TESTE DE DEGRADAÇÃO COM SIMULAÇÃO DO

Teste de degradação das membranas de quitosana

A tabela 13 mostra os resultados do grau de degradação das membranas de quitosana: QUI30, QUI50 e QUI70 em solução tampão Clark-Lubs.

Tabela 13: Resultados da análise do grau de degradação das membranas de quitosana.

Membranas Intervalo deTempo Observação

QUI30 15 - 30 min

Ocorreu degradação total nos primeiros trinta minutos. QUI50 15 min - 1h Degradação observada após 30 min de submersão. Em 1h de experimento ainda se observava resquícios da membrana. QUI70 15 min - 3 h Nos minutos antecedentes a primeira hora da simulação a membrana sofreu degradação em metade. Sua degradação total só foi observada após 3 h de experimento.

Os resultados mostram que para as membranas QUI30 a degradação total ocorre entre 15 e 30 minutos. Para a membrana QUI70 a degradação total ocorre com 3 h de experimento, mostrando a fragilidade da mesma e a inutilidade para a liberação controlada de fármacos no trato estomacal. Haja vista, que, se vinculada com algum princípio ativo os níveis terapêuticos seriam insatisfatórios, pois haveria uma liberação e um decaimento abrupto do ativo. (FERNANDES, 2004)

Teste de degradação das membranas de quitosana com sulfato de neomicina

A Tabela 14 mostra os resultados do grau de degradação das membranas de quitosana com sulfato de neomicina: QUISN30, QUISN50 e QUISN70 em solução tampão Clark-Lubs.

Tabela 14: Resultados da análise do grau de degradação das membranas de quitosana com sulfato de neomicina

Membranas de

Quitosana com neomicina

Intervalo de tempo Observação

QUISN30 15 - 30 min

Degradação iniciada rapidamente, após 30 min, degradação total.

QUISN50 15 min - 3h

Degradação observada

após 30 min de

submersão. Em 1h de experimento ainda havia metade da amostra. Com 3h a amostra foi totalmente solubilizada.

QUISN70 15 min - 5 h

Primeira hora da simulação a membrana não sofreu degradação considerável. Com 3 h de experimento metade havia sido dissolvida. Sua degradação total só foi observada após 5 h de experimento.

Uma observação a ser feita é o quanto prolongado foi a degradação das membranas com sulfato de neomicina, sua maior resistência em relação a membrana de quitosana pura ao ambiente ácido do estômago mostra uma relevante eficácia no que tange a liberação controlada de fármacos, uma vez que para a membrana QUISN70 degrada totalmente após 5 h de experimento.

De acordo com a literatura, o polímero empregado para liberar o princípio ativo de forma controlada pode atuar retardando a dissolução do fármaco, inibindo a difusão do fármaco para fora do sistema terapêutico, ou controlando o fluxo da solução de fármaco (FERNANDES, 2004)

6 CONCLUSÕES

A partir dos dados obtidos foi possível obter as membranas de quitosanas, e quitosana com sulfato de neomicina, determinar as propriedades importantes da quitosana, bem como das membranasproduzidas com ela.

Através dos resultados é possível afirmar importantes constatações em relação as membranas de quitosana e membrana com sulfato de neomicina.

• Para as membranas obtidas com o volume de 30 ml, o teor de sólidos é maior do que para os demais volumes, tanto para as membranas com quitosana pura quanto para membranas com sulfato de neomicina, indicando maior evaporação da água;

• Através da caracterização da quitosana comercial utilizada, obteve- se satisfatórios de grau de desacetilação e de massa molar média, os quaismostraram-se coerentes com a literatura;

• As membranas de quitosana pura apresentaram menor grau de intumescimento do que as membranas com sulfato de neomicina, indicando que a membrana que contém apenas quitosana é mais estável;

• O baixo grau de intumescimento da membrana de quitosana e quitosana com sulfato de neomicina, comparado à literatura, proporciona também baixa probabilidade de degradação das fibras dos filmes e ataque de microorganismos, podendo ser utilizadas para tratamento de ferimentos napele.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

. CLASEN, C.; WILHELMS, T.; KULICKE, W. M. Formation and characterization of chitosan membranes. Biomacromolecules, v. 7, p. 3210-3222, 2006.

<http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0001868600000828> Acesso em: 02 nov. 2012.

14, 30

ABREU, Eliane S.; MARQUES, Mariângela E. de A. Histologia da Pele Normal. In: JORGE, S.A; DANTAS, S.R.P.E. Abordagem multiprofissional do tratamento de feridas. São Paulo: Atheneu, 2003. Cap.4. p. 17/29

ADAMS, E.; LIU, L.; DIERICK, K.; GUYOMARD, S.; NABET, P.; RICO, S.;

ALVES, K. DOS S. Alquilação redutiva da quitosan e partir do glutaraldeído e 3-amino1- propanol, 2008. UNIVERSIDADE FEDERAL DO RIO GRANDE DO NORTE.

ANTONINO, N. A. Otimização do processo de obtenção de quitina e quitosana de exoesqueletos de camarões oriundos da indústria pesqueira paraibana. Dissertação (Mestrado), Universidade Federal da Paraíba, João Pessoa, 2007.

ATCHE, Josué et al. LIBERAÇÃO CONTROLADA DA EOSINA IMPREGNADA EM MICROESFERAS DE COPOLÍMERO DE QUITOSANA E POLI(ÁCIDO ACRÍLICO. 2000. ASSIS , J. T. S. J. A terapia ocupacional em contextos hospitalares: Sua importância na assistência ao paciente que sofreu queimaduras. In: FIGUEIREDO-UCHOA, L.R. Terapia ocupacional: Diferentes práticas hospitalares em geral. Ribeirão Preto: Legis Summa, 2009. P. 189/199

AZEVEDO, V. V. C. et al. Quitina e Quitosana: aplicações como biomateriais. Revista Eletrônica de Materiais e Processos. Campina Grande, v. 2-3, n. 27-34, p.27-34, 2007. BAER, W.S. The treatment of chronic osteomyelitis with the maggot (larva of the blowfly). J. Bone Joint Surg. 13: p.438-474, 1931.

BRANCO, F. A. A. C. Síntese, caracterização e revestimento da quitosana com Ni metálico. 2014. 45 f. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação) – Curso de Bacharel em Ciência e Tecnologia, Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró, 2014.

BRUNTON, L. L.; LAZO, J. S.; PARKER, K. L. Goodman & Gilman: As bases farmacológicas da terapêutica. McGraw Hill Interamericana do Brasil. 11 ed. Rio de Janeiro. 2006.

CANELLA, K. M. N. C.; GARCIA, R. B. Caracterização de quitosana por cromatografia de permeação em gel – Influência do método de preparação e do solvente. Quim. Nova. Natal, v. 24, n. 1, p. 13-17, 2001.

CARONI, A. L. P. F. Estudos de adsorção de tetraciclina em partículas de quitosana. 2009. 143 f. Tese (Doutorado), Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Natal, 2009.

CANDIDO, Luiz Cláudio. Nova abordagem no tratamento de feridas. São Paulo: Editora: SENAC São Paulo, 2001, p. 45-52

CAMPANA, S. P. Extração, estruturas e propriedades de α- e β-quitina. Quim. Nova. São Carlos, v. 30, n. 3, p. 644-650, 2007.

CHIOU, M.S; LI, H. Y. Adsorpion behavoir of reactive dye in adequos solution on chemical cross-linked chitosan beads. Chemosphere, v. 50, n.8,p.1095-1105,3//2003.

CRAVEIRO, A. A.; CRAVEIRO, A. C. e QUEIROZ, D. C. Quitosana – A fibra do futuro, Padetec, p. 124, 1999

DĄBROWSKI, A. Adsorption - from theory to practice. Advances in Colloid and Interface Science, v. 93, n. 1-3, p. 135-224, 2001. Disponível em:

DALLAN, P. R. M., Síntese e caracterização de membranas de quitosana para aplicação na regeneração de pele 2005, Universiade Estadual de Campinas, 2005.

DE BRUM, Osvaldino Guazina, Membrana de quitosana: obtenção e aplicação, 1988 DE OLIVEIRA SILVA, Y. M. Estudo do desempenho farmacológico de membranas de quitosana e de quitosana com tetraciclina para tratamento de queimaduras e ferimentos na pele. 2017-UFERSA-CARAÚBAS

DODANE AND VILIVALAM 1998; Hejazi and Amiji 2003; Jon et al. 2007;Kumar 2000; Rinaudo 2006

DOS SANTOS, M. C.; CIRILO, A. T. de O.; NUNES, M. L. Determinação do grau de desacetilação de quitosana obtida de camarão “Saburica” (Macrobrachium jelskii, Miers, 1877). Scientia Plena. v. 7, n. 9, p. 1-3, 2007.

FERNANDES, A. L. P. Obtenção e caracterização de nanopartículas de quitosana para fins farmacêuticos. Dissertação (Mestrado), Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Natal, 2004.

FERNANDES, L. Produção e caracterização de membranas de quitosana com sulfato de condroitinapara aplicações biomédicas.Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação) – Bacharel em Engenharia dos Materiais, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, 2009.

FRANCO, P. B. (2014)“Desenvolvimento e caracterização de membranas de quitosana e casca de banana verde para cicatrização de feridas cutâneas”. Dissertação – Programa de Pós-Graduação em Ciência e Engenharia de Materiais, Universidade Federal de Alfenas. FURTADO, L. M. Influência do glicerol em membranas de quitosana. Monografia (Graduação) – Bacharel em Química, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Natal, 2016.

GONSALVES, A. D. A. et al. Diferentes estratégias para a reticulação da quitosana. Química nova, v. 34, p. 1215-1223,2011.

GRZESKIEWICZ. M.; SREBRZYNSKA, K. Determination of neomycin and related substances in pharmaceutical preparations by reversed-phase high performance liquid chromatography with mass spectrometry and charged aerosol detection. Journal of Pharmaceutical and

Biomedical Analisys. v.76, p. 207-214. 2013.

GUPTA, K. C.; JABRAIL, F. H.; Carbohydr. Polym. 2006, 66, 43.

HANKO, V. P.; ROHRER, J. S. Determination of neomycin sulfate and impurities using high-performance anion-exchange chromatography with integrated pulsed amperometric detection. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. v. 43, p. 131-141. 2007.

IRION, Glenn. Feridas: novas abordagens, manejo clínico e atlas de cores. Tradução de João Clemente Dantas do Rêgo barros- Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2012. Título original: Comprehensive wound management

JAYAKUMAR, R., PRABAHARAN, M., SUDHEESH KUMAR, P. T., Nair, S. V., & Tamura, H (2011). “Biomaterials based on chitin and chitosan in wound dressingapplications.” Biotechnology Advances, 29(3), 322– 337.

JUNQUEIRA, L.C.; CARNEIRO, J. Histologia Básica. 12ª Ed. Editora Guanabara Koogan, 2013. Cap. 18. p. 359-370

KHOR, Eugene and Lee Yong Lim. Implantable applications of chitin and chitosan. Biomaterials Volume 24, Issue 13, June 2003, Pages 2339- 2349

KIM, C.-J. Advanced Pharmaceutics: Physicochemical Principles. Boca Raton: CRC Press, 2004

Kubota, Y. Nakagawa, Y. Eguchi, J. Appl. Polym. Sci. Vol 62 p1153 1996. 44. Kubota, N.Tatsumoto, T. Sano, Carbohydrate Polymers Vol 40 p107 1999.

LOCINTO, D.A. (2012)“Preparo, obtenção e caracterização de esponjas

quitosana/colágeno para liberação controlada de extrato de semente de uva”. Tese - Universidade de São Paulo.

LOUIS, P.; ROETS, E.; HOOGMARTENS, J. Neomycin: microbiological or liquid

chromatography?. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. v. 17, p. 757-766. 1996.

LUCAS, E. F. B. G. S. E. M. Caracterização de Polímeros: Determinação de Peso Molecular e Análise Térmica. E-Papers, 2001.

LYMAN, D.J. e ROWLAND, S.M. Biomaterials. In: KROSCHWITZ, J. I. Polymers: Biomaterials and Medical Applications, p.52-71, 1989.

M. YAR ET AL. (2017) Heparin binding chitosan derivatives for production of pro-

angiogenic hydrogels for promoting tissue healing Materials Science and Engineering 74 347–356.

MACEDO, M. O. C. et al. Avaliação da modificação de membranas de quitosana tratadas por plasma de hidrogênio para aplicações biomédicas. Revista Brasileira de Aplicações de Vácuo. v. 29, n. 1-2, p. 31-36, 2010.

MEIRELES, Isabela B.; SILVA, Roberto C. L. da. Fundamentos Biológicos para o Atendimento ao Portador de Lesões de Pele. In: SILVA,

PARK, CJ, CLARK SG, LICHTENSTEIGER CA, Jamison RD, Johnson AJ. (2009),

“Accelerated wound closure of pressure ulcers in aged mice by chitosan scaffolds with and without bFGF.” Acta Biomater. 5(6):1926-36.

PASPARAKIS, G.; BOUROPOULOS, N. Swelling studies and in vitro release of verapamil from calcium alginate and calcium alginate–chitosan beads. International Journal of Pharmaceutics. v. 323, p. 34-42, 2006.

SERRA, M. C; MACIEL, E. Tratado de Queimaduras: Manual prático. Rio de Janeiro- RJ: Athene, 2004

SHERMAN RA, WYLE FA. Low-cost, low-maintenance rearing of maggots in hospitals, clinics, and schools. Am J Trop Med Hyg. 1996;54

SIGNINI, R & CAMPANA FILHO, S.P. Polímeros: Ciênc. Tecnol., 4(4), p.63, 1998. SILVEIRA, M. M. Síntese e caracterização de membranas de quitosana para uso em osmose direta. 2013. 37 f. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação) – Curso de Engenharia Química, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, 2013. SOMASUNDARAN, P., Encyclopedia of Surface and Colloid Science.Adsorption of drugs. Boca Raton: CRC Press, 2006.

STYPULKOWSKA, K.; BLAZEWICZ, A.; FIJALEK, Z.; WAEOWNA-

TAVARES, I. S. Obtenção e caracterização de nanopartículas de quitosana. 2011. 54 f. Dissertação (Mestrado), Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Natal, 2011.

TANUMA, H. Preparation and characterization of PEG-cross-linked chitosan hydrogel films with controllable swelling and enzymatic degradation behavior. Carbohydrate Polymers. v. 80, n. 1, p. 260-265, 2010.

TRINCA,RAFAEL BERGAMO ;CECÍLIA BUZATTO WESTIN , José Alberto Fracassi da Silva ,Ângela Maria Moraes .(2017), “Electrospun multilayer chitosan scaffolds as potential wound dressings for skin lesions”. European Polymer Journal 88, 161–170

VASTRAD, B.M.; NEEGULAND, S.E. Optimization and production of neomycin from different agro industrial wastes in solid state fermentation. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Drugs Research. v.3, n.2, p. 104- 111. 2011.

YONG, KHOR , E.; LIM, L, Y. Implantable applications of chitin and chitosan. Biomaterials, v. 24, n 13, p 2339/2349, 2003.

ZHUANG, Z., Cao, L., Liu, S., et al.. Activity level and balance signs of subaqueous dunes in the continental shelf. Periodical of Ocean University of China. 2008