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ATIVIDADE ANTIBIOBILME DO ÓLEO ESSENCIAL DE Cymbopogon martinii CONTRA Salmonella Typhimurium

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Academic year: 2021

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ATIVIDADE ANTIBIOBILME DO ÓLEO ESSENCIAL DE Cymbopogon martinii CONTRA Salmonella Typhimurium

Vanessa SCHUH1; Karine DALLA COSTA2, Marina Leda RIBEIROS2, Saskia BERGAMIN3, Janaina SCHUH2, Sheila Mello da SILVEIRA4;Alessandra Farias MILLEZI5.

1 Graduanda do curso de Engenharia de Alimentos, Instituto Federal Catarinense, Campus Concórdia/SC, Bolsista CNPq; 2 Graduandas do curso de Engenharia de Alimentos, Instituto Federal Catarinense, Campus Concórdia/SC; 3 Estudante do Curso Técnico em Alimentos Integrado ao Ensino Médio, Instituto Federal Catarinense, Campus Concórdia/SC; 4 Co – orientadora, Docente do Instituto Federal Catarinense, Campus Concórdia/SC; 5 Orientadora, Docente do Instituto Federal Catarinense, Campus Concórdia/SC

Introdução

Os biofilmes podem ser definidos como formas de existência microbiana espacial e metabolicamente estruturadas em comunidades embebidas nas matrizes de substâncias poliméricas extracelulares, que liberam o exopolissacarídeo (EPS), imobilizando e protegendo as células. Sua formação provoca alterações fenotípicas nas células planctônicas, que podem ser descritas como estratégias de sobrevivência dos microrganismos em ambientes que estão sujeitos à condições adversas (CONSTERNON et al., 1999; NIKOLAEV, PLAKUNOV, 2007).

As bactérias são as que mais frequentemente produzem biofilme, ainda que algumas apresentem, naturalmente, maior aptidão que outras. Adesão de Salmonella a superfícies de indústrias de alimentos foi o primeiro relato publicado em relação à formação de biofilme por bactérias de origem alimentar (DUGUID, ANDERSON, CAMPBELL, 1966).

Atualmente busca-se o efetivo controle dos biofilmes bacterianos, principalmente em indústrias de alimentos, visto que são mais resistentes a agentes antimicrobianos do que células em estado planctônico e os problemas que causam, tais como a contaminação de alimentos por biotransferência, comprometendo a qualidade final do produto e diminuindo a vida útil de prateleira, podendo afetar a saúde do consumidor. Além disso, as contaminações resultam em consequentes perdas econômicas além da veiculação de toxinfecções alimentares.

Nessa busca por novos agentes antimicrobianos e antibiofilmes, o uso de óleos essenciais (OEs) tem demostrado ser uma alternativa efetiva para controlar o crescimento de bactérias. Os OEs são formados a partir de vias metabólicas secundárias de vegetais e podem ser definidos como misturas complexas de sustâncias voláteis, lipofílicas, geralmente odoríferas e líquidas. Eles podem agir como antibacterianos e contra biofilmes e

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recentemente, há considerável interesse no estudo de materiais vegetais como fontes de novos compostos para transformação em agentes antissépticos (MILLEZI et at., 2012, MILLEZI et al., 2013; NOSTRO et al, 2007).

Diante disso, o objetivo do presente trabalho foi pesquisar a capacidade do antibiofilme do OE Cymbopogon martinii contra a bactéria Salmonella Typhimurium ATCC 14028.

Materiais e Métodos

As análises foram realizadas no laboratório de Microbiologia de Alimentos localizado no Instituto Federal Catarinense, Campus Concórdia, SC.

A bactéria utilizada neste estudo foi Salmonella Typhimurium ATCC 14028. Para a formação de biofilme foi realizada a padronização dos inóculos em aproximadamente 108 CFU/mL (mediante curva de calibração). Os biofilmes foram inoculados em microplacas de polipropileno de 96 cavidades e incubados em shaker orbital (Tecnal, Brasil) a 37 ºC, agitação de 80 rpm, contendo os tratamentos com óleo e o controle positivo contendo apenas a suspensão bacteriana em meio TSB a 2x108 UFC/mL, sem óleo (MILLEZI et al., 2012).

Foram utilizadas as seguintes concentrações de OE de C. martinii: 0,20%, 0,38% e 0,78%, com base em de estudos anteriores (Millezi, 2013).

Após 24 horas, a biomassa dos biofilmes foi quantificada pela análise de Cristal Violeta (CV), de acordo com STEPANOVIC´ et al., (2000). As células aderidas foram fixadas com metanol 99% (15 min), coradas com cristal violeta (5 min), lavadas em água e, por último, foi adicionado ácido acético 33% para leitura a 630 nm em espectofotômetro Elisa (Biotek, USA).

Para quantificação das células viáveis (UFC), estas foram submetidas por 6 minutos ao banho ultrasson (Unique, Brasil). Procedeu-se à diluição seriada das amostras e plaqueamento em superfície de Ágar Triptona de Soja – TSA, utilizando a técnica de microgota. Após 24 horas de incubação realizou-se a contagem das células viáveis em biofilmes.

Para análise estatística utilizou-se ANOVA (Bonferroni), considerando significativo P<0,001. Os dados foram analisados usando o software Prisma (GrafPad Software).

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Resultados e Discussão

Diversos mecanismos têm sido propostos para explicar a atividade antimicrobiana dos OEs. De modo geral, entende-se que a inibição do crescimento microbiano pelos OEs seja devida ao dano causado à integridade da membrana celular pelos componentes lipofílicos do OE, o que acaba por afetar a manutenção do pH celular e o equilíbrio de íons inorgânicos, causando danos à célula, diminuindo seu crescimento (PETER, 2004).

De acordo com a figura 1 houve redução significativa (P<0,001) das células viáveis em biofilme nas três concentrações utilizadas. A concentração de 0,38% foi a que obteve maior redução, sendo esta de 3,47 log10 UFC.cm-2.

Conforme mostra a Figura 2, Salmonella Typhimurium aderiu à superfície, mas não demostrou expressiva produção de biomassa. A redução foi significativa (P<0,001) nas concentrações 0,38% e 0,78%.

Figura 1 – Células viáveis em biofilme. Os valores são referentes à média de três repetições e as barras indicam o desvio padrão. *P < 0,001 de acordo com ANOVA.

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Castelijn et al. (2013) também observaram a formação do biofilme de Salmonella spp.

em diferentes superfícies, onde várias cepas mostraram habilidade para formar biofilme em superfície de poliestireno.

Knowles et al. (2005) avaliaram a ação antimicrobiana do carvacol (componente ativo do orégano) em diferentes estágios do biofilme multiespécie desenvolvido por S. aureus e S.

Thphimurium e observaram redução de 3 Log UFC do biofilme de S. Typhimurium.

No presente estudo, houve redução das células viáveis (P<0,001). A maior redução ocorreu na concentração de 0,38% de OE, sendo esta de 3,47 log10 UFC.cm2. A diminuição da produção de biomassa também foi significativa (P<0,001) nas concentrações 0,38% e 0,78%.

Conclusões

A capacidade apresentada pelo OE de C.martinii em inibir o crescimento bacteriano permite que o mesmo seja utilizado na indústria de alimentos evitando o desenvolvimento de biofilmes em superfícies abióticas, sendo uma alternativa frente a microrganismos patogênicos, pois não apresentam risco de devolver resistência, sendo esta uma característica benéfica.

Figura 2 – Quantificação de biomassa. Os valores são referentes à média de três repetições e as barras indicam o desvio padrão. *P < 0, 001 de acordo com ANOVA.

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Referências

CASTELIJN, G. A.A.; PARABIRSING, J. A.; ZWIETERING, M.H.; MOEZELAAR, R.;

ABEE,T. Surface behaviour of S.Typhimurium, S. Derby, S. Brandenburg and S.Infantis.

Veterinary Microbiology. v. 161, p. 305-314, 2013.

DUGUID, J. P., ANDERSON, E. S., & CAMPBELL, I. Fimbriae and adhesive properties in Salmonellae. Journal of Pathology and Bacteriology. London, n. 92, v.1, 107-138, 1966.

KNOWLES, J. R.; ROLLER, S.; MURRAY, D. B.; NAIDU, A.S. Antimicrobial action of carvacrol at different stages of dual-species biofilm development by Sthaphylococcus aureus and Salmonella eterica sorovar Typhimurium. Applied and Environmental microbiology, Washington, v. 71, n. 2, p. 797 – 803, Feb. 2005.

MILLEZI, A. F., CARDOSO, M. G., ALVES, E., PICCOLI, R. H. Reduction of Aeromonas hidrophyla biofilm on stainless stell surface by essential oils. Brazillian Journal of Microbiology, São Paulo, (in press), 2013.

MILLEZI, F. M., PEREIRA, M. O., BATISTA, N. N., CAMARGOS N., AUAD I., CARDOSO, M. D. G. AND PICCOLI, R. H. Susceptibility of monospecies and dual-species biofilms of Staphylococcus aureus and Escherichia coli to essential oils. J. Food Saf. 32, 351–

359, 2012.

NIKOLAEV, Y. A., PLAKUNOV, V. K. Biofilm -“city of microbes” or an analogue of multicellular organisms? Microbiology. 2007; 76(2): 149-63.

NOSTRO, A.; ROCCARO, A.S.; BISIGNANO, G.; MARINO, A..; CANNATELI, M.A.;

PIZZIMENTI, F.C.; CIONI, P.L.; PROCOPIO, F.; BLANCO, A.R. Effects of oregano, carvacrol and thymol on Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis biofilms.

Journal of Medical Microbiology, Edinburgh, v. 56, n. 4, p. 519-523, 2007.

PETER, K. V. Handbook of herbs and spices. v. 2. Cambridge: Woodhead Publishing Limited; 2004.

STEPANOVIC, S., VUKOVIC, D., DAVIC, I., SAVIC´, B. and SVABIC-VLAHOVIC, M.

2000. A modified microtiter-plate test for quantification of staphylococcal biofilm formation.

J. Microb.Meth. 40, 175–179.

Agradecimentos: CNPQ e Instituto Federal Catarinense.

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