UNIVERSIDADE DE BRASÍLIA
FACULDADE DE AGRONOMIA E MEDICINA VETERINÁRIA
LAÍS SOARES MAIA
LEISHMANIOSE VISCERAL CANINA:
Aspectos clínicos e hematológicos de casos suspeitos e confirmados atendidos no Hospital Veterinário da
Universidade de Brasília em 2011.
Monografia apresentada para a conclusão do Curso de Medicina Veterinária da Faculdade de Agronomia e Medicina Veterinária da Universidade de Brasília
Brasília DF 2013
UNIVERSIDADE DE BRASÍLIA
FACULDADE DE AGRONOMIA E MEDICINA VETERINÁRIA
LAÍS SOARES MAIA
LEISHMANIOSE VISCERAL CANINA:
Aspectos clínicos e hematológicos de casos suspeitos e confirmados atendidos no Hospital Veterinário da
Universidade de Brasília em 2011.
Monografia apresentada para a conclusão do Curso de Medicina Veterinária da Faculdade de Agronomia e Medicina Veterinária da Universidade de Brasília
Orientadora: Ligia Maria Cantarino da Costa
Brasília DF 2013
FICHA CATALOGRÁFICA
Cessão de Direitos
Nome do Autor: Laís Soares Maia
Título da Monografia de Conclusão de Curso: Leishmaniose visceral canina:
Aspectos clínicos e hematológicos de casos suspeitos e confirmados atendidos no Hospital Veterinário da Universidade de Brasília em 2011.
Ano: 2013
É concedida à Universidade de Brasília permissão para reproduzir cópias desta monografia e para emprestar ou vender tais cópias somente para propósitos acadêmicos e científicos. O autor reserva-se a outros direitos de publicação e nenhuma parte desta monografia pode ser reproduzida sem a autorização por escrito do autor.
_______________________________
Laís Soares Maia
Maia, Laís Soares
Leishmaniose visceral canina: Aspectos clínicos e hematológicos de casos suspeitos e confirmados atendidos no Hospital Veterinário da Universidade de Brasília em 2011. / Laís Soares Maia; orientação de Ligia Maria Cantarino da Costa. – Brasília, 2013. 23 p.
Monografia – Universidade de Brasília/Faculdade de Agronomia e Medicina Veterinária, 2013.
1. Leishmaniose visceral. 2. Cães. 3. Aspectos clínicos. 4.
Aspectos hematológicos I. Maia, L.
FOLHA DE APROVAÇÃO
LAÍS SOARES MAIA
LEISHMANIOSE VISCERAL CANINA:
Aspectos clínicos e hematológicos de casos suspeitos e confirmados atendidos no Hospital Veterinário da Universidade de Brasília em 2011.
Monografia de conclusão do Curso de Medicina Veterinária apresentada à Faculdade de Agronomia e Medicina Veterinária da Universidade de Brasília.
Aprovada em:
Banca Examinadora:
Profª. MsC. Ligia Maria Cantarino da Costa Julgamento: ________________________
Instituição: Universidade de Brasília Assinatura: ______________________
Profª. MsC. Christine Souza Martins Julgamento: ________________________
Instituição: Universidade de Brasília Assinatura: ______________________
MV. MsC. Ana Lourdes Arrais de Alencar Mota Julgamento: _______________________
Instituição: Universidade de Brasília Assinatura: ______________________
DEDICATÓRIA
Dedico este trabalho aos cães por seu amor incondicional.
AGRADECIMENTOS
Agradeço a Deus por me dar a oportunidade e força de seguir o caminho que escolhi.
À minha família que me auxiliou e deu forças para atravessar mais essa etapa da minha vida.
À professora Ligia, por aceitar o cargo de orientadora, disponibilizado seu tempo, paciência e conhecimento.
Às secretárias do HVet/UnB, Thaísa, Cíntia e Monique por me auxiliarem com os prontuários.
À Ana Lourdes, pelas horas de ajuda, analisando os dados coletados e por aceitar fazer parte da banca avaliadora.
À professora Christine por aceitar o convite para a participação da banca, disponibilizando seu tempo e conhecimento e por abrir o hospital para a realização deste estudo.
“E Deus fez os animais selvagens, segundo suas espécies, e o gado, segundo suas espécies, e todos os animais que rastejam segundo suas espécies. E viu Deus que tudo isso era bom.”
Gênesis 1: 25 “O justo cuida da vida dos seus animais, mas no íntimo os ímpios são cruéis.“
Provérbios 12:10
RESUMO
MAIA, L. S. Leishmaniose visceral canina: aspectos clínicos e hematológicos de casos suspeitos e confirmados atendidos no Hospital Veterinário da Universidade de Brasília em 2011. [Canine visceral leishmaniasis: clinical and hematological aspects of suspected and confirmed cases seen at the Veterinary Hospital of the University of Brasilia in 2011.]. 2013. 23 p. Monografia (Conclusão do Curso de Medicina Veterinária) - Faculdade de Agronomia e Medicina Veterinária, Universidade de Brasília, Brasília, DF.
A leishmaniose visceral é uma zoonose causada por protozoários do gênero Leishmania spp. em expansão por todo mundo, incluindo o Brasil e o Distrito Federal. Foi realizado um levantamento dos prontuários de animais suspeitos e confirmados de leishmaniose visceral atendidos no HVet/UnB em 2011. Foram selecionados 149 prontuários e analisados quanto ao diagnóstico final, presença de sinais dermatológicos, parâmetros hematológicos e testes diagnósticos realizados, com o objetivo de verificar a ocorrência de casos e os achados clínicos e hematológicos mais frequentes. Sinais dermatológicos, anemia, hiperproteinemia, leucocitose e trombocitopenia foram apresentados pelos animais suspeitos e confirmados. Os exames mais realizados foram RIFI, ELISA e a citologia por punção de medula óssea.
Palavras-chave: Leishmaniose visceral. Cães. Aspectos clínicos. Parâmetros hematológicos.
ABSTRACT
MAIA, L. S. Canine visceral leishmaniasis: clinical and hematological aspects of suspected and confirmed cases seen at the Veterinary Hospital of the University of Brasilia in 2011. [Leishmaniose visceral canina: aspectos clínicos e hematológicos de casos suspeitos e confirmados atendidos no Hospital Veterinário da Universidade de Brasília em 2011]. 2013. 23 p. Monografia (Conclusão do Curso de Medicina Veterinária) - Faculdade de Agronomia e Medicina Veterinária, Universidade de Brasília, Brasília, DF.
Visceral leishmaniasis is a zoonosis caused by protozoa of the genus Leishmania spp. expanding throughout the world, including Brazil and Distrito Federal. A survey was made of the medical charts of suspected and confirmed cases of leishmaniais seen at HVet/UnB in 2011. 149 medical charts were selected and analyzed for final diagnosis, presence of dermatological signs, hematological and diagnostic tests, in order to verify the occurrence of cases and the most common clinical and hematological findings. Animals suspected and confirmed had dermatological signs, anemia, hyperproteinemia, leukocytosis and thrombocytopenia. The examinations more performed were IFA, ELISA and cytology by bone marrow aspiration.
Key-words: Visceral leishmaniasis. Dogs. Clinical aspects. Hematological parameters.
LISTA DE TABELAS
Tabela 1 – Valores de hemácias dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010). .. 14 Tabela 2 – Valores de hemoglobina dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010). .. 14 Tabela 3 – Valores de PPT dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010). ... 15 Tabela 4 – Valores de leucócitos dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010). .. 15 Tabela 5 – Valores de plaquetas dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Ettinger (2010). . 15 Tabela 6 – Valores de VG dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010). ... 15 Tabela 7 – Valores de VCM dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010). ... 15 Tabela 8 – Valores de CHCM dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010). .. 16 Tabela 9 – do teste RIFI em relação ao diagnóstico final registrados nos prontuários dos cães suspeitos e confirmados para LVC no HVet/UnB em 2011.. ... 16 Tabela 10 – Resultados do teste citologia em relação ao diagnóstico final registrados nos prontuários dos cães suspeitos e confirmados para LVC no HVet/UnB em 2011.. ... 17 Tabela 11 – Resultados do teste PCR em relação ao diagnóstico final registrados nos prontuários dos cães suspeitos e confirmados para LVC no HVet/UnB em 2011.. ... 17 Tabela 12 – Número de cães confirmados e suspeitos em relação à localidade de residência. ... 18
LISTA DE FIGURAS
Figura 1 – Posição taxonômica do gênero Leishmania (REYS, 1991). ... 4 Figura 2 – Diagrama para o diagnóstico de Leishmaniose Visceral Canina ... 9 Figura 3 – Distribuição geográfica dos cães positivos por localidade ... 19
LISTA DE ABREVIAÇÕES
CFMV – Conselho Federal de Medicina Veterinária
CHCM – Concentração de Hemoglobina Corpuscular Média DF – Distrito Federal
DPP – Dual Path Platform
ELISA – Ensaio Imunoenzimático HE – Histoquímico
HVet/UnB – Hospital Veterinário da Universidade de Brasília IMIQ – Imunohistoquímico
Lacen – Laboratórios centrais LV – Leishmaniose visceral
LVC – Leishmaniose visceral canina
MAPA – Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento MS – Ministério da Saúde
PCLV – Programa de Controle da Leishmaniose PCR – Reação em Cadeia da Polimerase
PPT – Proteína Plasmática Total RG – Registro geral
RIFI – Reação de Imunofluorescência Indireta
SINAN/NET – Sistema de Informação de Agravos de Notificação VCM – Volume Corpuscular Médio
VG – Volume Globular
SUMÁRIO
1. INTRODUÇÃO ... 1
1.1. Hospital Veterinário da Universidade de Brasília ... 2
2. REVISÃO DE LITERATURA ... 2
2.1. Agente etiológico ... 3
2.2. Vetor ... 4
2.3. Reservatórios ... 5
2.4. Ciclo biológico e transmissão ... 5
2.5. Patogenia e anatomia patológica ... 6
2.6. Achados clínicos e laboratoriais ... 7
2.7. Diagnóstico ... 8
2.8. Tratamento ... 10
2.9. Prevenção e Controle ... 11
2.10. Situação epidemiológica em humanos... 11
2.11. Vigilância epidemiológica em cães ... 12
3. MATERIAIS E MÉTODOS ... 13
4. RESULTADOS ... 14
5. DISCUSSÃO ... 19
6. CONSIDERAÇÕES FINAIS ... 21
7. REFÊRENCIAS ... 23
8. ANEXOS ... 27
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1. INTRODUÇÃO
Dentre as doenças causadas por parasitas do gênero Leishmania a leishmaniose visceral (LV) é considerada uma das seis doenças endêmicas de maior relevância no mundo pela Organização Mundial da Saúde. Possui ampla distribuição mundial e registro de casos em todos os continentes, à exceção da Oceania (BRASIL, 2010 b). São aproximadamente 500 mil casos por ano e a doença é fatal se não for tratada. Atualmente é considerada endêmica em 88 países, dos quais 72 são países em desenvolvimento: mais de 90% dos casos mundiais de LV ocorrem em Bangladesh, Brasil, Índia, Nepal e Sudão. (ALVAR, 2012).
No Brasil a LV tem sendo descrita em vários municípios brasileiros, apresentando mudanças importantes no padrão de transmissão, inicialmente predominando em ambientes silvestres e rurais e mais recentemente em centros urbanos. A doença atinge as cinco regiões brasileiras sendo que os casos estão mais concentrados na região Nordeste, seguida pelas regiões Norte, Sudeste, Centro-Oeste e Sul (BRASIL, 2010 b). Estudos apontam que a LV se tornou endêmica em Brasília (CARRANZA-TAMAYO et al, 2010) sendo o primeiro caso autóctone de LV em humanos registrado em setembro de 2005. Inicia-se a realização de inquéritos sorológicos caninos, constatando cães soros-reagentes e a presença do vetor em diversas áreas do Distrito Federal (DF). Desde 2008, foram confirmados 207 casos humanos de LV. Em 2011 foram registrados 42 casos com 4 óbitos. Dos casos humanos diagnosticados, 81% são importados de outros estados, 12% autóctones e 7% de local não determinado (GOVERNO DO DISTRITO FEDERAL, 2012).
A população canina do Distrito Federal é estimada em 220.500 cães e, em 2011, foram realizados 3.665 exames e 411 cães foram positivos para leishmaniose visceral no DF (GOVERNO DO DISTRITO FEDERAL, 2013). A enzootia canina tem precedido a ocorrência de casos humanos e a infecção em cães tem sido mais prevalente do que no homem. Assim, é fundamental estudar o perfil epidemiológico da leishmaniose visceral canina (LVC) e suas características para designar políticas públicas para o seu controle (BRASIL, 2004).
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Este trabalho teve como objetivos verificar a ocorrência de casos de leishmaniose visceral canina atendidos no Hospital Veterinário da Universidade de Brasília durante o ano de 2011 e os achados clínicos e hematológicos mais frequentes.
1.1. Hospital Veterinário da Universidade de Brasília
O Hospital Veterinário da Universidade de Brasília (HVet/UnB) é dividido em dois setores: Hospital-Escola para Animais de Companhia e o Hospital-Escola para Grandes Animais. O primeiro é destinado a animais de estimação, como cães e gatos, e animais silvestres e o segundo para animais de produção e equinos.
Para os animais com suspeita de leishmaniose, o hospital oferece os exames parasitológico e molecular (Reação em cadeia pela polimerase – PCR), realizados pelos Laboratórios de Patologia Clínica Veterinária e de Patologia Veterinária. Os testes sorológicos são encaminhados para laboratórios externos.
O HVet/UnB segue as recomendações do Ministério da Saúde (MS) e Conselho Federal de Medicina Veterinària (CFMV) quanto ao tratamento de animais e não oferece tratamento com medicamentos não registrados no Ministério de Agricultura, Pecuária e Abastecimento (MAPA) para os casos confirmados de LVC, ficando a critério do proprietário do animal a decisão final quanto ao destino de seu animal.
2. REVISÃO DE LITERATURA
Leishmanioses são zoonoses que tem como agente etiológico protozoário intracelular obrigatório do gênero Leishmania, sendo todos os mamíferos sujeitos à infecção. Pode se apresentar de duas formas distintas dependendo da espécie do agente etiológico envolvido: a leishmaniose tegumentar, marcada pela afecção de pele e mucosas, e a leishmaniose visceral, marcada pela afecção de órgãos internos (ETTINGER, 2010). A LV é caracterizada por sua evolução crônica e envolvimento sistêmico (MAIA-ELKHOURY, 2008).
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2.1. Agente etiológico
A leishmaniose visceral canina é causada por protozoários do gênero Leishmania, pertencentes à família Trypanossomatidae, o qual agrupa espécies unicelulares, digenéticos (heteróxenos) (MICHALICK, 2004).
As três principais espécies envolvidas com a infecção na leishmaniose visceral, dependendo da região geográfica são: Leishmania (L.) donovani, na Ásia e África; Leishmania (L.) infantum na Ásia, Europa e África, e Leishmania (L.) chagasi nas Américas (incluindo o Brasil). Apresentam duas formas: uma flagelada ou promastigota, encontrada no tubo digestivo do inseto vetor e outra aflagelada ou amastigota, que é intracelular obrigatória, sendo encontrada nas células do sistema fagocítico mononuclear do hospedeiro vertebrado (BRASIL, 2006).
À microscopia óptica as formas amastigotas, quando fixadas e coradas (métodos de Giemsa, Leishman ou Panotico), apresentam-se como organismos ovais, esféricos ou fusiformes, com núcleo grande e arredondado, cinetoplasto em forma de um pequeno bastonete e vacúolos. Não há flagelo livre. Os limites micrométricos de seus diâmetros são de aproximadamente 1,5 a 3,0 x 3,0 a 6,5 µm (MICHALICK, 2004). As formas flageladas (promastigotas) são alongadas, com um flagelo livre e longo, emergindo do corpo do parasito na sua porção anterior. O núcleo é arredondado ou oval e o cinetoplasto, em forma de bastão (MICHALICK, 2004).
2.1.1. Posição taxonômica
A posição taxonômica do gênero Leishmaniapode ser verificada na Figura 1.
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Figura 1 – Posição taxonômica do gênero Leishmania (REYS, 1991).
2.2. Vetor
No Brasil, a leishmaniose visceral tem como vetor duas espécies de flebotomíneos, Lutzomyia longipalpis e Lutzomyia cruzi, conhecidos popularmente como mosquito palha ou birigui. A primeira espécie é a de maior importância por estar nas cinco regiões geográficas do país, e a segunda, específica do estado do Mato Grosso do Sul (BRASIL, 2010).
Estes flebotomíneos fazem parte da Família Psychodidae, Subfamília Phlebotominae. Possuem ciclo de vida dividido nas fases de ovo, larva, pupa e adulto. As formas imaturas são terrestres, desenvolvem-se em ambiente úmido e se alimentam de matéria orgânica, principalmente vegetal, em decomposição. Os adultos são criptozoários, apresentam pequeno porte, entre 2 e 3 mm, e têm o corpo intensamente piloso (NOVO, 2011).
Reino: Protista (Haeckel, 1866).
Sub-reino: Protozoa (Goldfuss, 1817).
Filo: Sarcomastigophora (Honigberg & Balamuth, 1963).
Subfilo: Mastigophora (Deising, 1866).
Classe: Zoomastigophorea (Calkins, 1909).
Ordem: Kinetoplastida (Honigberg, 1963, emend. Vickerman, 1976).
Subordem: Trypanosomatina (Kent, 1880).
Família: Trypanosomatidae (Dofein, 1901, emend. Grobben 1905).
Gênero: Leishmania (Ross, 1903).
Subgênero: Leishmania (Saf ’yanova, 1982).
Espécie: chagasi (Cunha & Chagas, 1937).
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Esses insetos possuem atividade crepuscular e noturna, adaptam-se facilmente ao ambiente peridomiciliar, abrigando-se no interior dos domicílios e em abrigos de animais domésticos (BRASIL, 2010). Ambos os sexos se alimentam, principalmente, de sucos vegetais oriundos de néctar de flores ou de secreções de afídios ricos em carboidrato (NOVO, 2011). Somente as fêmeas dessas espécies tem a hematofagia como hábito alimentar, utilizando o sangue apenas para a maturação folicular ovariana (DIAS, 2003).
Existem pesquisas voltadas à procura de outros invertebrados agindo como vetor da LVC devido a existência de áreas onde a doença é endêmica sem a presença do flebótomo. Uma das hipóteses levantadas é a participação do carrapato (Rhipicephalus sanguineus) como vetor. Estudos encontraram kDNA de Leishmania em carrapatos retirados de cães naturalmente infectados com Leishmania porém, sua competência como vetor e a viabilidade dos parasitas nesses artrópodes não é conhecida (DANTAS-TORRES, 2010).
2.3. Reservatórios
Na área silvestre, os reservatórios da Leishmania (L) chagasi são raposas (Dusicyon vetulus e Cerdocyon thous) e marsupiais (Didelphis albiventris) enquanto na área urbana esse papel é do cão doméstico (Canis familiares) (COSTA, 2005). O papel do homem e do gato como reservatório está sendo questionado (BRASIL, 2010).
2.4. Ciclo Biológico e Transmissão
Os hospedeiros vertebrados e reservatórios são infectados quando formas promastigotas são inoculadas pelas fêmeas dos insetos vetores durante o repasto sanguíneo. Ao se alimentar, o inseto inocula sua saliva que exerce o papel de anticoagulante, causa vasodilatação e antiagregação plaquetária além de efeitos quimiotáticos para monócitos e imunorreguladores com capacidade de interagir com os macrófagos, aumentando sua proliferação e impedindo a ação efetiva destas células na destruição dos parasitos (MICHALICK, 2004).
A internalização da Leishmania ocorre através do processo de endocitose mediado por receptores na superfície do macrófago. Já dentro do vacúolo
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parasitóforo dessas células, a promastigota transforma-se em amastigota e entra em multiplicação intensa até provocar a lise do macrófago. Os amastigotas liberados serão internalizados por outros macrófagos e dar sequência ao processo de multiplicação (MICHALICK, 2004).
A infecção do hospedeiro invertebrado ocorre quando ele ingere as formas amastigotas no momento do repasto em um indivíduo infectado. Ao chegarem ao intestino do vetor, as formas amastigotas sofrem intensa multiplicação e transformação até a sua forma infectante, promastigosta metacíclica. Os parasitas migram para as porções anteriores do aparelho digestivo do inseto comprometendo a válvula estomadeu, seguida da invasão da faringe, cibário e probócide, reiniciando o ciclo de transmissão (MICHALICK, 2004).
Outras vias de transmissão já foram determinadas, como a transmissão transplacentária e a transmissão venérea (BOGGIATTO et al, 2011) (NAUCKE, 2012). A transmissão iatrogênica também pode ocorrer pela transfusão de sangue contaminado (SHERDING, 2006).
2.5. Patogenia e anatomia patológica
Em geral, o dano tecidual na LVC é causado por inflamação granulomatosa e deposição de imunocomplexos (MULLER, 2001). Como tem um caráter sistêmico, todos os órgãos podem ser afetados dependendo da resposta imune do hospedeiro e da evolução da doença (LUVIZOTTO, 2006).
O primeiro sistema envolvido é o hemolinfático, caracterizado por linfadenomegalia com aspecto inicial exsudativo evoluindo para poliferativo- hiperplásico (LUVIZOTTO, 2006). Os linfonodos podem apresentar alterações hipertróficas nas regiões corticais e medulares (SILVA, 2007). A esplenomegalia é um achado comum, apresentando consistência firme, cápsula espessa e rugosa, parênquima granular e grosseiro em casos sintomáticos e crônicos. Em outros casos, o órgão está aumentado de volume, cápsula tensa, deixando transparecer a hiperplasia da polpa branca como pontos brancacentos difusamente distribuídos e identificados na superfície de corte do órgão (LUVIZOTTO, 2006). Dependendo da fase da doença, a medula óssea pode apresentar hipertofia e hiperplasia da série
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leucocitária ou hipocelularidade das linhagens eritrocitárias e leucocitárias, resultando em anemia e trombocitopenia (LUVIZOTTO, 2006; SILVA, 2007).
No fígado é possível observar palidez extrema, consistência firme ou nodulações de tamanhos variados. Microscopicamente é possível observar reação linfohistioplasmocitária periportal com infiltrado de neutrófilos e eosinófilos e proliferação fibroblástica. A reação inflamatória crônica apresenta distribuição focal disseminada e subcapsular, caracterizada por aglomerados de macrófagos, linfócitos, plasmócitos, células com morfologia epitelióide e multinucleadas, com semelhança morfológica a dos granulomas (LUVIZOTTO, 2006).
A progressão da doença depende do tipo de resposta imunológica que ela provoca no indivíduo. A resistência à doença está associada à ativação da resposta Th1 mediada por células (CD4+) e produção de interferon gama, fator de necrose tumoral e IL-2 e IL-12. Enquanto o indivíduo suscetível é aquele que apresenta, durante a progressão da doença, ativação da resposta Th2 com a expansão e proliferação de células B e produção de IL-4, IL-6 e IL-10 Essa resposta humoral é responsável pelo aumento dos níveis séricos de imunoglobulinas, contribuindo para a formação de imunocomplexos cuja deposição em diferentes órgãos, especialmente nos rins, causa danos teciduais graves. (LUVIZOTTO, 2006).
2.6. Achados clínicos e laboratoriais
A LV é uma doença de caráter sistêmico e crônico, afetando tecido cutâneo e vísceras. Os cães podem não apresentar sinal aparente, contudo quando sintomáticos, comumente apresentam mais de um sinal clínico (FREITAS, 2012).
2.6.1. Alterações Dermatológicas
Dentre os sinais clínicos dermatológicos, o principal é a dermatite esfoliativa com descamação branca prateada, podendo ser generalizada, porém mais comum na cabeça, orelhas e extremidades. Pode haver hiperqueratose nasodigital com hipotricose ou alopecia na região e alopecia periocular. Outros achados dermatológicos incluem a onicogrifose, dermatite ulcerativa, paroníquia, dermatite pustular estéril, despigmentação nasal com erosões e ulcerações, dermatite nodular e piodermite bactéria secundária. Os sinais de LVC devem ser diferenciados de
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pênfigo foliáceo, lúpus eritematoso sistêmico, dermatose responsiva ao zinco, eritema migratório necrolítico, adenite sebácea e linfoma (MULLER, 2001).
2.6.2. Alterações Sistêmicas
Dentre as alterações sistêmicas é possível encontrar: hepatomegalia, esplenomegalia, linfadenopatia generalizada, uveíte anterior, conjuntivite, blefarite, pneumonia intersticial, rinite, poliartrite neutrofílica e glomerulonefrite. Essas alterações causam sinais clínicos como secreção ocular, tosse, epistaxe poliúria/polidipsia, icterícia, letargia, intolerância a exercícios, febre, perda de peso progressiva, caquexia, perda muscular, vômito, diarréia, melena (DUARTE, 1986;
SHERDING, 2006; LAPPIN, 2009).
Alguns estudos também relatam o envolvimento do sistema nervoso central acarretando sinais neurológicos como convulsão generalizada, alterações visuais, sinais de paresia de nervos cranianos, sinais de envolvimento vestibular e cerebelar, tetraparesia e tetraplegia, mioclonias, vocalização, andar em círculos e episódios de perseguição à cauda (FEITOSA, 2005).
2.6.3. Alterações hematológicas e bioquímicas
No hemograma, as alterações encontradas são trombocitopenia, anemia, linfopenia, leucocitose com desvio à esquerda e teste de Coombs positivo. No exame bioquímico pode apresentar níveis aumentados de uréia, creatina normal ou aumentada e baixa concentração de albumina (SHERDING, 2006).
Achados laboratoriais de hiperproteinemia, leucopenia associada a linfopenia ou leucocitose também são descritos (SONODA, 2007).
2.7. Diagnóstico
O diagnóstico da LVC é complexo devido ao caráter sistêmico da doença, sua gama de sinais clínicos inespecíficos e os custos dos exames. A combinação dos diferentes exames e a observação dos sinais clínicos é recomendada para a obtenção do diagnóstico mais seguro possível.
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Os testes disponíveis para o diagnóstico da LVC são os exames sorológicos (ensaio imunoenzimático – ELISA e reação de imunofluorescência indireta - RIFI), cultura do parasita, exames parasitológicos (histoquímico - HE e imunohistoquímico - IMIQ), exame molecular (PCR) e o xenodiagnóstico. Sendo mais utilizados os exames sorológicos combinados. O uso conjunto dos exames é mostrado na Figura 2. A partir de março de 2012, foi introduzido novo método de diagnóstico rápido, Dual Path Platform (DPP®) baseado na imunocromatografia.
Figura 2. Diagrama para o diagnóstico de Leishmaniose Visceral Canina (QUEIROZ, et al. 2010).
Por seu aspecto sistêmico e sinais inespecíficos, a anamnese do paciente quanto à região e condições ambientais do local de moradia, uso de repelentes e outros métodos de prevenção devem ser considerados e analisados de forma minuciosa, sendo pontos importantes para a suspeita e o diagnóstico de LVC.
Cão suspeito Exames sorológicos (RIFI e ELISA) RIFI e ELISA
positivo Caso confirmado
positivo
RIFI e ELISA negativos ou discordantes
IMIQ positivo
Caso confirmado
positivo
IMIQ negativo
PCR positivo
Caso confirmado
positivo
PCR negativo
Caso confirmado
negativo
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2.8. Tratamento
O tratamento de animais positivos para leishmaniose visceral é controverso, já que os quimioterápicos utilizados não são capazes de retirar completamente o protozoário do organismo, resultando em animais persistentemente infectados, o que pode representar risco para a saúde animal e humana (TROY, 2009).
Nos locais onde o tratamento é permitido o protocolo de tratamento da LVC é baseado no uso de antimoniais pentavalentes como o Antimoniato de Meglumina (Glucantime® – 100 mg intravenoso ou subcutâneo a cada 24 horas por 3 a 4 semanas) e o Estibogluconato de Sódio (Pentosan® – 30 a 50 mg/kg subcutâneo, a cada 24 horas por 3 a 4 semanas). Como efeitos adversos comuns desse tratamento o cão pode apresentar vômito, diarréia, dor e fibrose muscular, formação de abscessos, tromboflebite e insuficiência renal. Concomitante ao antimônico pentavalente, o Alupurinol (20 mg/kg, via oral, a cada 12 ou 24 horas) pode ser usado como fármaco de manutenção (TROY, 2009; PAPICH, 2009). Outros fármacos utilizados são a Anfotericina B, Miltefosina pentamidina, amonosidina (TROY, 2009).
Cães submetidos a esses protocolos devem ser monitorados frequentemente, especialmente sua função renal por causa do alto potencial nefrotóxico dessas fármacos em animais que podem já apresentar afecção renal.
Esses protocolos levam ao controle da infecção, podendo acarretar na cura clínica do animal, ou seja, o animal deixa de apresentar sinais clínicos. Porém, recidivas dentro de meses ou anos após o final do tratamento são comuns (SHERDING, 2006).
Em 17 de janeiro de 2013 foi publicado, pelo Tribunal Regional Federal da 3ª Região, o Acórdão 8268/2013, que considerou ilegal a Portaria n.º 1.426 Interministerial de 11 de julho de 2008 - MAPA e MS – cujo texto “proíbe o tratamento de leishmaniose visceral canina com produtos de uso humano ou não registrados no Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. (BRASIL, 2013).
No entanto, por outros motivos como as regulamentações sobre e fiscalização de produtos veterinários pelo MAPA, dispositivos legais impedem o tratamento canino
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(BRASIL, 1969 e 2004). O tratamento de escolha para humanos é o Desoxicolato de Anfotericina B e, como alternativas, podem ser usados: Antimoniato de N-metil Glucamina, Isotionato de Pentamidina e Anfotericina B Lipossomal (BRASIL, 2010).
Os medicamentos de uso humano para LV não são comercializados e são distribuídos gratuitamente pelo MS.
2.9. Prevenção e controle
A prevenção da leishmaniose nos cães é feita pelo controle da população canina errante, doação de animais somente após o exame para leishmaniose negativo, uso de telas em canis individuais ou coletivos e uso de coleiras impregnadas com deltametrina a 4% (BRASIL, 2010). Também existem produtos spot-on a base de permetrina com ação repente.
Uma prevenção e controle mais eficaz seriam alcançados com o uso da imunoprofilaxia dos cães. Atualmente, há no mercado duas vacinas contra leishmaniose canina, Leishtec® e Leishimune®, que possuem registro no MAPA.
Seu uso como medida de controle em Saúde Pública não é recomendado pelo MS.
(GONTIJO, 2004; BRASIL, 2009).
O controle da endemia é centrado no diagnóstico e tratamento precoce de casos humanos, redução da população de flebotomíneos, eliminação dos reservatórios (diagnóstico e eutanásia dos animais positivos) e atividades de educação em saúde (BRASIL, 2010).
2.10. Situação epidemiológica em humanos
A LV é uma zoonose com ampla distribuição mundial com registro de casos em todos os continentes, à exceção da Oceania. A cada ano, ocorrem 500.000 casos sendo que 90% deles localizados no Afeganistão, Argélia, Brasil, Irã, Peru, Arábia Saudita, Índia, Nepal e Sudão. A taxa de mortalidade global é apenas estimada, por causa da falta de notificação e diagnóstico em alguns países (WHO, 2007).
No Brasil, a leishmaniose visceral é uma doença endêmica, no entanto têm sido registrados surtos frequentes. Historicamente, os casos estavam restritos a
12
zonas rurais, hoje, encontra-se em expansão para regiões urbanas. Atinge as cinco regiões brasileiras. Nos últimos dez anos, a média anual de casos de LV foi de 3.379 casos e a incidência de 1,9 casos por 100.000 habitantes. (BRASIL, 2010).
No Distrito Federal, em 2011, foram notificadas 94 pessoas com LV tendo sido 42 casos humanos confirmados e 4 óbitos. Em 2012 foram notificados 70 casos e confirmadas 36 pessoas com LV. (GOVERNO DO DISTRITO FEDERAL, 2011;
2012).
2.11. Vigilância epidemiológica em cães
A vigilância epidemiológica em cães é um dos componentes do Programa de Controle da Leishmaniose Visceral (PCLV), cujos objetivos são reduzir as taxas de letalidade e grau de morbidade pelo diagnóstico e tratamento precoces dos casos humanos e diminuir os riscos de transmissão, mediante o controle da população de reservatórios e do agente transmissor (BRASIL, 2010).
As ações de vigilância epidemiológica voltadas aos cães incluem: alertar os serviços e a classe médica veterinária quanto ao risco da transmissão da LVC;
conscientizar a população sobre a ocorrência da doença na região, os sinais clínicos e os métodos para o diagnóstico, bem como as medidas preventivas para eliminação dos prováveis criadouros do vetor (BRASIL, 2010).
O poder público deverá desencadear e implementar as ações de limpeza urbana em terrenos, praças públicas, jardins, logradouros, entre outros, destinando de maneira adequada a matéria orgânica recolhida e, na suspeita clínica de cão, delimitar a área para investigação do foco. Nessa área, deverá ser desencadeada a busca ativa de cães com sinais clínicos, visando a coleta de amostras para exame parasitológico e identificação da espécie de Leishmania. Uma vez confirmada a L.
chagasi, deverá ser coletado material para testes sorológicos de todos os cães da área, a fim de avaliar a prevalência canina e desencadear as demais medidas (BRASIL, 2010).
O monitoramento é feito por inquérito sorológico amostral ou inquérito sorológico censitário, com a utilização das técnicas ELISA e imunofluorescência indireta (RIFI), realizados pelos Laboratórios Centrais e Saúde Pública (Lacen) ou
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laboratórios dos centros de controle de zoonose (BRASIL, 2010). zoonoses A amostra é considerada reagente (ou positiva) quando forem obtidos títulos iguais ou maiores a 1:40 na RIFI. O ELISA é considerado reagente (ou positivo) quando apresentar densidade óptica maior que o ponto de corte (cut off) referente ao intervalo preconizado pelo “kit” utilizado (BRASIL, 2010).
Recentemente, em dezembro de 2011, o MS publicou a Nota Técnica Conjunta 1/2011, substituindo o protocolo de diagnóstico da LVC com a introdução do método de diagnóstico rápido Dual Path Platform (DPP®) como teste de triagem e o ELISA como teste confirmatório (BRASIL, 2011).
3. MATERIAIS E MÉTODOS
Para este trabalho foram selecionados 149 prontuários de caninos atendidos no HVet/UnB em 2011. A seleção foi feita em etapas. Na primeira etapa, entre todos os prontuários de animais atendidos no HVet/UnB em 2011, foram escolhidos os atendimentos em cães que tiveram o registro feito em 2011. Nesta primeira seleção, foram separados 2.400 prontuários cujos registros estavam entre os números de registro geral 117.000 e 119.483. Numa segunda etapa de seleção, foram separados os prontuários dos cães com a primeira consulta realizada entre 10 de janeiro e 21 de dezembro de 2011. Para a última etapa da seleção dos prontuários para este estudo, foi verificado em cada prontuário se atendia aos critérios: 1) suspeita clínica de leishmaniose descrita na ficha clínica ou ficha de retorno; 2) solicitação de exames de rotina com essa suspeita (exemplo: hemograma com LVC como parte da suspeita clínica); e 3) solicitação de exames específicos para a LVC.
Os prontuários selecionados para o estudo foram os que atenderam a uma ou mais dos três critérios acima. Deles foram retirados os seguintes dados: número do registro no HVet/UnB (RG), nome do animal, raça, sexo, ano de nascimento, dados do proprietário, região de moradia, data da consulta, peso, motivo da consulta, exame dermatológico, outros sinais, suspeita clínica, hemograma, [volume globular (VG), hemácias, hemoglobina, leucócitos, volume corpuscular médio (VCM), concentração de hemoglobina corpuscular média (CHCM), proteína plasmática total (PPT), plaquetas, pesquisa de hemoparasitas, metarrubricitos], exames específicos para leishmaniose (citopatologia, ELISA, RIFI, PCR) e diagnóstico final.
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Os dados foram organizados em um banco de dados no programa EXCEL e analisados com o programa StataCorp. 2011.
4. RESULTADOS
Dos 149 prontuários selecionados, 106 tiveram um diagnóstico final definido, sendo 72 animais (68%) com diagnóstico de LVC descartado e 34 (32%) com o diagnóstico confirmado.
A porcentagem de animais suspeitos com algum sinal dermatológico foi de 53,8% (57 animais) sendo que, desses 57 animais, 61,4% (35 animais) tiveram o diagnóstico de LVC confirmado. E, 35,29% (12 animais) dos animais confirmados para LVC não apresentavam sinal dermatológico.
Os parâmetros hematológicos estão representados nas Tabelas 1, 2, 3, 4, 5 e 6.
Tabela 1 – Valores de hemácias dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010).
Hemácias (x103/µl) Diagnóstico de LVC Total Descartado Confirmado
Menor que 5,5 29 (%) 17 (%) 46
Entre 5,5 e 8,5* 32 (%) 14 (%) 46
Maior que 8,5 11 (%) 3 (%) 14
Total 72 34 106
Tabela 2 – Valores de hemoglobina dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010).
Hemoglobina (g/dl) Diagnóstico de LVC Total Descartado Confirmado
Menor 12 29 (%) 15 (%) 44
Entre 12 e 18* 33 (%) 16 (%) 49
Maior que 18 10 (%) 3 (%) 13
Total 72 34 106
15
Tabela 3 – Valores de PPT dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010).
PPT (g/dl) Diagnóstico de LVC Total
Descartado Confirmado
Menor que 6 1 (%) 0 1
Entre 6 e 8* 33 (%) 13 (%) 46
Maior que 8 38 (%) 21 (%) 59
Total 72 34 106
Tabela 4 – Valores de leucócitos dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010).
Leucócitos (x103/ µl) Diagnóstico de LVC Total Descartado Confirmado
Menor que 6 11 (%) 3 (%) 14
Entre 6 e 17* 42 (%) 25 (%) 67
Maior que 17 19 (%) 6 (%) 25
Total 72 34 106
Tabela 5 – Valores de plaquetas dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Ettinger (2010).
Plaquetas (x103) Diagnóstico de LVC Total Descartado Confirmado
Menor que 186 15 (%) 11 (%) 26
Entre 186 e 545* 44 (%) 20 (%) 64
Maior que 545 13 (%) 3 (%) 16
Total 72 34 106
Tabela 6 – Valores de VG dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010).
VG (%) Diagnóstico de LVC Total
Descartado Confirmado
Menor que 36 37 (%) 20 (%) 57
Entre 37 e 55* 25 (%) 11 (%) 36
Maior que 55 10 (%) 3 (%) 13
Total 72 34 106
Tabela 7 – Valores de VCM dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010).
VCM (fl) Diagnóstico de LVC Total
Descartado Confirmado
Menor que 60 1 (%) 1 (%) 2
Entre 60 e 77 60 (%) 31 (%) 91
Maior que 77 11 (%) 2 (%) 13
Total 72 (%) 34 (%) 106
16
Tabela 8 – Valores de CHCM dos animais suspeitos de LVC atendidos no HVet/UnB em 2011. *Valores de referência segundo Raskin (2010).
CHCM (g/dl) Diagnóstico de LVC Total
Descartado Confirmado
Menor que 32 5 (%) 6 (%) 11
Entre 32 e 36* 56 (%) 26 (%) 82
Maior que 36 11 (%) 2 (%) 13
Total 72 (%) 34 (%) 106
No teste ELISA, 26 dos 45 animais com amostras submetidas ao exame tiveram resultado de Não Reagente. Um desses animais teve o diagnóstico final de LVC confirmado. Dos 19 que tiveram o resultado Reagente, um animal teve o seu resultado de leishmaniose descartado. Esse mesmo animal foi reagente ao RIFI com titulação 1:80. A provável razão para esse descarte foi o fato desse animal possuir teste para erlichiose com Score 3 (médio-positivo).
Os resultados encontrados no RIFI, exame geralmente feito em conjunto com o ELISA, estão na Tabela 9. Das 47 amostras processadas, 27 foram negativas no RIFI e das 20 Reagentes, sendo 9 amostras na titulação 1:40, 9 reagentes a 1:80 e 2 amostras reagentes a 1:160.
Tabela 9. Resultados do teste RIFI em relação ao diagnóstico final registrados nos prontuários dos cães suspeitos e confirmados para LVC no HVet/UnB em 2011.
RIFI Diagnóstico LVC
Total Descartado Confirmado
Negativo 26 (96,3%) 1 (3,7%) 27
Regente 1:40 0 (0%) 9 (100%) 9
Reagente 1:80 1 (11,1%) 8 (88,9%) 9
Reagente 1:160 0 (0%) 2 (100%) 2
Total 27 (57,45%) 20 (42,55%) 47
Foram realizadas 46 citologias com os resultados de 31 animais negativos, 15 animais positivos. Dentre os positivos, 12 amostras foram obtidas por punção de medula óssea, 2 por punção de linfonodo e 1 por Imprint de lesão cutânea (Tabela 10).
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Tabela 10. Resultados do teste citologia em relação ao diagnóstico final registrados nos prontuários dos cães suspeitos e confirmados para LVC no HVet/UnB em 2011.
Citologia Diagnóstico LVC
Total Descartado Confirmado
Negativo 21 10 31
Positivo na medula óssea 0 12 12
Positivo na punção de linfonodo 0 2 2
Positivo no Imprint de lesão cutânea 0 1 1
Total 21 25 46
No diagnóstico pela técnica de PCR, das nove amostras submetidas ao exame duas foram positivas, conforme pode ser visualizado na Tabela 11. Nota-se na tabela que um dos animais que foi negativo no PCR foi considerado positivo para LVC. Este animal também teve amostras encaminhadas para RIFI e ELISA com resultado reagente nos dois exames, com titulação 1:80 no RIFI.
Tabela 11. Resultados do teste PCR em relação ao diagnóstico final registrados nos prontuários dos cães suspeitos e confirmados para LVC no HVet/UnB em 2011.
PCR Diagnóstico LVC
Total Descartado Confirmado
Negativo 6 1 7
Positivo 0 2 2
Total 6 3 9
Dos 106 animais com diagnóstico final estabelecido, apenas 64 possuíam a informação acerca da região onde moravam. A distribuição geográfica dos casos confirmados para LVC foi dispersa no território do DF. Os animais com diagnóstico confirmado eram da seguintes localidades: Águas Claras, Lago Norte, Lago Sul, Paranoá, Santa Maria, Sobradinho, Sobradinho II, Taguatinga, Varjão, Vicente Pires e Vila Planalto e está representada na Tabela 12 e na Figura 3.
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Tabela 12 – Número de cães confirmados e suspeitos em relação à localidade de residência.
Localidades Número de cães confirmados
Número de animais suspeitos
Águas Claras 2 4
Lago Norte 6 19
Lago Sul 7 13
Paranoá 1 4
Santa Maria 1 1
Sobradinho 5 9
Sobradinho II 1 1
Taguatinga 2 4
Vicente Pires 1 5
Vila Planalto 1 2
Varjão 2 2
Total 29 64
19
Figura 3 – Distribuição geográfica dos cães confirmados no HVet/UnB no ano de 2011 por localidade
* Cada ponto vermelho representa um caso de LVC confirmado.
5. DISCUSSÃO
É importante ressaltar que todos os animais deste estudo descritivo foram atendidos em um serviço veterinário, logo é esperado que apresentassem alterações clínicas e hematológicas.
Os sinais dermatológicos estavam presentes em 53,8% dos animais considerados suspeitos e, dentre os confirmados, apenas 35,29% apresentavam sinal dermatológico. Esses dados foram semelhantes aos encontrados nos trabalhos de Mattos e colaboradores (2004) e Freitas (2012). O número elevado de animais suspeitos que apresentavam sinais clínicos dermatológicos é evidência que estes sinais são considerados pelos veterinários fortes indícios dessa doença. A maioria dos animais suspeitos de LVC do estudo apresentou anemia, sendo esta uma das alterações mais comuns em cães infectados pela leishmaniose (SONODA, 2007;
FREITAS, 2012). Porém, entre os animais com diagnóstico confirmado para a
20
doença, a frequência de anemia foi menor do que o relatado por Freitas (2012).
Pode ser que essa discrepância esteja relacionada com a fase da doença em curso.
Outra alteração laboratorial comum na leishmaniose é o aumento da concentração de proteína plasmática (PPT). A maioria dos animais confirmados (61%) apresentava essa alteração, conforme a literatura (SHERDING, 2006;
SONODA, 2007; FREITAS, 2010). O aumento da PPT está associado com processos inflamatórios, como o causado pela LVC.
A leucocitose estava presente em 23% dos animais suspeitos, sendo que entre os confirmados, 17% apresentaram essa alteração. No estudo de Sonoda (2007) a leucocitose foi observada em somente 4,3%. A leucocitose é esperada em qualquer afecção que cause uma resposta inflamatória aguda, como a leishmaniose e outras doenças. O valor leucocitário normal dos animais confirmados para LVC pode estar relacionado ao estágio da doença em que se encontravam..
A trombocitopenia estava presente em 24% dos animais suspeitos. Entre os confirmados, apenas 32% apresentavam essa alteração, que é considerada por alguns autores um sinal comum da doença (SHERDING, 2006; SONODA, 2007;
FREITAS, 2010).
No atendimento do HVet/UnB os exames mais frequentes realizados em animais com suspeita de leishmaniose foram os exames sorológicos RIFI/ELISA e o de citologia por punção de medula óssea, como o recomendado na literatura (QUEIROZ, 2010; BRASIL, 2006).
Em 2011, os métodos diagnósticos sorológicos da LVC, recomendados pelo Programa de Vigilância e Controle das Leishmanioses, eram o Ensaio Imunoenzimático (ELISA) como método de triagem e a Reação de Imunofluorescência Indireta (RIFI), (titulação > 1:40) como confirmatório, utilizados na rotina e nos inquéritos caninos em municípios onde já houve registro da doença.
Os resultados das avaliações realizadas pela Fundação Ezequiel Dias (Funed/MG) demonstram que todos os lotes de ELISA liberados para o uso na rede pública, em 2011, tiveram sensibilidade média acima de 95% e a especificidade de 100%. Já a
21
RIFI demonstrou sensibilidade acima de 98,3% e especificidade acima de 94,1%
(BRASIL, 2011).
O animal que apresentou os exames sorológicos para LVC reagentes e teve o diagnóstico descartado também possuía exame sorológico para erlichiose positivo. A erlichiose é uma doença com sinais clínicos similares a LVC, principalmente por causar alterações no organismo pela deposição de imunocomplexos. Alguns testes sorológicos, como o RIFI, podem apresentar resultado falso-positivo para LVC quando o animal possui erlichiose (ZANETTE, 2006). O diagnóstico conclusivo deste animal não estava esclarecido em seu prontuário, apenas que LVC fora descartado.
As localidades com cães confirmados tinham registro de casos humanos conforme a notificação no Sistema de Informação de Agravos de Notificação – SINAN/NET, ou seja, já eram conhecidas por serem áreas de transmissão da LV.
6. CONSIDERAÇÕES FINAIS
O desenvolvimento do trabalho de levantamento dos dados foi verificado dificuldades na busca dos prontuários, pois para não atrapalhar o movimentos do HVet/UnB a pesquisa nos prontuários era em espaço de tempo delimitado. Muitos prontuários estavam com informações incompletas ou ausentes, principalmente em relação ao diagnóstico conclusivo dos pacientes. Notou-se diferença no preenchimento entre os diferentes profissionais. É importante reforçar a necessidade de melhorar o registro e as informações dos pacientes com a utilização de um sistema informatizado para que pesquisas futuras possam ser executadas de forma mais ágil e com uma menor margem de erro.
Nos prontuários analisados não foi observada nenhuma menção em relação à origem e ou história de deslocamento dos animais, não sendo possível afirmar que os animais adquiriram a doença no endereço fornecido pelo prontuário. Também não foi possível identificar se o caso teria sido ou não notificado.
Nos prontuários foi observada a preocupação de alguns proprietários de animais hígidos em fazer o teste diagnóstico para LVC como forma de prevenção da doença.
22
Como a LVC tem diversos métodos diagnósticos, é importante reforçar os critérios de diagnóstico clínico, epidemiológico e, principalmente, o laboratorial com relação à interpretação dos resultados.
O Médico Veterinário deve ter duas perspectivas diferentes desta doença: a visão clínica, individual, na qual o paciente é o mais importante e o diagnóstico falso positivo é um prognóstico ruim, pois aquele indivíduo é parte de uma família. Mas também deve ter a visão de saúde pública, na qual o bem-estar da maioria, incluindo animais e seres humanos, é a meta final e, por essa perspectiva, o diagnóstico falso negativo é o mais crítico, pois o cão poderá constituir uma fonte potencial de propagação deste protozoário. Cada profissional de saúde deve ter consciência da importância do seu papel perante o seu paciente e perante a sociedade, desde sua influência na proteção e prevenção individual até na decisão de que tratamento aquele animal deva receber.
A leishmaniose visceral é uma doença em expansão no tanto no DF como em outros estados do Brasil. Ainda há muito a ser feito para que o controle possa ser alcançado tanto em cães como em humanos.
23
7. REFÊRENCIAS
ALVAR J. et al. Leishmaniasis worldwide and global estimates of its incidence. PLoS ONE, 2012. V. 7(5): e35671. doi:10.1371/journal.pone.0035671. Disponível em: <
http://www.plosone.org/article/info:doi/10.1371/journal.pone.0035671>. Acesso em: 8 de março 2013.
BOGGIATTO, P. M. et al. Transplacental transmission of leishmania infantum as a means for continued disease incidence in north america. PLoS. Negl. Trop. Dis. 5(4) e1019. Abril 2011. Disponível em:
<http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3075227/pdf/pntd.0001019.pdf. >.
Acesso em 11 de dezembro, 2012.
BRASIL. Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Decreto-Lei nº 467, de 13 de fevereiro de 1969. Dispõe sobre a fiscalização de produtos de uso veterinário, dos estabelecimentos que os fabricam e dá outras providências. Disponível em: <
http://www.camara.gov.br/proposicoesWeb/prop_mostrarintegra;jsessionid=24180BB C47C952DD5FA63F43CA068716.node1?codteor=810221&filename=LegislacaoCita da+-PL+7827/2010>. Acesso em: 10 de março de 2013.
______. Decreto nº 5.053, de 22 de abril de 2004. Aprova o regulamento de
fiscalização de produtos de uso veterinário e dos estabelecimentos que os fabriquem ou comerciem, e dá outras providências. Disponível em: <
http://www2.camara.leg.br/legin/fed/decret/2004/decreto-5053-22-abril-2004-531773- publicacaooriginal-13751-pe.html>. Acesso em: 10 de março de 2013.
BRASIL, Ministério da Saúde. Manual de vigilância e controle da leishmaniose visceral. Brasília: Ministério da Saúde, 2006.
______. Programa nacional de vigilância e controle das leishmanioses. Brasília:
Ministério da Saúde, 2008.
______. Guia de vigilância epidemiológica, 7a edição. Brasília: Ministério da Saúde, 2010.
______. Situação epidemiológica das zoonoses de interesse para a saúde pública.
Boletim eletrônico epidemiológico. Ano 10, n° 2, abril, 2010 b. Disponível em:<
http://portal.saude.gov.br/portal/arquivos/pdf/ano10_n02_sit_epidemiol_zoonoses_br .pdf >. Acesso em: 7 de março 2013.BRASIL. Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Departamento de Vigilância das Doenças Transmissíveis. Nota Técnica n° 48 /2011. Esclarecimentos sobre o diagnóstico sorológico da
leishmaniose visceral canina utilizado na rede pública de saúde. Brasília, 2011.
Disponível em: <
http://portal.saude.gov.br/portal/arquivos/pdf/nt_48_2011_diagnostico_lvc_19_9_201 1.pdf>. Acesso em: 10 de março de 2013.
BRASIL. Portaria interministerial nº 1.426 de 11 de julho de 2008. Proíbe o tratamento de leishmaniose visceral canina com produtos de uso humano ou não registrados no Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Disponível em: <
24
http://bvsms.saude.gov.br/bvs/saudelegis/gm/2008/pri1426_11_07_2008.html >.
Acesso em: 10 de março 2013.
BRASIL., Ministério da Saúde. Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento.
Nota de esclarecimento sobra as vacinas antileishmaniose visceral canina registradas no MAPA. Brasília, 2009. Disponível em:<
http://www.agricultura.gov.br/arq_editor/file/Aniamal/Registros_Atorizacoes/Produtos _veterinarios/Comunicacoes_e_instrucoes_tecnicas/Nota_de_esclarecimento%20_s obre_a_vacina___.pdf>. Acesso em: 5 de março 2013.
BRASIL. Tribunal Regional Federal da 3ª Região. Acórdão 8268/2013. DIÁRIO ELETRÔNICO DA JUSTIÇA FEDERAL DA 3ª REGIÃO. Edição nº 11/2013 - São Paulo, quarta-feira, 16 de janeiro de 2013. Disponível em:
<http://web.trf3.jus.br/diario/Consulta/VisualizarDocumentosProcesso?numerosProce sso=200860000120313&data=2013-01-16> acesso em 9/3/2013
CARRANZA-TAMAYO, C. O. et al. Autochthonous visceral leishmaniasis in Brasília, Federal District, Brazil. Rev. Soc. Bras. Med. Trop. Uberaba, v.43, n.4, Aug. 2010.
Disponível em: <http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0037- 86822010000400012&lng=en&nrm=iso>.
COSTA, J. M. L. Epidemiologia das leishmanioses no Brasil. Gazeta Médica da Bahia, 2005.
DANTAS-TORRES, F. et al. Detection of leishmania infantum in rhipicephalus sanguineus ticks from Brazil and Italy. Parasitol Res, 2010: 857-860.
DIAS, F. O. P. et al. Fonte alimentar sanguínea e a peridomiciliação de Lutzomyia longipalpis (Lutz & Neiva, 1912) (Psychodidae, Phlebotominae). Caderno de Saúde Pública, 2003: 1373-1380.
DUARTE, M. I. S. et al. Interstitial pneumonitis in canine visceral leishmaniasis. Rev.
Inst. Med. Trop. S. Paulo [online]. 1986, vol.28, n.6, pp. 431-436.
ETTINGER, S. J., FELDMAN, E. C. Textbook of veterinary internal medicine, 7a ed., volume 1, capítulo 207. Saunders Elsevier, 2010.
FEITOSA, M. M., et al. Avaliação liquórica de cães, com ou sem sintomatologia neurológica, naturalmente acometidos por leishmaniose visceral. Veterinária Notícias, Uberlândia, 2005: 61-69
FREITAS, J. C. C. Clinical and laboratory alterations in dogs naturally infected by Leishmania chagasi. Revista da sociedade brasileira de medicina tropical, jan- fev, 2012: 24-29.
GONTIJO, C. M. F. Leishmaniose visceral no Brasil: quadro atual, desafios e perspectivas. Revista brasileira de epidemiologia , 2004: 338-349.
GOVERNO DO DISTRITO FEDERAL. Subsecretaria de vigilância à saúde. Diretoria de vigilância ambiental. Relatório anual de atividades. [Documento interno]. Brasília,
25
2013.GOVERNO DO DISTRITO FEDERAL. Secretaria de Estado de Saúde.
Gerência de Doenças Crônicas e Outros Agravos Transmissíveis. Núcleo de Controle de Endemias, Doenças Transmissíveis e Emergentes. Informativo
epidemiológico das leishmanioses no DF (leishmaniose visceral e tegumentar americana. Ano 4, nº 1, fevereiro de 2012. Brasília: Governo do Distrito Federal.
Disponível em: <http://www.saude.df.gov.br/sites/100/163/00011599.pdf>.
______. Secretaria de Estado de Saúde. Gerência de Doenças Crônicas e Outros Agravos Transmissíveis. Núcleo de Controle de Endemias, Doenças Transmissíveis e Emergentes. Informativo epidemiológico das leishmanioses no DF
(leishmaniose visceral e tegumentar americana). Ano 5, nº 1, janeiro de 2013.
Brasília: Governo do Distrito Federal. Disponível em:
<http://www.saude.df.gov.br/sites/100/163/00011599.pdf>. Acesso: 26/02/2013.
LAPPIN, M. R. Infectious diseases. In: NELSON, R. W.; COUTO, G. Small animal internal medicine, St: Mosby Elsevier, 2009. 4th Ed.1281-1389.
LUVIZOTTO, M.C.R. Alterações patológicas em animais naturalmente infectados. In:
1ºFórum sobre leishmaniose visceral canina, 2006, Jaboticabal. Anais do Fórum de Leishmaniose Visceral canina 2006. p.15-22.
MAIA-ELKHOURY, A. N. S. et al. Visceral leishmaniasis in Brazil: trends and challenges. Caderno de saúde pública, Dezembro 2008: pg. 2941-2947.
MATTOS JR, D. G. et al. Aspectos clínicos e de laboratório de cães soropositivos para leishmaniose. Arq. Bras. Med. Vet. Zootec. 2004. v.56, n.1, p.119-122.
Disponível em:< http://www.scielo.br/pdf/abmvz/v56n1/a19v56n1.pdf>. Acesso em 20 de fevereiro de 2013.
MICHALICK, M. S. M. Gênero Leishmania. In: NEVES, D. P. Parasitologia Humana, Ed Atheneu, 2004. 11a ed, pg. 41-46..
MULLER, G. H. et al. Muller & Kirk's Small Animal Dermatology. Saunders, 2001.
6th ed.
NAUCKE, T. J., LORENTZ, S. First report of venereal and vertical transmission of canine leishmaniosis from naturally infected dogs inGermany. Parasites & Vectors. 2012, 5:67. Disponível em: <http://www.parasitesandvectors.com/content/pdf/1756- 3305-5-67.pdf >. Acesso em 12 dezembro, 2012.
NOVO, S. P C. Levantamento da fauna de flebotomíneos, vetores de leishmanioses, na Ilha de Marambaia, município de Mangaratiba, Rio de Janeiro, Brasil.
Dissertação [Mestrado] Ciências na área de Saúde Pública. Escola Nacional de Saúde Pública, Fiocruz. Rio de Janeiro, Abril, 2011. Disponível em: <
http://phl.icict.fiocruz.br/cgi-
bin/wxis.exe?IsisScript=phl8/003.xis&cipar=phl8.cip&bool=exp&opc=decorado&exp=
PHLEBOTOMUS/PARASITOL&code=&lang=>. Acesso em: 10 de março de 2013.
OLIVEIRA, C. D. L. et al. Visceral leishmaniasis in large Brazilian cities: challenges for control. Caderno de Saúde Pública, 2008: 2953 - 2958. Disponível em:
26
http://www.scielosp.org/scielo.php?pid=S0102-
311X2008001200026&script=sci_arttext&tlng=pt. Acesso em 10 de março de 2013.
PAPICH, M. G. Manual Saunders Terapêutico Veterinário, 2a edição. São Paulo:
MedVet, 2009.
QUEIROZ, N. M. G. P. et al. Diagnóstico da leishmaniose visceral canina pelas técnicas de imunoistoquímica e PCR em tecidos cutâneos em associação com a RIFI e ELISA teste. Rev. Bras. Parasitol. Vet., Jaboticabal, v. 19, n. 1, p. 32-38, jan.-mar. 2010.
RASKIN, R. Erythrocytes, Leukocytes, and Platelets. In: Saunders Manual of Small Animal Practice, 3th ed. St Louis: Saunders Elsevier, 2006. P. 231 – 255.
REY, L.. Leishmânia e Leishmanioses: os Parasitos. In: REY, L. (ed.). Parasitologia. 2 ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 1991. 182-192 p.
SHERDING, R. G. Toxoplasmosis and other systemic protozoal infections. In:
Saunders Manual of Small Animal Practice, 3th ed. St Louis: Saunders Elsevier, 2006.
SILVA, F. S. Patologia e patogênese da leishmaniose visceral canina. Revista Tropical - Ciências Agrárias e Biológicas, V.1, n. 1, p. 20, 2007.
StataCorp. 2011. Stata Statistical Software: Release 12. College Station, TX:
StataCorp LP.
SONODA, M. C. Leishmaniose visceral canina: aspectos clínico-
epidemiológicos de casos atendidos no período de 1997 a 2007, no Hospital Veterinário da Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia da Universidade de São Paulo. Dissertação [Mestrado] Faculdade de Medicina Veterinária e
Zootecnia, Universidade de São Paulo. São Paulo, 2007. Disponível em:<
http://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/10/10136/tde-12122007-171752/pt- br.php>. Acesso em 20 de fevereiro de 2013.
TROY, G. C. American Leishmaniasis. In: BONAGURA; TWEDT. Kirk's Current Veterinary Therapy XIV. St. Louis: Saunders Elsevier, 2009.
World Health Organization. Control of leishmaniasis. Sixtieth World Health Assembly Resolution 60.10, 2007.
ZANETTE, M. F. Comparação entre os métodos de ELISA, imunofluorescência indireta e imunocromatografia para o diagnóstico da leishmaniose visceral canina. Dissertação [Mestrado]Faculdade de Odontologia de Araçatuba, Curso de Medicina Veterinária, da Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho” – UNESP. Araçatuba, 2006.
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8. ANEXOS
8.1. Ficha clínica utilizada no Hvet/UnB Pagina 1
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Pagina 2
29
Pagina 3
30
Pagina 4
