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1 INTRODUÇÃO

5.5 A MODULAÇÃO DO PERFIL M1 POR TAT ENVOLVE O EIXO PERK DA

mal-dobramento destas, o eixo PERK é deflagrado visando atenuar a tradução. Uma vez demonstrado no presente estudo e corroborado pela literatura científica que TAT leva as células microgliais a exibirem um perfil de ativação clássico, buscou-se investigar a potencial modulação do eixo PERK da via UPR na ativação microglial observada. Para isto, empregou- se o uso de o inibidor farmacológico de PERK GSK2606414, que dirige-se ao sítio ligante de ATP da proteína e é considerado um potente inibidor (MAHAMEED et al., 2019). Foi construída uma curva de concentração em 48h com valores utilizados em literatura (0,125 – 0,5 µM) para determinar uma concentração não citotóxica (JIANG et al., 2017). A avaliação da morte celular nas concentrações de inibidor utilizadas foi realizada por ensaio MTT e citometria de fluxo utilizando os marcadores Anexina V/7-AAD. Anexina V liga-se a fosfatidilserina, um fosfolipídeo de membrana que em fases iniciais de apoptose é externalizado na membrana, e 7- AAD é um intercalante de DNA, portanto, só há marcação se houver permeabilidade na célula, o que indica fases finais de apoptose. O ensaio MTT baseia-se na conversão de sais de tetrazólio em cristais de formazan, refletindo a atividade mitocondrial das células. Os resultados estão mostrados na Figura 9. Pode-se observar que a concentração de 0,125 µM foi a que levou a maior viabilidade nas 48h sob tratamento com o inibidor farmacológico, confirmado por ambas as técnicas utilizadas e em literatura (JIANG et al., 2017; MAHAMEED et al., 2019). Portanto, padronizou-se essa concentração para os próximos experimentos.

Figura 9. Perfil de viabilidade de células BV-2 após tratamento com o inibidor farmacológico do eixo PERK da

via UPR. Células BV-2 (0,5x106) foram tratadas com concentrações crescentes de GSK2606414 (PERK

i) por 48

h e a viabilidade celular em cada situação experimental avaliada por ensaio MTT e intensidade de fluorescência dos marcadores Anexina V/7-AAD por citometria de fluxo. Resultados representativos de três experimentos independentes e expressos como médias de porcentagens em relação ao controle celular sem tratamento ± desvio- padrão.

A expressão de genes relacionados envolvidos no eixo PERK foi avaliada por meio de RT-qPCR em células microgliais em 48h sob estímulo da proteína TAT recombinante com adição do inibidor do braço PERK estando os resultados dispostos na Figura 10. Observa-se que a concentração utilizada de GSK2606414 foi suficiente para inibir a expressão das moléculas BiP, ATF4, CHOP, GADD34 e XBP, envolvidas na cascata de sinalização deflagrada pela ativação de PERK, ao passo que TAT foi capaz de sobrexpressá-las. Na adição do inibidor sob estímulo de TAT houve supressão das moléculas, portanto, pode-se inferir que TAT modula o eixo PERK da via UPR em células microgliais. Em linfócitos T, TAT modula a via UPR e contribui para levar às células a apoptose, ativando os três eixos de maneira tempo- dependente (CAMPESTRINI; SILVEIRA; PINTO, 2018). A modulação da via UPR pela proteína TAT do HIV-1 também foi reportada em astrócitos, onde observou-se altos níveis de BiP, XBP-1 e eIF2α e em tecido cerebral in vivo de pacientes apresentando HAND (FAN; HE, 2016). Outro estudo relata a participação do eixo PERK em células endoteliais cerebrais quando estimuladas com TAT na apoptose celular (MA et al., 2016).

Figura 10. Efeito na expressão de componentes do inibidor do eixo PERK da via UPR induzida por TAT em

células BV-2. Células BV-2 (0,5x106) foram tratadas com TAT (400 nM) na presença ou ausência do inibidor

químico de PERK (PERKI, GSK2606414, 0,125 µM). Os níveis de expressão gênica de moléculas relacionadas à

via UPR foram analisados após 48h por RT-qPCR. Resultados representativos de três experimentos independentes e considerados estatisticamente relevantes em relação ao grupo celular tratado com TAT (p < 0.05*, p < 0.01**). A próxima etapa teve como objetivo por fim caracterizar a ativação microglial observada no presente trabalho em paralelo à atividade do eixo PERK da via UPR. Células BV- 2 foram estimuladas com TAT e todos os marcadores encontrados no presente trabalho até aqui foram submetidos a avaliação quando na presença do inibidor de PERK em 48h. Resultados estão dispostos na Figura 11. As citocinas TNF-α, IL-6 e NO tiveram sua secreção significativamente reduzida na presença de TAT com inibidor (Figura 11, a). Consoante com os níveis detectados da chaperona BiP na Figura 10, pode-se inferir que pela produção de diversas proteínas durante a ativação microglial induzida por TAT, a micróglia é responsiva à alta demanda de enovelamento proteico.

A participação da via UPR na ativação microglial clássica também pode ser salientada pela expressão de iNOs, que também foi suprimida quando PERK é inibido na presença de TAT (Figura 10, b). O estudo de Guo e colaboradores (2010) demonstra que XBP1 em sua forma processada (XBP1s) se liga ao promotor do gene iNOs in vivo e in vitro, aumentando sua expressão. Neste estudo, TAT levou à expressão de iNOs (Figura 7), e paralelamente, à expressão de XBP1 em sua forma processada e não-processada (Figura 10). Enfim, a expressão

do marcador CD16/32 também foi diminuída na presença do inibidor de PERK (Figura 11, c), demonstrada pela diminuição da quantidade de eventos positivos na população de células estimuladas com TAT e tratadas com GSK2606414. Assim, os resultados encontrados permitem levar a conclusão de que TAT modula o eixo PERK da via UPR durante a ativação microglial pró-inflamatória observada.

Figura 11. Efeito do inibidor do braço PERK da via UPR sobre a ativação induzida por TAT em células BV-2. a.

Células BV-2 (0,5x106) foram tratadas com TAT (400 nM) na presença ou ausência do inibidor químico de PERK

(PERKI, GSK2606414, 0,125 µM) por 48h e sobrenadantes submetido à análise da expressão das citocinas TNF-

α e IL-6 por CBA e liberação de NO pelo método de Griess. b. Análise da expressão relativa de iNOs por RT- qPCR em células BV-2. Resultados considerados estatisticamente relevantes em relação ao controle tratado com TATHI (p < 0.05*, p < 0.01**).c. Células nas condições experimentais descritas foram marcadas com anticorpos

anti-CD16/32 conjugados à FITC e analisadas por citometria de fluxo. Os números dos quadrantes denotam a porcentagem dos eventos. Os histogramas sobrepostos representam a intensidade de fluorescência de células BV- 2 após marcação. Contr: células não tratadas. Resultados representativos de três experimentos independentes. Resultados expressos como média mais desvio-padrão e considerados estatisticamente relevantes em relação ao controle sem tratamento (p < 0.05*, p < 0.01**).

6 SUMÁRIO DE RESULTADOS

a) TAT recombinante foi expressa e purificada livre de endotoxinas, com sua identidade confirmada por ensaio imunocromatográfico e espectrometria de massas;

b) TAT induziu a expressão de TNF-α, IL-6, MCP-1 e NO de maneira tempo- dependente pós estímulo nas células microgliais;

c) TAT induziu a expressão de iNOS de maneira tempo-dependente pós-estímulo nas células microgliais

d) TAT induziu a expressão de CD16/32 em 48 horas pós-estímulo;

e) A expressão das moléculas BiP, CHOP, XBP-1, GADD34, e ATF4 pertencentes ao eixo PERK da via UPR foram suprimidas quando este foi inibido nas células estimuladas com TAT;

f) A expressão de TNF-α, IL-6, MCP-1 e NO, iNOs e CD16/32 foi suprimida quando o eixo PERK da via UPR foi inibido em células estimuladas com TAT;

7 CONCLUSÃO

Este trabalho empregou uma estratégia de expressão e purificação de TAT recombinante eficiente para o cumprimento do principal objetivo. TAT recombinante induziu a expressão de TNF-α, IL-6, MCP-1 e NO de maneira tempo-dependente, além de iNOs e CD16/32, que são moléculas características de um estado pró-inflamatório clássico microglial, denominado M1. Paralelamente, foi demonstrado que TAT interage com a via UPR aumentando a expressão de moléculas envolvidas no eixo PERK de sinalização, sendo que quando este foi inibido, sob estímulo de TAT, a expressão das moléculas da ativação microglial avaliadas foi suprimida. Assim, a inibição de um braço de uma via celular importante na infecção pelo HIV por um fator viral circulante pode representar um potencial alvo terapêutico, tendo em vista a neuroinflamação e suas injúrias provocadas no ambiente neuronal amplamente relatadas, ainda que haja poucos estudos investigando a importância biológica do estresse no RE nas HAND.

8 REFERÊNCIAS

ABBAS, A. K; LICHTMAN, A. H; PILLAI, S. Imunidade inata. In: ABBAS, A. K; LICHTMAN, A. H; PILLAI, S. Imunologia celular e molecular. 8. ed., Saunders, 2015. Cap. 4. p. 137-211.

ADAMSON, D. C. et al. Rate and severity of HIV-associated dementia (HAD): Correlations with Gp41 and iNOS. Molecular Medicine, v. 5, n. 2, p. 98–109, 1999.

BAGASHEV, A.; SAWAYA, B. E. Roles and functions of HIV-1 Tat protein in the CNS: an overview. Virology Journal, v. 10, n. 358, p. 1–20, 2013.

BANKS, W.; ERCAL, N.; OTAMIS PRICE, T. The blood-brain barrier in neuroAIDS.

Current HIV Research, v. 4, n. 3, p. 259–266, 2006.

BISHOP, A.; ANDERSON, J. E. NO signaling in the CNS: from the physiological to the pathological. Toxicology, v. 208, n. 2, p. 193–205, 2005.

BORSA, M. et al. HIV infection and antiretroviral therapy lead to unfolded protein response activation. Virology Journal, v. 12, n. 77, p. 1–11, 2015.

BROWN, G. C. Nitric oxide and mitochondria. Frontiers in Bioscience, v. 12, p. 1024–1033, 2007.

BRUCE-KELLER, A. J. et al. Pro-inflammatory and pro-oxidant properties of the HIV protein Tat in a microglial cell line: attenuation by 17β-estradiol. Journal of Neurochemistry, v. 78, n. 6, p. 1315–1324, 2001.

CAMPESTRINI, J.; SILVEIRA, D. B.; PINTO, A. R. HIV-1 Tat-induced bystander apoptosis in Jurkat cells involves unfolded protein responses. Cell Biochemistry and

Function, p. 1–10, 2018.

CASELLA, G. et al. IL4 induces IL6-producing M2 macrophages associated to inhibition of neuroinflammation in vitro and in vivo. Journal of Neuroinflammation, v. 13, n. 139, p. 1–10, 2016.

CASELLI, E. et al. Short communication: activating Transcription Factor 4 (ATF4) promotes HIV Type 1 activation. AIDS Research and Human Retroviruses, v. 28, n. 8, p. 907–912, 2012.

CHAKRABORTY, A. et al. The E3 ubiquitin ligase Trim7 mediates c-Jun/AP-1 activation by Ras signalling. Nature Communications, v. 6, n. 6782, p. 1–12, 2015.

CHERRY, J. D.; OLSCHOWKA, J. A.; O’BANION, M. K. Are “resting” microglia more “M2”? Frontiers in Immunology, v. 5, n. 594, p. 2–5, 2014.

CLIFFORD, D. B.; ANCES, B. M. HIV-Associated Neurocognitive Disorder (HAND). Lancet Infectious Diseases, v. 13, n. 11, p. 976–986, 2013.

COLTON, C. A.; WILCOCK, D. M. Assessing activation states in microglia. CNS &

Neurological Disorders - Drug Targets, v. 9, n. 2, p. 174–191, 2010.

CUMMINS, P. M.; DOWNLING, O.; O’CONNOR, B. F. Ion-exchange chromatography: basic principles and application to the partial purification of soluble mammalian prolyl oligopeptidase. In: WALLS, D.; LOUGHRAN, S. T. Protein

Chromatography: Methods and Protocols, Methods in Molecular Biology. Springer

Science Business Media, 2010. v. 681, p. 215–228.

DEBAISIEUX, S. et al. The ins and outs of HIV-1 Tat. Traffic, v. 13, n. 3, p. 355– 363, 2012.

DESHMANE, S. L. et al. Monocyte Chemoattractant Protein-1 (MCP-1): an overview.

Journal of Interferon & Cytokine Research, v. 29, n. 6, p. 313–326, 2009.

DHEEN, S. T.; KAUR, C.; LING, E.-A. Microglial activation and its implications in the brain diseases. Current Medicinal Chemistry, v. 14, n. 11, p. 1189–97, 2007.

DHILLON, N. K. et al. Roles of MCP-1 in development of HIV-dementia. Frontiers

in Bioscience, v. 13, n. 10, p. 3913–3918, 2008.

DOS SANTOS, P. F. et al. ISG15-induced IL-10 is a novel anti-inflammatory myeloid axis disrupted during active tuberculosis. The Journal of Immunology, v. 200, n. 4, p. 1434– 1442, 2018.

EL-HAGE, N. et al. Synergistic increases in intracellular Ca2+, and the release of MCP-1, RANTES, and IL-6 by astrocytes treated with opiates and HIV-1 Tat. Glia, v. 50, n. 2, p. 91–106, 2005.

EUGENIN, E. A. et al. HIV-1 Tat protein induces a migratory phenotype in human fetal microglia by a CCL2 (MCP-1)-dependent mechanism: possible role in NeuroAIDS. Glia, v. 49, n. 4, p. 501–510, 2005.

EUGENIN, E. A. et al. Induction of monocyte chemoattractant protein-1 in HIV-1 Tat-stimulated astrocytes and elevation in AIDS dementia. Proceedings of the National

Academy of Sciences, v. 104, n. 9, p. 3438–3443, 2006.

FAN, Y.; HE, J. J. HIV-1 Tat induces unfolded protein tesponse and endoplasmic reticulum stress in astrocytes and causes neurotoxicity through glial Fibrillary Acidic Protein (GFAP) activation and aggregation. Journal of Biological Chemistry, v. 291, n. 43, p. 22819– 22829, 2016.

FINE, S. M. et al. Tumor necrosis factor α inhibits glutamate uptake by primary human astrocytes. Implications for pathogenesis of HIV-1 dementia. Journal of Biological

Chemistry, v. 271, n. 26, p. 15303–15306, 1996.

FISCHER-SMITH, T. et al. CNS invasion by CD14+/CD16+ peripheral blood-derived monocytes in HIV dementia: Perivascular accumulation and reservoir of HIV infection.

Journal of NeuroVirology, v. 7, n. 6, p. 528–541, 2001.

GOTTLIEB, M. S. et al. Pneumocystis carinii pneumonia and mucosal candidiasis in previously healthy homosexual men. The New England Journal of Medicina, v. 305, n. 24, p. 1425–1431, 1981.

GRÄSLUND, S. et al. Protein production and purification. Nature Methods, v. 5, n. 2, p. 135–146, 2008.

GRAZIANO, F.; VICENZI, E.; POLI, G. Plastic restriction of HIV-1 replication in human macrophages derived from M1/M2 polarized monocytes. Journal of Leukocyte

Biology, v. 100, n. 5, p. 1147–1153, 2016.

GUO, F. J. et al. XBP1U inhibits the XBP1S-mediated upregulation of the iNOS gene expression in mammalian ER stress response. Cellular Signalling, v. 22, n. 12, p. 1818–1828, 2010.

HENN, A. et al. The suitability of BV-2 cells as alternative model system for primary microglia cultures or for animal experiments examining brain inflammation. ALTEX -

Alternatives for animal experimentation, v. 26, n. 2, p. 83–94, 2009.

HERBEIN, G. et al. Macrophage signaling in HIV-1 infection. Retrovirology, v. 7, n. 1, p. 34, 2010.

HERBEIN, G.; VARIN, A. The macrophage in HIV-1 infection: from activation to deactivation? Retrovirology, v. 7, n. 33, p. 1–15, 2010.

ITO, S. et al. GADD34 inhibits activation-induced apoptosis of macrophages through enhancement of autophagy. Scientific Reports, v. 5, p. 8327, 2015.

JIANG, X. et al. Effects of GSK2606414 on cell proliferation and endoplasmic reticulum stress-associated gene expression in retinal pigment epithelial cells. Molecular

Medicine Reports, v. 15, n. 5, p. 3105–3110, 2017.

JIN, J. et al. HIV-1 Tat-induced microglial activation and neuronal damage is inhibited via CD45 modulation: a potential new treatment target for HAND. American Journal of

Translational Research, v. 4, n. 3, p. 302–315, 2012.

JUKNAT, A. et al. Differential transcriptional profiles mediated by exposure to the cannabinoids cannabidiol and Δ 9-tetrahydrocannabinol in BV-2 microglial cells. British

Journal of Pharmacology, v. 165, n. 8, p. 2512–2528, 2012.

KEMPURAJ, D. et al. Neuroinflammation induces neurodegeneration. Journal of

Neurology, Neurosurgery and Spine, v. 1, n. 1, p. 1–15, 2016.

KIM, J. BIN et al. Inhibition of LPS-induced iNOS, COX-2 and cytokines expression by poncirin through the NF-κB inactivation in RAW 264.7 macrophage cells. Biological and

Pharmaceutical Bulletin, v. 30, n. 12, p. 2345–2351, 2007.

KIM, R. S. et al. The XBP1 arm of the Unfolded Protein Response induces fibrogenic activity in hepatic stellate cells through autophagy. Scientific Reports, v. 6, n. 39342, p. 1–9, 2016.

KIMURA, A.; KISHIMOTO, T. IL-6: regulator of Treg/Th17 balance. European

Journal of Immunology, v. 40, p. 1830–1835, 2010.

KRAFT-TERRY, S. D. et al. HIV-1 neuroimmunity in the era of antiretroviral therapy.

Neurobiology of Disease, v. 37, n. 3, p. 542–548, 2010.

KRUGER, N. J. The Bradford method for protein quantitation. In: WALKER, J. M. (Ed.). The Protein Protocols Handbook. 2. ed. New Jersey: Humana Press, 2002. p. 15–22.

LI, W. et al. Role of Tat protein in HIV neuropathogenesis. Neurotoxicity Research, v. 16, n. 3, p. 205–220, 2009.

LINK, A. J.; ROBISON, K.; CHURCH, G. M. Comparing the predicted and observerd properties of proteins encoded in the genome of Escherichia coli K-12. Electrophoresis, v. 18, p. 1259–1313, 1997.

LIU, B.; GAO, H. M.; HONG, J. S. Parkinson’s disease and exposure to infectious agents and pesticides and the occurrence of brain injuries: Role of neuroinflammation.

Environmental Health Perspectives, v. 111, n. 8, p. 1065–1073, 2003.

LIU, X. et al. Human Immunodeficiency Virus Type 1 (HIV-1) Tat induces nitric- oxide synthase in human astroglia. The Journal of biological chemistry, v. 277, n. 42, p. 39312–9, 2002.

LOCATI, M.; MANTOVANI, A.; SICA, A. Macrophage Activation and Polarization as an Adaptive Component of Innate Immunity. In: Advances in Immunology. 1. ed. [s.l.] Elsevier Inc., 2013. v. 120p. 163–184.

MA, R. et al. HIV Tat-mediated induction of human brain microvascular endothelial cell apoptosis involves endoplasmic reticulum stress and mitochondrial dysfunction.

MADEIRA, F. et al. The EMBL-EBI search and sequence analysis tools APIs in 2019.

Nucleic acids research, v. 47, n. W1, p. W636–W641, 2019.

MAHAMEED, M. et al. The unfolded protein response modulators GSK2606414 and KIRA6 are potent KIT inhibitors. Cell Death and Disease, v. 10, n. 4, 2019.

MARTINEZ, F. O.; GORDON, S. The M1 and M2 paradigm of macrophage activation: time for reassessment. F1000prime reports, v. 6, n. 13, p. 1–13, 2014.

MIRON, V. E.; FRANKLIN, R. J. M. Macrophages and CNS remyelination. Journal

of Neurochemistry, v. 130, n. 2, p. 165–171, 2014.

MOSMANN, T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. Journal of Immunological Methods, v. 65, n. 1–2, p. 55–63, 1983.

NOOKALA, A. R.; KUMAR, A. Molecular mechanisms involved in HIV-1 Tat- mediated induction of IL-6 and IL-8 in astrocytes. Journal of Neuroinflammation, v. 11, n. 1, p. 214, 2014.

ORIHUELA, R.; MCPHERSON, C. A.; HARRY, G. J. Microglial M1/M2 polarization and metabolic states. British Journal of Pharmacology, v. 173, n. 4, p. 649–665, 2016.

PARK, I. W.; WANG, J. F.; GROOPMAN, J. E. HIV-1 Tat promotes monocyte chemoattractant protein-1 secretion followed by transmigration of monocytes. Blood, v. 97, n. 2, p. 352–358, 2001.

PFAFFL, M. W. Quantification strategies in real-time PCR. In: BUSTIN, S. (Ed.). A-

Z of quantitative PCR. Internatio ed. p. 87–112. 2004.

POLAZZI, E.; LEVI, G.; MINGHETTI, L. Human immunodeficiency virus type 1 tat protein stimulates inducible nitric oxide synthase expression and nitric oxide production in microglial cultures. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology, v. 58, n. 8, p. 825–831, 1999.

PUGLIESE, A. et al. A review of HIV-1 Tat protein biological effects. Cell

Biochemistry and Function, v. 23, n. 4, p. 223–227, 2005.

RAO, V. R.; RUIZ, A. P.; PRASAD, V. R. Viral and cellular factors underlying neuropathogenesis in HIV associated neurocognitive disorders (HAND). AIDS research and

therapy, v. 11, n. 1, p. 13, 2014.

RATH, M. et al. Metabolism via arginase or nitric oxide synthase: two competing arginine pathways in macrophages. Frontiers in Immunology, v. 5, n. 532, p. 1–10, 2014.

ROSSI, G. B. et al. Comparison of Grain Proteome Profiles of Four Brazilian Common Bean ( Phaseolus vulgaris L.) Cultivars. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 65, n. 34, p. 7588–7597, 2017.

RÖSZER, T. Understanding the mysterious M2 macrophage through activation markers and effector mechanisms. Mediators of inflammation, v. 2015, p. 1–16, 2015.

SARLUS, H.; HENEKA, M. T. Microglia in Alzheimer’s disease. Journal of Clinical

Investigation, v. 127, n. 9, p. 3240–3249, 2017.

SIDDAPPA, N. B. et al. Transactivation and signaling functions of Tat are not correlated: biological and immunological characterization of HIV-1 subtype-C Tat protein.

Retrovirology, v. 3, p. 1–20, 2006.

SOKOLOVA, A. et al. Monocyte chemoattractant protein-1 plays a dominant role in the chronic inflammation observed in alzheimer’s disease. Brain Pathology, v. 19, n. 3, p. 392– 398, 2009.

SØRENSEN, H. P.; MORTENSEN, K. K. Advanced genetic strategies for recombinant protein expression in Escherichia coli. Journal of Biotechnology, v. 115, n. 2, p. 113–128, 2005.

SOWERS, C. R. et al. The protein kinase PERK/EIF2AK3 regulates proinsulin processing not via protein synthesis but by controlling endoplasmic reticulum chaperones.

Journal of Biological Chemistry, v. 293, n. 14, p. 5134–5149, 2018.

STOTT, D. I. Immunoblotting and dot blotting. Journal of Immunological Methods, v. 119, n. 2, p. 153–187, 1989.

TANG, Y.; LE, W. Differential roles of M1 and M2 microglia in neurodegenerative diseases. Molecular Neurobiology, v. 53, n. 2, p. 1181–1194, 2015.

TSUCHIYA, Y. et al. IRE1-XBP1 pathway regulates oxidative proinsulin folding in pancreatic β cells. Journal of Cell Biology, v. 217, n. 4, p. 1287–1301, 2018.

TYOR, W. R. et al. Cytokine expression in the brain during the acquired immunodeficiency syndrome. Annals of Neurology, v. 31, n. 4, p. 349–360, 1992.

UNAIDS. Relatório Informativo - Atualização global da aids 2019Unaids. [s.l:

s.n.]. Disponível em: <https://unaids.org.br/wp-

content/uploads/2017/12/UNAIDSBR_FactSheet.pdf>.

VARGAS, D. L. et al. Neuroglial activation and neuroinflammation in the brain of patients with autism. Annals of Neurology, v. 57, n. 1, p. 67–81, 2005.

WALTER, P.; RON, D. The Unfolded Protein Response: From Stress Pathway to Homeostatic Regulation. Science, v. 334, n. 6059, p. 1081–1086, 2011a.

WALTER, P.; RON, D. The unfolded protein response: from stress pathway to homeostatic regulation. Science, v. 334, n. 6059, p. 1081–1086, 2011b.

WANG, Y. et al. M1 and M2 macrophage polarization and potentially therapeutic naturally occurring compounds. International Immunopharmacology, v. 70, p. 459–466, maio 2019.

WU, F. et al. Simvastatin alters M1/M2 polarization of murine BV2 microglia via Notch signaling. Journal of Neuroimmunology, v. 316, p. 56–64, 2018a.

WU, X. et al. HIV-1 Tat increases BAG3 via NF-κB signaling to induce autophagy during HIV-associated neurocognitive disorder. Cell Cycle, v. 0, n. 0, p.

15384101.2018.1480219, 2018b.

YOSHIDA, H. ER stress and diseases. FEBS Journal, v. 274, n. 3, p. 630–658, 2007. ZHANG, L.; WANG, A. Virus-induced ER stress and the unfolded protein response.

Frontiers in Plant Science, v. 3, n. December, p. 1–16, 2012.

ZHONG, J. et al. The role of endoplasmic reticulum stress in autoimmune-mediated beta-cell destruction in type 1 diabetes. Experimental Diabetes Research, v. 2012, p. 1–12, 2012.

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