Seçlo: Entomologia e Fitopatologia
COCIETIONILIÍA DOS CAPINS, Antonina graminis, NO BRASIL II.
INTRODUÇÃO DE Neodusmetia san gwani, INIMIGO NATURAL
DA COCHONILHA
JONAS MACHADO DA COSTA 3, ROGER N. W1LLIAMS 4 e MICIIAEL F, SCHtJSTER
Siswpse
'A cochonilha dos capins, Arstonina graminLs Maskell, um dos mais sérios problemas para as gra-míneas forrageiras no Brasil, ataca severamente muitos dos capins promissores do país, conforme já foi registrado na 1a parte dêste trabalho. Chegou-se i. conclusão que o contrôle químico desta praga não é viávêl, devido ao alto Custo de inseticidas, mão-de-obra e equipamentos, necessários a tal prática. Depois de ter sido feita uma avaliação detalhada do problema, decidiu-se que o contrôle biológico seria a prática mais adequada para 9onlbater a praga.
Para tanto, introduziu-se no Brasil o parasito Neodusmeüa san gwani (Rao), portador das me-Ibores possibilidádes de estabelecimento o contrôle da cochonilha, desde quando em outras regi6es como na India e na África, bem como no Texas, EUA, onde foi também introduzido, demonstrou ser muito eficiente, pois, nessas áreas, a coc}ionilha não é mais considerada um problema. Estas• evidêiicias circunstanciais comprovam as nossas afirmativas e aumentam as nossas esperanças de um sucesso considerável no Brasil.
Encontram-se em anexo as instruçóes para a multiplicação dâste parasito, no• laboratório e no campo.
INTRODUÇÃO
• O parasito da cochonilha dos capins, Neodusmetia
san gwani (Rao), foi primeiramente identificado como
Dusmetia sangwani, na India (Rao 1957). Um sinô-nimo é Dusmetia indica (Burks 1957). Demonstrou ser eficiente no contrôle da cochonilha em Delhi e Bangalore, India (Narayanan et ai. 1957). No ano de 1959 foi introduzido nos Estados Unidos da Amé-rica do Norte, para ser avaliado nas condiç6es clima-tológicas do sul do Texas (Dean et ai. 1981).
Nos ?iltimos doze anos, no sul do Texas, foram in-troduzidos seis parasitos para o contrôle biológico da cochonilha. (Dean & Schuster 1958, Dean et ai.
1981). Dois dástes parasitos demonstraram, ser efi-cientes: Anagyrus antoninae Timberlake e Neodns-
Recebido 20 nov. 1969, aceito 10 dez. 1969. Trba1bo realizado era um Projeto da Aliança para o Progresso, sob o Convênio entre o IRIe a IJSAID no Brasil.
5 Antonina gransinis (Maskell) (Homoptera: -
Psetido-oidae); .Neoduametia saagwani (Rao) Hymeooptera: En-cvrtidae).
' E ng.e Agrdnomo. Chefe da Seço de Entomologia do Instituto de Pesquisas e Experimersta5o Agropecssárias do
Leste (IPEAL), Cruz das Almas, Bahia.
4 Entomologista do Instituto de Pesquisas IRI, Salvador,
Bahia. Atrsalmcnte entomologista junto ao Convênio OSU/ ESALÇ, Piracicaba, SSo Paulo.
Entomologista do Texas A&M tniversity, Weslaco, Texas, EUA. Ex-consultor do Instituto de Fesquisas IRI, no Brasil, durante dois meses em 1967.
metia sangu'ani (Dean & Schuster 1958, Sciuster 1966) . Neodusrnetia demonstrou ser mais competi-dor do que o Ana gyrus, substituindo-o, ali, por causa do clima (Schuster, dados não publicados). O
Ana-gyrus foi também introduzido no México (Dean 1960).
O "Departamento de Contrôlc Biológico" do Mé-xico informou que o Neodusmetia está sendo eficien-te nas áreas de Vera Cruz, Vera Cruz e Acapulco, Guerrero, México (comunicado pessoal do Eng.° Agrônomo Eleazar Jimenez Jimenez).
A pedido do Instituto de Pesquisas e Experixnen-tação Agropecuárias do Leste (IPEAL) e do IRI, o Prof. Cincinnato Rory Conçalves (Divisão de Defesa Sanitária Vegetal, Ministério da Agricultura, Rio de Janeiro) conseguiu licença do Ministério da Agricul. tura (Decreto de 5 de outubro de 1067, Diário Ofi-cial de 16 de outubro de 1967), para importar para o Brasil o parasito procedente do Texas, cujo foco de disseminação foi iniciado na Bahia.
MATERIAL E MÉTODOS
Para evitar a introdução de outros insetos, que não fôssem o Neodusmetia, o material foi preparado numa sala de quarentena da estação experimental de Wes-laco, Os parasitos adultos, desta espécie, possuem
Pesq. ogropec. hr0a. 3:339-343. 1970
340 J. M. DA COSTA, R. N. WILLTAMS e M. F. SCI1USTE1t
um periodo de vida muito curto, aproximadamente
12-48 horas (Schuster 1965); assim, para que pu- dessem ser conduzidos a uma distância como esta,
E É e
.11
1
11.
A B FFIG. 1. Adulto de Neodusmetia saugwani (macho): A)
vata dorsal; 3) antena; F) asa anterior.
foram transportados no estado imaturo, dent.ro da cochonilha hospedeira. A fim de se conseguir isto, a cochonilha foi exposta a uma fêmea dêste parasito, durante 8 horas, antes da viagem. O tempo da expo-sição foi correlacionado com o tempo da viagem, para que os adultos começassem a emergir 3 ou 4 dias após a chegada. Para a introdução e transporte, as cochonillias, coro parasitos, foram isoladas individual-mente em pequenos vidros e remetidas ao Rio de Janeiro, via aérea, para inspeção. Duzentas encho-nilhas parasitadas foram levadas para Cruz das Almas, Bahia, no dia 26 de outubro de 1967. Os primeiros parasitos adultos começaram a emergir 4 dias depois.
Cada vidro, antes de ser aberto, foi examinado num microscópio dissector de baixa potência, para se veri ficar a presença do Neoduametia. Abriu-se, apenas, .0
bastante para permitir a coleta dos parasitos vivos e, ]ogo em seguida, foram os vidros tampados e quei-mados.
Cêrca de 750 fêmeas foram usadas para o estabe-lecimento do nic1eo original no laboratório. A prole resultante destas fêmeas somou 3.759 na primeira geração. A metade foi utilizada para aumentar o nicIeo em Cru.z das Almas, sendo o restante distri-buido, pela primeira vez, num pasto de capim ango-linha, no IPEAL, que se encontrava severamente in-festado pela cochonitha. A distribuição no campo foi feita, na primeira oportunidade, para se fazer um estabelecimento permanente. Geralmente, não deve-mos considerar estas distribuições como estabeleci-mento permanente de um determinado agente de con-
o c 5 É o E
FIO, 2. Adult0 d'e Neodusinetia sangwani (ftnca): E) vista dorsal; 1)) pnfil; C) antena. Pesq. a,qso'ec. brar, 5339-343. 1970
COCHONILHA DOS CAPINS, Antoniria gruiniozis, NO BRASIL. IL 311 trôle biológico. Sàinente depois de um ano é que
êstes agentes experimentaram tôdas as mudanças cli-matológicas de uma área e, se sobreviverem a estas mudanças, poderão, então, ser considerados como estabelecidos.
Apesar de cedo ainda, para se fazer um julgamento quanto ao estabelecimento, já se têm noticias da re-cuperação das pastagens, em dois dos locais perto de Cruz das Almas, Bahia, onde primeiro se distribuiu o parasito. Todos os fatôres indicam que o mesmo está aumentando e se disseminando nas condiçâes am-bientafs da Bahia.
MsdtipUcação em laboratório
A sala de reprodução usada no IPEAL, Cruz das Almas, Bahia, não era aquecida, nem ventilada, man-tendo-se tôdas as janelas fechadas e protegidas por papelão. A temperatura ali permaneceu a 26°C
(25,5 -. 27,7), A umidade relativa oscilou entre 82 a 89%. Sob estas condiçíies, o ciclo de vida (desde a desova até a emersão dos adultos) foi de 23 dias. Na multiplicação do parasito foram usadas caixas cilíndricas de fibra, com capacidade ele 1 galão (3.785 ml) contornadas por sacos pI'sticos. Em ca-da caixa foram colocaca-das, juntamente com o capim hospedeiro, 500 cochonil}ias e 75 fêmeas do parasito. As caixas foram lacradas e mantidas assim até o vigé-simo dia. Depois foram abertas, diàriawente, para coletar os adultos que haviam emergido da nilha e que foram usados para infestar Outras cocho-nilhas, no laboratório, ou para distribuição no campo. Também, parte dêstes parasitos foi distribuída entre os fazendeiros. l-Iouve uma vantagem na distribuição de mudas parasitadas, no campo, pois isto permitiu que os parasitos se espalhassem nas pastagens infes-tadas pela espécie Antonina graminis antes de os adul-tos terem emergido das cochonilhas hospedeiras. Além disso, a distribuição podia ser feita a qualquer dis-tância, pois o problema do curto ciclo de vida dos parasitos, neste caso, não era significativo.
RESULTADOS
Ficou estabelecido que o IPEAL enviará culturas do parasito não só às seis instituições filiadas ao Mi-nistério da Agricultura, mas também a tôda e qual-quer outra entidade interessada na sua multiplicação para distribuição entre os fazendeiros. O que já foi distribuído, até o momento, em áreas diferentes, está especificado no Quadro 1 (24 de novembro de 1967 a 19 de maio de 1968). Um total de 73.827 fêmeas foram criadas e enviadas a outras entidades.
QUADRO 1. Dio6ribuiçrlo, tio Brasil, do parasito da cocho.
nilha dos capins, Neodi.iametia eangwani, durantø os seis
primeira meses após a sota introdugüe, a
Munaipalidade e Quantidade
Local de pernoites
asSado
dzstrzbuidc IPEAL Cruz das Almas, Bahia 3. Tabuleiro a 8 km de C. Almas Cruz duo Almas, Bahia 600 Fazeuda Paraico . - Cruz duo Almas, Bahia 300
Fazenda "TesO Início" Co,. Mangabeira, Bahia 1.000 Fazeod 'Araá" Coneeiç90 do Almeida, Bahia 900 Fazenda "ConceiçSo" Jrarzi. Bahia' 1.100 Recife, Pernanzbun' 6.000 EnSr.rodovialt0.AntônioBR -11 G Santo Amzrs, Bahia . 900 -
Fazenda "Api" . Cata. Bahia . 600
Fazenda "UniSo" Pojuca Bahia 1500 A 5 kno da Fazenda "Unilio" Pojuca, Bahia . 800
A 10 km da Fazenda "Uniu0" Pouea, Bahia .
Margem estrada perto da cidade S. Miguol, Bahia . 600
Margens rodovia Bahia-Feira S. SebastiAo. Bahia . . 600
Fazenda "Alipio L'spinheir&' Itapetinga. Bahia 1.100 A 8 km de Itopotinga . Itapetinga, llshja 1,000
Fazenda Sr.' Juvenal . Baixa do Palmeira, Bahia 1.000
Fazenda C:Almeida C. do Almeida, Bahia 1.000 IPEAL .. Cruz das Almas, Bahia 5.000' Fazenda "ArapV' . Cruz das Almas, Bahia 5.000
Krn 47 IPEACO . . . Itagual, Rio de 7anciro . 10.000.
IRI Matito, 200 Paulo' 10.000 F,at. Exp. QuimonoS Aracajá. Sergipe . 2.000
Fazenda "Araçiz" C. do Almeida, Bahia 3.020 Fozond "Alegre" Crua das Almas, Bahia ' 1.000
Fazenda."Azapi" C. do Almeida, Bahia 1,000 Fazenda . Uberaba, Minas GeTraia . 2.100
B000la de Agrouomia ' . ' Fortaleza, Ceará . 3.000
Fazenda "Aniaralina" .. Itapotinga, Bahia . 2.400
Dennonstrag5o ANCAI1BA-IRI Castro Alvas. Bahia , 400
Fazenda do Estado - Itambd . Itambé, Bahia - 400
Fazenda "J'uvinio Oliveira" Itap,tinga, Bahia ' ' 801)
Fazenda "Amun-al)n" "' Itapetinga, Bahia ,. 400 Parque "Ondina" . Salvador, Bahia ' 1200
Total ' . . . ,
a Êts, parasitas já di-ztribiii10 000 provenientes do núcleo original estabek-rido cnn Crua dx Almas, Bahia.
MOM00141
COMO CRIAR E LIBERAR Neodu.smetia san gwani
A' pedido de diversos entomologistas interessados neste proleto, estamos anexando instruçées para as pessoas Interessadas em criar e liberar o parasito.
Criaçao enu laboratório
O principal fator limitante da multiplicação dos - parasitos no loboratório é demasiada umidade dentro do recipiente que está sendo usado para criar os para-sitos. Grande parte dêsse problema pode ser elimi-nada secando-se mudas de capim infestado com co-chonilJaa um dia ou dois,' em local protegido da chuva. Métodos alternativos são: abrir os recipientes depois que foram e.opostos aos parasitos durante uma sema-na ou 10 dias (depois que os parasitos adultos
342 J. M. DA COSTA. R. N. WILLIAMS e M. F. SCHUSTER originais estiverem mortos, o que geralmente se dá
dentro de 48 horas), ou adicionar um secante n recipiente.
O único instrumento especial necessário para criar
Neodusmetia no laboratório é um aspirador pequeno e barato, usado para coletar adultos. Instruçães sôbre como fazer aspiradores podem ser encontradas em muitos compêndios de entomologia.
1. Colete gramíneas infestadas pela cochonilha (angola, favorita, Rhodes, pangola, capim de burro ou angolinha). Corte o capim em pedaços pequenos, de 3 a 5 centímetros de comprimento, tendo-se o cuidado
de manter o Antonina intato.
2. Ponha os pequenos pedaços de capim em um recipiente, até que se tenham aproximadamente 500 cochonilhas no recipiente (conte as cochonilhas as primeiras vêzes até que possa estimar aproximada-mente 500). O recipiente mais• prático para êsse
trabalho é um saco plástico de 3 a 4 litros de ca-pacidade.
• 3. Ponha de 50 a 70 parasitas Neodusmetia adul-tos (machos e fêmeas) no recipiente com o capim infestado pela cochanilha e feche muito• bem o reci-piente (lembre-se que êstes parasitos são muito pe-quenos e escaparão fàcilmente se houver qualquer abertura no recipiente).
4. Guarde o saco, num recinto onde não penetre diretamente a luz solar. Dependendo da temperatura, a próxima geração começará a emergir, dentro de 17
(a 30°C) a 47 dias (a 20 0C).
5. Depois do 17.° dia, examine os recipientes dià-. riamente até ' que os parasitas adultos comecem a emergir. Logo que notar a emersão dos. primeiros adultos, retire os mesmos três vêzes por dia (de manhã, ao meio-dia e à tarde) com o auxilio de um aspirador. Logo saberá quanto tempo é necessário para a passagem de ôvo à forma adulta, nas suas con-diç6es de temperatura, umidade, etc.
. Os adultos coletados poderão ser usados no labo-ratório, usando o mesmo procedimento, oi poderão ser usados para .liberação no campo. Se forem libe-rados no campo, é conveniente mantê-los à .sombra, em lugar fresco, até a hora da 'liberação. É 'conve-niente liberá-los ao fim da tarde, em lugar protegido. Os primeiros pastos a serem infestados deverão ser aquêles que serão usados para tirar mudas para outras áreas. Dêsse modo, os parasitos podem ser espalhados com as mudas.
Libetaçêo dos parositos no campo
1. Se os parasitos forem recebidos na forma de adultos, libere-os assim que fór praticável, em uma
área protegida, infestada de cochonilhas, preferivel-mente no fim ' da tarde. Isto deverá ser na área onde mudas serão retiradas. A área deverá ser 'marcada com uma estaca alta para possibilitar 'o reconheci-mento. Distribua o material sôbre uma área de apro-ximadamente um metro quadrado.
Se os primeiros parasitos forem recebidos na forma. imatura, dentro das cochonilhas, é recomendável colo-car-se metade dêles em uma área protegida no pasto (marcada com estaca) e conservar-se a outra metade" em um saco plástico bem fechado até que os adultos comecem a emergir. Esta medida é recomendada para que se possa observar a aparência e o hábito de pular dos, adultos. Assim que os adultos começarem a emergir, coloque-os em um segundo local no pasto que será usado para o plantio. Distribua cada metade do material sôbre uma área de cêrca de um metro quadrado. Marque, sempre, cada área com uma es-taca.
2. Após 90 dias, corte a(s) área(s) infestada(s). Corte bem rente ao solo a fim de obter tantas co-chonilhas parasitadas quanto possível. Divida o ma-terial cortado em 4 partes e distribua em 4 novas áreas no pasto, a uma distância de 200 'metros uma da outra. Escolha as áreas que estiverem altamente in-festadas e ,tenha a certeza ,de marcar estas áreas, de um metro quadrado,' com uma estaca.
3. 'Proceda da mesma maneira, isto é, a cada 90 dias corte o capim, divida e mude para novas áreas a 200 metros de distância Usando êste sistema, em pouco tempo a propriedade inteira está infestada com
Neodusinetia.
4. É relativamente fácil verificar-se' a ' presença do parasito. Simplesmente colete' algumas ,m'udas de capim infestãdas com a cochonilha da área de um metro quadrado após 90 dias (ou de qualquer outra área) e coloque em um 'vidro de bôca larga ou em um saco plástica pequeno * Feche bem o reci-piente e observe diàriamente para ,verificar se' há parasitas prêtos, pequeninos. Em poucos dias' os parasitas começarão a emergir, se estiverem presentes (não confunda os parasitas com as ninfas da cacho-nilha; estas são muito menores, de côr mais clara, e caminham muito vagarosamente; os parasitas adul-tos se locomovem pulando)
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RIIODESCRASS SCALE, Antonita graminis 1N BRAZIL. II. 1NTRODUCTION OF
Neodusrnetia sangwani, NATURAL ENEMY OF RHODESGRASS SCALE Abstraci
The Rhodesgrass scale, Antonina graminis Maskeli, one ai tho rnost serious problems aí forago grasses in
Brazil, severely attacks many aí the pronlising grasses ol the country, as reported in Part 1 o( this work.
Chemical contrai ai Lhis rest in not economical due to the great cost of insecticide, labor and equipment
whicli would he needed on pastures. After evaluating the probiem in detail it was decided that biolagical contrai appeared ta be the rnost practical approach to the problern.
The parasito Neodusmeti.a .stingwani (Rao) was introduced into Brazii because it offered the greatest
possibility of successfui establishment and control. It is apparently giving good control af the seale in the
Indian and African Continents as Fshodesgrass scale is not considered a problem in these areas where N.
sangwaril is establi.shed. This circunistantial evidence, along with that its spectaeular contrai in Texas gives the indication tbat it will do the sarne in Brazil.
Annexcd are instructions for Lhe rnultipiication ai this parasito both in the laboratory and in the field.
