READ HIGHLIGHTED CHANGES

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bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab

3000-1172 1 x 96 TESTS

3000-1173 5 x 96 TESTS (480)

ELISA test for the detection of antibodies to Human Immunodeficiency Viruses (HIV) type 1 (group M, O) or type 2 and HIV-p24 antigen in human serum or plasma samples in clinical laboratories and as a first-line screening assay in blood centers.

Summary

Serological evidence of infection with HIV may be obtained by testing for presence of HIV antigens or antibodies in serum or plasma of individuals suspected for HIV infection. Antigen can generally be detected during both acute phase and the symptomatic phase of AIDS. The antibodies to HIV-1 and/or HIV-2 can be detected throughout virtually the whole infection period, starting at or shortly after the acute phase and lasting till the end stage of AIDS. HIV fourth generation ELISA allows the simultaneous determination of HIV p24 antigens and HIV-1/HIV-2 antibodies reducing therefore the diagnostic window and allowing an early diagnosis of acute HIV infection. Apart from sexual transmission, the principal route of infection with HIV is blood transfusion. HIV can be present in both cellular and cell-free fractions of human blood. Therefore, all donations of blood or plasma should be tested due to the risk of HIV transmission through contaminated blood. This can be effectively achieved by testing for antibodies to HIV and p24 antigen by using a highly sensitive ELISA test.

Principle

bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab is a fourth generation enzyme immunoassay for the simultaneous qualitative detection of

HIV p24 antigen and antibodies to HIV-1 (groups M and O) or HIV-2. Antigens representing epitopes of HIV-1 gp41 and HIV-2 gp36 are coated onto microplate wells together with monoclonal antibodies against HIV p24. In the first step of the immunoassay, serum or plasma samples are added to these wells along with the sample diluent containing biotinylated anti-p24 antibodies. If specific HIV-1 and/or HIV-2 antibodies are present in the sample, they will form stable complexes with the HIV antigens attached to the wells. If p24 antigen is present in the sample, it will bind simultaneously to the antibodies in the well and to the biotinylated antibodies present in the sample diluent. The microwells are then washed to remove unbound serum proteins. A set of biotinylated antigens are added to the wells, these antigens will bind to the specific captured antibodies. After a second wash to remove unbound conjugate, a second conjugate of Streptavidin-HRP is added to the wells. In wells containing the “sandwich” immunocomplex, the colourless Chromogen is oxidised by the bound conjugate to a blue coloured product. The blue colour changes to yellow after stopping the reaction with sulphuric acid. The intensity of colour can be measured and is proportional to the concentration of anti-HIV 1/2 antibodies or HIV p24 antigen present in the sample. Wells containing negative samples remain colourless.

Components

1. MCPL MICROPLATE:

12 x 8 wells coated with antigens representing epitopes of HIV-1 gp41 and HIV-2 gp36 and monoclonal antibodies against p24. Plates are sealed into aluminum pouch with desiccant.

2. CONTROL + 1 HIV-1 POSITIVE CONTROL:

Diluted human serum containing antibodies to HIV-1 (Heat inactivated). Contains 0.1% ProClinTM_{300 as}

preservative. Ready to use.

3. CONTROL + 2 HIV-2 POSITIVE CONTROL:

Diluted human serum containing antibodies to HIV-2 (Heat inactivated). Contains 0.1% ProClinTM 300 as preservative. Ready to use.

4. CONTROL + Ag HIV POSITIVE CONTROL p24:

Diluted human serum spiked with recombinant HIV-1 p24 antigen. Contains 0.1% ProClinTM 300 as preservative. Ready to use

5. CONTROL – NEGATIVE CONTROL:

Diluted human serum negative for antibodies to HIV-1/2 and HIV p24 antigen. Contains 0.1% ProClinTM 300 as preservative. Ready to use.

6. DIL SAMP SAMPLE DILUENT:

Biotinylated monoclonal antibodies against HIV p24 diluted in Tris-buffer. Contains 0.05% ProClinTM_{300 as}

preservative and red dye. Ready to use.

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BIOKIT, S.A. - Can Malé s/n - 08186 Lliçà d’Amunt - Barcelona - SPAIN 3000-1172_R01_02.2015_eng.docx

7. CONJ 1 CONJUGATE 1 READY TO USE:

Phosphate buffer containing HIV-1 and HIV-2 biotinylated antigens. Contains 0.05% ProClinTM 300 as preservative and blue dye. Ready to use.

8. DIL CONJ 2 CONJUGATE DILUENT 2:

Phosphate buffer containing protein stabilizers, 0.05% ProClinTM_{300 as preservative and yellow dye.}

9. CONJ 2 101X CONCENTRATE CONJUGATE 2 (101X):

Contains peroxidase labelled streptavidin. To be diluted 1:101 in conjugate diluent 2 before use. 10. SUBS TMB SUBSTRATE-TMB:

Contains 3,3', 5,5'-Tetramethylbenzidine (TMB) and hydrogen peroxide. Ready to use. 11. WASH SOLN 25x CONCENTRATE WASHING SOLUTION:

Concentrate PBS buffer pH 7.4 (25x). Contains Tween-20 as detergent, <0.2% ProClinTM 300 as preservative To be diluted 1:25 in distilled or deionised water before use.

12. H2SO4 0.8N STOPPING SOLUTION: 0.8N sulphuric acid. Ready to use. 13. SEALS ADHESIVE SEALS:

To cover the microplate during incubations. 14. BAG RESEALABLE BAG:

For storage of unused strips.

Precautions

bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab is intended for IN VITRO diagnostic use.

For professional use only.

WARNING: The Negative Control, HIV-1 Positive Control, HIV-2 Positive Control, HIV p24 Positive

Control, Sample Diluent, Conjugate 1, Conjugate Diluent 2 and Concentrate Washing Solution contain <0.2% ProClinTM 300 as preservative.

Hazard statements

H317: May cause an allergic skin reaction. Precautionary statements

P280: Wear protective gloves/protective clothing/eye protection/face protection. P302+P352: IF ON SKIN: Wash with plenty of soap and water.

P333+P313: If skin irritation or rash occurs: Get medical advice/attention. P363: Wash contaminated clothing before reuse.

P501: Dispose of contents/container in accordance with local/regional/national/international regulations.

WARNING: POTENTIALLY BIOHAZARDOUS MATERIAL.

All human source material used in the preparation of this product was found to be negative for the presence of HCV antibodies, Treponema pallidum antibodies, hepatitis B surface antigen and HIV 1/2 antibodies (except for the Positive Controls 1 and 2), using a commercial licensed method. Nevertheless, because no test method can offer complete assurance of the absence of infectious agents, this product should be handled with caution:

- Avoid contact of reagents with the eyes and skin. If that occurs, wash thoroughly with water. - Wear gloves.

- Do not pipette by mouth. - Do not smoke.

- Dispose all used materials in a suitable biohazardous waste container. Remains of samples, controls, aspirated reagents and pipette tips should be collected in a container for this purpose and autoclaved 1-hour at 121°C or treated with 10% sodium hypochlorite (final concentration) for 30 min before disposal. (Remains containing acid must be neutralised prior to the addition of sodium hypochlorite).

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Handling instructions:

- Adjust washer to the plate used (flat bottom) in order to wash properly. - Do not mix reagents from different lots.

- Do not use reagents after the expiration date.

- Do not use the reagent if you observed any change in appearance of components included in the kit. - Extreme care should be taken to avoid microbial contamination and cross contamination of reagents. - Use a new pipette tip for each specimen and each reagent.

- Do not exchange reagents from different lots or use reagents from other commercially available kits. The components of the kit are precisely matched for optimal performance of the tests.

- CAUTION - CRITICAL STEP: Allow the reagents and specimens to reach room temperature (20-25°C) before use. Shake reagent gently before use. Return at 2-8°C immediately after use.

- The enzymatic activity of conjugate 2 might be affected by dust and reactive chemical substances like sodium hypochlorite, acids, alkalis etc. Do not perform the assay in the presence of these substances.

- It is very important to keep the Substrate-TMB solution in a well-sealed container and avoid light exposure. - Soaps and/or oxidising agents remaining in containers used for the Substrate-TMB solution can interfere with

the reaction. If glass containers or re-used plastic containers are used, they should be washed with 1N sulphuric or hydrochloric acid, rinsed well with distilled water and dried before use. We recommend using disposable plastic containers.

Storage and stability

The components will remain stable through the expiration date shown on the label if stored at 2-8°C. The bag containing the microplate should be brought to room temperature before opening to avoid condensation in the wells. Once opened the bag, the microplate wells are stable for 3 months at 2-8°C in the plastic bag tightly sealed, along with the silicagel. Discard any microplate sealed without the silicagel. Once diluted, the washing solution is stable for 6 days only if stored at 2-8°C. Do not use diluted washing solutions if stored overnight at room temperature. Once diluted, the conjugate 2 is stable for 30 days at 2-8°C. Store the Substrate-TMB solution in the dark.

Available packaging

- 1 microplate kit (1x96 tests), REF 3000-1172.

Contains: 1 microplate, 1 x 2 mL negative control, 1 x 2 mL HIV-1 positive control, 1 x 2 mL HIV-2 positive

control, 1 x 2 mL HIV-1 p24 positive control, 1 x 14 mL sample diluent, 1 x 25 mL conjugate 1 ready to use, 1 x 0.250 mL concentrate conjugate 2 (101x), 1 x 25 mL conjugate 2 diluent, 1 x 20 mL substrate-TMB, 1 x 12 mL stopping solution, 2 x 50 mL concentrate washing solution, 1 resealable bag and adhesive seals.

- 5 microplates kit (5 x 96 tests), REF 3000-1173.

Contains: 5 microplates, 1 x 4 mL negative control, 1 x 4 mL HIV-1 positive control, 1 x 4 mL HIV-2 positive control, 1 x 4 mL HIV-1 p24 positive control, 1 x 70 mL sample diluent, 1 x 120 mL conjugate 1 ready to use, 1 x 1.2 mL concentrate conjugate 2 (101x), 1 x 120 mL conjugate 2 diluent, 1 x 100 mL substrate-TMB, 1 x 60 mL stopping solution, 3 x 100 mL concentrate washing solution, 1 resealable bag and adhesive seals.

Material required not provided

- Distilled or deionised water. - Disposable gloves and timer.

- Appropriate waste containers for potentially contaminated materials. - Disposable V-shaped troughs.

- Dispensing system and/or pipette (single or multichannel) and disposable pipette tips. - Absorbent tissue or clean towel.

- Dry incubator or water bath, 37 ± 1°C.

- Microplate reader with a 450 nm filter. Reference filter of 620 nm or 630 is advisable. - Manual or automated wash system.

Sample collection

Use fresh serum with or without Serum separator tube (SST), EDTA plasma, Acid-citrate-dextrose (ACD) plasma, Lithium heparin plasma, Sodium heparin plasma, Sodium citrate plasma, Potassium oxalate/sodium fluoride plasma, CPD and CPDA plasma. Other anticoagulants should be evaluated before use. Samples can be stored at 2-8°C for 8 days. For longer periods, samples should be frozen (-20°C). Avoid repeated freezing and thawing (maximum 4 freeze-thaw cycles). Specimens showing visible particulate matter should be clarified by centrifugation. Serum or plasma samples should not be heat inactivated, since that may cause incorrect results.

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Automatic processing

Automated or semi-automated assay may be used with different instruments. It is very important to validate any automated system to demonstrate that the results obtained for samples are equivalent to the ones obtained using the manual assay. It is recommended that the users validate periodically the instrument. If there is any difficulty in the programming and setting of Biokit automatic processors, please contact your distributor.

PROCEDURE Previous operations

Allow all the reagents to reach room temperature (20-25°C) before running the assay. Gently mix all liquid reagents before use.

Check the washing solution concentrate for the presence of salt crystals. If crystals have formed, resolubilize by warming at 37°C until crystals dissolve. Use distilled or deionized water.

Negative and Positive controls should be treated as the samples.

Dilute the washing solution 1:25 in distilled water. If the entire plate is used, add 40 mL of concentrate washing solution (25x) to 960 mL of deionised water. If the entire plate is not used, prepare the proportional volume of solution.

Dilute the concentrated conjugate 2 1:101 with the conjugate diluent 2 according to table 1. For the 1 plate

packaging, if the entire plate is to be used, add 250 µL of concentrate conjugate directly to the bottle containing 25 mL of conjugate diluent. Mix gently.

TABLE 1

Strips required 1 2 4 6 8 10 12

Conjugate diluent 2 mL 2.0 4.0 8.0 12.0 16.0 20.0 25.0

Concentrate conjugate 2 µL 20 40 80 120 160 200 250

Assay procedure

1. Use only the number of strips required for the test. Reserve 7 wells for blank and controls. One well as Blank (e.g. A1), three wells as negative control (e.g. B1, C1, D1) and, at least, one well of each of the positive controls: positive control HIV-1 (e.g. E1), positive control HIV-2 (e.g. F1) and positive control HIV p24 (e.g. G1).

2. Add 100µL of sample diluent to all the wells except the Blank.

3. Add first 100 μl of samples, and last 100 μl of negative and each of the positive controls into their respective wells.

4. Cover the plate with an adhesive seal, mix gently and incubate at 37°C ± 1°C for 60 minutes with a tolerance range of 58 – 65 minutes

5. Remove and discard the adhesive seal. Aspirate the contents of the wells and fill them completely (approximately 350 µL) with the diluted washing solution. Repeat the process of aspiration and washing 4 more times, 5 (five) cycles in total. Ensure that each column of wells soaks for at least 15 seconds before the next aspiration cycle.

6. Transfer 200 µL of conjugate 1 into each well, except the one reserved for the substrate blank. Avoid bubbles upon addition.

7. Cover the microplate with an adhesive seal and incubate at 37°C ± 1°C for 30 minutes with a tolerance range of 28 – 35 minutes.

8. Remove and discard the adhesive seal. Aspirate and wash the wells as in the previous washing step for

3 (three) wash cycles.

9. Transfer 200 µL of working conjugate 2 into each well, except the one reserved for the substrate blank. Avoid bubbles upon addition.

10. Cover the microplate with an adhesive seal and incubate at 37°C ± 1°C for 30 minutes with a tolerance range of 28 – 35 minutes.

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12. Add 150 µL of Substrate-TMB solution to each well, including the blank.

13. Incubate at room temperature (20-25°C) for 30 minutes with a tolerance range of 28 – 35 minutes, protected from direct light exposure

14. Stop the reaction by adding 100 µL of stopping solution in the same sequence and time intervals as for the Substrate-TMB.

15. Blank the reader at 450 nm with the blank well and read the absorbance of each well within 30 minutes. It is recommended to read in bichromatic mode using a 620 - 630 nm reference filter.

Quality control

Results of an assay are valid if the following criteria are accomplished: 1. The Absorbance value of the blank well must be ≤ 0.100.

2. The Absorbance value of the positive controls must be ≥ 0.900 after subtracting the blank. If not the run should be repeated.

3. Each individual absorbance value of the negative control must be ≤ 0.120 after subtracting the blank. If one of the negative control values does not meet the Quality Control criteria, it should be discarded and the mean value calculated again using the remaining two values. If two or more negative control Absorbance values do not meet the Quality Control Range specifications, the test is invalid and must be repeated.

Results

1. Subtract the blank from each of the valid negative controls. Calculate the mean absorbance of the negative control (NCx). Calculate the cut-off value by adding 0.170 to the mean absorbance of the negative control.

Cut-off = NCx + 0.170

Example: NCx = 0.011 cut-off value = 0.011 + 0.170 = 0.181 2. Divide the absorbance of the sample by the cut-off value.

Positive: ratio absorbance/cut-off ≥ 1.0 Negative: ratio absorbance/cut-off < 0.9 Equivocal: ratio absorbance/cut-off ≥ 0.9 < 1.0

Interpretation of results

Negative Results: Specimens with an absorbance to cut-off ratio lower than 0.9 are considered non reactive which indicates that no anti-HIV 1 and/or HIV-2 antibodies or HIV p24 antigen have been detected with

bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab kit.

Positive Results: Specimens giving an absorbance equal to or greater than the cut-off value are considered initially reactive, which indicates that anti-HIV 1/2 antibodies or HIV p24 antigen have probably been detected using

bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab. All initially reactive specimens should be retested in duplicate to confirm the initial result.

Equivocal: Specimens with an absorbance to cut-off ratio between 0.9 and 1.0 are considered equivocal and retesting of these specimens in duplicate is required to confirm the initial results.

- If, after retesting the initially reactive samples, both wells report negative results (S/CO < 0.9), these samples should be considered as non-repeatable positive (or, false positive) and recorded as negative.

- If, after retesting in duplicate, one or both wells report positive results, the final result from this ELISA test should be recorded as repeatedly reactive. Repeatedly reactive specimens can be considered positive for antibodies to HIV 1/2 or p24 antigen, therefore the patient is probably infected with HIV1 or HIV2.

- After retesting in duplicate, samples with values close to the cut-off value should be interpreted with caution and considered as equivocal, or uninterpretable for the time of testing.

- Follow-up, confirmation and supplementary testing of any positive specimen with other analytical system (e.g. WB, PCR) is required. Clinical diagnosis should not be established based on a single test result. It should

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Limitations of the procedure

- Optimal assay performance requires strict adherence to the assay procedure described. Deviation from the procedure may lead to aberrant results.

- As in all sensitive immunoassays, there is the possibility that non-repeatable positive results occur.

- Positive results must be confirmed with another available method and interpreted in conjunction with the patient clinical information.

- Negative results obtained with bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab are considered negative for antibodies to HIV-1/2 and p24 antigen and further testing is not required.

- The prevalence of the marker will affect the assay’s predictive values.

- This assay cannot be used to test pooled (mixed) plasma. bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab has been evaluated only with individual serum or plasma specimens.

- bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab is a qualitative assay and the results cannot be used to measure concentrations of

antibodies to HIV or p24 antigen. This assay cannot distinguish between infections with HIV-1 and HIV-2. - A negative result does not exclude the possibility of exposure or infection with HIV.

Expected results

The number of positive results depends on the disease incidence in the geographic area and the type of tested population. In the world, the HIV incidence in people older than 15 years varies from 0.1% in Australia, New Zeeland and Asia Pacific, 0.3% in Western Europe, North Africa and Middle East, 0.5% in East Europe, Central Asia and Latin America, 0.6% in North America and South Asia and 9% in sub-Saharan Africa. In the same country, incidence also varies enormously according to the tested population. In Western Europe, HIV antibodies prevalence in blood bank donations varies from 0 to 5 cases over 100,000 donations, while the incidence among prisoners, sex workers and drug abusers may easily reach 20% in these risk populations.

Performance characteristics Analytical Sensitivity

The limit of detection has been estimated below 0.5 IU/ml by testing the WHO HIV p24 Antigen, First International Reference NIBSC code 90/636 with two different lots during the internal evaluation. Additionally, the limit of detection has been also estimated below 12.5 pg/ml by testing BIORAD HIV-1 Antigen Standard 72217 with two different lots during the internal evaluation.

Sensitivity

- A total of 537 HIV-1 positive samples were evaluated with bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab, among them: 28 HIV-1

fresh-same-day collected samples, 85 HIV-1 and 4 HIV-1 Subtype O samples in an European reference lab;

380 HIV -1 samples were evaluated at Biokit and 40 HIV-1 non B subtype samples (and at least 3 samples of each HIV-1 subtype) were evaluated in another European reference lab. bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab detected all 537 samples. The sensitivity found was100% (537/537).

- A total of 115 HIV-2 positive samples were evaluated with bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab, among them: 27 HIV-2 samples in an European reference lab and 88 HIV-2 samples were evaluated at Biokit.

bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab detected all 115 samples. The sensitivity found was 100% (115/115).

- A total of 61 HIV-1 p24 Ag positive samples were evaluated also with bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab, among them: 15 samples in an European reference lab, 16 samples were evaluated in another European reference lab and 30 samples at Biokit. bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab detected all 61 samples. The sensitivity found was 100% (61/61).

- Additional sensitivity studies were carried out by testing a total of 31 seroconversion panels at Biokit and a

European reference lab. Results obtained were comparable to the most sensitive commercial method for HIV 1+2 antigen and antibody detection.

- 16 HIV Seroconversion Panels from BBI/Seracare and Zeptometrix were evaluated at Biokit.

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Seroconversion Panel HIV Ag/Abbioelisa

HIV Ag/Ab

Assay HIV Ab Assay HIV p24 antigen NAT First sample detected positive in the panel

BB1-PRB965-n=6 2 2 4 2 1 ZEPT-12007-n=9 4 4 5 ND 4 BBI-PRB954-n=7 6 6 7 6 4 BBI-PRB932-n=9 4 ND 4 4 4 ZEPT-9017-n=11 1 4 3 1 1 ZEPT-9014-n=7 1 1 3 1 1 ZEPT-9012-n=8 5 6 7 5 1 ZEPT-9032-n=14 8 8 7 8 1 ZEPT-6243-n=10 7 7 8 7 1 ZEPT-9022-n=9 7 8 9 7 1 ZEPT-9018-n=11 9 9 10 9 1 BBI-PRB939-n=9 6 ND 8 6 5 BBI-PRB956-n=5 4 4 5 4 2 BBI-PRB945-n=6 3 4 4 3 1 BBI-PRB955-n=4 2 2 4 2 1 BBI-PRB958-n=6 3 3 5 3 1 - In the previous table it can be observed the first sample detected as positive in each panel evaluated with

bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab in comparison with 4th Generation assays (Ag/Ab Assays), 3rd Generation assays

(Ab Assays), assays for HIV p24 antigen and HIV RNA NAT assays. bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab showed excellent sensitivity to detect early antigen or antibodies in 16 HIV Seroconversion Panels evaluated.

- Another study was conducted to assess the sensitivity in 32 early seroconversion samples. These type of samples are characterized to be positive to the presence of HIVp24 Ag and/or positive by NAT (Nucleic Acid Testing), not detected by all HIV 3rd generation methods and to be negative or Indeterminate by Western-Blot methods. bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab detected all 32 samples. The sensitivity found was 100% (32/32).

- Finally, 50 cell culture supernatans from HIV cell cultures, including different HIV-1 subtypes and HIV-2 were evaluated in a European Reference Lab. bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab detected all 50 samples. The sensitivity found was100% (50/50).

Specificity

The specificity was evaluated by testing a total of 6465 unselected blood donors' samples at three different sites. - In the first site 3045 unselected samples including 684 first donors were tested. From this total, 4 samples

were reactive. The specificity obtained in this study was 99.87% (3041/3045).

- In the second site 500 unselected samples from Blood Bank were tested. All 500 samples were negative. The specificity was 100% (500/500)

- An internal evaluation of 2920 unselected samples from Blood Bank was performed. From this evaluation, 6 samples were reactive. The specificity obtained in this study was 99.79%. (2914/2920)

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Evaluation 1 (3045 sera)

Initial Reactive Repeated Reactive False Positive Specificity %

Serum 6 4 4 99.87 (95% C.I.: 99.66 - 99.96)

Evaluation 2 (500 sera)

Serum 0 0 0 100 (95% C.I.: 98.89 - 100)

Internal Evaluation (1000 sera + 1920 plasmas)

Plasma 8 6 6 99.69 (95% C.I.: 99.32 - 99.89)

Serum 1 0 0 100 (95% C.I.: 99.44 - 100)

Total 9 6 6 99.79 (95% C.I.: 99.55 - 99.93)

- In addition 200 samples from hospitalized patients have been tested and compared to a reference test. 194 samples were found negative by both tests and six samples were reactive. The six samples were also

reactive with other ELISA tests. A specificity of 100% was obtained in this study (194/194).

Precision

Intra-assay reproducibility:

The coefficient of variation obtained for the absorbance values of a HIV-1 positive sample assayed in a minimum of 40 replicates was 3.42%, 5.79% and 4.71% in three lots studied.

The coefficient of variation obtained for the absorbance values of a HIV-2 positive sample assayed in a minimum of 40 replicates was 6.39%, 5.91% and 8.38% in three lots studied.

The coefficient of variation obtained for the absorbance values of a HIV-1 p24 positive sample assayed in a minimum of 40 replicates was 4.08%, 3.44% and 3.71% in three lots studied.

Inter-assay reproducibility:

Four positive samples of different levels were tested in 15 different assays. The coefficients of variation obtained for the ratios absorbance/Cut-off of the four samples were 4.87%, 5.37%, 7.49% and 7.54%.

Interferences

Interference by addition

No interference has been found for haemoglobin (500 mg/dl), bilirubin (20 mg/dl), human Albumin (5 g/dl) and triglycerides (500 mg/dl).

Cross-reactivity

To evaluate possible interferences, 125 potential cross-reacting specimens were analyzed. Among those samples, 4 samples (RF+), 4 samples positive for anti-nuclear antibodies (ANA), 5 samples Mononucleosis, 89 samples from other related infectious diseases and 23 samples from pregnant women. No evidence of cross reactivity was found in the samples evaluated. The 2 anti-Toxoplasma IgM samples that tested positive were also positive by other HIV assays.

Potential interfering samples = 125 RF (Rheumatoid factor) ‐ 4 Elevated IgG ‐ 4 ANA (anti‐Nuclear Antibodies) ‐ 4 Elevated IgM ‐ 5 Mononucleosis ‐ 5 HSV 1 IgG (Herpes Simplex Virus) ‐ 5 Pregnant women‐ 23 (including 7 multiparous) HSV 2 IgG (Herpes Simplex Virus) ‐ 4 Syphilis Ab ‐ 6 anti‐CMV IgG (Cytomegalovirus) ‐ 5 anti‐EBV (Epstein‐Barr Virus) ‐ 3 anti‐CMV IgM (Cytomegalovirus) ‐ 7 anti‐Rubella (Rubella Virus) ‐ 4 anti‐HTLV (Human T‐lymphotropic Virus) ‐ 4 anti‐VZV IgG (Varicela Zoster Virus) ‐ 2 anti‐HCV (Hepatitis C Virus) ‐ 8 anti‐VZV IgM (Varicela Zoster Virus) ‐ 2 anti‐E.coli (Escherichia coli) ‐ 5 anti‐Toxoplasma IgG (T. gondii) ‐ 10 HBsAg (Hepatitis B Antigen) ‐ 8 anti‐Toxoplasma IgM (T. gondii) ‐ 7

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bioelisa: Troubleshooting guide

Problem Possible

causes

Solution

1. Controls out of validation.

1a. Incorrect temperature,

timing or pipetting. Check procedure. Repeat assay.

1b. Improper preparation of reagents, error of dilution, reagents not well mixed.

Check procedure. Repeat assay.

1c. Cross-contamination of

controls. Pipette carefully. Do not interchange caps. Repeat assay.

1d. Incorrect reading filter. Check that the wavelenght of the filter used is 450 nm. If no reference 620 - 630 nm is used, absorbance increases approximately 0.050.

1e. Interference in the optical pathway.

Check the reader. Clean or dry the bottom of microplate. Check for air bubbles. Repeat reading.

1f. Used components from

different lots. Do not use components from different lots as they are adjusted for each batch released.

1g. Expired reagents. Check the kit expiry date. Use a non- expired kit.

2. No colour or only a light colour developed at the end of the assay.

2a. One or more reagents not added or added in wrong sequence.

Check procedure. Repeat assay.

2b. Inactive conjugate. Wrong dilution of concentrate conjugate 2. Improper conservation.

Check for contamination. Check procedure. Repeat assay.

2c. Inactive microplate:

Improper conservation. Always keep unused strips in the bag very well closed, with the desiccant inside. Repeat assay.

2d. Inactive Sustrate-TMB:

Improper conservation. The container used affects Substrate-TMB stability, cross-contamination with the stopping solution.

Use disposable containers or wash with acid or ethanol and rinse with deionised water before re-use. Check procedure. Repeat assay.

2e. Too cold reagents. Let reagents reach room temperature before use.

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bioelisa: Troubleshooting guide

Problem Possible

causes

Solution

3. Too much colour in all microplate wells.

3a. Contaminated or oxidised

Substrate-TMB solution. Check that substrate is colourless, discard if blue. Use acid or ethanol washed or disposable containers. Repeat assay.

3b. Contaminated or

improperly prepared reagents.

Check for contamination: turbid aspect. Check dilutions. Repeat assay.

3c. Contaminated washing

solution (1x).

Check the quality of distilled or deionised water used for dilution. Repeat assay.

3d. Insufficient washing or washing not consistent: filling volume and/or aspiration insufficient or not uniform. Insufficient number of washing cycles, contaminated device.

Check the washing device. Fill wells with washing solution close to the top, aspirate completely. Increase the number of wash cycles.

3e. Using of a washing solution from other manufacturer.

Use only the washing solution supplied with the kit.

4. Poor reproducibility or high number of non-repeatable reactive samples.

4a. Washing problems. See 3c, 3d, 3e.

4b. Uncalibrated pipettes or tips not well fitted. Improper pipetting.

Use only calibrated pipettes, with well fitted tips and pipette carefully, without bubbles and splashing. Repeat assay.

4c. Reagents too cold or not well mixed before using.

Equilibrate reagents to room temperature and mix thoroughly before using.

4d. Air currents over the microplate during incubations.

Keep the microplate protected from air currents.

4e. Too long time for addition of samples and/or

reagents. Inconsistency in time intervals. Air

bubbles.

Develop consistent and uniform technique.

4f. Interference in the optical pathway.

(11)

bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab

3000-1172 1 x 96 TESTS

3000-1173 5 x 96 TESTS (480)

Prueba ELISA para la detección de anticuerpos frente a los virus de la inmunodeficiencia humana (HIV) de tipo 1 (grupo M, O) o de tipo 2 y antígenos p24 del HIV en muestras humanas de suero o plasma en laboratorios clínicos y como ensayo de detección de primera línea en centros de análisis sanguíneos. Sumario

Es posible obtener evidencia serológica de infección por HIV mediante la detección de la presencia de antígenos o anticuerpos frente al HIV en el suero o plasma de personas en las que se sospecha de infección por HIV. Por lo general, los antígenos pueden detectarse tanto durante la fase aguda como durante la fase sintomática del sida. Los anticuerpos frente al HIV-1 y/o el HIV-2 pueden detectarse prácticamente durante todo el período de infección, a partir o poco después de la fase aguda y hasta la fase terminal del sida. La técnica ELISA de cuarta generación para el HIV permite la determinación simultánea de antígenos p24 del HIV y anticuerpos frente al HIV-1/HIV-2, con lo que se reduce el margen diagnóstico y puede realizarse un diagnóstico precoz de la infección aguda por HIV. Aparte de la transmisión sexual, la principal vía de infección por HIV es la transfusión sanguínea. El HIV puede estar presente tanto en la fracción celular como en la acelular de la sangre humana. Por tanto, todas las donaciones de sangre o plasma deberían analizarse por el riesgo de transmisión del HIV a través de sangre contaminada. Esto puede conseguirse de forma eficaz mediante el análisis de detección de anticuerpos frente al HIV y antígeno p24 con una prueba ELISA altamente sensible.

Principio

bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab es un enzimoinmunoanálisis de cuarta generación para la detección cualitativa

simultánea del antígeno p24 del HIV y anticuerpos frente al HIV-1 (grupos M y O) o HIV-2. Los antígenos que representan los epítopos de gp41 del HIV-1 y gp36 del HIV-2 recubren los pocillos de las microplacas junto con anticuerpos monoclonales frente al p24 del HIV. En la primera fase del inmunoanálisis, se añaden muestras de suero o plasma a estos pocillos junto con el diluyente de muestras que contiene anticuerpos anti-p24 biotinilados. Si hay anticuerpos frente al HIV-1 y/o HIV-2 específicos en la muestra, formarán complejos estables con los antígenos del HIV unidos a los pocillos. Si hay antígeno p24 en la muestra, se unirá de forma simultánea a los anticuerpos del pocillo y a los anticuerpos biotinilados presentes en el diluyente de muestras. A continuación se lavan los pocillos para eliminar las proteínas séricas libres. Se añade un conjunto de antígenos biotinilados a los pocillos, que se unirán a los anticuerpos capturados específicos. Después de un segundo lavado para eliminar el conjugado libre, se añade un segundo conjugado de estreptavidina-HRP a los pocillos. En los pocillos que contienen el inmunocomplejo "sándwich", el cromógeno incoloro se oxida por el efecto del conjugado unido para dar lugar a un producto de color azul. El color azul cambia a amarillo después de que se detenga la reacción con ácido sulfúrico. La intensidad del color puede cuantificarse y es proporcional a la concentración de anticuerpos anti-HIV 1/2 o del antígeno p24 del HIV presentes en la muestra. Los pocillos que contienen muestras negativas permanecen incoloros.

Componentes

1. MCPL MICROPLACA:

12 x 8 pocillos recubiertos de antígenos que representan epítopos de gp41 del HIV-1 y gp36 del HIV-2 y anticuerpos monoclonales frente a p24. Las placas se sellan en bolsas de aluminio con desecante.

2. CONTROL + 1 CONTROL POSITIVO HIV-1:

Suero humano diluido con anticuerpos frente al HIV-1 (inactivados por calor). Contiene ProClinTM 300 al 0,1% como conservante. Listo para usar.

3. CONTROL + 2 CONTROL POSITIVO HIV-2:

Suero humano diluido con anticuerpos frente al HIV-2 (inactivados por calor). Contiene ProClinTM 300 al 0,1% como conservante. Listo para usar.

4. CONTROL + Ag CONTROL POSITIVO p24 DEL HIV:

Suero humano diluido inoculado con antígeno p24 del HIV-1 recombinante. Contiene ProClinTM_{300 al 0,1%}

como conservante. Listo para usar 5. CONTROL – CONTROL NEGATIVO:

Suero humano diluido negativo para anticuerpos frente al HIV-1/2 y antígeno p24 del HIV. Contiene ProClinTM 300 al 0,1% como conservante. Listo para usar.

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BIOKIT, S.A. - Can Malé s/n - 08186 Lliçà d’Amunt - Barcelona - SPAIN 3000-1172_R01_02.2015_spa.docx

6. DIL SAMP DILUYENTE DE MUESTRAS:

Anticuerpos monoclonales biotinilados frente a p24 del HIV diluidos en tampón Tris. Contiene ProClinTM 300 al 0,05% como conservante y colorante rojo. Listo para usar.

7. CONJ 1 CONJUGADO 1 LISTO PARA USAR:

Tampón fosfato con antígenos biotinilados del HIV-1 y HIV-2. Contiene ProClinTM_{300 al 0,05% como}

conservante y colorante azul. Listo para usar. 8. DIL CONJ 2 DILUYENTE DE CONJUGADO 2:

Tampón fosfato con estabilizadores de proteínas, ProClinTM 300 al 0,05% como conservante y colorante amarillo.

9. CONJ 2 101X CONJUGADO CONCENTRADO 2 (101X):

Contiene estreptavidina marcada con peroxidasa. Para diluir 1:101 en el diluyente de conjugado 2 antes del uso.

10. SUBS TMB SUSTRATO-TMB:

Contiene 3,3', 5,5'-tetrametilbenzidina (TMB) y peróxido de hidrógeno. Listo para usar. 11. WASH SOLN 25x SOLUCIÓN DE LAVADO CONCENTRADA:

Tampón PBS concentrado con pH 7,4 (25x). Contiene Tween-20 como detergente, ProClinTM 300 a < 0,2% como conservante. Para diluir 1:25 en agua destilada o desionizada antes del uso.

12. H2SO4 0.8N SOLUCIÓN DE PARADA: Ácido sulfúrico 0,8 N. Listo para usar. 13. SEALS LÁMINAS ADHESIVAS:

Para cubrir la microplaca durante las incubaciones. 14. BAG BOLSA DE PLÁSTICO:

Para la conservación de tiras no utilizadas.

Precauciones

bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab está prevista para uso diagnóstico IN VITRO.

Uso exclusivo para profesionales.

ATENCIÓN: El control negativo, el control positivo para HIV-1, el control positivo para HIV-2, el control

positivo para p24 del HIV, el diluyente de muestras, el conjugado 1, el diluyente de conjugado 2 y la solución de lavado concentrada contienen ProClinTM 300 a < 0,2% como conservante.

Indicaciones de peligro

H317: Puede provocar una reacción alérgica en la piel. Consejos de prudencia

P280: Llevar guantes/prendas/gafas/máscara de protección.

P302+P352: EN CASO DE CONTACTO CON LA PIEL: Lavar con agua y jabón abundantes.

P333+P313: En caso de irritación o erupción cutánea: Consultar a un médico. P363: Lavar las prendas contaminadas antes de volver a usarlas.

P501: Eliminar el contenido/el recipiente de acuerdo con las normativas locales/regionales/nacionales/ internacionales.

ATENCIÓN: MATERIAL DE RIESGO BIOLÓGICO.

Todo el material de origen humano utilizado en la preparación de este producto dio un resultado negativo para la presencia de anticuerpos frente al HCV, anticuerpos frente a Treponema pallidum, antígenos de superficie de la hepatitis B y anticuerpos frente al HIV 1/2 (excepto los controles positivos 1 y 2), según un método comercial aprobado. Sin embargo, dado que no existe un método analítico que pueda garantizar completamente la ausencia de agentes infecciosos, este producto debe manipularse con precaución:

- Evitar el contacto de los reactivos con los ojos y la piel. En caso de contacto, lavar bien con agua. - Usar guantes.

- No pipetear con la boca. - No fumar.

(13)

- Desechar todos los materiales usados en recipientes adecuados para material biocontaminante. Los restos de muestras, controles, reactivos aspirados y puntas de pipetas deben depositarse en un contenedor para tal fin y esterilizarse en autoclave durante 1 hora a 121°C o tratarse con hipoclorito de sodio al 10% (concentración final) durante 30 minutos antes de su eliminación. (Los restos que contengan ácido deberán neutralizarse antes de la adición del hipoclorito de sodio).

Instrucciones de manipulación:

- Ajustar el lavador a la placa utilizada (fondo plano) para un lavado correcto. - No mezclar reactivos de diferentes lotes.

- No utilizar reactivos después de la fecha de caducidad.

- No utilizar el reactivo si se observa cualquier cambio en el aspecto de los componentes incluidos en el kit. - Deberá extremarse la precaución para evitar la contaminación microbiana y la contaminación cruzada de los

reactivos.

- Utilizar una nueva pipeta para cada muestra y cada reactivo.

- No intercambiar los reactivos de diferentes lotes ni utilizar reactivos de otros kits disponibles en el mercado. Los componentes del kit están ajustados con precisión para un rendimiento óptimo de las pruebas.

- PRECAUCIÓN - PASO CRÍTICO: Dejar que los reactivos y las muestras alcancen la temperatura ambiente (20-25°C) antes del uso. Agitar suavemente el reactivo antes del uso. Devolver a 2-8°C inmediatamente después del uso.

- La actividad enzimática del conjugado 2 puede verse afectada por el polvo y sustancias químicas reactivas como hipoclorito de sodio, ácidos, álcalis, etc. No realizar el ensayo en presencia de estas sustancias.

- Es muy importante mantener la solución de sustrato-TMB en un recipiente bien cerrado para evitar la exposición a la luz.

- Los jabones y/o agentes oxidantes que queden en el recipiente utilizado para la solución de sustrato-TMB pueden interferir con la reacción. Si se utilizan recipientes de vidrio o de plástico reutilizados, deberán lavarse con ácido sulfúrico o clorhídrico 1 N, aclararse bien con agua destilada y secarse antes del uso. Recomendamos utilizar recipientes de plástico desechables.

Conservación y estabilidad

Los componentes permanecerán estables hasta la fecha de caducidad indicada en la etiqueta si se conservan a 2-8°C. La bolsa con la microplaca deberá llevarse a temperatura ambiente antes de su apertura para evitar

condensación en los pocillos. Una vez abierta la bolsa, los pocillos de la microplaca permanecerán estables durante 3 meses a 2-8°C en la bolsa de plástico herméticamente cerrada con gel de sílice. Desechar las microplacas cerradas sin el gel de sílice. Una vez diluida, la solución de lavado permanece estable durante 6 días solo si se conserva a 2-8°C. No utilizar soluciones de lavado diluidas si se conservan durante toda la noche a temperatura ambiente. Una vez diluido, el conjugado 2 permanece estable durante 30 días a 2-8°C. Conservar la solución de sustrato-TMB a oscuras.

Presentaciones disponibles

- Kit de 1 microplaca (1x96 tests), REF 3000-1172.

Contiene: 1 microplaca, 1 x 2 mL de control negativo, 1 x 2 mL de control positivo para HIV-1, 1 x 2 mL de control positivo para HIV-2, 1 x 2 mL de control positivo para p24 de HIV-1, 1 x 14 mL de diluyente de muestras, 1 x 25 mL de conjugado 1 listo para usar, 1 x 0,250 mL de conjugado concentrado 2 (101x), 1 x 25 mL de diluyente de conjugado 2, 1 x 20 mL de sustrato-TMB, 1 x 12 mL de solución de parada, 2 x 50 mL de solución de lavado concentrada, 1 bolsa de plástico y láminas adhesivas.

- Kit de 5 microplacas (5 x 96 tests), REF 3000-1173.

Contiene: 5 microplacas, 1 x 4 mL de control negativo, 1 x 4 mL de control positivo para HIV-1, 1 x 4 mL de control positivo para HIV-2, 1 x 4 mL de control positivo para p24 de HIV-1, 1 x 70 mL de diluyente de muestras, 1 x 120 mL de conjugado 1 listo para usar, 1 x 1,2 mL de conjugado concentrado 2 (101x), 1 x 120 mL de diluyente de conjugado 2, 1 x 100 mL de sustrato-TMB, 1 x 60 mL de solución de parada, 3 x 100 mL de solución de lavado concentrada, 1 bolsa de plástico y láminas adhesivas.

Material necesario no proporcionado

- Agua destilada o desionizada.

- Guantes desechables y temporizador.

- Recipientes de desechos adecuados para materiales potencialmente contaminados. - Cubetas en forma de V desechables.

- Sistema de aplicación y/o pipeta (de uno o varios canales) y puntas de pipeta desechables. - Paño absorbente o toallita limpiadora.

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- Incubadora de baño seco o baño con agua, 37 ± 1°C.

- Lector de microplacas con filtro de 450 nm. Se recomiendan filtros de referencia de 620 o 630 nm. - Sistema de lavado manual o automático.

Recolección de muestras

Utilizar suero reciente con o sin tubo separador del suero (SST), plasma con EDTA, plasma con ácido-citrato-dextrosa (ACD), plasma con heparina de litio, plasma con heparina de sodio, plasma con citrato de sodio, plasma con oxalato de potasio/fluoruro de sodio y plasma con CPD y CPDA. Otros anticoagulantes deben ser comprobados antes del uso. Las muestras pueden conservarse entre 2-8°C durante 8 días. Para periodos más prolongados, las muestras deberán congelarse (-20°C). Evitar congelar y descongelar de forma repetida (máximo de 4 ciclos de congelado y descongelado). Las partículas en suspensión deben eliminarse por centrifugación. Las muestras de suero o plasma no deben inactivarse por calor, ya que podrían dar lugar a resultados incorrectos.

Procesamiento automático

Puede utilizarse un ensayo automático o semiautomático con diferentes instrumentos. Es muy importante validar los sistemas automáticos para demostrar que los resultados obtenidos para las muestras son equivalentes a los obtenidos mediante el ensayo manual. Se recomienda que los usuarios validen el instrumento de forma periódica. En caso de dificultad en la programación y configuración de los procesadores automáticos de Biokit, contacte con el distribuidor.

PROCEDIMIENTO Operaciones previas

Dejar que todos los reactivos alcancen la temperatura ambiente (20-25°C) antes de ejecutar el ensayo. Mezclar suavemente todos los reactivos líquidos antes del uso.

Comprobar el concentrado de solución de lavado para detectar cristales de sales. Si se han formado

cristales, calentar a 37°C para resolubilizar hasta que se disuelvan los cristales. Utilizar agua destilada o desionizada.

Los controles negativos y positivos deben tratarse como las muestras.

Diluir la solución de lavado en 1:25 en agua destilada. Si se utiliza toda la placa, añadir 40 mL de solución de lavado concentrada (25x) a 960 mL de agua desionizada. Si no se utiliza toda la placa, preparar el volumen de solución proporcional.

Diluir el conjugado concentrado 2 en 1:101 con el diluyente de conjugado 2 de acuerdo con la tabla 1. Para el envase de 1 placa, si va a utilizarse toda la placa, añadir 250 µL de conjugado concentrado directamente al frasco que contiene 25 mL de diluyente de conjugado. Mezclar suavemente.

TABLA 1

Tiras necesarias 1 2 4 6 8 10 12

Diluyente de conjugado 2 mL 2,0 4,0 8,0 12,0 16,0 20,0 25,0

Conjugado concentrado 2 µL 20 40 80 120 160 200 250

Realización de la prueba

1. Utilizar solo el número de tiras necesarias para la prueba. Reservar 7 pocillos para blancos y controles. Un pocillo como blanco (p. ej., A1), tres pocillos como control negativo (p. ej., B1, C1, D1) y, al menos, un pocillo de cada uno de los controles positivos: control positivo para HIV-1 (p. ej., E1), control positivo para HIV-2 (p. ej., F1) y control positivo para p24 del HIV (p. ej., G1).

2. Añadir 100 µL de diluyente de muestras a todos los pocillos excepto el blanco.

3. Añadir primero 100 μL de muestras y, por último, 100 μL de control negativo y de cada uno de los controles positivos a sus pocillos correspondientes.

4. Cubrir la placa con una lámina adhesiva, mezclar suavemente e incubar a 37°C ± 1°C durante 60 minutos con un intervalo de tolerancia de 58-65 minutos

5. Retirar y desechar la lámina adhesiva. Aspirar el contenido de los pocillos y llenarlos totalmente (aproximadamente 350 µL) con la solución de lavado diluida. Repetir el proceso de aspiración y lavado 4 veces más, 5 (cinco) ciclos en total. Asegurarse de que cada columna de pocillos se sumerge durante al menos 15 segundos antes del siguiente ciclo de aspiración.

(15)

6. Transferir 200 µL de conjugado 1 a cada pocillo, excepto el reservado para el blanco de sustrato. Evitar la formación de burbujas durante la adición.

7. Cubrir la microplaca con una lámina adhesiva e incubar a 37°C ± 1°C durante 30 minutos con un intervalo de tolerancia de 28-35 minutos.

8. Retirar y desechar la lámina adhesiva. Aspirar y lavar los pocillos como en la fase de lavado anterior durante

3 (tres) ciclos de lavado.

9. Transferir 200 µL de conjugado de trabajo 2 a cada pocillo, excepto el reservado para el blanco de sustrato. Evitar la formación de burbujas durante la adición.

10. Cubrir la microplaca con una lámina adhesiva e incubar a 37°C ± 1°C durante 30 minutos con un intervalo de tolerancia de 28-35 minutos.

11. Retirar y desechar la lámina adhesiva. Aspirar y lavar los pocillos como en la fase 5 durante 5 (cinco) ciclos de lavado.

12. Añadir 150 µL de solución de sustrato-TMB a cada pocillo, incluido el blanco.

13. Incubar a temperatura ambiente (20-25°C) durante 30 minutos con un intervalo de tolerancia de 28-35 minutos, protegido de la exposición a la luz directa.

14. Detener la reacción mediante adición de 100 µL de solución de parada en la misma secuencia e intervalos temporales que para el sustrato-TMB.

15. Poner a cero el lector a 450 nm con el pocillo de blanco y leer la absorbancia de cada pocillo en un plazo máximo de 30 minutos. Se recomienda leer en modo bicromático mediante un filtro de referencia de 620 - 630 nm.

Control de calidad

Los resultados de un ensayo son válidos si se cumplen los siguientes criterios: 1. El valor de absorbancia del pocillo de blanco debe ser ≤ 0,100.

2. El valor de absorbancia de los controles positivos debe ser ≥ 0,900 después de sustraer el blanco. De lo contrario, deberá repetirse el ensayo.

3. Cada valor de absorbancia individual del control negativo debe ser ≤ 0,120 después de sustraer el blanco. Si uno de los valores del control negativo no cumple los criterios de control de calidad, deberá desecharse y deberá volver a calcularse el valor medio con los dos valores restantes. Si dos o más valores de absorbancia del control negativo no cumplen las especificaciones del intervalo del control de calidad, la prueba no será válida y deberá volver a repetirse.

Resultados

1. Sustraer el blanco de cada uno de los controles negativos válidos. Calcular la absorbancia media del control negativo (CNx). Calcular el valor umbral mediante adición de 0,170 a la absorbancia media del control negativo.

Valor umbral = CNx + 0,170

Ejemplo: CNx = 0,011 valor umbral = 0,011 + 0,170 = 0,181 2. Dividir la absorbancia de la muestra entre el valor de corte.

Positivo: cociente de absorbancia/valor umbral ≥ 1,0 Negativo: cociente de absorbancia/valor umbral < 0,9 Dudoso: cociente de absorbancia/valor umbral ≥ 0,9 < 1,0

Interpretación de resultados

Resultados negativos: Las muestras con un cociente de absorbancia/valor umbral inferior a 0,9 se consideran no reactivas, lo que indica que no se han detectado anticuerpos frente al HIV 1 y/o HIV-2 o antígeno p24 de HIV con el kit bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab.

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Resultados positivos: Las muestras con una absorbancia igual o superior al valor umbral se consideran inicialmente reactivas, lo que indica que probablemente se hayan detectado anticuerpos frente al HIV 1/2 o antígenos p24 del HIV mediante bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab. Todas las muestras inicialmente reactivas deberán volver a evaluarse por duplicado para confirmar el resultado inicial.

Dudoso: Las muestras con un cociente de absorbancia/valor umbral entre 0,9 y 1,0 se consideran dudosas y se precisa volver a analizar estas muestras por duplicado para confirmar los resultados iniciales.

- Si, después de volver a analizar las muestras inicialmente reactivas, ambos pocillos indican resultados negativos (S/CO < 0,9), estas muestras deberán considerarse positivas no reproducibles (o falsas positivas) y registrarse como negativas.

- Si, después del segundo análisis por duplicado, uno o más pocillos indican resultados positivos, el resultado final de esta prueba ELISA deberá registrarse como reiteradamente reactiva. Las muestras reiteradamente reactivas pueden considerarse positivas para anticuerpos frente al HIV 1/2 o antígeno p24, por lo que el paciente probablemente esté infectado por el HIV1 o HIV2.

- Después del segundo análisis por duplicado, las muestras con valores cercanos al valor umbral deberán interpretarse con precaución y considerarse dudosas, o no interpretables en el momento de análisis.

- Se precisa seguimiento, confirmación y análisis complementarios de todas las muestras positivas con otro sistema analítico (p. ej., inmunotransferencia, PCR). El diagnóstico clínico no debería establecerse basándose en un solo resultado analítico. Deberá integrar datos clínicos y otros datos y resultados analíticos.

Limitaciones del procedimiento

- Un rendimiento óptimo del ensayo requiere un cumplimiento estricto del procedimiento analítico descrito. La desviación del procedimiento puede dar lugar a resultados aberrantes.

- Como en todos los inmunoensayos sensibles, existe la posibilidad de obtener resultados positivos no reproducibles.

- Los resultados positivos deben confirmarse con otro método disponible e interpretarse en combinación con la información clínica del paciente.

- Los resultados negativos obtenidos con bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab se consideran negativos para anticuerpos frente al HIV-1/2 y antígeno p24 y no precisan análisis adicionales.

- La prevalencia del marcador afectará a los valores predictivos del ensayo.

- Este ensayo no puede utilizarse para analizar el plasma agrupado (mezclado). bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab se ha evaluado solo con muestras de suero o plasma individuales.

- bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab es un ensayo cualitativo y los resultados no pueden utilizarse para medir las

concentraciones de anticuerpos frente al HIV o de antígeno p24. En este ensayo no puede distinguirse entre infecciones por HIV-1 y HIV-2.

- Un resultado negativo no excluye la posibilidad de exposición o infección por HIV.

Resultados esperados

El número de resultados positivos depende de la incidencia de la enfermedad en el área geográfica y el tipo de población evaluada. A nivel mundial, la incidencia de HIV en personas mayores de 15 años oscila entre el 0,1% en Australia, Nueva Zelanda y Asia Pacífico, el 0,3% en Europa Occidental, norte de África y Oriente Medio, el 0,5% en el este de Europa, Asia Central y Latinoamérica, el 0,6% en Norteamérica y el sur de Asia y el 9% en el África subsahariana. En el mismo país, la incidencia también varía considerablemente en función de la población evaluada. En Europa Occidental, la prevalencia de anticuerpos frente al HIV en donaciones a bancos de sangre oscila entre 0 y 5 casos por 100.000 donaciones, mientras que la incidencia entre presos, profesionales del sexo y toxicómanos puede alcanzar fácilmente el 20% en estas poblaciones de riesgo.

Características funcionales Sensibilidad analítica

Se ha calculado que el límite de detección es inferior a 0,5 UI/mL mediante el análisis del antígeno p24 del HIV de la OMS, primer estándar internacional de referencia del NIBSC 90/636 con dos lotes diferentes durante la evaluación interna. Además, también se ha determinado que el límite de detección es inferior a 12,5 pg/mL mediante el análisis de BIORAD HIV-1 Antigen Standard 72217 con dos lotes diferentes durante la evaluación interna.

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Sensibilidad

- Se evaluó un total de 537 muestras positivas para el HIV-1 con bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab, entre las cuales: 28 muestras recientes del mismo día de HIV-1, 85 muestras de HIV-1 y 4 muestras de subtipo O de HIV-1 en un laboratorio de referencia europeo; 380 muestras de HIV-1 se evaluaron en Biokit y 40 muestras de subtipo diferente de B de HIV-1 (y al menos 3 muestras de cada subtipo de HIV-1) se evaluaron en otro laboratorio de referencia europeo. bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab detectó las 537 muestras. La sensibilidad fue del 100% (537/537).

- Se evaluó un total de 115 muestras positivas para HIV-2 con bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab, entre las cuales:

27 muestras de HIV-2 en un laboratorio de referencia europeo y 88 muestras de HIV-2 en Biokit.

bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab detectó las 115 muestras. La sensibilidad fue del 100% (115/115).

- También se evaluó un total de 61 muestras positivas para Ag p24 del HIV-1 con bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab, entre las cuales: 15 muestras en un laboratorio de referencia europeo, 16 muestras en otro laboratorio de referencia europeo y 30 muestras en Biokit. bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab detectó las 61 muestras. La sensibilidad fue del 100% (61/61).

- Se llevaron a cabo otros estudios de sensibilidad mediante análisis de un total de 31 paneles de seroconversión en Biokit y un laboratorio de referencia europeo. Los resultados obtenidos fueron comparables a los del método comercial más sensible para la detección de antígenos y anticuerpos de HIV 1+2.

- Se evaluaron 16 paneles de seroconversión del HIV de BBI/Seracare y Zeptometrix en Biokit.

bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab identificó correctamente todas las muestras positivas.

Panel de seroconversión

bioelisa HIV Ag/Ab

Ensayo HIV

Ag/Ab Ensayo HIV Ab Antígeno p24 del HIV NAT Primera muestra detectada positiva en el panel

BB1-PRB965-n=6 2 2 4 2 1 ZEPT-12007-n=9 4 4 5 ND 4 BBI-PRB954-n=7 6 6 7 6 4 BBI-PRB932-n=9 4 ND 4 4 4 ZEPT-9017-n=11 1 4 3 1 1 ZEPT-9014-n=7 1 1 3 1 1 ZEPT-9012-n=8 5 6 7 5 1 ZEPT-9032-n=14 8 8 7 8 1 ZEPT-6243-n=10 7 7 8 7 1 ZEPT-9022-n=9 7 8 9 7 1 ZEPT-9018-n=11 9 9 10 9 1 BBI-PRB939-n=9 6 ND 8 6 5 BBI-PRB956-n=5 4 4 5 4 2 BBI-PRB945-n=6 3 4 4 3 1 BBI-PRB955-n=4 2 2 4 2 1 BBI-PRB958-n=6 3 3 5 3 1 - En la tabla anterior puede observarse la primera muestra detectada como positiva en cada panel evaluado

con bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab frente a ensayos de cuarta generación (ensayos Ag/Ab), ensayos de tercera

generación (ensayos Ab), ensayos para antígeno p24 de HIV y ensayos de NAT de ARN del HIV.

bioelisa HIV-1+2 Ag/Ab mostró una sensibilidad excelente para detectar antígenos o anticuerpos de forma temprana en 16 paneles de seroconversión de HIV evaluados.

- Se llevó a cabo otro estudio para evaluar la sensibilidad en 32 muestras de seroconversión temprana. Las muestras de este tipo se caracterizan por ser positivas a la presencia de Ag p24 del HIV y/o positivas según NAT (análisis del ácido nucleico), no detectadas por ningún método de tercera generación para HIV y negativas o indeterminadas con métodos de inmunotransferencia. bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab detectó las 32 muestras. La sensibilidad fue del 100% (32/32).

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- Por último, se evaluaron 50 sobrenadantes de cultivo celular de cultivos celulares de HIV, incluidos diferentes subtipos de HIV-1 y HIV-2 en un laboratorio de referencia europeo. bioelisa HIV 1+2 Ag/Ab detectó las 50 muestras. La sensibilidad fue del 100% (50/50).

Especificidad

La especificidad se evaluó mediante análisis de un total de 6.465 muestras de donantes de sangre aleatorias en tres centros diferentes.

- En el primer centro, se analizaron 3.045 muestras aleatorias, que incluían 684 primeros donantes. De este total, 4 muestras fueron reactivas. La especificidad obtenida en este estudio fue del 99,87% (3.041/3.045). - En el segundo centro, se analizaron 500 muestras aleatorias del banco de sangre. Las 500 muestras fueron

negativas. La especificidad fue del 100% (500/500).

- Se llevó a cabo una evaluación interna de 2.920 muestras aleatorias del banco de sangre. De esta evaluación, 6 muestras fueron reactivas. La especificidad obtenida en este estudio fue del 99,79% (2.914/2.920).

En la tabla siguiente se muestra un resumen detallado de estos estudios de especificidad.

Evaluación 1 (3.045 sueros)

Inicialmente reactivas Reactividad repetida Falso positivo Especificidad %

Suero 6 4 4 99,87 (I.C. 95%: 99.66 - 99.96)

Evaluación 2 (500 sueros)

Suero 0 0 0 100 (I.C. 95%: 98.89 - 100)

Evaluación interna (1.000 sueros + 1.920 plasmas)

Plasma 8 6 6 99,69 (I.C. 95%: 99.32 - 99.89)

Suero 1 0 0 100 (I.C. 95%: 99.44 - 100)

Total 9 6 6 99,79 (I.C. 95%: 99.55 - 99.93)

- Además, se han analizado 200 muestras de pacientes hospitalizados y se han comparado con una prueba de referencia. 194 muestras resultaron negativas mediante las dos pruebas y 6 muestras fueron reactivas. Las 6 muestras también fueron reactivas con otras pruebas de ELISA. En este estudio se obtuvo una especificidad del 100% (194/194).

Precisión

Reproducibilidad intraensayo:

El coeficiente de variación obtenido para los valores de absorbancia de una muestra positiva para HIV-1 evaluada en un mínimo de 40 repeticiones fue del 3,42%, el 5,79% y el 4,71% en los tres lotes estudiados.

El coeficiente de variación obtenido para los valores de absorbancia de una muestra positiva para HIV-2 evaluada en un mínimo de 40 repeticiones fue del 6,39%, el 5,91% y el 8,38% en los tres lotes estudiados.

El coeficiente de variación obtenido para los valores de absorbancia de una muestra positiva para p24 del HIV-1 evaluada en un mínimo de 40 repeticiones fue del 4,08%, el 3,44% y el 3,71% en los tres lotes estudiados.

Reproducibilidad interensayo:

Se analizaron 4 muestras positivas de diferentes niveles en 15 ensayos diferentes. Los coeficientes de variación obtenidos para los cocientes de absorbancia/valor umbral de las cuatro muestras fueron del 4,87%, 5,37%, 7,49% y 7,54%.

(19)

Interferencias

Interferencia por adición

No se han observado interferencias para la hemoglobina (500 mg/dL), la bilirrubina (20 mg/dL), la albúmina humana (5 g/dL) y los triglicéridos (500 mg/dL).

Reactividad cruzada

Para evaluar posibles interferencias, se evaluaron 125 muestras con posible reactividad cruzada. Entre estas muestras, 4 muestras (RF+), 4 muestras positivas para anticuerpos antinucleares (ANA), 5 muestras de mononucleosis, 89 muestras de otras enfermedades infecciosas relacionadas y 23 muestras de mujeres embarazadas. No se observaron signos de reactividad cruzada en las muestras evaluadas. Las 2 muestras de anti-toxoplasma IgM que dieron un resultado positivo también fueron positivas según otros ensayos del HIV.

Muestras con posible interferencia = 125 RF (factor reumatoide) ‐ 4 IgG elevadas ‐ 4 ANA (anticuerpos antinucleares) ‐ 4 IgM elevadas ‐ 5 Mononucleosis ‐ 5 HSV 1 IgG (virus Herpes Simplex) ‐ 5 Mujeres embarazadas ‐ 23 (incluidas 7 multíparas) HSV 2 IgG (Herpes Simplex) ‐ 4 Anticuerpos anti‐sífilis ‐ 6 anti‐CMV IgG (Citomegalovirus) ‐ 5 anti‐EBV (virus de Epstein‐Barr) ‐ 3 anti‐CMV IgM (Citomegalovirus) ‐ 7 anti‐Rubella (virus de la rubéola) ‐ 4 anti‐HTLV (virus linfotrópico T humano) ‐ 4 anti‐VZV IgG (virus de la varicela Zoster) ‐ 2 anti‐HCV (virus de la hepatitis C) ‐ 8 anti‐VZV IgM (virus de la varicela Zoster) ‐ 2 anti‐E. coli (Escherichia coli) ‐ 5 anti‐Toxoplasma IgG (T. gondii) ‐ 10 HBsAg (antígeno de la hepatitis B) ‐ 8 anti‐Toxoplasma IgM (T. gondii) ‐ 7

(20)

bioelisa:

Guía de resolución de problemas

Problema Posibles

causas

Solución

1. Controles no validados. 1a. Temperatura, hora o

pipeteado incorrectos. Comprobar el procedimiento.Repetir el ensayo.

1b. Preparación inadecuada de los reactivos, error de dilución, reactivos no mezclados correctamente. Comprobar el procedimiento. Repetir el ensayo. 1c. Contaminación cruzada

de los controles. Pipetear cuidadosamente.intercambiar los tapones. No Repetir el ensayo.

1d. Lectura incorrecta del

filtro. Comprobar que la longitud de onda del filtro utilizado sea de 450 nm. Si no se utilizan los filtros de referencia de 620-630 nm, la absorbancia se incrementa en

aproximadamente 0,050.

1e. Interferencia en la vía óptica.

Comprobar el lector. Limpiar o secar la base de la

microplaca. Comprobar si hay burbujas. Repetir la lectura.

1f. Se han utilizado componentes de diferentes lotes.

No utilizar componentes de diferentes lotes, ya que están ajustados para cada lote autorizado.

1g. Reactivos caducados. Comprobar la fecha de

caducidad del kit. Utilizar un kit no caducado.

2. Sin color o solo color claro al final del ensayo.

2a. Uno o más reactivos no se han añadido o se han añadido en una

secuencia errónea.

Comprobar el procedimiento. Repetir el ensayo.

2b. Conjugado inactivo. Dilución errónea del conjugado concentrado 2. Conservación incorrecta. Comprobar si hay contaminación. Comprobar el procedimiento. Repetir el ensayo. 2c. Microplaca inactiva:

Conservación incorrecta. Mantener siempre las tiras no utilizadas en la bolsa bien cerrada, con el desecante dentro. Repetir el ensayo.

2d. Sustrato-TMB inactivo: Conservación incorrecta. El recipiente utilizado afecta a la estabilidad del sustrato-TMB,

contaminación cruzada con la solución de parada.

Utilizar recipientes

desechables o lavar con ácido o etanol y aclarar con agua desionizada antes de volver a utilizar. Comprobar el

procedimiento. Repetir el ensayo.

2e. Reactivos demasiado

fríos.

Dejar que los reactivos alcancen la temperatura ambiente antes del uso.

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bioelisa:

Guía de resolución de problemas

Problema Posibles

causas

Solución

3. Demasiado color en todos los pocillos de la microplaca.

3a. Solución de sustrato-TMB

contaminada u oxidada. Comprobar que el sustrato sea incoloro, desechar si es azul. Utilizar recipientes

lavados con ácido o etanol o desechables. Repetir el ensayo. 3b. Reactivos contaminados o preparados de forma incorrecta. Comprobar si hay contaminación: aspecto turbio. Comprobar las

diluciones. Repetir el ensayo.

3c. Solución de lavado

contaminada (1x). Comprobar la calidad del agua destilada o desionizada utilizada para la dilución. Repetir el ensayo.

3d. Lavado insuficiente o inconsistente: volumen de llenado y/o aspiración insuficiente o no uniforme. Número insuficiente de ciclos de lavado, dispositivo contaminado. Comprobar el dispositivo de lavado. Llenar los pocillos con solución de lavado casi hasta el tope, aspirar en su

totalidad. Aumentar el número de ciclos de lavado.

3e. Se ha utilizado una solución de lavado de otro fabricante.

Utilizar solo la solución de lavado suministrada con el kit. 4. Mala reproducibilidad

o número alto de muestras reactivas no repetibles.

4a. Problemas de lavado. Ver 3c, 3d, 3e.

4b. Pipetas no calibradas o puntas no colocadas correctamente. Pipeteado incorrecto.

Utilizar solo pipetas

calibradas, con puntas bien colocadas y pipetear con cuidado, sin burbujas ni salpicaduras. Repetir el ensayo.

4c. Reactivos demasiado fríos o no mezclados correctamente antes del uso.

Equilibrar los reactivos a temperatura ambiente y mezclar bien antes de usar.

4d. Corrientes de aire en la microplaca durante las incubaciones.

Mantener la microplaca protegida de las corrientes de aire.

4e. Tiempo de adición de muestras y/o reactivos demasiado prolongado. Inconsistencia en los intervalos de tiempo. Burbujas de aire.

Desarrollar una técnica uniforme y consistente.

4f. Interferencia en la vía