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ARTIGO
ORIGINAL
TLR-2
and
TLR-4
expression
in
monocytes
of
newborns
with
late-onset
sepsis
夽
,
夽夽
Ana
C.C.
Redondo
a,
Maria
E.J.R.
Ceccon
a,∗,
Ana
L.
Silveira-Lessa
b,
Camila
Quinello
c,
Patrícia
Palmeira
c,
Werther
B.
Carvalho
de
Magda
Carneiro-Sampaio
eaUnidadedeCuidadosIntensivosNeonatais,InstitutodaCrianc¸a,HospitaldasClínicas,FaculdadedeMedicina,Universidadede
SãoPaulo(USP),SãoPaulo,SP,Brasil
bDepartamentodeParasitologia,InstitutodeCiênciasBiomédicas,UniversidadedeSãoPaulo(USP),SãoPaulo,SP,Brasil cLaboratóriodeInvestigac¸ãoMédica(LIM-36),InstitutodaCrianc¸a,HospitaldasClínicas,FaculdadedeMedicina,Universidade
deSãoPaulo(USP),SãoPaulo,SP,Brasil
dDepartamentodeNeonatologia,FaculdadedeMedicina,UniversidadedeSãoPaulo(USP),SãoPaulo,SP,Brasil eDepartamentodePediatria,FaculdadedeMedicina,UniversidadedeSãoPaulo(USP),SãoPaulo,SP,Brasil
Recebidoem1deoutubrode2013;aceitoem26dedezembrode2013
KEYWORDS
Sepsis/immunology; Innateimmunity; Toll-likereceptor2; Toll-likereceptor4; Newborn;
Monocytes
Abstract
Objective: Toanalyzetoll-likereceptor(TLR)-2andTLR-4expressioninmonocytesofnewborns withlate-onsetsepsis.
Methods: Thisprospectivestudyincluded27full-termnewbornsaged8to29days,with cli-nicalandlaboratorydiagnosisoflate-onsetsepsis.Tennewborns(37%)hadpositivecultures. Cytokinesweremeasured bycytometricbeadarrayinperipheralblood,whileTLR-2,TLR-4 expression,andmedianfluorescenceintensity(MFI)weredeterminedbyimmunophenotyping peripheral wholebloodmonocytes, andwere analyzed with aBD FACSDiva flowcytometer (Becton,DickinsonandCompany,USA).Acomparisonwasperformedwithhealthyadults.
Results: Microorganismswereidentifiedin37%ofthesesepticnewborns,andallofthemhad highlevels ofpro-inflammatorycytokines (IL-8, IL-6,IL-1)and anti-inflammatorycytokine (IL-10)corroboratingtheinflammatory/septicprocess.Inmonocytes,thefrequencyofTLR-4 expressionwashigherininfectednewborns(p=0.01).
Conclusion: Thisstudy investigatedtheinnate immune responseinseptic newborns.Septic newborns thatreliedalmostexclusively ontheinnateimmune system showedlittle invivo
DOIserefereaoartigo:http://dx.doi.org/10.1016/j.jped.2013.12.012
夽 Comocitaresteartigo:RedondoAC,CecconME,Silveira-LessaAL,QuinelloC,PalmeiraP,CarvalhoWB,etal.TLR-2andTLR-4expression
inmonocytesofnewbornswithlate-onsetsepsis.JPediatr(RioJ).2014;90:472---8.
夽夽EstudorealizadonoInstitutodaCrianc¸a,HospitaldasClínicas,FaculdadedeMedicina,UniversidadedeSãoPaulo,SãoPaulo,SP,Brasil.
∗Autorparacorrespondência.
E-mail:[email protected](M.E.J.R.Ceccon).
responseatmonocyteactivation,suggestingimpairedimmuneresponseandincreased suscep-tibilitytoinfection.
©2014SociedadeBrasileiradePediatria.PublishedbyElsevierEditoraLtda.Allrightsreserved.
PALAVRAS-CHAVE
Sepse/imunologia; Imunidadeinata; Receptor2toll-like; Receptor4toll-like; Recém-nascidos; Monócitos
ExpressãodoTLR-2edoTLR-4emmonócitosderecém-nascidosatermocomsepse tardia
Resumo
Objetivos: AnalisaraexpressãodosTLR-2eTLR-4emmonócitosderecém-nascidoscomsepse tardia.
Métodos: Trata-sedeumestudoprospectivocom27recém-nascidosatermoentre8e29dias devidacomdiagnósticoclínicoelaboratorialdesepsetardiadosquaisdez(37%) apresenta-ramculturapositiva.AscitocinasforamdeterminadasportestedeCBAemsangueperiférico enquantoqueaexpressãoeMFI(medianadeintensidadedefluorescência)dosTLR-2eTLR-4 foi determinadoporimunofenotipagemem monócitosde sangueperiféricototal atravésde análisepelocitômetrodefluxoBDFACSDiva. Ogrupousadopara comparac¸ãofoideadultos saudáveis.
Resultados: Microrganismosforamidentificadosem37%dospacienteseestesjuntamentecom ospacientescomsepseclínicativeramníveiselevadosdecitocinaspró-inflamatórias(IL-8,IL-6, IL-1)edecitocinaanti-inflamatória(IL-10)corroborandooprocessoinflamatório/infeccioso. Nomonócito,afrequênciadeexpressãodoTLR-4foimaiselevada(p=0,01).
Conclusões: Esteestudoanalisouarespostaimuneinatanorecém-nascidocomsepse. Recém--nascidossépticosquedependemquaseexclusivamentedosistemaimuneinatoapresentaram poucarespostainvivonaativac¸ãodemonócitosoquesugereumarespostaimunedeficientee maiorsusceptibilidadeàinfecc¸ão.
©2014SociedadeBrasileiradePediatria.PublicadoporElsevierEditoraLtda.Todososdireitos reservados.
Introduc
¸ão
A sepse corresponde a uma das principais causas de morbidade e mortalidade no recém-nascido (RN),1,2 com
gravidadeproporcional à interac¸ão existente entreo
hos-pedeiro e seu agente agressor,desencadeando a ativac¸ão
deumacascatadeeventosresponsáveispelaexpressãoda
respostaimune.
A sepse neonatal tardia ocorre após 72h de vida com
sinaisesintomasclínicosquepodemsersutiseinespecíficos
nocomec¸odainfecc¸ão, emuitas vezesmal interpretados
ouconfundidoscomoutrascondic¸õesclínicasnão
infeccio-sas.Apesardisso,suaevoluc¸ãopodeserfulminanteelevar
a choque séptico, coagulac¸ãointravascular disseminadae
óbitoempoucashoras.3---5
Diferentementedoadulto,foramdescritosnoRNmuitos
grausdedeficiêncianarespostaimuneinataeadaptativa.6
Ao nascimento, a resposta imune adaptativa está
preju-dicadatanto pela mínima exposic¸ão antigênicaintraútero
quantopeladisfunc¸ãodascélulasBeTefetora.1Porconta
disso,oRNcontacomaefetividadedarespostaimuneinata
ecomaprotec¸ãopassivadosanticorposmaternosadquiridos
viatransplacentária.7
Parte primordial do desencadear da resposta imune
inatacorrespondeàativac¸ãodosreceptoresToll-like(TLR)
expressosnasuperfície demonócitos,macrófagos,células
dendríticas,linfócitos,célulasepiteliaisounocitoplasmade
célulasdediferentestecidos.Dosdez tiposdereceptores
descritosemsereshumanos,oTLR-2eoTLR-4reconhecem
principalmentecomponentesdebactériasGram-positivase
Gram-negativas,respectivamente.A ativac¸ão desinaisde
transduc¸ãorecrutaváriasproteínas intracelulares(MyD88,
IRAK e TRAF-6), que vãodesencadear a ativac¸ãodas vias
JNKe ERKda cascata das MAPKs (proteínas quinases
ati-vadaspormitógeno). Issoinduz aativac¸ão dosfatoresde
transcric¸ãoAP-1(ativadorproteico-1)eNF-kB(fatornuclear
kappaB)queexpressamváriosgenesdiretamente
envolvi-dosna produc¸ão decitocinas inflamatórias em respostaà
infecc¸ão,exercendoinfluênciafundamentalnaamplificac¸ão
darespostaimunecelular.8---11
Osmonócitos sãocélulas possuidorasde antígenosque
agemsobreoprocessoinflamatórioecomofontesde
macró-fagosecélulasdendríticas.Apósaativac¸ãoviaTLRocorre
aumentonaexpressãodemoléculascoestimuladoras(CD80
eCD86), quesãoimportantesnoiníciodarespostaimune
adaptativaenaproduc¸ãodecitocinas.12
A regulac¸ão do sistema imunológico ao nascimento se
traduznumarespostaneonataldoTLRtendenciosapor
esti-mularumamenorproduc¸ão decitocinas pró-inflamatórias
e mostrar menor polifuncionalidade.13,14 Somente com o
decorrerda vida os níveis de citocinas se equiparam aos
do indivíduo adulto.15 Ainda no período neonatal têm-se
descritoalterac¸õesquantitativas equalitativas dos
recep-toresToll-likeedascélulasparticipantesdarespostaimune
inataquandocomparadasaoindivíduoadulto,proporcionais
àidadegestacionalaonascer.16 Estasdiferenc¸aspoderiam
elucidaramaiorsusceptibilidade àinfecc¸ão observadana
Portanto,apesar da crescenteconscientizac¸ão sobrea
importânciadosistemadoTLR nadefesadoRN contraas
infecc¸ões,18 muito ainda precisa ser esclarecido sobre os
mecanismosderegulac¸ãodasrespostasTLRnoperíodo
neo-natal.Assim,esteestudo tevecomo objetivocaracterizar
a expressão dos TLR-2 e TLR-4 em monócitos de
recém--nascidosatermocomsepsetardia.
Métodos
Trata-se de um estudo prospectivo cuja amostra de con-veniência incluiu 27 recém-nascidos a termo transferidos paraaUnidadedeCuidadosIntensivosNeonataldoHospital InstitutodaCrianc¸adoHospitaldas ClínicasdaFaculdade deMedicinada UniversidadedeSãoPaulo --- HCFMUSP, no períodoentrefevereiro de2011ajaneirode2013. Foram incluídospacientescujaidadegestacionalesteve entre37 e42semanas,queapresentarammanifestac¸õesclínicase/ ou laboratoriais (hemograma completo e PCR) de sepse neonatal entre 72h até 30 dias de vida no momento da internac¸ãoouduranteamesmaquelevouaoiníciode anti-bioticoterapia.Oscritériosdeexclusãoforamfatoresque por si só alterariam a resposta imune, como: diagnóstico de infecc¸ões congênitas, erros inatos do metabolismo, uso de anti-inflamatórios (indometacina, ibuprofeno e corticóides), diagnóstico de hemorragia intracraniana comprovadaporultrassonografiaoutomografia computado-rizadadecrânioeprocedimentocirúrgiconaúltimasemana alémdaquelesemqueadatadacoletadaamostranãoseria favorávelàanálisedomaterial.
Oscritériosutilizadosparadefinirodiagnóstico e clas-sificar quanto à gravidade clínica (sepse, sepse grave e choqueséptico)foramoscitadosnoSurvivingSepsis Cam-paign(2012), ajustados paraa faixa etária com base nos critérios de Goldstein (2005) conforme contemplado pelo consenso.19,20Aanálisedohemogramacompletofoibaseada
noescorehematológicodeRodwell(SHR),enquantoqueum
PCR(proteínaCreativa)>10mg/Lfoiconsideradosugestivo
deinfecc¸ão.OestudofoiaprovadopelaComissãodeÉtica
paraAnálisedeProjetosdePesquisadoHCFMUSP(CAPPesq).
Amostras
Após consentimento livre e esclarecido dos responsáveis legais foram coletadas amostras de sangue dos RN por
punc¸ãovenosadeveiaperiféricaparaaavaliac¸ãodoquadro infeccioso (HMG, PCR e hemocultura) e análise das cito-cinas e monócitos. O momentoda coletafoi padronizado paraocorrernasprimeiras24hapartirdasuspeita diagnós-ticadeinfecc¸ãoeiníciodaantibioticoterapia.Distribuiu-se 0,5mLdosangueemtubocomgelseparadorparadosagem decitocinase1,5mLemtubocomEDTApararealizac¸ãode imunofenotipagem, que foram realizados no Laboratório deInvestigac¸ãoMédicadoInstitutodaCrianc¸adoHC-FMUSP (LIM36).
Análisedascitocinas
AscitocinasTNF-␣,IL-1,IL-2,IL-4,IL-6,IL-8,IL-10foram dosadasnasamostrasdesoroatravésdotestedeCBA( Cyto-metricbeadarrayBDOptEIATMSet Human),deacordocom
asinstruc¸õesdofabricante.
AnálisedereceptoresToll-like
Para a realizac¸ão daimunofenotipagem, as hemácias das amostrasdesanguecolhidasemtubocontendoEDTAforam preparadas para adic¸ão de anticorpos pré-estabelecidos (tabela 1) e processamento até serem transferidas para
leitura no citômetro de fluxo FACS LRS II Fortessa.
A populac¸ão demonócitos foi definida pelo gatede
célu-las CD14+HLA-DR+ utilizando como parâmetro o tamanho
(forwardscatter,FSC)eagranulosidadecelular(side
scat-ter,SSC),comodescritonaliteratura.20
Aanálise foifeita nosoftwareFlowJo (Tree Star,
Ash-land,OR,USA),ondecada populac¸ãocelularfoianalisada
separadamenteatravésdegatesutilizandocomoparâmetro
otamanhoeagranulosidadecelular.Pelomesmosoftware
foram obtidos os dados apresentados que representam a
MedianadaIntensidadedeFluorescência(MFI,median
flu-orescenceintensity)dosrespectivosmarcadores.
Os números absolutos das populac¸ões foram
calcula-dos pela multiplicac¸ão da porcentagem indicada de cada
populac¸ãonacitometriadefluxoeonúmeroabsolutode
leu-cócitosdeterminadospelocontadorautomáticodecélulas.
Amostrascontroledesanguedeadultossaudáveis
Foram obtidas amostras de sangue periférico de 27 adul-tossaudáveis,queforamutilizadasparaapadronizac¸ãoeo
Tabela1 Marcadoresdesuperfíciecelulardemonócitos
Anticorpomonoclonal Clone Fluorocromo Fabricante
HLA-DR L243 APCCy7 BDBiosciences
CD14 M5E2 Pacificblue BDBiosciences
CD80 BB1 FITC BDBiosciences
CD86 2331(FUN-1) PECy5 BDBiosciences
TLR-2(CD282) 11G7 Alexa647 BDBiosciences
TLR-4(CD284) HTA125 PE BioLegenda
HLA-DR,antígenoleucocitáriohumanoclasseII,locus-DR;CD,clusterofdifferentiation;TLR,receptorToll-like;APCCy7,aloficocianina combinadoaocorantedecianina;Pacificblue,fluoróforo6,8-difluoro-7-hidroxicumarina;FITC,isotiocianatodefluoresceína;PECy5, conjugadocom ficoeritrinaecorantedecianina;Alexa 647,fluorocromoparaleituraentre594e633nm;PE,R-ficoeritrina.Clone, refere-seaosmarcadoresdosanticorposmonoclonaisespecificados.
Tabela2 Distribuic¸ãodos27RNconformeosdadosclínicoselaboratoriais
DADOSCLÍNICOS[Mediana(p25-p75)]
Idadenainternac¸ão(dias) 11(2-22)
Idadenoiníciodossintomas(dias) 20(8-29)
Idadenacoleta(dias) 21(12-30)
Peso(g) 3130(2823-3511)
Sexo(M:F) 1,07:1
EXAMESLABORATORIAIS[Mediana(p25-p75)]
-SHR 1(0-3)
-PCR(mg/L) 35,2(9-83,1)
Culturas[N(%)]
-Culturaspositivas 10(37%)
BactériasGram-positivas 4(40%)
Staphilococcusepidermidis 3
Staphilococcusaureus 1
BactériasGram-negativas 6(60%)
Enterobactercloacae 1
Salmonellasp 1
Escherichiacoli 2a
Klebsiellapneumoniae 1
Bordetellapertussis 1
-Culturasnegativas 17(63%)
CITOCINASpg/mL[Mediana(p25-p75)] Culturapositiva Culturanegativa p
-IL-6 147,7(72,2-385,1) 132,3(6,3-332) 0,6066
-IL-8 137,9(61,1-411,8) 58,1(16,3-55,4) 0,5414
-IL-1 3,0(1,07-15,8) 2,55(1,15-5,62) 0,5349
-IL-10 8,05(4,12-19,9) 3,5(1,8-76,15) 0,4516
-TNF-␣ 1,2(0,45-1,7) 1,75(1,0-2,47) 0,1188
-IL-2 1,7(1,4-1,9) 2,4(1,6-4,55) 0,1014
-IL-4 2,2(0,85-2,8) 0,4(0,3-1,1) 0,0714
N,númeroabsoluto;%,porcentagem;SHR,escorehematológicodeRodwell;PCR,proteínaCreativa;IL,interleucina;TNF-␣,fatorde necrosetumoralalfa.
a 1pacientecomuroculturapositivaparaEscherichiacoli.
controledostestesrealizados.Oscritériosdeselec¸ãoforam: adultosvoluntáriossaudáveisde18a35anos,dossexos mas-culinoe feminino,comreac¸õessorológicasnegativaspara HIV,HTLVI/II,hepatitesBeC,doenc¸adeChagasesífilis,e ausênciadesintomasdeinfecc¸ãonoperíododacoleta.
Análiseestatística
OsdadosdosRNforamregistradosemformuláriodecoleta earmazenadosemplanilhaeletrônicadopacoteestatístico GraphPad-Prismversão6.0cparaMacOSX(GraphPad Soft-ware,LaJolla,Califórnia,EstadosUnidos).Paraasvariáveis qualitativas foicalculada a frequênciaabsolutae relativa (númerode casos e porcentagem), enquanto que para as variáveisquantitativasfoicalculadaamediana,osvalores mínimoe máximo e intervalointerquartil (p25-p75), para cadaumdosreceptoresavaliadosemcadaanálise.Oteste de Mann-Whitney foi usado para comparar a mediana de marcadoresentreosgrupos,enquanto queaanálise com-parativadasmedianasdemaisdedoisgruposutilizou-seo Testede Kruskal-Wallis compós-teste de Dunn. Ostestes
foramrealizadoscomlimitesdeintervalodeconfianc¸ade 95%,eumvalordep<0,05foiconsideradosignificativo.
Resultados
Ascaracterísticasclínicaselaboratoriaisdos 27RN incluí-dos noestudo encontram-se na tabela 2. Observa-se que
a maioria dos pacientes (62,9%) apresentou quadro
com-patívelcomsepse grave(44,4%) echoque séptico (18,5%)
ocorridocommedianadeidadede20diasdevida,sendoque
foiconstatadoóbitoemapenasdoispacientes(7,4%).Dentre
os17 pacientesqueapresentaram culturanegativa,todos
apresentaramsinaisesintomasclínicosclarosdeinfecc¸ãoe
alterac¸õeslaboratoriaiscompatíveisem hemogramaePCR
nomomentododiagnósticoenaanáliseclínicasequencial,
sendoassimconsideradospacientescomsepseclínica.
Dessespacientescomsepseclínica,oito(47%)
apresenta-ramquadroclínicocompatívelcomsepse,cinco(29,5%)com
sepsegraveequatro(23,5%)comchoqueséptico.Alémdo
mais,a dosagem dascitocinas pró-inflamatóriasfoi
Monócito CD14 HLA-DR
Monócito CD80
Monócito TLR-2
Monócito CD86
Monócito TLR-4
Monócito TLR-4 Monócito TLR-2
Número absoluto (células/
μ
L)
MFI MFI
%
4000
3000
2000
1000
0
2000 4000 6000 8000
0 0
MFI MFI
0 5000 10.000 20.000
15.000 25.000
0 5000 10.000 15.000 0 50
%
0 50 100
150 100
10.000 20.000 30.000
RN Adulto
RN Adulto RN Adulto
RN Adulto
RN Adulto
RN Adulto
RN Adulto
p < 0,05
Monócito CD14 HLA-DR
%
0 2 4 6 8 10
RN Adulto
p < 0,05
p < 0,05
Figura1 Apresentac¸ãodográfico decaixadonúmeroabsoluto(células/L),frequência(%)emedianadaintensidadede flu-orescência(MFI)paramoléculasdeativac¸ãoCD80,CD86,TLR-2eTLR-4.Valoresexpressosemmediana±intervalointerquartil (p25-p75);preferenteàsignificânciaestatística.Númerodaamostradosgrupos‘‘RN’’e‘‘adulto’’=27.
RN,recém-nascido;HLA-DR,antígenoleucocitáriohumanoclasseII,locus-DR;CD,clusterofdifferentiation;TLR,receptorToll-like.
dapositividadedacultura,conformemostradonatabela2.
Apositividadede culturacoletada delíquido estéril
(san-gue, urina e líquor) ocorreu em dez pacientes(37%) com
distribuic¸ãoconformeoagenteisolado,comoapresentado
namesmatabela.
Com relac¸ão aos monócitos observa-se que, apesar
doseunúmeroabsolutototalsermaiornosRNcomparado
aosadultos(p<0,0001),houvefrequênciasemelhantedos
monócitosentreosgrupos(fig.1).
OMFIparamoléculasdeativac¸ãoCD80,CD86ea
frequên-ciaeMFIparaTLR-2eTLR-4encontra-seexpostanafigura1.
AlémdomenorMFI paraCD86 nosRNcominfecc¸ão,esses
pacientesapresentarammanutenc¸ãodaexpressãonoCD80
eTLR-2(p=0,822ep=0,825,respectivamente),enquanto
houvemaiorfrequênciaparaTLR-4noRNsépticoemrelac¸ão
aoadulto(p=0,0043).
A positividade da cultura esteve relacionada à maior
Tabela3 Medianadafrequência(%)eMFIdosreceptoresToll-like2e4emmonócitosdesangueperiféricoderecém-nascidos cominfecc¸ão(culturapositivaounegativa)edesangueperiféricodeadultos
Monócitos Adulto Culturanegativa Culturapositiva p
[N]Mediana(p25-p75)
%
TLR-2 [27]93,5
(82-98,5)
[17]96,5 (82,2-97,6)
[10]87,1 (59-92,2)
0,475
TLR-4 [27]10,6
(5,7-17,9)
[17]11,8 (6,7-24,9)
[10]30,5 (18,5-72,1)
0,0011
MFI
TLR-2 [27]3134
(1336-6386)
[17]8631 (2972-15300)
[10]5504 (3921-42850)
0,516
TLR-4 [27]2768
(2159-4377)
[17]4276 (1594-5088)
[10]3204 (2017-3831)
0,867
N,númerodaamostra;Medianadaintensidadedefluorescência(MFI)preferenteàsignificânciaestatísticapelotestedeKruskal-Wallis; TLR,receptorToll-like.
pacientescomculturanegativa(tabela3),enquantohouve
frequênciasemelhanteentreosgruposnaavaliac¸ãodo
TLR-2.
Apesar daidentificac¸ãodealgumasbactérias, aanálise
entreapositividadedaculturaconformeotipodebactéria
identificadaeostiposdereceptorToll-likenãofoirealizada
devidoaonúmerodaamostraestudada.
Discussão
Descrevemosarespostainvivodemonócitosneonataisde sangue periférico frente a umquadro infeccioso que evi-denciou expressão semelhanteoumenor de moléculas de ativac¸ão,alémde maiorexpressão dosTLR-4 em RN com infecc¸ãoporbactériasgram-positivasegram-negativasedo TLR-2empacientescomsepseclínica.
Osmonócitossãocélulasdosistemafagocitárioe exer-cem importante papel na imunidade inata e adquirida atravésdasuaac¸ãosobreoprocessoinflamatóriooucomo fonte dos macrófagos e células dendríticas. O comporta-mentodos TLRnoRN,sejaelesaudáveloucominfecc¸ão, é controverso. Segundo Levy et al., embora a expressão basaldosreceptoresToll-likeemmonócitosdeRNatermo seja similar ao de adultos, as consequências funcionais daativac¸ãosão bemdiferentes,já queseobserva menor produc¸ãodecitocinasnosRNemenorexpressãodas molé-culascoestimuladoras.18
Pôde-seobservarque,frenteaumestímuloinfeccioso,
apopulac¸ãoderecém-nascidosanalisadaapresentoumenor
quantidadedecélulasativadas(MFIparaCD86menorqueno
indivíduoadulto eMFI paraCD80semelhanteao indivíduo
adulto sem infecc¸ão)em sangue periférico,sugerindo um
menorpotencialdeatividadedestetipocelularnoRN,dado
essedeacordocomaliteratura.18---21
Com relac¸ão ao TLR-2, observou-se que o mesmo foi
amplamente expresso nos monócitos neonatais (93,9%) e
nosmonócitosdeindivíduosadultosseminfecc¸ão(94,6%).
A mesma semelhanc¸a foi observada com relac¸ão ao MFI
paraessereceptor(MFI =4748 e6386, respectivamente),
independentemente da positividade ou não da cultura,
contrariandoachadosdaliteraturaquedemonstramum
up--regulationna expressão de TLR-2 em monócitos isolados
de pacientes com sepse bem como mudanc¸as
significan-tesnaexpressão deTLR-2.22,23 Assim,nanossacasuística,
onde todos os recém-nascidos apresentavam sinais
clíni-coselaboratoriaisdeinfecc¸ão,observamosque,apesarde
apresentaremasferramentasnecessáriasparareconhecer
oantígenoinvasor(receptorToll-likeemoléculas
coestimu-ladoras), estasnãosofreram o up-regulationesperado na
análiseglobal.
Enquanto isso,deformacontráriaao relatadopor
Vie-mannetal.,1apresenc¸adeculturapositivaesteveassociada
aumamaiorfrequêncianaexpressãodoTLR-4comrelac¸ão
aoindivíduoadultoecomculturanegativaprovavelmente
secundáriaaofatodeamaiorpartedospacientescom
cul-turapositivaterisoladobactériasgram-negativas(60%)na
cultura.Jáaexpressãosemelhantedomesmoreceptornos
RNcomculturanegativaenospacientesadultospodesugerir
umatendênciaaimunoparalisiaqueteriadesviadoa
medi-anaparaníveismaisbaixosesemelhantesao doindivíduo
adulto saudável, jáque quatro RN deste grupoevoluíram
comquadrodechoqueséptico.
Nossoestudoapresentalimitac¸õesquemerecemser
res-saltadas,comootamanhodaamostraeseucaráterpontual
quantoà avaliac¸ão doquadro infeccioso. Ainda assim,os
resultadossugeremquenomomentodahipótesediagnóstica
deinfecc¸ãonoRNosreceptoresTLR-2eoTLR-4
apresenta-ram umaexpressão maiorem RN com infecc¸ão, mascom
manutenc¸ão da expressão das moléculas coestimuladoras
indicandoumapossíveldeficiêncianoprocessodeativac¸ão
celularinvivo.
Assim,emboramaioresextrapolac¸õesnãopossamser
fei-tas,acreditamosqueseriainteressanteverificarnaevoluc¸ão
deumquadroclínicodeinfecc¸ãoarespostadosTLR,bem
comodaativac¸ãocelularemRNcominfecc¸ão.
Financiamento
Conflitos
de
interesse
Osautoresdeclaramnãohaverconflitosdeinteresse.
Agradecimentos
OsautoresagradecemàFundac¸ãodeAmparoàPesquisado EstadoSãoPaulopelofinanciamentodoprojeto.
Referências
1.ViemannD,DubbelG,SchleifenbaumS,HarmsE,SorgC,Roth J.Expressionoftoll-likereceptorsinneonatalsepsis.Pediatr Res.2005;58:654---9.
2.DellingerRP,LevyMM,CarletJM,BionJ,ParkerMM,Jaeschke R,etal.SurvivingSepsisCampaign:internationalguidelinesfor managementofseveresepsisandsepticshock:2008.CritCare Med.2008;36:296---327.
3.Camacho-GonzalezA,SpearmanPW,StollBJ.Neonatal infecti-ousdiseases:evaluationofneonatalsepsis.PediatrClinNorth Am.2013;60:367---89.
4.Bedford Russell AR. Neonatal sepsis. Paediatr Child Health. 2011;21:265---9.
5.CianciarulloMA,CostaIC,CecconME,KrebsVL.Newandold markersoninfectioninneonatalsepsisdiagnostic:criticvision. Pediatria(SãoPaulo).2008;30:107---17.
6.KollmannTR,CrabtreeJ,Rein-WestonA,BlimkieD,Thommai F,WangXY,etal.NeonatalinnateTLR-mediatedresponsesare distinctfromthoseofadults.JImmunol.2009;183:7150---60. 7.Yoon HS. Neonatal innate immunity and toll-like receptor.
KoreanJPediatr.2010;53:985---8.
8.MuzioM,BosisioD,PolentaruttiN,D’amicoG,StoppacciaroA, MancinelliR,etal.Differentialexpressionandregulationof toll--likereceptors(TLR)inhumanleukocytes:selectiveexpression ofTLR3indendriticcells.JImmunol.2000;164:5998---6004. 9.TippingPG.Toll-likereceptors:theinterfacebetweeninnate
andadaptiveimmunity.AmSocNephrol.2006;17:1769---71. 10.BochudPY,Calandra T.Pathogenesisofsepsis: newconcepts
andimplicationsforfuturetreatment.BMJ.2003;326:262---6. 11.HigginsSC,LavelleEC,McCannC,KeoghB,McNeelaE,Byrne
P,et al. Toll-likereceptor 4-mediatedinnate IL-10 activates antigen-specific regulatory T cells and confers resistance to
Bordetella pertussis by inhibiting inflammatory pathology. J Immunol.2003;171:3119---27.
12.KadowakiN,HoS,AntonenkoS,MalefytRW,KasteleinRA,Bazan F,etal.Subsetsofhumandendriticcellprecursorsexpress dif-ferent toll-like receptorsand respond to different microbial antigens.JExpMed.2001;194:863---9.
13.NguyenM,LeuridanE,ZhangT,DeWitD,WillemsF,VanDamme P,etal.Acquisitionofadult-likeTLR4andTLR9responsesduring thefirstyearoflife.PLoSOne.2010;5:e10407.
14.PrabhuDasM,AdkinsB,GansH,KingC,LevyO,RamiloO,etal. Challenges ininfant immunity:implications for responses to infectionandvaccines.NatImmunol.2011;12:189---94. 15.KollmannTR,LevyO,MontgomeryRR,GorielyS.Innateimmune
functionbyToll-likereceptors:distinctresponsesinnewborns andtheelderly.Immunity.2012;37:771---83.
16.Förster-WaldlE,SadeghiK,TamandlD,GerholdB,HallwirthU, RohrmeisterK,etal.Monocytetoll-likereceptor4expression andLPS-inducedcytokineproductionincreaseduring gestatio-nalaging.PediatrRes.2005;58:121---4.
17.Wynn JL, Levy O. Role of innate hostdefenses in suscepti-bilitytoearly-onsetneonatalsepsis. ClinPerinatol.2010;37: 307---37.
18.LevyO.Innateimmunityofthenewborn:basicmechanismsand clinicalcorrelates.NatRevImmunol.2007;7:379---90.
19.DellingerRP,LevyMM, RhodesA, AnnaneD,GerlachH,Opal SM,et al.Survivingsepsiscampaign:internationalguidelines formanagementofseveresepsisandsepticshock:2012.Crit CareMed.2013;41:580---637.
20.Goldstein B, Giroir B, Randolph A. International Consensus ConferenceonPediatricSepsis.Internationalpediatric sepsis consensusconference:definitionsforsepsisandorgan dysfunc-tioninpediatrics.PediatrCritCareMed.2005;6:2---8.
21.Sánchez-TorresC,García-RomoGS,Cornejo-CortésMA, Rivas-CarvalhoA,Sánchez-SchmitzG.CD16+andCD16-humanblood monocytesubsetsdifferentiateinvitrotodendriticcellswith different abilities to stimulate CD4+ T cells. Int Immunol. 2001;13:1571---81.
22.Hirschfeld M, Ma Y, Weis JH, Vogel SN, Weis JJ. Cutting edge:repurificationoflipopolysaccharideeliminatessignaling throughbothhumanandmurinetoll-likereceptor2.JImmunol. 2000;165:618---22.