Ação de quitosana sobre o desenvolvimento de Plasmopara viticola e Elsinoe ampelina, in
vitro e em videiras cv. Isabel
Aline José Maia*
1, Renato Vasconcelos Botelho
1, Cacilda Márcia Duarte Rios Faria
1, Carla Daiane Leite
1*Parte da dissertação de mestrado apresentada a Universidade Estadual do Centro Oeste, para a obtenção do título de mestre. Bolsista Capes;
2Departamento de Agronomia da Universidade Estadual do Centro Oeste, Rua: Simeão Camargo Vilela de Sá, 3 - Bairro Cascavel, CEP 85040080,
Guarapuava, Paraná.
Autor para correspondência: Aline José Maia (alymaia2005@yahoo.com.br) Data de chegada: 31/08/2009. Aceito para publicação em: 27/07/2010.
1672
ABSTRACT
T hi s wo r k a i me d t o ev a lu a t e t he e ff e ct o f c hi t o sa n o n th e control of fungi Els ino e a m p e lin a a nd Pla sm o p a r a v itico la , the ca u sa l a gen ts of dow ny mil dew a nd a nt hr a cno se in gr a pev ine s, r espectively. The concentra tions of 0, 2 0 , 4 0 , 80 a nd 1 6 0 mg L -1 chitosan were used in the following trials: mycelia l growth, spore
ger mina tion, and exper iment in field conditions. For the last two t r i a l s st a n da r d t r e a t me nt s wi th m a n co ze b a n d bo r d ea x mi xt u r e were added. There was a reduction in E. amp elina mycelia l growth a nd the highest chitosan concentra tion (1 60 mg L-1) decr ea sed by
5 7 % the f u ng u s de vel op men t a t 1 9 2 h ou r s a ft er in cu b a t ion . I n
Maia, A.J.; Botelho, R.V.; Faria, C.M.D.R.; Leite, C.D. Chitosan action on Plasmopara viticola and Elsinoe ampelina development in vitro and in grapevines cv. Isabel. Summa Phytopathologica, v.36, n.2, p.203-209, 2010.
Keywords: Vitis labrusca, alternative control, downy mildew, anthracnose, vines, fruit trees of temperate climates. Palavras-chave adicionais: Vitis labrusca, controle alternativo, míldio, antracnose, fruteiras de clima temperado.
RESUMO
Este trabalho teve como objetivos ava liar o efeito da quitosana no contr ole dos fu ngos Pla s mo p ar a vitic o la e Els in oe a mp e lin a , a g en t e s c a u s a i s d o m í l d io e da a n tr a c n os e d a v i d e ir a , r espectiva mente. As concentra ções de 0 , 2 0 , 4 0 , 80 e 16 0 mg L -1 de qu itosana for am u tiliza da s nos seguintes experimentos: testes
de cr escimento micelia l, de ger mina çã o de espor os e ensa io em condições de ca mpo. Pa r a os dois ú ltimos ensa ios, a dicionou -se tr atamentos padrões com mancozeb e calda bor da lesa. Verificou-se redução no crescimento micelial de E. amp elina sendo que a maior concentr a çã o de qu itosa na ( 1 6 0 mg L-1) r edu ziu em 5 7 % o
Maia, A.J.; Botelho, R.V.; Faria, C.M.D.R.; Leite, C.D.. Ação de quitosana sobre o desenvolvimento de Plasmopara viticola e Elsinoe ampelina,
in vitro e em videiras cv. Isabel. Summa Phytopathologica, v.36, n.3, p.203-209, 2010.
the ger m ina tio n tes ts, t he co ncent r a tion of 1 6 0 mg L-1 c hit os a n
r educed spore ger mina tion in E. a mp elina by approximately 98 % a nd P. v i ti c o l a b y 6 0 % , n ot di ffe r in g f r o m t he tr ea t men ts wi th b or de a u x m i xt u r e a nd ma nc o ze b. I n t h e fi e ld t r ia l t he h i gh es t c h it o s a n c o n c e nt r a t io n s ( 8 0 a n d 1 6 0 m g L- 1) d e cr e a s e d
anthracnose severity between 93 a nd 81 %. For downy mildew, the c o nc e n t r a t i o n o f 1 6 0 m g L- 1 d e cr e a s e d th e d i s e a s e b y
a pproxima tely 8 1 %. B a sed on these r esults, chitosa n ha s a gr ea t p ot e nt i a l fo r t h e c on t r o l o f d ow n y m il d ew a n d a n th r a c n os e i n gr a p evi ne s.
A videira é economicamente uma das mais importantes fruteiras cultivadas no mundo, devido às inúmeras utilizações dos seus frutos para consumo in natura e processamento (18).
As doenças fúngicas são um dos principais problemas de interesse econômico na viticultura, devido às grandes perdas registradas. Entre as principais doenças fúngicas, destacam-se o míldio, doença causada pelo fungo Plasmopara viticola, e a antracnose cujo agente causal é o fungo Elsinoe ampelina, responsáveis pelos maiores danos para a viticultura no sul do Brasil, assim como em outras regiões vitícolas do mundo. Essas doenças são especialmente sérias em anos com elevada precipitação, alta umidade relativa e longos períodos de umidade sobre
desenvolvimento do fungo, 192 horas após incubação. Nos testes de germinação, a dose de 160 mg L-1 de quitosana reduziu a germinação
de esporos de E. ampelina em aproximadamente 98% e de P. viticola em 6 0 %, nã o difer indo dos tr a ta mentos com ca lda bor da lesa e mancozeb. Nos ensaios a campo as maiores doses de quitosana (80 e 160 mg L-1) apresentaram um decréscimo na severidade de antracnose entre
93 e 81%. Para o míldio, a concentração de 160 mg L-1 apresentou um
decréscimo de aproximadamente 81%. Baseando-se nestes resultados, pode-se concluir que a quitosana tem um grande potencial no controle do míldio e da antracnose da videira.
folhas e frutos e, em alguns anos são tão severas a pon to de comprometer não só a produção do ano como também produções futuras (25).
O fungicida mais utilizado e mais eficiente no controle do míldio e antracnose é a calda bordalesa, entretanto, a calda bordalesa assim como todos os cúpricos, tem o inconveniente de poder causar fitotoxidez nas partes jovens da planta além de comprometer o sistema de condução, devido su a ação corrosiva. Em fu nção destas características, os cúpricos são recomen dados apen as após a frutificação. Além disso, inúmeros são os fungicidas sintéticos utilizados na viticultura em larga escala para o controle destas doenças,
tais como: captan, metalaxyl, cymoxanil e mancozeb (1). A solubilidade destes produtos, além de sua ação sistêmica são os principais fatores de risco para a contaminação de resíduos dos subprodutos da uva (21).
De acordo com Cabras & Angioni (7), o mosto de uva e o vinho podem apresentar resíduo de aqroquímicos. Soleas & Goldberg (24) analisando 26 agroquímicos em sucos de uva bruto antes da fermentação, verificaram que os agroquímicos mais frequentemente encontrados foram: folpete, captan, carbaril e dimetoato. Além disso, Navarro et al. (15) observaram que quatro dias após a vinificação, o vinho apresentou teores residuais de mancozeb, penconazole, vinclozolin, fenarimol e metalaxyl. Isto, consequentemente, é o resultado do uso de fungicidas/inseticidas na viticultura, portanto, estes resíduos podem permanecer na videira e serem transferidos para o vinho (17), embora a mobilidade dos aqroquímicos de uvas para vinho é geralmente reduzido, devido ao processo de vinificação (esmagamento, prensagem, estabilização, etc) (7).
A preocu pação com a seguran ça alimen tar tem levantado questionamento sobre a agricultura moderna, aumentando a demanda pela produção orgânica, a qual preserva os agroecossistemas através do uso adequado dos recursos naturais e obtenção de alimentos de maior qualidade (23).
Diante do exposto, o uso de compostos naturais ou biodegradáveis, não-tóxicos, derivados de animais ou plantas, que apresentem efeito fungistático ou induzam a resistência natural das plantas, tem tomado destaque entre os fitopatologistas (4). Dentre estas alternativas, encontra-se a quitosana, que é um polissacarídeo obtido através da desacetilação da quitina, presente na carapaça de crustáceos (camarões, caranguejos e siris), e na parede celular de fungos (Aspergillus niger e
Penicillium notatum) (26), com efeito, fungistático e indutor dos
mecanismos de defesa das plantas (27). Camilli et al. (8) verificaram que a quitosana aplicada em frutos de uva cv. Itália demonstrou ser eficiente no controle de Botrytis cinerea. Muñoz et al. (14) observaram que a aplicação de 1,0 e 2,5% de quitosana também reduziu o tamanho das lesões em frutos de tomates e bagas de uvas.
Neste sentido, o objetivo do trabalho foi de avaliar o efeito in vitro e in vivo da quitosana no controle de P. viticola e E. ampelina, agentes causais do míldio e antracnose da videira, respectivamente.
MATERIAL E MÉTODOS Produtos utilizados para o controle dos patógenos
Como fonte de quitosana foi utilizado o produto comercial Fish Fértil Quitosana® (20 g L-1 de quitosana, Fish Indústria e Comércio de
Fertilizan tes Ltda., Mogi-Mirim-SP). Como controle positivo, utilizou-se o princípio ativo mancozeb (Manzate® 800, fabricado por
Dow AgroSceinces Industrial LTDA-Barueri-SP), empregando-se a dose indicada no rótulo para a cultura. A calda bordalesa na proporção 1:1:100 (sulfato de cobre: cal virgem: água), produto recomendado na agricultura orgânica, foi utilizado como padrão.
Teste in vitro
Para este experimento foi realizado isolamento do patógeno, E.
ampelina, a partir de folhas com lesões provenientes da região de
Guarapuava-PR, o qual foi mantido em meio de cultura BDA (batata-dextrose-ágar).
Inicialmente, adicionou-se ao meio BDA as doses de 20, 40, 80 e 160 mg L-1 de quitosana, além da testemunha sem adição do produto.
Em seguida, os meios foram autoclavados durante 20 minutos, a 120 °C e pressão de 1 atm, e vertidos em placas de Petri de 90 mm de diâmetro, onde discos de 8 mm de diâmetro do micélio do fungo foram depositados no centro da placa.
As placas foram incubadas em câmara de crescimento (BOD) a 25 ± 1 °C, com fotoperíodo de 16 horas de luz. Após 48, 92, 144 e 244 horas de incubação, avaliou-se o crescimento micelial através da medida do diâmetro da colônia, com au xílio de paquímetro digital. O delineamento experimental adotado foi inteiramente casualizado, com cinco tratamentos, cinco repetições e parcela experimental constituída por uma placa de Petri. Para validação dos dados o experimento foi repetido duas vezes.
Os resultados foram submetidos à análise de variância e quando significativo se estudou a regressão polinomial ao nível de 5% probabilidade, através do programa estatístico SISVAR (12). Teste de germinação
Para avaliar o efeito da quitosana sobre a germinação de P. viticola e E. ampelina utilizou-se uma alíquota de 40 µL de suspensão de esporos (2,2 x 106 esporângios mL-1 e 5,8 x 106 conídios mL-1) e outra
de 40 µL de cada concentração de quitosana (0, 20, 40, 80 e 160 mg L -1), além de uma única dose de calda bordalesa e mancozeb como
tratamento padrão, não autoclavados. Estes foram colocadas em cada uma das cavidades de uma placa utilizada em teste ELISA (19).
As placas foram incubadas sob luz constante a 20 °C ± 1 °C e 25 ± 1 °C para P. viticola e E. ampelina, respectivamente. A porcentagem de germinação foi determinada as 2, 6 e 12 horas para P. viticola e 12 e 24 horas para e E. ampelina, após o início do experimento, através do emprego de 20 µL do corante azul algodão de lactofenol para paralisar a germinação.
A avaliação foi realizada através da observação ao microscópio ótico com aumento de 400 vezes. Contaram-se 100 esporos aleatórios por repetição, totalizando 400 esporos por tratamento. Para o fungo
P. viticola foram considerados esporos germinados aqueles que
apresentavam liberação dos zoósporos. Já para E. ampelina foram considerados como esporos germinados aqueles que apresentavam qualquer emissão do tubo germinativo. Para validação dos dados apresentados em porcentagem, o experimento foi repetido duas vezes. Os resultados foram submetidos à análise de variância e regressão polinomial ao nível de 5% probabilidade, através do programa estatístico SISVAR (12).
Experimento em campo
O experimento foi conduzido no período de setembro de 2008 a janeiro de 2009, em vinhedo comercial da cv. Isabel, localizado no município de Guarapuava–PR, com as seguintes coorden adas geográficas: 25º 23' 26'’ S e 51º 27' 15'’ O, altitude de 1.120 m. O solo foi classificado como Latossolo bruno distroférrico típico, textura muito argilosa (11). As plantas eram enxertadas sobre porta enxerto ‘ 11 03 P au lsen’ , conduzidas em sistema de espaldeira, com espaçamento 2,5 x 2,0m.
Os tratamentos consistiram das seguintes concentrações de quitosana: 0, 20, 40, 80 e 160 mg L-1, além do tratamento padrão com
calda bordalesa, por ser um vinhedo conduzido em sistema orgânico. As pulverizações foram realizadas semanalmente com pulverizador manual até o ponto de “gotejamento”, nas horas mais frescas do dia, a partir do início da brotação em 10/09/2008, perfazendo um total de 14 aplicações. O delineamento experimental foi em blocos ao acaso contendo cinco tratamentos e cinco repetições, sendo cada planta uma repetição.
Com o aparecimento dos primeiros sintomas, a severidade do míldio e da antracnose da videira foi avaliada em três folhas do ápice de dois ramos por planta, previamente identificadas, utilizando-se uma escala diagramática com notas de um a doze que correspondem de 0% a 100% da área foliar lesionada (2). Com os dados da severidade foi determinada a área abaixo da curva de progresso das doenças (AACPD), segundo Campbell & Madden (9). No total foram realizadas cinco avaliações com intervalos de sete dias.
Todos os resultados foram submetidos à análise de variância e quando significativo realizou-se a comparação de médias pelo teste de Tukey e análise de regressão polinomial ao nível de 5% probabilidade, através do programa estatístico SISVAR (12).
RESULTADOS E DISCUSSÃO Teste in vitro
Para o teste in vitro, verificou-se redução no crescimento micelial de E. ampelina em função das concentrações de quitosana, com significância para regressão quadrática nas avaliações as 48, 96, 144 e 192 horas após incubação (Figura 1). Notou-se que na concentração de 160 mg L-1 houve maior efeito fungistático, reduzindo em 57% o
desenvolvimento de E. ampelina quando a avaliação foi realizada 192 horas após a incubação. Resultados semelhantes foram obtidos por Muñoz et al. (14) que verificaram que quitosana a 2% reduziu o crescimento micelial de Colleotrichum sp. em 63%. Di Piero & Garda (10 ) observaram redu ção do crescimen to micelial do fu ngo
Colletotrichum lindemuthianum, a partir de 1 mg L-1 de quitosana
colocada em meio BDA. Liu et al. (13) verificaram total inibição do crescimento micelial de B. cinerea quando utilizou 5% de quitosana. Teste de germinação
Nos ensaios realizados para a verificação da germinação, houve efeito quadrático em função das doses de quitosana para ambos os fungos. A maior dose (160 mg L-1) reduziu a germinação de esporos de
E. ampelina em aproximadamente 98%, 12 e 24 horas após incubação,
não havendo diferença da quitosana em relação aos tratamentos com mancozeb e calda bordalesa (Figura 2). Para P. viticola, na maioria das avaliações, as concentrações de 80 e 160 mg L-1 não diferiram dos
tratamentos com calda bordalesa e mancozeb (Figura 3), exceto na última avaliação em que a calda bordalesa apresentou maior redução de germinação de esporos em relação aos tratamentos com quitosana. Propriedades fungicidas da quitosana foram relatadas para outros fitopatógenos. Ben-Shalom et al. (6) observaram que a quitosana a 50 µg L-1 inibiu a germinação de esporos e reduziu a elongação do tubo
germinativo de B. cinerea, enquanto que a dose de 100 µg L-1 reduziu
em 75% a germinação de uredosporos de Puccinia arachidis, agente causal da ferrugem do amendoim (22). Liu et al. (13) verificaram a total inibição da germinação de esporos quando utilizaram 0,5 e 1% de quitosana, para Penicillium expansum e B. cinerea, respectivamente. De acordo com Benhamou (5), possivelmente este mecanismo de ação da quitosana é devido ao seu alto peso molecular e as suas cargas positivas, às quais interferem com os resíduos carregados negativamente das macromoléculas expostas sobre a superfície celular fúngica e, modificam a permeabilidade da membrana plasmática, levando à degeneração e morte do patógeno. No entanto novos testes deverão ser realizados para a confirmação da hipótese.
Experimento em campo
Para os resultados da AACPD, houve efeito quadrático em função das concentrações de quitosana para antracnose, sendo que as maiores doses de quitosana (80 e 160 mg L-1) apresentaram um decréscimo de
aproximadamente 93 e 81%, respectivamente, não diferindo do tratamento com calda bordalesa (Figura 4). Para míldio, houve efeito linear negativo em função das concentrações de quitosana, sendo que as concentrações de 40, 80 e 160 mg L-1 apresentaram um decréscimo
de aproximadamente 52, 76 e 81%, respectivamente, não diferindo do tratamento com calda bordalesa (Figura 5). Aziz et al. (3) obtiveram resultados semelhantes, quando verificaram que oligômeros da quitosana na concentração de 200 µg mL-1 pulverizado isoladamente ou em
combinação com sulfato de cobre (CuSO4) a 50 µg mL-1 sobre folhas
de videira cv. Chardonnay, reduziram a severidade de P. viticola em
Figura 1. Crescimento micelial (mm) de Elsinoe ampelina em função de concentrações crescentes de quitosana, 48, 96, 144 e 192 horas após incubação
Figura 2. Germinação de esporos de Elsinoe ampelina, em diferentes concentrações de quitosana, mancozeb e calda bordalesa 12 (A) e 24 horas (B) após
incubação a 25 °C. ** Significativo a 1% de probabilidade.
Figura 3. Germinação de esporos de Plasmopara viticola em diferentes concentrações de quitosana, calda bordalesa e mancozeb 2 (A), 6 (B) e 12 horas
(C) após incubação a 20 °C. **Significativo a 1% de probabilidade.
Figura 4. Efeito das doses de quitosana sobre a severidade da antracnose em plantas de videira cv. Isabel. Dados transformados em raiz quadrada de Y +
1.0 - SQRT (Y + 1.0). ** Significativo a 1% de probabilidade.
...continuação
Figura 5. Efeito das doses de quitosana sobre a severidade do míldio em plantas de videira cv. Isabel. Dados transformados em raiz quadrada de Y + 1.0
71% e 85%, respectivamente. Do mesmo modo, Di Piero & Garda (10), avaliando o controle da antracnose em feijoeiro-comum com o uso de diferentes doses de quitosana, verificaram redução da severidade da doença em torno de 70%, quando se utilizou 9 mg de q uitosana por plan ta, q uatro dias an tes da inoculação de C .
lindemuthianum. Estes resultados sugerem um efeito da quitosana
na interação patógeno-hospedeiro, através da ação direta sobre o desenvolvimento do patógeno (16).
Além do efeito fungistático, a quitosana também tem o potencial de ativar enzimas (4) e compostos fenólicos (5) relacionadas com o mecanismo de defesa das plantas. Trabalhos realizados por Vander et al. (28) demonstraram que a quitosana pode induzir a atividade da enzima FAL (fenilalanina amônia liase) e a produção e acúmulo de fitoalexinas em milho e videira, o que também foi comprovado por Romanazzi et al. (20) em videiras. Aziz et al. (3) obtiveram a máxima indução na atividade das enzimas quitinase e -1,3-glucanase quando utilizou 300 µg mL-1 de oligômeros de quitosana em videiras
cv. Chandonnay.
Com base nos resu ltados obtidos, a quitosana, substân cia natural, biodegradável, não tóxica, pode inibir diretamente os fungos,
P. viticola e E. ampelina, in vitro, como também reduzir a severidade
das doenças em campo, tornando-se uma substância promissora no controle de fitopatógenos, principalmente para sistema orgânico de cultivo. Assim, este polímero pode substituir a utilização de fungicidas sintéticos, diminuindo o impacto ambiental, sem causar danos à saúde humana. Novos experimentos deverão ser conduzidos para melhor entendimento da ação da quitosana sobre os patógenos estudados.
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
01. Amorim, L.; Kuniyuk i, H . Doenças da Videir a. I n: Kimati, H .; Amorim, L.; Rezende, J.A.M.; Bergamin Filho, A.; Camargo, L.E.A. (Ed.). M anual de f it opat olog ia. D oenças da s planta s cultiva -das. 4. ed. São Paulo: Ceres, 2005. v.2, p.639-651.
02 . Azevedo, L.A.S. M anual de quant if ic aç ã o d e do e n ç a s d e
plant as . São Pa u lo: N ovar tis Biociência s- Setor Agr o, 19 97 .
1 1 4 p .
03. Aziz, A.; Trotel-Aziz, P.; Dhuicq, L.; Jeandet, P.; C ou derchet, M.; Ver net, G. C hitosa n oligomer s a nd copper su lfa te indu ce gr a pevine defen se r ea ctions a nd r esista nce t o gr a y mold a nd d o wn y mi l d e w. P h yt o p at h o l o g y , Sa i n t Pa u l , v. 9 6 , n. 1 1 , p. 1 1 8 8 -1 1 9 4 , 2 0 0 6 .
04. B au tista-Ba ños, S.; H er ná ndez-Lau za rdo, A.N .; Valle, M.G.V.; H er ná ndez-López, M.; B ar ka , E.A.; Bosqu ez-Molina, E.; Wil-son C.L. Chitosan as a potentia l na tu ra l compound to control p r e a n d p o st h a r v es t d i se a se s o f h o r t i cu l tu r a l co m mo d it i es .
C r o p P ro t e c t io n, Lon don , v.2 5 , n .2 , p. 1 0 8 -11 8 , 2 0 0 6 .
05. B enhamou , N. Elicitor-induced plant defense pathways. Tre nds
Plan t Sc ie nc e , C hi ca go, v.1 , n.7 , p. 2 3 3 – 2 4 0 , 1 9 9 6 .
06 . Ben-Sha lom, N.; Ardi, R.; Pinto, R .; Ak i, C .; Fa llik, E. C on-tr olling gr a y mou ld ca used by Bo on-tr y tis c in e r e a in cu cu mber pla nts by mea ns of chitosan. C ro p Pro te c tion, London, v.22 , n.2 , p. 2 8 5 – 2 9 0 , 2 0 0 3 .
07. C abra s, P.; Angioni, A. Pesticide residu es in gr apes, wine a nd their pr ocessing pr odu cts. J o ur nal o f Ag r ic ult ure and Fo o d
C h e mi s t r y, Wa sh ing to n, v.4 8 , n. 4 p .9 6 7 – 9 7 3 , 2 0 0 0 .
08 . C a milli, E.C .; B ena to, E.A.; Pa schola ti, S.F.; C ia, P. Ava lia -çã o d e q u it osa na , a p lic a da em pó s c olh eit a , na pr o teç ã o de u v a ‘ I tá li a ’ co ntr a Bo tr y t is c in e r e a . Su mma Ph yt o pat ho l o
-g ic a, B otu c a tu , v.3 3 , n. 3 , p.2 1 5 -2 2 1 , 2 0 0 7 .
09 . C a mpbell, C .L.; Ma dden, L.V. I nt ro duc tio n t o Plant D is
ea-s e E pide mio lo g y. N ew Yor k : J ohn. Wiley, 1 9 9 0 . 5 3 2 p.
10 . Di Piero, M.D .; Ga rda, M.V. Qu itosa na redu z a severidade da a ntr a cnose e a u menta a a tividade de glu ca na ses em feijoeiro-comu m. Pe s quis a Ag ro pe c uá r ia B r as ile ir a. B r a sília , v. 4 3 , n. 9 , p.1 1 2 1 - 1 1 2 8 , 2 0 0 8 .
11 . EMPR ESA B R ASI LEI R A D E PESQ UI SA AG R O PEC UÁR I A. C e nt r o N a c io na l de P es qu is a de S ol os . S is t e ma b r a s i le ir o
de c las s if ic aç ão de s olo s , 2 .ed. R io de Ja neir o: EMB R APA,
2 0 0 6 . 3 0 6 p.
12. Ferreira, D.F. Aná lises estatísticas por meio do SISVAR (Siste-ma pa r a a n á lise de va r iâ ncia ) pa r a Windows ver sã o 4 .0 . I n: R eu niã o anu al da r egião br asileir a da socieda de inter na ciona l de biometr ia, 45., 2000, São Carlos. Anais ... São Carlos: UFS-C a r , p.2 5 5 - 2 5 8 , 2 0 0 0 .
1 3 . L iu , J . ; T ia n, S .; M e ng , X. ; Xu , Y. Effe ct s o f ch it os a n o n contr ol of po stha r vest disea se a nd phy siologica l r espon se of toma to fr u i t. Po s t har v e s t B io lo g y and Te c no lo g y , Ams te r-da m, v. 4 4 , n.3 , p.3 0 0 -3 0 6 , 2 0 0 7 .
1 4 . Mu ñoz, Z.; Mor et, A.; G a rcés, S. Assessment of chitosa n for inhibition of Colletotrich um sp. on tomatoes and gr apes. Cr op
Pro t e c t io n, Lo ndon, v. 2 8 , n.1 , p. 3 6 - 4 0 , 2 0 0 9 .
15 . N ava ro, S.; B arba, A.; Oliva , J.; Na var o, G.; Pa rdo, F. Evolu-tion of residual levels of six pesticides levels during elaborati-on o f r ed wi nes . Eff ect o f w in e-m a k ing pr oc edu r e s i n t he ir di sa pp ea r a nce. J o ur n al o f Ag r ic u lt u re an d F o o d C h e mi s
-t r y, Wa shin g-ton, v.4 7 , p.2 6 4 -2 7 0 , 1 9 9 9 .
1 6 . O h, S.K.; C ho, D .; Yu , S.H . D evelopment of integr ated pest ma na gement techniqu es using biomass for orga nic far ming (I ). Su pp r e ssi on of l a t e b li ght a nd Fu s a r i u m w il t of t om a t o by chitosa n involving both a ntifu nga l a nd pla nt a ctiva ting a cti-v it ie s . K o r e an So c ie t y o f P la n t P at h o l o g y , Su w o n, cti-v.1 4 , p. 2 7 8 – 2 8 5 , 1 9 9 8 .
1 7. O liva , J .; Payá , P.; C á ma r a, M.A.; B a rba , A. Remova l of fa -moxadone, flu qu inconazole a nd tr ifloxystr obin residues in red wines: Effects of clar ifica tion a nd filtr ation processes. J our
n al o f E nv i r o nm e nt al Sc ie nc e a nd H e al t h, P a r t B : P e s -t i c i d e s , F o o d C o n -t a mi n a n -t s a n d A g r i c ul -t u r al Wa s -t e s ,
Lond on, v.4 2 , n.7 , p.7 7 5 , 2 0 0 7 .
18. Pommer, C.V.; Ma ia, M.L. Introdu ção. In: Pommer, C.V. (Ed.).
U v a: t e c no l o g i a d a pr o d u ç ão , p ó s - c o l he i t a e m e r c ad o .
Po r to Aleg r e: C inc o C o nti nent es, 2 0 0 3 . p. 11 -3 6 .
19. Regente, M.C.; Oliva, C.R.; Ffeldma n, M.L.; C asta gnaro, A.P.; C a na l, L .A. su nflower l ea f a ntifu nga l peptide a ctive a ga inst
S c l e r o ti n ia s c le r o tio r u m . Phy s io l o g ia Plant ar um , Sw ede n,
v. 1 0 0 , p.1 7 8 - 1 8 2 , 1 9 9 7 .
2 0. R oma na zzi, G.; Ga bler, F.M.; Smila nick , J .L. Preha rvest chi-tosan a nd posthar vest UV ir ra dia tion treatments su ppress gra y mold of ta ble gr a pes. Plant D is e as e , Sa int Pa u l, v. 9 0 , n.4 , p. 4 4 5 - 4 5 0 , 2 0 0 6 .
21. Rose, G.; Lane, S.; J ordan, R. T he fate of fungicide a nd insec-ticide r esidues in Au stralia n wine grape by-products following f i el d a pp l i ca t i o n. F o o d C he m i s t r y , O x f o r d, v. 1 1 7 , n . 4 , p. 6 3 4 - 6 4 0 , 2 0 0 9 .
22 . Sa thiyabama M.; B alasu br amania m R. Chitosan indu ces resistance components in Ar ac h is h ip o g ae a a ga inst lea f r u st ca u -sed by Pu c c in ia a r a c h id is Speg. C r o p Pr o t e c t io n, Lond on, v.1 7 , n. 4 , p3 0 7 -3 1 3 , 1 9 9 8 .
2 3. Schiûer stein, H.N .J .; Ou de Ophuis, P.A.M. Hea lth-r elated de-ter mina nts of o r ga n ic f ood cons u mpt ion in t he N ethe r la n ds.
F o o d Q u a li t y an d P re f e r e nc e , Fr a n c e, v. 9 , n . 3 , p . 11 9 –
1 3 3 , 1 9 9 8 .
2 4. Solea s, G.J.; Goldberg, D .M. Pesticides r esidues in unfermen-ted gra pe ju ices and ra w wines: a 5 -yea r su r vey of more tha n 3 0 0 0 pr od u c ts . J o u r n a l o f Wi n e R e s e a r c h , L on do n , v. 11 , n. 3 , p .1 9 7 – 2 0 7 , 2 0 0 0 .
2 5 . Sônego, O .R .; Ga r r ido, L.R . D oença s Fú ngica s. I n: Fa ja r do, T. V. M . ( E d . ) . U v as p a r a p r o c e s s a me n t o f i t o s s a n i d ad e . B r a sília : EMB R APA infor ma çã o tecnológica , 2 0 0 3 . 1 3 1 p. 2 6 . Ta n, S . C . ; Ta n , T. K . ; Wo ng , S .M . ; K h o r , E . T h e ch i t os a n
yield of Zygomycetes a t their optimu m har vesting time. C ar
27 . Terr y, L.A.; J oyce, D.C. Elicitors of indu ced disease resistan-ce in posthar vest horticultu ra l cr ops: a br ief review. Pos
thar-v e s t B io lo g y an d Te c hn o l o g y, Am st er da m, thar-v. 3 2 , n .1 , p. 1 –
1 3 , 2 0 0 4 .
28. Vander, P.; Varum, K.M.; Domard, A.; El-Gueddari, N.E.;, Mo-er schba chMo-er , B.M. Compa r ison of the a bility par tia lly N -ace-tyla ted chitosa ns a nd chitooligosa ccha r ides to elicit r esista n-c e r e a n-c ti o n s i n w he a t le a v e s. P l an t P hy s i o l o g y , U r b a n a , v. 11 8 , p. 1 3 5 3 – 1 3 5 9 , 1 9 9 8 .
