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Blastocrithidia triatomae, Trypanosoma cruzi e Trypanosoma rangeli: tripanosomatídeos de triatomíneos

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Portuguese

ReonFacema. 2018 4(Esp):963-967.

Blastocrithidia triatomae, Trypanosoma cruzi and

Trypanosoma rangeli: triatominae trypanosomatids

Blastocrithidia triatomae, Trypanosoma cruzi e Trypanosoma rangeli:

tripanosomatídeos de triatomíneos

Blastocrithidia triatomae, Trypanosoma cruzi y Trypanosoma rangeli:

tripanosomatídeos de Triatominae

ABSTRACT

Objectives: to review the main biological and epidemiological aspects on Trypanosoma cruzi, Trypanosoma rangeli

and Blastocrithidia triatomae, parasitic tripanosomatids of triatominae, based on specialized literature.

Methodology: searches were held in the main indexes of the area such as Pubmed and Medline. Were selected the

most relevant articles on the subject, which cover the main aspects about triatominae trypanosomatids, their relationships with hosts, geographic distribution and characterization by different approaches. Results: the literature review allowed highlight and clarify the impact of each species in the epidemiology of Chagas disease, transmission cycles related to the disease and intraspecific features of diagnostic value. Conclusions/final considerations: the discovery of two triatominae tripanosomatids species that promote complex syndromes in these insects become relevant the study of these parasites for the better understanding of the T. cruzi cycles of transmission in differents ecotops, where these species overlap, as well as the importance of differential diagnosis in different hosts and the impact of these issues in public health.

RESUMO

Objetivos: revisar os principais aspectos biológicos e epidemiológicos sobre Trypanosoma cruzi, Trypanosoma rangeli

e Blastocrithidia triatomae, tripanosomatídeos parasitos de triatomíneos, com base na literatura especializada.

Metodologia: buscas foram realizadas nos principais indexadores da área como o Pubmed e Medline. Foram

selecionados os artigos mais relevantes sobre a temática, que abordassem os principais aspectos sobre tripanosomatídeos de triatomíneos, suas relações com hospedeiros, distribuição geográfica e caracterização por diferentes abordagens. Resultados: a revisão da literatura permitiu evidenciar e esclarecer o impacto de cada espécie na epidemiologia da Doença de Chagas, ciclos de transmissão relacionados com a doença e características intraespecíficas de valor diagnóstico. Conclusões/considerações finais: A descoberta de duas espécies de tripanosomatídeos de triatomíneos que promovem síndromes complexas nestes insetos tornou relevante o estudo destes parasitos para o melhor entendimento dos ciclos de transmissão do próprio T. cruzi nos mais variados ecótopos, onde estas espécies se sobrepõem, além da importância do diagnóstico diferencial em diferentes hospedeiros e o impacto destas questões em saúde pública.

RESUMEN

Objetivos: para repasar los principales biológicos y epidemiológicos aspectos de Trypanosoma cruzi, Trypanosoma

rangeli y Blastocrithidia triatomae, tripanosomatídeos parásitos de triatominae, basan en la literatura especializada.

Metodología: se realizaron búsquedas en los índices principales de la zona como Pubmed y Medline. Se seleccionaron

los más relevantes artículos sobre el tema, que cubren los principales aspectos acerca de tripanosomatídeos de triatominae, sus relaciones con ejércitos, distribución geográfica y caracterización de diferentes enfoques.

Resultados: la revisión de literatura permitió destacar y aclarar el impacto de cada especie en la epidemiología de la

enfermedad de Chagas, ciclos de transmisión relacionadas con la enfermedad y intraespecíficas características de valor diagnóstico.Consideraciones/conclusiones finales: el descubrimiento de dos especies de tripanosomatídeos de

triatominos que promover síndromes complejos en estos insectos llegan a ser relevantes en el estudio de estos parásitos para la mejor comprensión de los ciclos de transmisión de propio T. cruzi, en ecótopos, donde estas especies se superponen, así como la importancia de la diagnosis diferenciada en distintos hosts y el impacto de estos problemas en la salud pública.

Renato da Silva Júnior¹ Fabrício do Amaral Costa Vieira² James de Castro Barbosa4

Suzete Araújo Oliveira Gomes5

Maria Denise Feder6

963

¹Biomédico. Doutor em Ciências e Biotecnologia – Universidade Federal Fluminense. Pesquisador Colaborador do Laboratório Interdisciplinar de Vigilância Entomológica de Diptera e Hemiptera – Instituto Oswaldo Cruz/Fiocruz, Rio de Janeiro/RJ, Brasil. Professor Assistente da Faculdade de Ciências Biológicas e da Saúde da Universidade Iguaçu, Nova Iguaçu/RJ, Brasil. renatojr@ioc.fiocruz.br

²Médico Veterinário. Discente da Faculdade de Medicina da Universidade Federal Fluminense, Rio de Janeiro/RJ, Brasil.

fabriciovieira.med@gmail.com

4Fisioterapeuta. Discente da Faculdade de Medicina da Universidade Iguaçu, Nova Iguaçu/RJ, Brasil. jamescastrobarbosa@gmail.com 5Bióloga. Doutora em Biologia Parasitária – Instituto Oswaldo Cruz/Fiocruz. Professora Adjunta do Instituto de Biologia da Universidade

Federal Fluminense, Niterói/RJ, Brasil. suzetearaujo@id.uff.br

6Bióloga. Doutora em Biologia Celular e Molecular – Instituto Oswaldo Cruz/Fiocruz. Professora Associada da Universidade Federal

Fluminense, Niterói/RJ, Brasil. mdfeder@id.uff.br Descriptors Trypanosomatina. Triatominae. Chagas disease.. Descritores Trypanosomatina. Triatominae. Doença de Chagas. Descriptores Trypanosomatina. Triatominae. Enfermedad de Chagas. Sources of funding: No Conflict of interest: No

Date of first submission: 2017-12-19 Accepted: 2018-01-23

Publishing: 2018-05-11

Corresponding Address Renato da Silva Júnior

Laboratório Interdisciplinar de Vigilância Entomológica de Diptera e Hemiptera – Instituto Oswaldo Cruz/Fiocruz - Pavilhão Carlos Chagas. Av. Brasil, 4365 – Manguinhos, Rio de Janeiro/RJ, Brasil. Cep 21.040-360

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INTRODUÇÃO

Blastocrithidia triatomae Cerisola, Del-Prado, Rohwedder & Bozzini 1971 identificada na Argentina parasitando o trato intestinal de Triatoma infestans Klug 1834, (Hemiptera, Reduviidae) mantidos em laboratório. Resultados discordantes quanto ao uso de T. infestans em xenodiagnósticos insuflaram uma investigação detalhada destes triatomíneos, revelando parasitismo de B.

triatomae(1,2). Infecções naturais em outros triatomíneos

foram observadas, obtendo-se dados preliminares sobre o diagnóstico morfológico diferencial da espécie(3,4). O

parasita possui (sensu Hoare & Wallace 1966) epimastigotas e micromastigotas (“cistos flagelares”), estes dimórficos: escleromastigotas e “bacillus-like”(1,5).

Quando a condensação do citoplasma é extrema, a célula possui dimensões diminutas e morfologia semelhante a um bacilo, caracterizando o segundo tipo de cisto flagelar(1,6,7). Os triatomíneos se infectam após a ingestão

dos parasitos por práticas coprofágicas ou canibalismo, já que seus cistos, eliminados pelas fezes do inseto, podem estar viáveis por 3 anos(8,9). No estômago, epi- e

micromastigotas não sofrem diferenciação, chegando ao intestino médio, onde o excistamento pode ocorrer de 12-24 h após a ingestão(10). O parasita coloniza todo o

trato digestório posterior, apresentando alto tropismo pelas porções médias do intestino(11). B. triatomae é

patogênica para triatomíneos, assim como T.

rangeli(12,13), causando uma complexa síndrome que

resulta em alterações diversas no ciclo biológico e fisiologia dos insetos do gênero Triatoma e

Dipetalogaster, mas não em insetos do gênero Rhodnius (1,9,14).

Trypanosoma (Schyzotrypanum) cruzi Chagas,

1909, o agente etiológico da Tripanossomíase Americana foi descoberto parasitando o tubo digestivo de

Panstrongylus megistus Berg 1879 (Hemiptera, Reduviidae). Carlos Chagas observou posteriormente o parasito em seres humanos, mas a primeira infecção relatada em vertebrados foi em Felis catus Linnaeus 1798 (Mammalia, Felidae). Ao longo de estudos mais abrangentes, a espécie foi detectada em diversos hospedeiros nas Américas do Norte, Central e outros países da América do Sul(15-18). Infecções naturais foram

reportadas em hemípteros dos gêneros Rhodnius,

Triatoma e Eratyrus. Carrapatos e cimicídeos também

foram incriminados como vetores potenciais(17,19).

Estudos posteriores identificaram T. cruzi em uma diversidade de mamíferos. O flagelado é transmitido vetorialmente aos vertebrados(18). Os insetos se infectam

durante o repasto sanguíneo contaminado com o parasito. No estômago, se diferenciam em esferomastigotas. O estágio epimastigota é encontrado no intestino médio e posterior. Na ampola retal encontra-se o estágio tripomastigota metacíclico, infectante ao hospedeiro vertebrado, onde a transmissão ocorre através da eliminação de fezes e urina contaminadas com metacíclicos, que penetram através do local da picada ou qualquer solução de continuidade da pele, entrando em contato com células do Sistema Fagocítico Mononuclear, diferenciando-se em amastigotas. Estas formas se multiplicam por divisão binária simples, diferenciando-se em tripomastigotas, que são liberados pela célula hospedeira, percorrem a circulação sanguínea, refazendo o ciclo. Podem ainda serem destruídos por células do sistema imune ou ingeridos por insetos hematófagos, iniciando o ciclo extracelular (19,20). As populações de T. cruzi são extremamente heterogêneas, e sua diversidade

de hospedeiros contribui em muito para este caráter, atuando como filtros biológicos na natureza. Esta heterogeneidade promove variações nas manifestações clínicas da Doença de Chagas (Miles et al 1978, Stuart et

al 2008). Estudos buscam correlacionar a diversidade

genotípica e fenotípica da espécie com as manifestações clínicas e seus ciclos de transmissão. Recentemente, aspectos ecológicos, epidemiológicos e evolutivos da espécie foram concatenados em uma proposta consensual, baseadas em estratégias moleculares, na qual o parasito foi segregado em 6 grupos(23). Ao longo da

história evolutiva de T. cruzi, as infecções ocorriam em caráter enzoótico, restrita a animais silvestres(24). As

atividades depredatórias humanas promoveram o desequilíbrio ecológico dos ciclos de transmissão, onde os triatomíneos passaram a veicular no domicílio e peridomicílio. Como resultado, temos então novos perfis associados: (a) silvestre, entre triatomíneos e animais silvestres; (b) peridomiciliar, por animais do entorno de residências e vetores associados; (c) domicílio,

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associados ao homem, animais sinantrópicos e insetos domiciliados (18,25).

Trypanosoma (Herpetosoma) rangeli Tejera,

1920 foi descoberto na Venezuela e se sobrepõe à distribuição geográfica de T. cruzi. Desde então, seu diagnóstico diferencial se tornou extremamente relevante(13,17,26). Triatomíneos foram encontrados

naturalmente infectados com o flagelado, considerado não patogênico para vertebrados, mas gerando distúrbios generalizados em seus vetores, similares à síndrome causada por B. triatomae em T. infestans(17,27). O parasito

é transmitido aos vertebrados pela picada do inseto. Após a ingestão de sangue contaminado com tripomastigotas, os parasitas diferenciam-se em epimastigotas que se multiplicam por divisão binária no intestino. Formas epimastigotas e tripomastigotas são encontradas em todas as porções intestinais e nas fezes. A adesão epitelial é fundamental no ciclo, e esta ocorre, essencialmente, pela membrana perimicrovilar. A invasão epitelial subsequente se dá, essencialmente, por reconhecimento prévio, induzido por células específicas do tecido(28,29). Invadem a hemocele, via intestino, por

lesão epitelial, invasão pelo espaço intercelular ou por vacúolos endocíticos(30). Na hemolinfa, são encontrados

epimastigotas em reprodução simples ou múltipla, tripomastigotas na forma livre ou no interior de

hemócitos, principalmente plasmócitos

(esferomastigotas também podem ser encontradas no seu interior), além de alguns metacíclicos. Os parasitas interagem com o sistema imune dos insetos, inibindo a microagregação e atividade fagocítica dos hemócitos, além de efeitos sobre a atividade do sistema profenoloxidase, de lisozimas e fatores tripanolíticos(30).

O caráter dimórfico dos epimastigotas de T. rangeli (curtos ou longos) e a linhagem evolutiva da cepa (KP1+/KP1-) é fundamental nos processos de escape da vigilância imune e invasão nos hemócitos(31-33). As formas

epimastigotas aderem ao epitélio das glândulas salivares através do flagelo e do corpo, etapa dependente de fatores moleculares que atuam como ligantes(34). O

parasito alcança a luz da glândula, atravessando o parênquima por vacúolos, onde diferenciando-se em metacíclicos que contaminam a saliva do inseto (35,36). Os

ciclos de transmissão estão diretamente relacionados

com a competência vetorial do inseto, decorrente de um processo de co-evolução entre a espécie do triatomíneo e a linhagem do parasito. Recentemente, as cepas de T.

rangeli foram segregaradas em dois grandes grupos

genotípicos representativos da diversidade de minicírculos de kDNA: KP1+ e KP1-(33). Posteriormente,

observou-se a existência da correlação direta de co-evolução entre linhagem do parasita e o grupo específico do inseto, e que espécies agrupadas como KP1+ só infectam o genótipo R. robustus e KP1- o genótipo R.

pictipes(37-39). T. rangeli compartilha com T. cruzi os

mesmos hospedeiros vertebrados, inclusive o homem. Entretanto, no hospedeiro vertebrado, a infecção é considerada subpatente. No homem, a baixa parasitemia pode durar até 18 meses; nos demais vertebrados, é variável. Não está demostrada, ainda, a fase reprodutiva desta espécie no hospedeiro vertebrado, embora alguns estudos tenham observado estágios de divisão presentes no sangue de roedores e no homem(13).

REFERÊNCIAS

1. Schaub GA 1988. Developmental time and mortality in larvae of the Reduviid bugs Triatoma infestans and Rhodnius prolixus after coprophagic infection with Blastocrithidia triatomae (Trypanosomatidae). J Invert

Pathol 51: 23-31.

2. Cerisola JA, Del-Prado CE, Rohwedder R, Bozzini JP 1971. Blastocrihtidia triatomae n. sp. found in Triatoma

infestans from Argentina. J Protozool 18(3): 503-506.

3. Hubsch R, Nuñez V, Mora E, Carrasquero B 1977.

Blastocrithidia triatomae torrealbai n. subsp.,

encontrado em Triatoma maculata (hemeiptera, Reduviidae) de Venezuela. Bol Direc Malariol San

Ambient 36(1): 14-19.

4. Rocha-e-Silva EO, Pattoli DGB, Correa RR, Andrade JCR

1977. Observações sobre o encontro de

tripanosomatídeos do gênero Blastocrithidia, infetando naturalmente triatomíneos em insetário e no campo. Rev

Saúde Publ S Paulo 11: 87-96.

5. Hoare CA & Wallace FG 1966. Development stages of trypanosomatid flagellates: a new terminology. Nature 212: 1385-1386.

(4)

Portuguese

ReonFacema. 2018 4(Esp):963-967.

6. Mehlhorn H, Schaub GA, Peters W, Haberkorn A 1979. Electron microscopic studies on Blastocrithidia

triatomae Cerisola et al 1971 (Trypanosomatidae). Tropenmed Parasitol 30: 289-300.

7. Reduth D, Schaub GA, Pudney M 1989. Cultivation of

Blastocrithidia triatomae (Trypanosomatidae) on a cell

line of its host Triatoma infestans (Reduviidae). Parasitology 98: 387-393.

8. Schaub GA, Böker CA, Jensen C, Reduth D 1989. Cannibalism and coprophagy are modes of transmission of

Blastocrithidia triatomae (Trypanosomatidae) between

triatomines. J Protozool 36 (2): 171-175.

9. Schaub GA, Reduth D, Pudney M 1990. The pecuiliarities of Blastocrithidia triatomae. Parasitol

Today 6 (11): 361-363.

10. Schaub GA & Pretsch M 1981. Ultrastructural studies on the excystment of Blastocrithidia triatomae (Trypanosomatidae). Trans R Soc Med Hyg 75(1): 168-171. 11. Schaub GA & Böker CA 1986. Scanning electron microscopic studies of Blastocrithidia triatomae (Trypanosomatidae) in the rectum of Triatoma infestans (Reduviidae). J Protozool 33(2): 266-270.

12. Schaub GA & Jensen C 1990. Development time and mortality of the redviid bug Triatoma infestans with differential exposure to coprophagic infections with

Blastocrithidia triatomae (Trypanosomatidae). J Invert Pat 55: 17-27.

13. D’Alessandro 1976. Biology of Trypanosoma (Herpetosoma) rangeli Tejera 1920. In: WHR Lumdsen & DH Evans (eds), Biology of Kinetoplastida, vol I, Academic Press, London, New York.

14. Schaub GA & Breger B 1988. Pathological effects of

Blastocrithidia triatomae (Trypanosomatidae) on the

reduviid bugs Triatoma sordida, T. pallidipennis and

Dipetalogaster máxima after coprofagic infection. Med Vet Entomol 2: 309-318.

15. Chagas C 1909. Nova tripanossomíase humana: Estudos sobre a morfologia e o ciclo evolutivo do

Schizotrypanum cruzi n. gen., n. sp., agente etiológico

de nova entidade mórbida do homem. Mem Inst Oswaldo

Cruz. 1: 159-218.

16. Brener Z & Chiari E 1963. Variações morfológicas observadas em diferentes amostras de Trypanosoma

cruzi. Rev Inst Med Trop São Paulo 5: 220-224.

17. Hoare CA 1972. The Trypanosomes of mammals. A Zoological Monograph, Blackwell Scientific Pulblications, Oxford, 722 pp.

18. Barreto MP & Ribeiro RD 1979. Reservatórios silvestres do Trypanosoma (Schyzotrypanum) cruzi Chagas 1909.

Rev Inst Adolfo Lutz 39: 25-36.

19. Brumpt E 1912. Le Trypanosoma Cruzi évolue chez

Conorhinus megistus, Cimex lectularius, Cimex Boueti et Ornithodorus moubata. Cycle évolutif de ce parasite. Bull Soc Pathol Exot 5: 360-367.

19. Vickerman K 1985. Development cycle and biology of pathogenic trypanosomes. Brit Med Bull 1985. 41: 105-114.

20. Buscaglia CA, Di Noia JM 2003. Trypanosoma cruzi clonal diversity and the epidemiology of Chagas' disease.

Microb Infect 5(5): 419-427.

21. Miles MA, Souza A, Povoa M, Shaw JJ, Lainson R, Toye PJ 1978. Isozymic heterogeneity of Trypanosoma cruzi in the first autochthonous patients with Chagas' disease in Amazonian Brazil. Nature. 272: 819-821.

22. Stuart K, Brun R, Croft S, Fairlamb A, Gürtler RE, McKerrow J, Reed S, Tarleton R 2008. Kinetoplastids: related protozoan pathogens, different diseases. J Clin

Investig 118(4): 1301-1310.

23. Zingales B, Andrade SG, Briones MRS, Campbell DA, Chiari E, Fernandes O, Guhl F, Lages-Silva E, Macedo AM, Machado CR, Miles MA, Romanha AJ, Sturm NR, Tibayrenc M, Schijman AG 2009. A new consensus for Trypanosoma

cruzi intraespecific nomenclature: second revision

meeting recommends TcI to TcVI. Mem Inst Oswaldo Cruz 104(7): 1051-1054.

24. Carcavallo RU, Curto de Casas SI, Sherlock IA, Galíndez-Girón I, Jurberg J, Galvão C, & Noireau F 1999. Geographical distribution and alti-latitudinal dispersion.

Atlas of Chagas disease vectors in the Americas, 3,

747-792.

25. Coura JR 2007. Chagas disease: what is known and what is needed-a background article. Mem Inst Oswaldo

Cruz 102 Suppl (1):113-122.

26. Tejera E 1920. Um nouveau flagellé de Rhodnius

prolixus, Trypanosoma (ou Crithidia) rangeli n. sp. Bull Soc Pathol Exot 13: 527-530.

27. Eichler S & Schaub GA 2002. Development of symbionts intriatominae bugs and the effects of

(5)

Portuguese

ReonFacema. 2018 4(Esp):963-967.

infections with trypanosomatids. Exp Parasitol 100: 17-27.

28. Oliveira MA & De Souza W 2001. Na electron microscopic study of penetration by Trypanosoma rangeli into mid-gut cells of Rhodnius prolixus. J Invert Pathol 77: 22-26.

29. Gomes SAO, Graciano G, Nogueira NFS, de Souza W, Garcia ES, Azambuja P 2002. Effects of gamma irradiation on the development of Trypanosoma rangeli in the vector

Rhodnius prolixus. J Invert Pathol 79: 86-92.

30. Garcia ES, Castro DP, Figueiredo MB, Azambuja P 2012. Parasite-mediated interactions within the insect vector: Trypanosoma rangeli strategies. Parasit Vect 5: 105-111.

31. Mello CB, Garcia ES, Ratcliffe NA, Azambuja P 1995.

Trypanosoma cruzi and Trypanosoma rangeli: interplay

with hemolymph components of Rhodnius prolixus. J

Invert Pathol 65: 265-268.

32. Gomes SAO, Feder D, Thomas NE, Garcia ES, Azambuja P 1999. Rhodnius prolixus infected with

Trypanosoma rangeli: in vivo and in vitro experiments. J Invert Pathol 73: 289-293.

33. Vallejo GA, Guhl F, Carranza JC, Lozano LE, Sánchez JL, Jaramillo JC, Gualtero D, Castañeda N, Silva JC, Steindel M 2002. kDNA markers define two major

Trypanosoma rangeli lineages in Latin-America. Acta Trop 81(1): 77-82.

34. Stark KR & James AJ 2008. The salivar glands of disease vector. In: Biology of Disease Vector, Beaty BJ & Marguart WC (eds), New York, University Press.

35. Grewal MS 1957. Pathogenicity of Trypanosoma

rangeli Tejera, 1920 in the invertebrate host. Exp Parasitol.1957 6(2): 123-130.

36. Cuba Cuba CA 1998. Review of biological and diagnostic aspects of Trypanosoma (Herpetosoma)

rangeli. Rev Soc Bras Med Trop 31(2): 207-220.

37. Abad-Franch F, Monteiro FA 2007. Biogeography and evolution of Amazonian triatomines (Heteroptera: Reduviidae): implications for Chagas disease surveillance in humid forest ecoregions. Mem Inst Oswaldo Cruz 102: 57-70.

38. Urrea DA, Guhl F, Herrera CP, Falla A, Carranza JC, Cuba-Cuba CA 2011. Sequence analysis of the spliced-leader intergenic region (SL-IR) and Random Amplified

Polymorphic DNA (RAPD) of Trypanosoma rangeli strains isolated from Rhodnius ecuadoriensis, R. colombiensis, R.

pallescenses and R. prolixus suggests a degree of

co-evolution between parasites and vectors. Acta Trop 120: 59-66.

39. Pulido XC, Pérez G, Vallejo GA 2008. Preliminary characterization of a Rhodnius prolixus hemolymph trypanolytic protein, this being a determinant of Trypanosoma rangeli KP1 (+) and KP1 (-) subpopulations’ vectorial ability. Mem Inst Oswaldo Cruz, 103: 172-179.

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