SEMINÁRIO DE RESPONSABILIDADE TÉCNICA EM ESTABELECIMENTOS DE AQUICULTURA E INDÚSTRIA DE PESCADO

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Emiko Shinozaki Mendes SEMINÁRIO DE RESPONSABILIDADE TÉCNICA_{A cadeia produtiva do camarão}

✓

A cadeia produtiva do camarão Litopenaeus vannamei;

✓

Anatomia e fisiologia do camarão L. vannamei;

✓

Principais enfermidades do camarão L.vannamei;

✓

Legislação e documentação sanitária;

✓

Monitoramento sanitário dos animais cultivados;

✓

Controle de qualidade de camarão.

CONTEÚDO

SEMINÁRIO DE RESPONSABILIDADE TÉCNICA

EM ESTABELECIMENTOS DE AQUICULTURA E

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A CADEIA PRODUTIVA

DO CAMARÃO

Litopenaeus vannamei

Dra. Emiko Shinozaki Mendes

Professora Associada

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Emiko Shinozaki Mendes SEMINÁRIO DE RESPONSABILIDADE TÉCNICA_{A cadeia produtiva do camarão} Brackishwater (5,91 MT-8,53% Marine (20,05 MT-28,92% Freshwater (43,37 MT-62,55% FAO, 2016

AQUICULTURA MUNDIAL

0,0 1,0 2,0 3,0 4,0 5,0 6,0 Korea USA Brazil Japan Philippines Myanmar Chile Thailand Egypt Norway Bangladesh Viet Nam Indonesia India China

Produção (Milhões de toneladas)

42,69 t

0,473 MT 130 _lugar.

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AQUICULTURA NO BRASIL

FAO, 2016

0 50 100 150 200

M. rosenbergii Salminus brasiliensisCichla spp Astyanax fasciatusBrycon spp Oncorhynchus mykissHoplias spp Arapaima gigas Prochilodus sppOsteichthyes Piaractus brachypomusBrycon amazonicus Tambaqui x BrachypomusP. Mesopotamicus Siluroidei CyprinidaeMollusca Mesopotamicus x TambaquiPenaeus vannamei Colossoma macropomumOreochromis

Produção (1000 t.) Freshwater 388800t (82,23(%) Marine 84029 t (17,77(%)

472.829 t/2013

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PAÍSES PRODUTORES DE CAMARÕES

90 _Lugar FAO, 2016 0 1000 2000 3000 4000 Philippines Brazil Mexico Bangladesh India Ecuador Thailand Viet Nam Indonesia China Produção (x1000 t.) 0 500 1000 1500 2000 2500 3000 3500 4000 1998 2000 2002 2004 2006 2008 2010 2012 2014 P ro d u ção ( x 1000 t .) Ano Indonesia China Thailand VietNam

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28,65%

Litopenaeus vannamei x PENEÍDEOS

FAO, 2016 Prod_{(P. vannamei)}= 0,2515Ano - 502,68

R² = 0,9707 Prod_(Peneídeos) = 0,2614Ano - 521,58

R² = 0,979 0,0 0,5 1,0 1,5 2,0 2,5 3,0 3,5 4,0 4,5 5,0 1998 2000 2002 2004 2006 2008 2010 2012 2014 P ro d u ção ( x 1000000 t. ) Ano

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SITUAÇÃO DA CARCINICULTURA BRASILEIRA

FAO, 2011 ABCC, 2011 Dolar

Proc. antidumping (USA) Doenças (IMNV,WSSV) Modificação manejo Cheias Redução 16,84% 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 1994 1996 1998 2000 2002 2004 2006 2008 2010 2012 P ro d u ção ( m il t ) Ano 90.190 t 63.134 t 75-80 mil t

WSSV - NE

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TÉCNICAS E TECNOLOGIA

Propriedade Produtores bandejas Tratamento

solo Equipamento hidrologia Aeradores Tanques berçário

Pequeno 712 655 673 394 432 92

Médio 233 230 228 215 189 84

Grande 52 52 49 51 39 39

Total 997 937 950 660 660 215

(9)

Infra-estrutura

disponível

Larvicultura

2010 - 36,5 milhões de PL

(MAIA, 2011)

Guerrelhas, (2011).

Estado Laboratórios PL/ano (bilhões)

RN

9 8,0

CE

4 3,5

BA

1 1,2

PE

1 0,5

PI

2 1,5

SC

1 0,3

Total

18 15,0

(10)

Infra-estrutura disponível - Processamento

Estado Empresas

Razão social

CE

6 Cajucoco, MMMonteiro, Loyola, Compescal,

Cina, Pesqueira Maguary

RN

9 Enseg, Enpel, Faifs, Aquaproduz, Costa

Azul, Camanor, Produmar, Potiporã, Marine

SC

7 Quality, ICAP, Incopesca, Lago Pesca,

Lapesca, Natubrás, Pesqueira Oceânica

BA

2 Lusomar, Yale

PI

1 Secom

PE

5 Netuno, Angramar, Marítmos Pescados,

Qualimar, Noronha Pescados

PB

1 Aquamaris

AL

1 Aqual

(11)

L

A

R

V

I

C

U

L

T

U

R

A

INÍCIO

(12)

LARVICULTURA

(13)

(14)

Implantação da ponteira

(15)

Tratamento da água

filtração

(16)

Larvicultura interna

(17)

Larvicultura externa

(18)

Sistema de aeração

IMPORTÂNCIA

✓

Oxigenação;

✓

Redução dos efeitos tóxicos (NH

₃

);

✓

Homogeneizar alimentos e larvas;

✓

Estabilização de nutrientes.

Volume requerido: 0,04 - 0,05 m

3

_/min/m

2

Ausência por 2-3 horas poderá ser fatal a 100% das larvas.

Importância do gerador de energia elétrica.

Equipamentos: difusor de ar, soprador.

(19)

REPRODUTORES

(20)

ALIMENTAÇÃO

(21)

ABLAÇÃO

(22)

Bolsa espermática/télico

(23)

Desenvolvimento

embrionário

(24)

PRODUÇÃO DE PÓS-LARVAS

NAUPLIOS

ZOEA

MISIS

(25)

NAUPLIOS

Estágios: 5 a 6 subestágios

Características: fototactismo positivo

Alimentação: reservas nutritivas

Densidade de cultivo

Sistema Japonês: < 75 nauplios/L

Sistema Americano: 100 a 150 larvas/L

Tempo: 30 a 35 horas

Sobrevivência de 65 a 70%.

(26)

ZOEA

herbívora

Classe Detalhes Espécie

Bacillariophyceae Diatomáceas Thalassiosira sp.(1.8-3m)

Chaetoceros sp.(3-8m) Skeletonema costatum

Flagelados (marrom) Isochrysis galbana (2-7m)

Haptophyceae Monnochrysis lutheri

Chlorophyceae Algas verdes Nannochloris sp.(2-3m)

Chlorella sp.

Dunaliella tertiolecta

Prasinophyceae Algas verdes Tetraselmis sp (10-12 m)

(27)

ALGAS

(28)

ARTÊMIA

(29)

MISIS

Estágios: 3 subestágios (M

_I

, M

_II

, M

_III

)

Hábito alimentar: onívoros

Alimentação: Algas + Artemia sp.

Alternativa rotíferos (Brachionus plicatilis);

nematódeo (Panagrellus redivivus).

(30)

PÓS-LARVA

Aparência: camarão adulto

Alimentação: Artemia + ‘Alga” + ração

Ração

Poderá ser feita de carne de peixe,

molusco e/ou crustáceo, enriquecida com

vitaminas e sais minerais. Deverá ser

peletizada, com diâmetro menor que

1,6 mm, possuir um teor de proteína

mínima

de

35%

e

apresentar

boa

estabilidade na água.

Sobrevivência: 70 a 85%

Comercialização: PL

_8-10

(31)

Parâmetros para avaliação

Tamanho compatível com a idade;

Homogeneidade do lote;

Formato da PL;

Relação músculo:intestino (3:1, 6º seg);

Brânquias desenvolvidas;

PL nadando contra corrente;

PL reagem a impacto no recipiente;

Músculo cor amarelada e translúcido;

Sem deformidade;

Carapaça limpa;

Intestino cheio e com gordura.

Teste

de

estresse

Classificação Sobrevivência final (%)

Excepcional > 90 Ótimo 80 – 90 Regular 70 – 80

Ruim < 70

(32)

Qualidade e estresse

Sobrevivência > 75%

(33)

Embalagem de pós-larvas

Saco: 30 litros;

1/3 água; 2/3 ar e amarração;

Densidade: 1000-1500 PL/L

(34)

TRANSPORTE

(35)

SISTEMAS DE CULTIVOS

Viveiro de engorda

Viveiro berçário

Berçário

(36)

TANQUES BERÇÁRIO

Recepção das PL

Fotos: Paulo de Paula Mendes

(37)

Transferência das pós-larvas

✓

Realizar este procedimento, preferencialmente, no início da manhã

ou final da tarde;

✓

Verificar continuamente o estado de estresse das pós-larvas;

✓

Manter a densidade de transporte < 500-800 PL/L;

✓

Fornecer alimento durante o processo;

✓

Oxigênio dissolvido > 5,0 mg/L;

✓

Utilizar 0,002 g calcário/ L de água;

✓

Efetuar a operação no menor tempo possível

(38)

Berçário

Povoamento

Direto

(39)

Facilidade no monitoramento PL;

Aclimatação das PL as condições de campo;

Facilidade na oferta e controle do alimento;

Controle de sanidade “quarentena” das PL adquiridas.

TANQUES BERÇÁRIO

(40)

TANQUES

BERÇÁRIO

(41)

AERAÇÃO

Sistema de aeração: obrigatório (relação de 1,0 CV/50-60 m

3

_);

TANQUES BERÇÁRIO

(42)

Copepoda harpacticoida Artemia sp

Diatomáceas

Alimentação das pós-larvas

Biomassa de artemia

Ração

(43)

Fotos: Paulo de Paula Mendes

BANDEJA

DE

(44)

TANQUES BERÇÁRIO

(45)

VIVEIROS DE ENGORDA

(46)

(47)

WSSV

Prevenção

Hospedeiros

Temperatura

elevada

Vibriose

NHPB

Custo final

Pássaros Foto: Vinatea

(48)

AERAÇÃO

(49)

Fotos: Paulo Mendes

(50)

Fotos: Paulo Mendes

(51)

DESPESCA

(52)

Fotos: Paulo Mendes

(53)

Fotos: Paulo Mendes

(54)

Fotos: Paulo Mendes

(55)

PROCESSO DE MELANIZAÇÃO

DEFESA

MELANOSE

ANTE MORTEM

POST MORTEM

(56)

Foto: Paulo Mendes

(57)

Fotos: Paulo Mendes

(58)

METABISSULFITO DE SÓDIO

Vinhos, cervejas, frutas desidratadas, sucos de

frutas em garrafas, hidro-mel, vinagre, conservas,

batatas fritas industrializadas.

Utilização do conservante na carcinicultura

10 kg de metabissulfito para cada 500 L de água (2%)

de 20''a 10’ (BARBIERI; OSTRENSKY, 2002).

(59)

MÉTODOS DE APLICAÇÃO DO METABISSULFITO DE SÓDIO

H₂O + GELO +

METABISSULFITO PESAGEM ISOPOR(G/C/G)

DESPESCA

MÉTODO 1

DESPESCA H₂O+GELO _{METABISSULFITO}H2O + GELO + PESAGEM

ISOPOR(G/C/G)

MÉTODO 2

MÉTODO 3

CAPTURA DESCABEÇADO E LAVADO SALMOURA CÂMARAS FRIGORÍFICAS