2.1. Obtenção dos isolados de rizobactérias
Os isolados foram obtidos da rizosfera de mudas clonais de Eucalyptus com cerca de 35- 60 dias de idade, provenientes de empresas florestais localizadas em Minas Gerais, São Paulo, Espírito Santo e Bahia. Segmentos de raízes com solo aderido foram colocados em Erlenmeyers contendo 20 ml de água destilada esterilizada, deixados em banho ultra-som (sonicação, potência de aproximadamente 40 kz) por 15 min., e posteriormente filtrados em camada dupla de gaze. Com uma parte do filtrado, realizou-se diluição em série na razão 1 x 10-1 até 1 x 10-5, procedendo-se a semeadura em meio B de King (KMB) (KING et al., 1954). Outra amostra do filtrado foi distribuída em tubos de ensaio esterilizados e colocados em banho-maria a 80ºC/ 20 min para isolamento seletivo de Bacillus sp., e, posteriormente, diluída em série como descrito acima e plaqueada em meio 523 de KADO e HESKETT (1970). Após 24-48 h de crescimento (28ºC/ escuro), as colônias com diferentes características morfológicas foram purificadas pelo método de estrias. As placas com KMB foram observadas sob luz ultravioleta (360 nm) e as colônias fluorescentes purificadas e repicadas para tubos com o mesmo meio. Após crescimento, as culturas foram mantidas a 4ºC.
2.2. Testes de seleção
Foram realizados quatro ensaios em casa-de-enraizamento da Cenibra S.A em Belo Oriente- MG, onde em cada um deles testou-se um grupo diferente de isolados. Os isolados bacterianos foram cultivados em meio 523 de KADO e HESKETT (1970) por 48 h. Suspensões dos isolados foram preparadas a uma densidade ótica de 0,2 de absorvância, aferida em espectrofotômetro a 540 nm. Substrato natural à base de composto de casca de arroz carbonizada:vermiculita (1:1), foi usado para enchimento de tubetes plásticos cônicos (57 ml de capacidade) e posteriormente irrigado com as suspensões dos isolados (10 ml/tubete). No tratamento testemunha o substrato foi tratado apenas com água destilada. O melhor isolado observado no ensaio 1 foi utilizado também como comparador em todos os demais experimentos. Estacas de um clone comercial, híbrido natural de Eucalyptus grandis (Rio Claro), tratadas com uma solução de 6000 ppm de AIB (ácido indol butírico), preparadas conforme rotina da empresa, foram plantadas nesses tubetes e colocadas para enraizar em casa de enraizamento com temperatura média de 26-28ºC e irrigação intermitente por nebulização, por 35 dias. Após esse período, avaliaram-se a porcentagem média de enraizamento e o peso médio do sistema radicular seco por estaca enraizada, para cada tratamento. Utilizou- se o delineamento inteiramente casualizado com cinco repetições por tratamento, cada uma delas constituída de dez estacas.
2.3. Identificação dos isolados
Amostras de DNA dos isolados bacterianos indutores potenciais de enraizamento foram extraídas segundo metodologia descrita por AUSUBEL et al. (1999) e enviadas à Fundação Tropical de Pesquisas e Tecnologia “André Tosello” (Campinas, SP) para caracterização e identificação molecular, utilizando-se a análise filogenética de seqüências parciais de DNA ribossomal 16S (rDNA 16S). A metodologia constituiu na amplificação do DNA ribossomal 16S, a partir do DNA genômico das bactérias, mediante o uso da técnica de PCR. O par de “primers” utilizado foi o p27f e p152r, homólogos a regiões
conservadas do gene rRNA 16S de bactérias. Os fragmentos de rDNA 16S amplificados foram clonados em vetor plasmidial pGEM-T (Promega), purificados e submetidos ao sequenciamento em sequenciador automático (ALFexpress, Pharmacia). Os “primers” utilizados para sequenciamento foram o M13 “forward reverse”. As sequências parciais de rDNA 16S obtidas foram comparadas com as seqüências de rDNA 16S de organismos representados nas bases de dados RDP (“Ribossomal Database Project”, USA: http://www.cme.msu.edu/RDP/ html/index.html) e Genbank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov).
2.4. Eficácia dos isolados em diferentes substratos de enraizamento
Os dez isolados selecionados foram testados em três substratos de enraizamento: vermiculita pura; moinha de carvão + composto de casca de eucalipto + vermiculita (5:3:1) e composto de casca de arroz carbonizada + vermiculita (1:1), em dois ensaios conduzidos em fevereiro e março de 2001. O preparo das suspensões bacterianas e tratamento dos substratos ocorreram conforme a metodologia dos testes iniciais de seleção (item 2.2). Na leitura ótica utilizada nos ensaios (0,2 A), a concentração das suspensões dos isolados variou de 107 a 109 ufc/ml. Foram utilizadas miniestacas com cerca de 8 dias de idade de um clone de E. grandis, após tratamento da base das mesmas com solução de 2000 ppm de AIB. Após 35 dias em casa-de- enraizamento, nas mesmas condições descritas no item 2.2, avaliaram-se a porcentagem média de enraizamento e o peso do sistema radicular seco. Utilizou-se o delineamento inteiramento casualizado em arranjo fatorial, com 11 tratamentos e três substratos. Utilizaram-se quatro repetições, cada uma com 30 estacas.
2.5. Eficácia dos isolados em diferentes clones de eucalipto
Os dez isolados selecionados foram testados em cinco clones de eucalipto: 1213 (híbrido E. grandis x E. urophylla) , 57 e 111 (híbridos naturais
de E. grandis -Rio Claro), C129 e C7074 (E.grandis) em ensaios conduzidos em fevereiro e março de 2001, no viveiro da Cenibra S.A, em Belo Oriente. Os experimentos foram montados como no item 2.2. Foram utilizadas miniestacas após tratamento da base das mesmas com solução a 2000 ppm de AIB. As condições de condução e avaliação do ensaio foram como previamente descritas (itens 2.2 e 2.4). Utilizou-se o delineamento inteiramento casualizado em arranjo fatorial, com 11 tratamentos e cinco clones. Utilizaram-se quatro repetições, cada uma delas com 30 estacas.
2.6. Produção de AIA (ácido indol acético) em meio líquido
Visando determinar a capacidade de produção de auxinas dos isolados bacterianos, quantificou-se a produção de AIA in vitro por meio de cromatografia líquida de alto desempenho (CLAD ou HPLC), no departamento de Química da UFV. Utilizou-se uma metodologia adaptada de SRINIVASAN et al. (1996) e PRIKRYL et al. (1985).
Os isolados foram cultivados em Erlenmeyers com 200 ml de meio mineral básico suplementado com 0,5% de glucose e 0,02 % de L- triptofano, à 28ºC, no escuro. Após 48h, o meio de crescimento foi centrifugado a 2000 x g por 20 min., e o sobrenadante filtrado em filtro bacteriológico (Milipore 0,45 µm). Para evitar oxidação dos compostos indólicos, foram adicionados ao filtrado 0,05 g de ditiotreitol. Ajustou-se o pH de 15 ml do filtrado com HCl (1 M) para 2,7 e extraiu-se por 4 vezes em igual volume de acetato de etila (99,9%). Adicionou-se sulfato de magnésio para retirar o excesso de água e filtrou-se em filtro de papel. O acetato foi removido em evaporador rotativo a 37ºC, e o resíduo seco coletado em 1,5 ml de etanol. Essa solução foi congelada e armazenada no escuro para posterior utilização em CLAD.
A solução em etanol foi filtrada para retirar impurezas e, a seguir, injetada no aparelho de cromatografia. Utilizou-se uma coluna Licrosorb RP-18 (10 µm) como fase reversa, solução de água-ácido ácetico-etanol (84,2:0,8:15) como fase móvel e comprimento de onda de 280 nm. Após 20 min. de corrida cromatográfica, efetuaram-se três leituras por isolado.