8). Por sua vez, em condições de semicampo (casa de vegetação) tal condição foi revertida, não houve diferenças estatísticas com os tratamentos Dipel e controle,contudo foi observado efeito negativo dos produtos comerciais Bac-Control e Dipel na taxa de emergência de T. pretiosum (Tabelas 9).

A ação de Bac Control em T. pretiosum não pode ser associada à ação direta de B. thuringiensis, uma vez que não houve consumo de resíduos de B.

thuringiensis por T. pretiosum. Além disso, se isso tivesse acontecido T. pretiosum não tem os receptores necessários para a ligação das toxinas Cry com as células epiteliais do intestino médio, porque tanto Dipel como Bac-Control atuam sobre Lepidoptera e especificamente sobre os seus estágios imaturos. Assim, propomos que a ação de Bac-Control se associa com alterações químicas dos semioquimicos presentes na superfície coriônica provocando a rejeição dos ovos hospedeiros.

Provavelmente durante a imersão dos ovos ocorreram mudanças nos cairomonios ou em suas concentrações, o que levou às fêmeas de T. pretiosum a rejeitá-los porque não tinha informação confiável para aceita-los como suporte para a sua progênie. Há também a possibilidade de que T. pretiosumtenha a capacidade de detectar as toxinas de B. thuringiensis atuando esses como repelentes. Estudos do tempo de aceitação/parasitismo de T. brassicae em ovos de H. armigera tratados com B. thuringiensis subesp. kurstakidemostraram que o tempo em que as fêmeas de T. brassicae dedicaram ao tratamento com ovos sem B. thuringiensis foi 1,5 vezes maior, demostrando possível influência desse bioinseticida em agentes não alvo (VAEZ; IRANIPOUR; HEJAZI, 2013).

No que diz respeito à variação observada entre as formulações de B. thuringiensis utilizadas em nossos experimentos, elas podem estar associadas ao numero de toxinas e/ou formulação dos produtos. No entanto, este ponto não foi totalmente resolvido.

7. CONCLUSÕES

A manipulação de ovos hospedeiros pode causar alterações físicas e químicas que podem influenciar a preferência e aceitação por Trichogramma pretisoum linhagem Tp8.

A metodologia de obtenção de ovosdesenvolvida para P. xylostellamostrou-se eficiente, não interferindo no comportamento parasítico de T. pretiosum.

A criação de T. pretiosum,linhagem Tp8 por sucessivas gerações no hospedeiro parental C. cephalonica provocou condicionamento para este hospedeiro ebaixos níveis de parasitismo ao novo hospedeiro P. xylostella.

A criação de T. pretiosum, linhagem Tp8 por uma geração no novo hospedeiro P. xylostella foi suficiente para alterar a preferência em favor do novo hospedeiro, já que as fêmeas de T. pretiosum, linhagem Tp8 tem capacidade de aprender e memorizar sinais associados com a recompensa de um ovo para a oviposição e/ou alimentação (host-feeding).

Em condições de casa de vegetação ou semi campo, foi necessária a criação de T. pretiosum, linhagem Tp8, por duas gerações em P. xylostella para o parasitoide detectar, aceitar e parasitar este hospedeiro.

Os efeitos de Dipel e Bac Control sobreT. pretiosum, linhagem Tp8 não foram totalmente esclarecidos, dado que existiram diferenças entre os resultados obtidos em condições de laboratório e semicampo.

Em condições de semicampo, por serem esses mais próximos da realidade agrícola, os resultados indicaram que é possível utilizar formulados comerciais de B. thuringiensisconjuntamente com liberações inundativas deT. pretiosum, linhagem Tp8, o que não ocorreu em condições de laboratório.

Em condições de laboratório novas pesquisas são necessárias para avaliar a utilização combinada de B. thuringiensis e espécies de Trichogramma de forma a estabelecerse B. thuringiensis exerce efeitos negativos sobre as espécies ou linhagem de Trichogramma. É também necessário realizar testes para visar a tolerancia das espécies/ linhagem de Trichogramma a doses e formulações de B. thuringiensis.

8. REFERÊNCIAS

AHUJA, I.; ROHLOFF, J.; and BONES, A. Defence mechanisms of Brassicaceae: implications for plant-insect interactions and potential for integrated pest management. A review. Agronomy for Sustainable Development, Houten, v.30, n.2, p. 311-348, 2010.

ANANTHAKRISHNAN, Τ.Ν.; SENRAYAN, R.; MURUGESAN, S.; and ANNADURAI, R.S. Kairomones of Heliothis armigera and Corcyra cephalonica and their influence on the parasitic potential of Trichogramma chilonis (Trichogrammatidae: Hymenoptera). Journal of Bioscience, Madras, v.16, n.3, p. 111–119, 1991.

AZIZOGLUA, U.; YILMAZB, S.; AYVAZ, A.; KARABÖRKLÜ, S. Effects of Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki HD1 spore-crystal mixture on the adults of egg parasitoid Trichogramma evanescens (Hymenoptera: Trichogrammatidae). Biotechnology & Biotechnological Equipment, [S.I.], v. 29, n. 4, 653-658, 2015. BALLESTER, V.; GRANERO, F.; TABASHNIK, B.E.; MALVAR, T.; and FERRÉ, J. Integrative model for binding of Bacillus thuringiensis toxins in susceptible and resistant larvae of the diamondback moth (Plutella xylostella). Applied and Environmental Microbiology, Washington DC, v.65, n.4, p. 1413–1419, 1999. BARROS, R. Efeito de cultivares de repolho Brassica oleracea var. capitata (L.) na biologia da traça-das-crucíferas, Plutella xylostella (L., 1758) e do parasitoide Trichogramma pretiosum Riley, 1879. 1998. 98 f. Tese (Doutorado em Entomologia

Agrícola) – Universidade de São Paulo ESALQ/USP, Piracicaba, 1998.

BARROS, R.; VENDRAMIM, J.D. Efeito de cultivares de repolho, utilizadas para criação de Plutella xylostella (L.) (Lepidoptera: Plutellidae), no desenvolvimento de Trichogramma pretiosum Riley (Hymenoptera: Trichogrammatidae). Anais da

Sociedade Entomológica do Brasil, Londrina, v.28, n.3, p. 469-476, 1999.

BIGLER, F.; MEYER, A.; BOSSHART, S. Quality assessment in Trichogramma maidis Pintureau et Voegeli reared from eggs of the factitious hosts Ephestia kuehniella Zell. andSitotroga cerealella (Olivier). Journal of Applied Entomology, Berlin, v.104, n.1-5, p. 340-353, 1987.

BOIVIN, G. Phenotypic plasticity and fitness in egg parasitoids. Neotropical Entomology, Piracicaba, v.39, n.4, p. 457-463, 2010.

BOO, K.S; YANG, J.P. Kairomones used by Trichogramma chilonis to find Helicoverpa assulta eggs. Journal of Chemical Ecology, Tampa, v.26, n.2, p. 359- 375, 2000.

CASTELO BRANCO, M.; FRANÇA, F. H.; VILLAS BOAS, G. L. Traça-das- crucíferas

(Plutella xylostella). Brasília: Embrapa Hortaliças, 1997.

CASTELO BRANCO, M.; MELO, C. A. Resistência a abamectin e cartap em populações de traça-das-crucíferas. Horticultura Brasileira, Brasília DF, v.20, n.4, p. 541-543, 2002.

COLAZZA, S.; PERI, E.; SALERNO, G.; CONTI, E. Host searching by eggs parasitoids: eplotation of host chemical cues. In: CÔNSOLI, F. L.; PARRA, J. R. P.; ZUCCHI, R. A. (Eds.) Egg parasitoids in agrosystems with emphasis on Trichogramma. New York: Springer. 2010. p. 267-292.

CÔNSOLI, F.L.; PARRA, J.R.P. In vitro rearing of parasitoids: constraints and perspectives. Trends in Entomology, Kerala, v.2, p. 19-32, 1999.

CORBET, S.A. Insect chemosensory responses: a chemical legacy hypothesis. Ecological Entomology, [S.I.], v. 10, p.143–153, 1985.

DE BORTOLI, S.A.; VACARI, A.M.; POMARI, A.F.; VEIGA, A.C.P.; VOLPE, H.X.L.; MAGALHÃES, G.O; MAEDA, J.M. Produção de insetos: da base à biofábrica. In: BUSOLI, A.C.; FRAGA, D.F.; SANTOS, L.; ALENCAR, J.R.C.C.; GRIGOLLI, J.F.J.; JANINI, J.C.; SOUZA, L.A.; VIANA, M.A.; FUNICHELLO, M. (Eds.). Tópicos em entomologia agrícola IV. Jaboticabal: Multipress: 2011. p. 95-116.

DE BORTOLI, S.A.; POLANCZYK, R.A.; VACARI, A.M.; DE BORTOLI, C.P.; DUARTE, R.T. Plutella xylostella (Linnaeus, 1758) (Lepidoptera: Plutellidae): tactics for integrated pest management in Brassicaceae. In: SOLENOSKI, S.; LARRAMENDY, M. (Eds.). Weed and Pest Control - Conventional and New Challenges. Rijeka: Intech. p. 31-51. 2013.

DIAS, D.G.S; SOARES, C.M.S.; MONNERAT, R.G. Avaliação de larvicidas de origem microbiana no controle de traça-das-crucíferas em couve-flor. Horticultura Brasileira, Brasilia, v. 22, p. 387-390, 2004.

DUKAS, R. Evolutionary biology of insect learning. Annual Review of Entomology, Palo Alto, v.53, p. 145–160, 2008.

FATOUROS, N.E.; BUKOVINSZKINE, G.; KALKERS, L.; SOLER, R.; DICKE, M. and HILKER, M. Oviposition-induced plant cues: do they arrest Trichogramma wasps during host location? Entomolgia Experimentalis et Applicata, Groningen, v.115, n.1, p. 207–215, 2004.

FURLONG, M.; WRIGHT, D.; DOSDALL, L. Diamondback moth ecology and management: problems, progress and prospects. Annual Review of Entomology, Palo Alto, USA, v.58, p. 517-541, 2013.

GRZYWACZ, D.; ROSSBACH, A.; RAUF, A.; RUSSELL, D.; SRINIVASAN, R.; SHELTON, A. Current control methods for diamondback moth and other brassica insect pests and the prospects for improved management with lepidopteran-resistant Bt vegetable brassicas in Asia and Africa. Crop Protection, [S.I.], v.29, n.1, p. 68-79, 2010.

HASSAN, S.A. and GUO, M.F. Selection of effective strains of egg parasites of the genus Trichogramma (Hym., Trichogrammatidae) to control the European corn borer Ostrinia nubilalis Hb. (Lep., Pyralidae). Journal of Applied Entomology, Berlin, v.111, n.1-5, p. 335-341, 1991.

HOEDJES, K.; KRUIDHOF, H.; HUIGENS, M.; DICKE, M.; VET, L.; SMID, H. Natural variation in learning rate and memory dynamics in parasitoid wasps: opportunities for converging ecology and neuroscience. Proceedings of the Royal Society B, [S.I.], v.278, n.1707, p. 889-897, 2010.

HOMMAY, G.; GERTZ, C.; KIENLEN, J.C.; PIZZOL, J.; and CHAVIGNY, P. Comparison between the control efficacy of Trichogramma evanescens Westwood (Hymenoptera: Trichogrammatidae) and two Trichogramma cacoeciae Marchal strains against grapevine moth (Lobesia botrana Den. & Schiff.), depending on their release density. Biocontrol Science and Technology, Manchester, v.12, n.5, p. 569-581, 2002.

HUIGENS, M.; PASHALIDOU, F.; QIAN, M.H; BUKOVINSZKY, T.; SMID, H. Van LOON, J.; DICKE, M.; FATOUROS, N. Hitch-hiking parasitic wasp learns to exploit butterfly antiaphrodisiac. Proceedings of the National Academy of Sciences, [S.I.], v.106, n.3, p. 820-825, 2009.

IDRIS, A. B.; GRAFIUS, E. Diurnal flight activity of Diadegma insulare (Hymenoptera: Icheneumonidae), a parasitoid of the diamondback moth (Lepidoptera: Plutellidae) in the field. Environmental Entomology, Annanopolis., v.27, n.2, p. 406-414, 1998. KAISER, L.; PHAM-DELEGUE, M.H.; and MASSON, C. Behavioural study of plasticity in host preferences of Trichogramma maidis (Hym.: Trichogrammatidae). Physiological Entomology, Londres, v.14, n.1, p. 53-60, 1989.

KÖLLIKER-OTT, U. M., BIGLER, F.; HOFFMANN A. A. Does mass rearing of field collected Trichogramma brassicae wasps influence acceptance of european corn borer eggs? Entomologia Experimentalis et Applicata, Amsterdam, v. 109, n.3, p. 197–203, 2003.

KRNJAJIC, S.; DIMIC, N.; PERIC, P.; VURSA, M.; CVETKOVIC, M. Biological control of cabbage pests. Acta Horticulturae, Bruselas, v.462, n.1, p. 119-124, 1997.

KRUIDHOF, H.M.; PASHALIDOU, F.G.; FATOUROS, N.E.; FIGUEROA, I.A.; VET, L.E.M.; SMID, H.M.; HUIGENS, M.E. Reward value determines memory consolidation in parasitic wasps. PLoS ONE, [S.I], v.7, n.8, p. 1-10, 2012.

LI-YING, L. Worldwide use of Trichogramma for biological control on different crops: a survey. In: WANJBERG, E.; HASSAN, S. A. (Eds.). Biological control with egg parasitoids. Wallingford: CAB International, 1994. p. 37-53.

LOBDELL, C. E.; YONG, T. H.; HOFFMANN, M. P. Host color preferences and short- range searching behavior of the egg parasitoid Trichogramma ostriniae. Entomologia Experimentalis et Applicata, Amsterdam, v.116, n.2, p. 127-134, 2005.

LUCCHETTA, P.; BERNSTEIN, C.; THÉRY M.; LAZZARI, C.; DESOUHANT, E. Foraging and associative learning of visual signals in a parasitic wasp. Animal Cognition, Hanover, v. 11, p. 525–533, 2008.

MARGARITIS, L. H., MAZZINI, M. Structure of the egg. In: HARRISON F. E.; LOCKE, M. (Eds.). Microscopic Anatomy of Invertebrates Insecta. New York: Wiley-Liss, 1998. p. 995-1037.

MEDEIROS, P.; SONE, E.; SOARES, C.M.; DIAS, J. M.; MONNERAT, R. Avaliação de produtos á base de Bacillus thuringiensis no controle da traça-das-crucíferas. Horticultura Brasileira, Brasília DF, v.24, n.2, p. 245-248, 2006.

MICHIGAN STATE UNIVERSITY. Arthropod pesticide resistance database. Michigan Sate University, United State of America, 2014. Disponível em: <http://www.pesticideresistance.com>. Acesso em: 04 ago. 2014.

OATMAN, E.; PLATNER, G. An ecological study of insect populations on cabbage in southern California. Hilgardia, California, v.40, n.1, p. 1-40, 1969.

OLSON, D.M.; RAINS, G.C.; MEINERS, T.; TAKASU, K.; TERTULIANO, M.; TUMLINSON, J.H.; WÄCKERS, F.L.; LEWIS, W.J. Parasitic Wasps Learn and Report Diverse Chemicals with Unique Conditionable Behaviors. Chemical Senses, Oxford. v. 28, p. 545–549, 2003

PAK, G.; OATMAN, E. Biology of Trichogramma brevicapillum.Entomologia Experimentalis et Applicata, Amsterdam, v.32, n.1, p. 61-67, 1982.

PAK, G. A.; VAN DALEN, A.; KAASHOEK, N.; DIJKMAN, H. Host egg chorion structure influencing host suitability for the egg parasitoid Trichogramma Westwood. Journal of Insect Physiology, Texas, v.36, n.11, p. 869-875, 1990.

PAPAJ, D. R.; PROKOPY, R. J. Ecological and evolutionary aspects of learning in phytophagous insects. Annual Review of Entomology, Palo Alto, v.34, p. 315-350, 1989.

PARRA, J.R.P. In: PARRA, J. R. P.; ZUCCHI, R. A. (Eds.). Trichogramma e o controle biológico aplicado. Piracicaba: FEALQ, 1997. p. 83-206.

PARRA, J. R. P. Mass rearing of egg parasitoids for biological control programs. In: CÔNSOLI, F. L.; PARRA, J. R. P., ZUCCHI, R. A. (Eds.). Egg parasitoids in agrosystems with emphasis on Trichogramma. New York: Springer, 2010. p. 267- 292.

PAUL, A. V. N.; SINGH, S.; SINGH, A. K. Kairomonal effect of some saturated hydrocarbons on the egg parasitoids, Trichogramma brasiliensis (Ashmead) and Trichogramma exiguum Pinto & Platner (Hym., Trichogrammatidae). Journal of

PEÑAFLOR, M. F. G. V.; ERB, M., MIRANDA, L. A.; WERNEBURG, A. G.; BENTO, J. M. S. Herbivore induced plant volatiles can serve as host location cues for a generalist and a specialist egg parasitoid. Journal of Chemical Ecology, Tampa, v.37, n.12, p. 1304-1313, 2011.

PLUKE, R. W. H.; LEIBEE, G. L. Host preferences of Trichogramma pretiosum and the influence of prior ovipositional experience on the parasitism of Plutella xylostella and Pseudoplusia includens eggs. BioControl, Dordrecht, v.51, n.5, p. 569-583, 2006.

PRATISSOLI, D.; POLANCZYK, R. A.; VIANNA, U. R; ANDRADE, G.; OLIVEIRA, R. C. Desempenho de Trichogramma pratissolii Querino & Zucchi (Hymenoptera, Trichogrammatidae) em ovos de Anagasta kuehniella (Zeller) (Lepidoptera, Pyralidae) sob efeito de Bacillus thuringiensis Berliner. Ciência Rural, Santa María, v.36, n.2, p. 369-377, 2006.

PRATISSOLI, D.; HOLTZ, A. M.; GONÇALVES, J. R.; OLIVEIRA, R. C.; VIANNA, U. R. Características biológicas de linhagens de Trichogramma pretiosum, criadas em ovos de Sitotroga cerealella e Anagasta kuehniella. Horticultura Brasileira, Brasília, v.22, n.3, p. 562-565, 2004.

PINTO, J. D. Taxonomia de Trichogrammatidae (Hymenoptera) com ênfase nos gêneros que parasitam Lepidoptera. In: PARRA, J. R. P.; ZUCCHI, R. A. (Eds.). Trichogramma e o controle biológico aplicado. Piracicaba: FEALQ, 1997. p. 13- 40.

PINTO, J.D. A review of the new world genera of Trichogrammatidae (Hymenoptera). Journal of Hymenoptera Research, Washington D.C., v.15, nº1 p. 38-163, 2006. PINTO, J. D.; OATMAN, E. R.; PLATNER, G. R. Trichogramma pretiosum and a new cryptic species occurring sympatrically in southwestern North America (Hymenoptera: Trichogrammatidae). Annals of the Entomological Society of America, Annanopolis, v.79, n.6, p. 1019-1028, 1986.

POLANCZYK, R.A.; PRATISSOLI, D.; VIANNA, U.R.; OLIVEIRA R.G.S.; ANDRADE, G.S. Interaction between natural enemies Trichogramma and Bacillus thuringiensis in pest control. Acta Scientiarum Agronomy, Maringá, v.28, n.2, p. 233-239, 2006. QUERINO, R., ZUCCHI, R. A., PINTO, J. D. Systematics of the Trichogrammatidae (Hymenoptera: Chalcidoidea) with a focus on the genera attacking Lepidoptera. In:

CÔNSOLI, F. L.; PARRA, J. R. P.; ZUCCHI, R. A. (Eds.). Egg parasitoids in agrosystems with emphasis on Trichogramma. New York: Springer, 2010. p. 191- 218.

RAINS, G. C., UTLEY, S. L., LEWIS, W. J. Behavioral monitoring of trained insects for chemical detection. Biotechnology Progress, Hanover, v. 22, p. 2-8, 2006. RENWICK, J. The chemical world of crucivores: lures, treats and traps. Entomologia Experimentalis et Applicata, Amsterdam, v.104, n.1, p. 35-42, 2002.

SANTOS, J.; HUGO, J.; MARQUES, E.; PRATISSOLI, D.; KLOSS, T.; MACHADO, L.; ANDRADE, G. Efeito de Bacillus thuringiensis (Bacillaceae) sobre parâmetros biológicos do parasitoide Trichogramma pretiosum (Trichogrammatidae). Natureza on line, Santa Teresa, v.9, n.1, p. 1-6, 2011.

SARFRAZ, M.; KEDDIE, B. A.; DOSDALL, L. M. Biological control of the diamondback moth, Plutella xylostella: a review. Biocontrol Science and Technology, Manchester, v.15, n.8, p. 763-789, 2005.

SAS INSTITUTE. SAS/Stat User’s Guide. Carolina del Norte:Cary, 2002.

SCHMIDT. J. Host recognition and acceptance by Trichogramma. In: WANJBERG, E.; HASSAN, S. A.; (Eds.). Biological control with egg parasitoids. Wallingford: CAB International, 1994. p. 113-135.

SCHMIDT, J. M.; SMITH, J. J. Host volume measurement by the parasitoid wasp Trichogramma minutum: the roles of curvature and surface area. Entomologia

Experimentalis et Applicata, Amsterdam, v.39, n.3, p. 213-221, 1985a.

SCHMIDT, J. M.; SMITH, J. J. The mechanism by which the parasitoid wasp Trichogramma minutum responds to host clusters. Entomologia Experimentalis et

Applicata, Amsterdam, v.39, n.3, p. 287-294, 1985b.

SCHROER, S.; SULISTYANTO, D.; EHLERS, R. U. Control of Plutella xylostella using polymer-formulated Steinernema carpocapsae and Bacillus thuringiensis in cabbage fields. Journal of Entomology and Nematology, Nairobi, v.129, n.4, p. 198-204, 2005.

SHU, S.; JONES, R. L. Kinetic effects of a kairomone in moth scales of the european corn borer on Trichogramma nubilale Ertle & Davis (Hymenoptera:

Trichogrammatidae). Journal of Insect Behavior, Amsterdam, v.2, n.1, p. 123-131, 1989.

STEIN, C. P; PARRA, J. R. P. Aspectos biológico de Anagasta kuehniella (Zeller, 1879) criada em dois sustratos alimentares. Anais da Sociedade Entomológica do Brasil, Londrina, v.16, p. 173-185, 1987.

TABONE, E.; PINTUREAU, B.; PIZZOL, J.; MICHEL, F.; BARNAY, O.; TABONE, E. Aptitude de 17 souches de Trichogrammes a parasiter lateigne dês cruciferes Plutella xylostella L. em laboratoire (Lep: Yponomeutidae). Annales de la Société

Entomologique de France, Paris, v.35, n.1, p. 427- 433, 1999.

THAPHAN, P.; KEAWSOMPONG, S.; CHANPAISAENG, J. Characterization of Bacillus thuringiensis JCPT121 as promising biopesticide against diamondback moth (Plutella xylostella L.). Thai Journal of Agricultural Science, Bangkok, v.44, n.1, p. 61-70, 2011.

THOMSON, L. J.; HOFFMANN, A. A. Laboratory fecundity as predictor of field success in Trichogramma carverae (Hymenoptera: Trichogrammatidae). Journal of Economic Entomology, Annanopolis. v.95, n.5, p. 912-917, 2002.

THULER, R.T.; DE BORTOLI, S.A.; GOULART, R.M.; VIANA, C.L.T.; PRATISSOLI, D. Interação tritrófica e influência de produtos químicos e vegetais no complexo: brássicas x traça-das-crucíferas x parasitoides de ovos. Ciência e Agrotecnologia,Lavras, v. 32, n. 4, p. 1154-1160, 2008.

TRIPLEHORN, CH.A.; JOHNSON, N. 2011. ESTUDO DOS INSETOS – Tradução da 7ª edição de Borror and Delong’s Introduction to the Study of Insects. . Editora Cengage Learning, EE.UU. 2011. P. 40-44.

VAEZ, N.; IRANIPOUR, S.; HEJAZI, M. Effect of treating eggs of cotton bollworm with Bacillus thuringiensis Berliner on functional response of Trichogramma brassicae Bezdenko. Archives of Phytopathology and Plant Protection, Oxfordshire, v.46, n.20, p. 2501-2511, 2013.

VANDEMBERG, J. D.; SHELTON, A. M.; WILSEY, W. T.; RAMOS, M. Assessment of Beauveria bassiana sprays for control the diamondback moth (Lepidoptera: Plutellidae) on crucifers. Journal of Economic Entomology, Annanopolis, v.91, n.3, p. 624-630, 1998.

van BERGEIJK, K. E.; BIGLER, F.; KAASHOEK, N. K.; PAK, G. A. Changes in host acceptance and host suitability as an effect of rearing Trichogramma maidis on a factitious host. Entomologia Experimentalis et Applicata, Amsterdam, v.52, n.3, p. 229-238, 1989.

VASCONCELOS, Y. Inseto contra inseto. Pesquisa FAPESP, São Paulo, n. 194, p. 68-73, 2012.

VASQUEZ, L.A.; SHELTON, A.M.; HOFFMANN, M.P.; ROUSH, R.T. Laboratory evaluation of commercial Trichogrammatid products for potential use against Plutella xylostella (L.) (Lepidoptera: Plutellidae). Biological Control, San Diego, v.9, n.1, p. 143 -148, 1997.

VET, L. E. M.; LEWIS, W. J.; CARDE, R. T. Parasitoid foraging and learning. In: CARDE, R. T.; BELL, W. J. (Eds.). Chemical Ecology of Insects. New York: Chapman and Hall, 1995. p. 65-101.

VINSON, S. B. The general host selection behavior of parasitoid Hymenoptera and a comparison of initial strategies utilized by larvaphagous and oophagous species. Biological Control, San Diego, v.11, n.2, p. 79-96, 1998.

VINSON, S. Nutritional Ecology of Insect Egg Parasitoids. In: CÔNSOLI, F. L.; PARRA, J. R. P.; ZUCCHI, R. A. (Eds.). Egg parasitoids in agrosystems with emphasis on Trichogramma. New York: Springer, 2010. p. 25-45.

VOLKOFF, A. N.; DAUMAL, J.; BARRY, P.; FRANÇOIS, M. C.; HAWLITZKY, R. M.

Development of Trichogramma cacoeciae Marchal (Hymenoptera:

Trichogrammatidae): timetable and evidence for a single larval instar. International Journal of Insect Morphology and Embryology, Oxford, v.24, n.4, p. 459-466, 1995.

WÄCKERS, F. L.; BONIFAY, C.; LEWIS, W. J. Conditioning of appetitive behavior in the Hymenopteran parasitoid Microplitis croceipes. Entomologia Experimentalis et Applicata, Amsterdam, v. 103, p. 135–138, 2002

WÜHRER, B. G.; HASSAN, S. A. Selection of effective species/strains of Trichogramma (Hym.; Trichogrammatidae) to control the diamondback moth Plutella xylostella L. (Lep., Plutellidae). Journal of Applied Entomology, Berlin, v.116, n.1- 5, p. 80-89, 1993.

YAMAZAKI, T.; ISHIKAWA, T.; PANDIAN, G.; OKAZAKI, K.; HAGINOYA, K.; TACHIKAWA, Y.; MITSUI, T.; MIYAMOTO, K.; CHANAN ANGUSTHANASOMBAT, C.; HORI, H. Midgut juice of Plutella xylostella highly resistant to Bacillus

thuringiensis Cry1Ac contains a three times larger amount of glucosinolate sulfatase which binds to Cry1Ac compared to that of susceptible strain. Pesticide Biochemistry and Physiology, San Diego, v. 101, p. 125-131, 2011.

YOU, M.; YUE, Z.; HE, W.; YANG, X.; YANG, G.; XIE, M.; ZHAN, D.; BAXTER, S.; VASSEUR, L.; GURR, G.; DOUGLAS, C.; BAI, J.; WANG, P.; CUI, K.; HUANG, S.; LI, X.; ZHOU, Q.; WU, Z.; CHEN, Q.; LIU, C.; WANG, B.; LI, X.; XU, X.; LU, C.; HU, M.; DAVEY, J.; SMITH, S.; CHEN, M.; XIA, X.; TANG, W.; KE, F.; ZHENG, D.; HU, Y.; SONG, F.; YOU, Y.; MA, X.; PENG, L.; ZHENG, Y.; LIANG, Y.; CHEN, Y.; YU, L.; ZHANG, Y.; LIU, Y.; LI, G.; FANG, L.; LI, J.; ZHOU, X.; LUO, Y. ; GOU, C.; WANG, J.; WANG, J.; YANG, H.; WANG, J.; JUN, W. J. A. Heterozygous moth genome provides insights into herbivory and detoxification. Nature Genetics, New York, v. 45, p. 220-225, 2013.

ZABORSKI, E.; TEAL, P.E.; LAING, J.E. Kairomone-mediated host finding by spruce budworm egg parasite, Trichogramma minutum. Journal of Chemical Ecology, New York., v.13, n.1, p. 113-122, 1987.

ZALUCKI, M.; SHABBIR, A.; SILVA, R.; ADAMSON, D.; SHU-SHENG, L.; FURLONG, M. Estimating the economic cost of one of the world's major insect pest, Plutella xylostella (Lepidoptera: Plutellidae): just how long is a piece of string?

Journal of Economic Entomology, Annanopolis, v.105, n.4, p. 1115-1129, 2012. ZUCCHI, R.A.; MONTEIRO, R.C. O gênero Trichogramma na América do Sul. In: PARRA, J.R.P.& ZUCCHI, R.A. (Eds.). Trichogramma e o controle biológico aplicado. Piracicaba: FEALQ, 1997. p.41-66.

Documentos relacionados