• Nenhum resultado encontrado

UNIVERSIDADE FEDERAL RURAL DE PERNAMBUCO (UFRPE) UNIDADE ACADÊMICA DE GARANHUNS (UAG)

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2021

Share "UNIVERSIDADE FEDERAL RURAL DE PERNAMBUCO (UFRPE) UNIDADE ACADÊMICA DE GARANHUNS (UAG)"

Copied!
17
0
0

Texto

(1)

UNIVERSIDADE FEDERAL RURAL DE PERNAMBUCO (UFRPE)

UNIDADE ACADÊMICA DE GARANHUNS (UAG)

EDITAL FACEPE 08/2012 apoio a projetos institucionais de absorção de jovens doutores na pós-graduação (programa nacional de pós-doutorado) parceria capes – PNPD

ATIVIDADE ENZIMÁTICA E PERFIS DE ÁCIDOS GRAXOS DA COMUNIDADE

MICROBIANA DE SOLOS E RESÍDUOS AGROINDUSTRIAIS ENVOLVIDOS NA

SUPRESSIVIDADE DA PODRIDÃO RADICULAR DA MANDIOCA

Coordenadora da proposta: Dra. Erika Valente de Medeiros

1

1Dra. Em Fitotecnia/Proteção de plantas (2008). Profa. Adjunta e do Mestrado Em Produção Agrícola da Universidade Federal Rural de

(2)

1. IDENTIFICAÇÃO DA PROPOSTA

TÍTULO DO PROJETO: Atividade enzimática e perfis de ácidos graxos da comunidade microbiana de solos e resíduos agroindustriais envolvidas na supressividade da podridão radicular da mandioca

REFERÊNCIA DO EDITAL: EDITAL FACEPE 08/2012 apoio a projetos institucionais de absorção de jovens doutores na pós-graduação (programa nacional de pós-doutorado) parceria capes – PNPD COORDENADOR DO PROJETO: Erika Valente de Medeiros

FORMAÇÃO PROFISSIONAL: Doutora em Fitotecnia: Proteção de Plantas

INSTITUIÇÃO EXECUTORA: Universidade Federal Rural de Pernambuco- Unidade Acadêmica de Garanhuns

(3)

2. RESUMO

O cultivo da mandioca tem grande expressão econômica no Brasil e no mundo devido à sua importância na alimentação humana, animal e em processos industriais, sendo a sexta cultura de maior importância mundial. A Região Nordeste é uma das principais produtoras nacionais, estando vinculado a uma produção na qual utiliza pouca ou nenhuma tecnologia, o que vem contribuindo para o aumento do número e intensidade de doenças. Dentre estas, a podridão radicular da mandioca vem se tornando uma das principais causas de perdas. É de difícil controle, pois além de existir uma diversidade de fitopatógenos envolvidos, o controle químico é ineficiente e antieconômico, pois está fortemente associadas à riscos ambientais, econômicos e sociais. Por isso, existe uma forte necessidade da adoção de medidas integradas de manejo da doença que preconizem práticas sustentáveis e accessíveis a agricultores familiares. Neste sentido, avaliação de fontes de resíduos agroindustriais sobre a supressividade de tais doenças poderá ser uma alternativa desejável, pois poderá possibilitar o manejo das doenças com eficiência, menores danos ambientais por estar reciclando resíduos da agroindústria, e melhor qualidade do produto, com valor agregado, devido à inexistência de resíduos de agrotóxicos e pelos resíduos serem disponíveis na região. Por isso, o objetivo do presente trabalho será avaliar a atividade enzimática, perfis de ácidos graxos, atributos microbianos e químicos envolvidos na supressividade de fontes de matéria orgânica adicionados à solos sobre a podridão radicular da mandioca, causada por Scytalidium lignicola e Fusarium spp., para determinar parâmetros capazes de induzir a supressividade da doença para o direcionamento de programas de controle integrado da podridão radicular da mandioca, visando fortalecer a pesquisa de impacto no interior do estado, contribuído para o curso de Pós-graduação em Produção Agrícola, na unidade Acadêmica de Garanhuns da UFRPE, além de estimular arranjos produtivos locais na região.

Palavras-chave: Manihot esculenta, podridão radicular, supressividade, cama de aviário, esterco

(4)

3. QUALIFICAÇÃO DO PRINCIPAL PROBLEMA A SER ABORDADO

A mandioca (Manihot esculenta, Crantz) têm grande expressão econômica no Brasil e no mundo pelo seu importante valor na alimentação humana, animal e na industrialização. Apresenta grande importância social, pois contribui para a sobrevivência de significativa parcela da população de baixa renda, como fonte alimentícia e como economia para a agricultura familiar rural (SOUZA; TARGINO, 2009).

É a sexta cultura de maior produção e expressão do planeta, estando atrás apenas de soja, trigo, arroz, milho e batata (FAO 2012). O Brasil é o segundo maior produtor mundial e esta cultura é a segunda de maior expressão econômica nacional, com uma safra estimada para 2012 de 25,2 milhões de toneladas (IBGE, 2011). Cerca de 37% da produção nacional encontra-se no Nordeste, onde a produção é toda voltada para a elaboração artesanal de farinha, enquanto que a mandioca mansa, é diretamente utilizada para alimentação humana (SOUZA, 2009). No estado de Pernambuco, os principais municípios produtores são: Araripina, Jucati, São João, Caetés, Jupi e Ipubi (CUENCA; MANDARINO, 2006)

A produção desta cultura concentra-se em pequenos produtores que utilizam manivas de má qualidade e baixo nível tecnológico, o que reduz o potencial de produção devido envelhecimento fisiológico, provocado pela constante multiplicação, por esta ser uma fonte de disseminação de diversas doenças, principalmente as sistêmicas (OLIVEIRA; FIORINE, 2006), e pela forma contínua e intensiva, associada à ausência de rotação de culturas e práticas culturais eficientes, o que resulta no aumento do número e intensidade de doenças.

Dentre essas, a podridão radicular da mandioca vem se tornando uma doença de alto impacto econômico e social para o estado de Pernambuco, pois está provocando uma queda progressiva na produtividade da mandioca, além de inutilizar as áreas para plantio ao longo dos ciclos da cultura.

Diversos fitopatógenos podem estar associado à esta síndrome, principalmente Phytophthora drechsleri Tucker (LIMA et al., 1993; MUNIZ et al., 2006) e Fusarium sp. Além desses, os fungos Diplodia sp, Sytalidium sp e Botriodiplodia sp podem estar envolvidos nesta síndrome (EMBRAPA, 2012).

Esta doença vem sendo responsável por grandes perdas na produção de mandioca no Nordeste. No Maranhão, os fungos Phytophthora spp. e Fusarium spp. respondem por 30 e 70% das perdas, respectivamente, podendo chegar até 100% em ataques severos (FUKUDA, 1991).

É de difícil controle por ser uma doença radicular, pois além de existir uma diversidade de fitopatógenos envolvidos, o controle químico é ineficiente e antieconômico, pois está fortemente associadas à riscos ambientais, econômicos e sociais. Por isso, existe uma forte necessidade da adoção de medidas integradas de manejo da doença que preconizem práticas sustentáveis e accessíveis a agricultores familiares.

A utilização de variedades tolerantes é uma estratégia importante, mas deve ser utilizada com outras medidas de controle, pois utilizada individualmente dificilmente obterá resultados eficientes (MICHEREFF, 2005). Práticas culturais devem ser empregadas visando a integração de diversas estratégias de controle integrado, como a rotação de culturas, cultivo consorciado, utilização de manivas de alta qualidade fisiológica e sanitária (OLIVEIRA; FIORINE, 2006) e manipulação do solo para a indução da supressividade pelo manejo físico, químico, biológico e bioquímico do solo na qual interferem isoladamente ou em interação acelerando ou retardando o desenvolvimento, crescimento e sobrevivência de patógenos radiculares e no estímulo ou inibição da doença (BETTIOL; GHINI, 2005).

(5)

Neste sentido, a matéria orgânica é um forte aliado no controle aos fitopatógenos, pois aumenta a atividade microbiana (mecanismos de antibiose, hiperparasitismo, indução da resistência e competição por nutrientes, oxigênio e CO2, entre outros), melhora as características químicas e físicas dos solos (HOITINK; BOEHM, 1999). A aplicação de diversas fontes de matéria orgânica vem sendo estudada no manejo do patógeno Phytophthora spp. (ERWIN; RIBEIRO, 1996), um dos principais patógenos envolvidos na podridão radicular da mandioca.

O caráter saprofítico e patogênico de alguns fitopatógenos está relacionado a alguns fatores edáficos de natureza biótica, como as interações antagônicas com a microbiota do solo, microbiota esta que pode ser qualificada e quantificada através de perfis de ácidos graxos- FAMES (ACOSTA-MARTINÉZ et al., 2008) e fatores abióticos como temperatura, umidade, aeração, concentração de CO2 e pH do solo (BAKER;

MARTINSON, 1970). As interações entre esses e outros fatores podem conduzir à supressividade dos solos e pode ser utilizado como uma forma de desenvolvimento de estratégias de manejo desta síndrome (BETTIOL; GHINI, 2005; ALABOUVETTE et al., 2006; BETTIOL et al., 2009). As principais características de solos supressivos, de acordo com Baker; Cook (1974), é que o patógeno não se estabelece, se estabelece, mas não produz doença ou se estabelece por um tempo e sofre declínio.

Devido à importância desta cultura para o Brasil e para o mundo e por inexistirem trabalhos acerca dos principais fatores envolvidos na supressividade desta doença quando incorporada matéria orgânica ao solo, o objetivo do presente trabalho será avaliar os parâmetros de atividade enzimática, comunidade microbiana através da análise de perfis de ácidos graxos (FAMES), atributos microbiano e químicos de solos adicionados à fontes de matéria orgânica sobre a supressividade da podridão radicular da mandioca, causadas por Fusarium spp. e Scytalidium lignicola, visando o estímulo ao aumento da quantidade e qualidade da produção para o desenvolvimento de arranjos produtivos locais.

(6)

4. OBJETIVOS E METAS A SEREM ALCANÇADOS

Geral

 Avaliar atividades enzimáticas, perfis de ácido graxo (FAMES), atributos microbianos e químicos envolvidos na supressividade de solos adicionados à fontes de matéria orgânica sobre a podridão radicular da mandioca, causada por Fusarium spp. e Scytalidium lignicola.

Específicos

 Selecionar isolados patogênicos dos gêneros Fusarium spp. e Scytalidium lignicola envolvidos na podridão radicular da mandioca;

 Identificar, através da biologia molecular, preservar e catalogar os micro-organismos a serem utilizados nos experimentos;

 Analisar o efeito de fontes de resíduos agroindustriais sobre a supressividade da severidade da podridão radicular da mandioca;

 Avaliar os atributos químicos de rotina (pH, K, P, Ca, Mg e Al), atributos microbianos (comunidade microbiana através de perfis de ácidos graxos- FAMES, carbono e nitrogênio da biomassa microbiana, respiração basal, carbono orgânico total, quociente metabólico e microbiano) e atributos bioquímicos (atividade enzimática de enzimas envolvidas nos ciclos do C, N, P e S);

 Determinar a capacidade supressiva ou condutiva de tais fontes de matéria orgânica sobre a podridão radicular da mandioca, através da seleção de atributos pela análise multivariada de componentes principais e de agrupamento;

 Determinar a capacidade supressiva ou condutiva de tais fontes de matéria orgânica sobre a podridão radicular da mandioca;

 Formar recursos humanos em ecologia e manejo de doenças radiculares de solos.

Metas

 Em três anos indicar fontes e doses de material orgânico disponível na região para manipulação do solo visando a supressividade da doença, causada por dois dos principais patógenos envolvidos nesta síndrome no estado de Pernambuco: Fusarium spp. e Scytalidium lignicola;

 Aumentar a publicação de artigos, com equipamentos e análises de nível internacional;

 Fortalecer o grupo de pesquisa “Matéria orgânica do solo” e “Uso e manejo do solo e da água”, contribuindo com a interiorização das pesquisas nos novos campus do interior do estado (UFRPE- Unidade Acadêmica de Garanhuns).

(7)

 Formar recursos humanos em ecologia e manejo de doenças radiculares de solos, contribuindo para a renovação de quadros no programa de Pós-graduação em Produção Agrícola da UAG/UFRPE;

 Em três anos apoiar a política de desenvolvimento produtivo, envolvendo a universidade e empresas geradoras de resíduos agroindustriais para solução do problema da podridão radicular da mandioca no estado de Pernambuco.

5. METODOLOGIA A SER EMPREGADA

Ação 1. Obtenção de isolados patogênicos de Fusarium spp. e Scytalidium lignicola no estado de Pernambuco

Para o isolado de Fusarium spp. serão coletadas amostras de plantas com sintomas e/ou sinais da doença do município de São João, e de Scytalidium lignicola em Caetés, pois em estudos prévios, foi identificado estes patógeno como sendo os principais agentes causal desta doença em mandioca nesses Municípios, respectivamente.

As amostras serão processadas em laboratório para isolamento, repicagem, até o aparecimento de cultura pura, quando então serão identificadas suas estruturas em microscópio óptico.

Após essa pré-identificação, serão realizados testes de patogenicidade conforme (SERRA et al., 2009), quando então será selecionado um isolado patogênico de Fusarium spp. e Scytalidium lignicola.

Estes isolados serão encaminhados para o laboratório de epidemiologia de doenças de plantas do professor Sami Jorge Michereff, onde será extraído o material genético, purificado, seqüenciado o produto da PCR por Kit e enviado para seqüenciamento na empresa Macrogen, Coréia do Sul. Os eletroferogramas serão analisados no programa BioEdit (HALL, 1999).

Ação 2. Coleta de solos

Os solos utilizados nos experimentos serão coletados no Estado de Pernambuco, em mata Nativa (Caatinga), a uma profundidade de 0-20 cm e logo enviados para laboratório para caracterização química e física. Será selecionado solo com potencial produtor de mandioca.

Ação 3. Avaliação de materiais orgânicos sobre a severidade da podridão radicular da mandioca

(8)

Em cada experimento, um inóculo patogênico será preparado a partir de um isolado coletado nas raízes de mandioca. Estes serão colocados em frascos de vidro contendo substrato constituído de 250 g de arroz parborizado descascado e 150 mL de água destilada (APA), esterilizado em autoclave (120ºC, 1 atm, 30 min) e resfriado. Em cada frasco serão colocados cinco discos de 5 mm de diâmetro de cultura do fungo em meio BDA com 10 dias de idade.

Os frascos contendo os substratos serão incubados a 25°C e fotoperíodo de 12 h, sendo agitados a cada dois dias para distribuição uniforme dos propágulos do fungo nas misturas, durante 21 dias. Depois será acondicionado em sacos de papel para secagem a 35°C por 72h. Posteriormente será triturado, peneirado e pesado conforme alíquota a ser incorporada ao solo.

As amostras de solo serão acondicionadas em vasos plásticos com capacidade de 3 Kg, onde serão adicionados os resíduos agroindustriais: resíduo da indústrias de café (Café Ouro Verde), de leite (Lácteos Brasil), farinha (casas de farinha do Agreste Meridional), e da produção animal: esterco bovino, esterco caprino, e cama de aviário), nas diferentes concentrações e após 3 dias, serão infestadas ou não, separadamente, com o fungo na densidade de 50 mg de substrato colonizado Kg-1 de solo.

Após 14 dias de infestação serão coletadas amostras do solo para determinação dos atributos químicos, microbianos e bioquímicos. Logo após essa coleta, serão colocadas duas estacas de mandioca medindo de 8-10 cm de comprimento com 2-3 gemas desinfestadas e secas.

O delineamento experimental será inteiramente casualizado, distribuídos em esquema fatorial 6 x 2 + 2, sendo o primeiro fator fonte de resíduo agroindustriais (do café, do leite, da farinha, esterco bovino, esterco caprino e cama de aviário), em concentrações recomendadas após análise e o segundo fator, com infestação e sem infestação do patógeno, mais duas testemunhas: sem material orgânico, sem infestação e sem material orgânico com infestação, com quatro repetições.

A parcela experimental consistirá de um vaso e serão mantidas em casa de vegetação, por um período de até 5 meses, onde serão realizadas novas coletas do solo para determinação dos atributos químicos, microbianos e bioquímicos.

Avaliação da severidade

A severidade será avaliada por com o auxílio de uma escala de notas. Com os dados obtidos na escala de notas, serão calculados os índices de severidade da doença conforme McKinney (1923), pela expressão: SVF ou SVR = [Σ(grau da escala x freqüência)/(número total de unidades x grau máximo da escala)]x100.

Ação 4. Atividade enzimática, atributos químicos, microbianos e perfis de ácidos graxos da comunidade microbiana de solos e matéria orgânica envolvidas na supressividade da podridão radicular da mandioca

Antes e depois da inoculação do fitopatógeno em cada experimento, serão coletadas amostras das misturas para determinação dos atributos bioquímicos (atividades enzimática), microbianos com os FAMES e químicos.

(9)

Atividade enzimática das misturas

Serão determinadas atividades enzimáticas envolvidas nos ciclos, como uréase (ciclo do N), β-Glucosidade (ciclo do C), fosfatase acida e alcalina (ciclo do P) e Aril-sulfatase (ciclo do S). Além da atividade microbiana determinada pelo método de hidrólise de diacetato de fluoresceína (FDA).

A atividade urease será estimada segundo Kandeler & Gerber (1988). A atividade da β-Glucosidade, fosfatase acida e alcalina e Aril-sulfatase serão determinadas segundo a metodologia proposta por Evazi & Tabatabai (1988), Evazi e Tabatabai, (1977) e Tabatabai & Bremmer (1972), respectivamente. A estimativa da atividade microbiana será realizada pelo método de hidrólise do diacetato de fluoresceína (CHEN et al., 1988)

Análise do perfil de ácidos graxos da população microbiana das misturas (FAMES)

A extração de Ácidos Graxos com Ligações Éster (EL-FAME) (adaptado de Schutter e Dick, 2000), onde serão pesadas 3 g de solo na umidade de campo, adicionado 15 mL de solução de KOH (0,2 M) preparada em metanol, onde serão homogenizadas por 15s. Colocadas em banho-maria a 37oC por 60 min. Depois será adicionado 3 mL de ácido acético (1M), 10 mL de hexano e homogeneizar em vórtex. Depois as amostras serão centrifugadas por 10 min (480 x g) e a fase orgânica com hexano (superior) serão transferidas para tubos de ensaio, quando então procederá a secagem do hexano, contendo os FAMES a 37-40oC sob N2 ultrapuro. Será

ressuspendido os FAMES em hexano e transferido para tubos de cromatografia âmbar (GC vials). Serão injetadas 1 μL das amostras em cromatógrafo a gás equipado com coluna capilar (5% bifenil-95% dimetilpolisiloxano, 25 m) e detector de ionização de chama (FID)., com um inclemento de 5oC por min, desde 120 a 270oC. As temperaturas do injetor e do detector serão de 250oC e 280oC, respectivamente.

As identificações dos picos cromatográficos serão realizadas com base nas comparações dos tempos de retenção de FAMES microbianos das amostras e de padrões comerciais (BAME, Supelco)

Atributos de químicos

Os atributos de químicos, de fertilidade serão determinados conforme Embrapa (2009): pH em água (1:2.5), P disponível, K, Na, Al, Ca, Mg trocáveis e o carbono orgânico total (COT) conforme Yeomans & Bremner (1988). O P, Na e K serão extraídos por Mehlich I, sendo o Na e K determinados por fotometria de chama. A quantificação do P inorgânico será realizada por colorimetria conforme Braga & Defelipo (1974).

Biomassa microbiana, respiração basal, quociente microbiano e metabólico

Amostras de solo serão secas ao ar, destorroadas e peneiradas em malha de 2 mm para obtenção da TFSA e, em seguida, as amostras serão submetidas a análises de respiração basal e biomassa microbiana.

(10)

A respiração basal da população microbiana nas amostras será determinada pela quantificação do dióxido de carbono (CO2) liberado no processo de respiração microbiana (evolução de CO2) pelo método de adsorção

alcalina, com a umidade das amostras de solo ajustadas para 60% de sua capacidade de campo (ANDERSON; DOMSCH, 1985). Das amostras de solo serão retiradas alíquotas de 50 g e colocadas em recipientes hermeticamente fechados, individualmente, onde o CO2 produzido será capturado por solução de NaOH 0,5 mol

L-1. Após 48 horas de incubação, o CO2 será quantificado por titulação com HCl 0,25 mol L -1

, utilizando fenoftaleína diluída em 100 mL de álcool etílico (95%, v/v) como indicador. As determinações serão efetuadas em triplicata.

Para determinação da biomassa microbiana (C e N microbianos) as amostras serão submetidas ao processo de irradiação conforme a metodologia descrita por Mendonça; Matos (2005). Na quantificação do C e N microbianos será adotada a metodologia descrita por Vance et al. (1987) e Tate et al. (1988) utilizando-se como extrator K2SO4 0,5 M, sendo colocado 50 ml de. K2SO4 0,5 M em 20 g de solo com umidade atual. O C e N das

amostras de solo e nos extratos utilizados para a biomassa microbiana, serão determinados através de um analisador elementar (CHNS-O) da marca Perkin Helmer 2400. As amostras de solo serão trituradas e almofariz e colocadas nas panelas de estanho as quais serão colocadas no amostrador automático do analisador elementar. As amostras líquidas serão pipetadas diretamente para as panelas de estanho.

Análise estatística

1. Efeito da matéria orgânica sobre a supressividade da podridão radicular da mandioca causada por Fusarium spp. e Scytalidium lignicola:os dados da severidade, da atividade enzimática, FAMES, atributos químicos e microbianos do início do experimento serão submetidos à análise de variância e as médias comparadas pelo teste de Scott-knott para indicar o melhor tratamento. Depois, serão selecionadas algumas variáveis para análise multivariada de componentes principais para avaliação das variáveis mais sensíveis em detectar diferenças entre os tratamentos e análise multivariada de agrupamento (Clusters) para determinar quais os grupos formados através dessas variáveis.

2. Evolução de atributos de solo contendo matéria orgânica e Fusarium spp. e Scytalidium lignicola antes e após plantio com mandioca: os dados de atividade enzimática, FAMES, atributos químicos e microbianos antes e após plantar a maniva serão confrontados através do teste t e submetidos à análise multivariada de componentes principais para avaliação dos atributos mais sensíveis em detectar diferenças entre os tratamentos.

6. PRINCIPAIS CONTRIBUIÇÕES CIENTÍFICAS OU TECNOLÓGICAS DA PROPOSTA

Os dados obtidos neste trabalho terão um importante impacto a nível acadêmico e do setor produtivo tendo em vista que não há informações acerca da utilização de fontes de adubação orgânica disponível na região para indução da supressividade da podridão radicular da mandioca em solos do estado de Pernambuco.

(11)

Além disso, este projeto será referência para diversos outros trabalhos relacionados às variáveis relativas à supressividade de diferentes fungos de importância econômica à diversas plantas.

Este trabalho também é inovador no Brasil devido às novas variáveis mensuradas como as atividades enzimáticas e FAMES na qual é requisito para publicações em periódicos internacionais, pois utilizará tecnologia avançada para suprir demandas de produtores locais do mundo inteiro visando a solução problema que afeta diretamente a população mundial.

Após a finalização do experimento espera-se indicar algumas variáveis para a indução da supressividade da doença, visando integrar um programa de manejo integrado da doença, de forma sustentável e accessível aos agricultores familiares, contribuindo para o incentivo ao desenvolvimento de arranjos produtivos locais APL da mandioca no estado de Pernambuco, contribuindo para busca de formas alternativas de controle do principal problema do cultivo da mandioca no Estado.

7. ORÇAMENTO DETALHADO

Rubrica/Item de despesa

Total ($)

Material de consumo, componentes e/ou peças de reposição de equipamentos,

software,instalação, recuperação e manutenção de equipamentos

27800,00

Serviços de terceiros – pagamento integral ou parcial de contratos de manutenção e

serviços de terceiros, pessoa física ou jurídica, de caráter eventual;

2000,00

Passagens e diárias, de acordo com as normas das agências financiadoras, para

participação em congressos ou estágios bem como para a realização de trabalho de campo.

6200,00

(12)

8. CRONOGRAMA FÍSICO-FINANCEIRO

Cronograma ANO 1

ATIVIDADE DESENVOLVIDA MESES

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 Escolha das área para coleta das amostras de

mandioca;

X X X Delimitação da área com geo-referenciamento; X X X Isolamento, seleção e identificação dos fungos X X X Envio dos isolados selecionados para a caracterização

molecular

X

Coleta dos solos em mata nativa; X

Análises físicas dos solos coletados X

Implantação do experimento utilizando fontes de matéria orgânica adicionados ao solo sobre a supressividade da severidade da podridão radicular da mandioca, causada por um isolado patogênico de Fusarium spp.

X X X X X

Primeira coleta das amostras X

Segunda coleta das amostras X

Análise dos FAMES X X X X X

Atividade enzimática X X X X X X X

Envio de trabalhos para congressos X X

Formação de recursos humanos X X X X X X X X X X X X

Cronograma ANO 2 –

ATIVIDADE DESENVOLVIDA MESES

13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24

Análise química das amostras X X X X X X

Análise dos atributos microbianos X X X X X X

Implantação do experimento utilizando fontes de matéria orgânica adicionados ao solo sobre a supressividade da severidade da podridão radicular da mandioca, causada por um isolado patogênico de Scytalidium lignicola.

X X X X X

Primeira coleta das amostras X

Segunda coleta das amostras X

Envio de trabalhos para congressos X X

Formação de recursos humanos X X X X X X X X X X X X

Cronograma ANO 3 –

ATIVIDADE DESENVOLVIDA MESES

25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36

Análise dos FAMES X X X X X

Atividade enzimática X X X X X X X

Análise química das amostras X X X

Análise dos atributos microbianos X X X X X X

Escrita dos artigos científicos X X X X X

Envio de trabalhos para congressos X X

(13)

9. IDENTIFICAÇÃO DOS DEMAIS PARTICIPANTES DO PROJETO

A equipe do projeto será composta por professores da UFRPE/UAG e da Universidade Federal Rural do Semi-árido como descrito abaixo. Além disso, o projeto tem como participante três estudantes de mestrado do Programa de Pós-Graduação em Produção agrícola da UFRPE-UAG

Nome Intituição/

Titulação

Função Atividades

Erika Valente de Medeiros UFRPE/UAG

Doutora Proponente

Coordenação das atividades do projeto; escolha dos solos e dos isolados, orientação nas análises e implantação dos experimentos.

Rui Sales Júnior UFERSA

Doutor Colaborador

Identificação dos principais fungos causadores da podridão radicular da mandioca e redação de

artigos científicos

Cristiano Souza Lima UFRPE/UAG

Doutor Pesquisador

Auxílio na identificação molecular dos fitopatógenos selecionados.

Gustavo Pereira Duda UFRPE/UAG

Doutor Pesquisador

Coleta das amostras de solo. Interpretação dos resultados analíticos. Análises de biomassa microbiana. Redação dos artigos científicos.

Euzelina dos Santos Borges Inácio

UFPE/Recife

Doutora Pesquisador

Auxílio nas análises de biomassa microbiana . Redação dos artigos científicos

Keila Aparecida Moreira UFRPE/UAG

Doutora Pesquisadora

Análise das atividade enzimáticas e redação de artigos e resumos

Marcelo Ferreira Fernandes EMBRAPA

Doutor Colaborador

Auxílio nas análises de FAMES

Mardelo Del Grande SINC Colaborador Auxílio nas análises de FAMES

José Romualdo de Souza Lima

UFRPE/UAG

Doutor Pesquisadora

Análises físicas dos solos. Redação de artigos e resumos.

Alunos de Pós-Graduação Mestrando

Mestrando do curso de Produção

agrícola da UAG/UFRPE

Implantação do experimento. Coleta das amostras. Realização das análises. Interpretação dos resultados analíticos. Envio

de trabalhos para congressos. Redação dos artigos científicos. Defesas de dissertações Aluno de graduação Graduando Bolsista de

iniciação científica

Implantação do experimento. Coleta das amostras. Realização das análises.

Indústria Café Ouro Verde Doador dos

resíduos

Doador dos resíduos

Indústria Lácteos Brasil Doador dos

resíduos

Doador dos resíduos

Casas de farinha Doador dos

resíduos

(14)

10. INDICAÇÃO DE COLABORAÇÕES OU PARCERIAS JÁ ESTABELECIDAS COM

OUTROS CENTROS DE PESQUISA NA ÁREA

A proponente do projeto participa de outros projetos em parceria com vários pesquisadores do Brasil, Canadá e México e está inserida na rede de Biodiversidade, através do projeto do CNPq Edital MCT/CNPq/MMA/MEC/CAPES/FNDCT – Ação Transversal/FAPs Nº 47/2010 Sistema Nacional de Pesquisa em Biodiversidade - SISBIOTA Brasil.

Outras parcerias também já foram estabelecidas pela proponente com pesquisadores de outras Universidades como a UFPE, UFERSA, UFC, entre outras, sendo colaborador de projetos de pesquisadores destas instituições.

A pesquisadora proponente possui um vínculo, através de projetos de extensão, com pesquisadores do Instituto Agronômico de Pernambuco (IPA), atuando como coordenadora de projetos de extensão e colaboradora o que vai permitir que o bolsista seja inserido nas parcerias existentes.

11. DISPONIBILIDADE EFETIVA DE INFRA-ESTRUTURA E DE APOIO TÉCNICO PARA O

DESENVOLVIMENTO DO PROJETO

A unidade Acadêmica de Garanhuns da UFRPE conta com infra-estrutura necessária para o início da realização do trabalho como alguns equipamentos e laboratórios, casa de vegetação, além da disponibilização de transporte e motorista para a coleta do material e dos solos. Através do FINEP, essa Unidade acadêmica adquiriu equipamentos de alto impacto científico como é o caso de cromatógrafo à gás, acoplado à espectrômetro de massas; analisador elementar (CHNS-O), absorção atômica, entre outros. Como os laboratórios desta unidade são de caráter multiusuário, vai facilitar a estratégia de ação das análises inseridas neste projeto, facilitando o trabalho do bolsista.

12. ESTIMATIVA DOS RECURSOS FINANCEIROS DE OUTRAS FONTES QUE SERÃO

APORTADOS PELOS EVENTUAIS AGENTES PÚBLICOS E PRIVADOS PARCEIROS

Outros recursos financeiros serão aportados ao projeto via bolsas de iniciação científica e mestrado do CNPq-UFRPE e FACEPE.

A proponente do projeto participa de outros projetos em parceria com vários pesquisadores do Brasil, Canadá e México e está inserida na rede de Biodiversidade, através do projeto do CNPq Edital

(15)

MCT/CNPq/MMA/MEC/CAPES/FNDCT – Ação Transversal/FAPs Nº 47/2010 Sistema Nacional de Pesquisa em Biodiversidade - SISBIOTA Brasil, parceria também com recursos financeiros.

A proponente tem aprovado equipamentos e consumíveis através de editais anteriores do CNPq e FACEPE, o que permitirá auxiliar nas análises deste projeto;

A UFRPE/UAG e parceiros como as prefeituras dos municípios produtores, instituto agronômico de Pernambuco, Pro-Rural também contribuirão através da liberação de transporte para viagem e a coleta das amostras do material vegetal e solo.

13. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ACOSTA-MARTINÉZ, V.; ACOSTA-MERCADO, D.; SOTOMAYOR-RAMÍREZ, D.; CRUZ-RODRÍGUEZ, L. Microbial communities and enzymatic activities under different management in semiarid soils. Appl. soil ecol. 38: 249-260, 2008.

ALABOUVETTE, C. et al. Concepts and methods to assess the phytosanitary quality of soils. In: BLOEM, J.; HOPKINS, W. W.; BENEDETTI, A. (Eds.). Microbiological methods for assessing soil quality. Wallingford: CAB International, 2006. p. 257-269.

ANDERSON, T.H.; DOMSCH, K.H. Determination of ecophysiological maintenance carbon requirements of soil microorganisms in a dormant state. Biol. Fertil. Soils, v.1, p.81-89, 1985.

BARKER, R.; MARTINSON. Epidemiology of disease caused by Rhizoctonia solani. In: PARMETER, J.R. (ed.) Biology and pathology of Rhizoctonia solani. Berkeley, 1970. 255p.

BAKER, K.F.; COOK, R.J. Biological control of plant pathogens. San Francisco, W.H. Freeman, 1974. 433p BETTIOL, W. et al. Supressividade a fitopatógenos habitantes do solo. In: BETTIOL, W.; MORANDI, M. A. B. (Eds.). Biocontrole de doenças de plantas: uso e perspectivas. Jaguariúna: Embrapa Meio-Ambiente, 2009. p. 183-205.

BETTIOL, W.; GHINI, R. Solos supressivos. In: MICHEREFF, S.J.; ANDRADE, D.E.G.T.; MENEZES, M. (Eds.) Ecologia e manejo de patógenos radiculares em solos tropicais. Recife: Imprensa Universitária da Universidade Federal Rural de Pernambuco, 2005. p.125-152.

CHEN, W.; HOITINIK, A.J.; SCHMITTHENNER, A.F.; TOUVINEN,O.H.; The role of microbial activity in supression of damping-off causad by Pythium ultimum. Phytophatology, v.78, p. 314-322. 1988.

CUENCA, M.A.G.; MANDARINO, D.C. Aspectos agroeconômicos da cultura da mandioca: características e evolução da cultura no Estado de Pernambuco entre 1990 e 2004. Aracaju : Embrapa Tabuleiros Costeiros, - (Documentos / Embrapa Tabuleiros Costeiros, 99). 2006. 24 p.

EMBRAPA. Cultivo da mandioca para a região Semi-árida. Disponível em < http://sistemasdeproducao.cnptia.embrapa.br/FontesHTML/Mandioca/mandioca_semiarido/doencas.htm>. Acesso em: 30 jun. 2012.

EMBRAPA. Manual de Análises Químicas de Solos, Plantas e Fertilizantes. Brasília DF: Embrapa. 2º Ed. 2009. 627p.

(16)

EVAZI, F.; TABATABAI, M.A. Glucosidases and Galactosidases in soils. Soil Biology and Biochemistry. V.20, n.5, p.601-606, 1988.

EVAZI, F.; TABATABAI, M.A. Phosphatases in soils. Soil Biology and Biochemistry., v.9, p.167-172. 1977. FAO (Fundation Agricultural Organization). Participação dos continentes na produção de mandioca em 2008. FAOSTAT Database Gateway- FAO. Roma. Disponível em: <http://apps.fao.org>. Acesso em: 01 Jun. 2012. FUKUDA, C. Podridão das Raízes da Mandioca. Cruz das Almas: Embrapa Mandioca e Fruticultura, (Embrapa Mandioca e Fruticultura. Mandioca em Foco, 08). 1991.

HALL, T.A. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/Me/XP/NT. Nucleic Acids Symposium Series v.41, p.95-98, 1999.

HOITINK; H.A.J.; BOEHM, M.J. Biocontrol within the context of soil microbial communities: a substrate ependent phenomenon. Annual review of phytopathology, v. 37, p.427-446, 1999.

IBGE- PRODUÇÃO AGRÍCOLA MUNICIPAL IBGE- Rio de Janeiro: IBGE- Sistema IBGE de recuperação automática- SIDRA. Disponível em <http://www.ibge.gov.br>. Acesso em: 20 nov. 2011.

KANDELER, E., GERBER, H., Short-term assay of soil urease activity using color-imetric determination of ammonium. Biol. Fertil. Soils 6, 68e72. 1988.

LIMA, M.F., REIFSCHNEIDER, F.J.B., TAKATSU, A. & FONSECA, M.E.N. Caracterização de isolados de Phytophthora de mandioca. Fitopatologia Brasileira. v.18, p.416-424. 1993.

MCKINNEY, H.H. Influence of soil temperature and moisture on infection of wheat seedlings by Helminthosporium sativum. J. Agric. Res. V. 26, p. 195-218, 1923.

MENDONÇA, E. S; MATOS, E. da S. Matéria orgânica do solo: Métodos de análises. Viçosa: UFV, p.86-92, 2005.

MICHEREFF, S.J.; PERUCH, L.A.M.; ANDRADE, D.E.G.T. Manejo integrado de doenças radiculares. In: MICHEREFF, S.J.; ANDRADE, D.E.G.T.; MENEZES, M. (Eds.) Ecologia e manejo de patógenos radiculares em solos tropicais. Recife: Imprensa Universitária da Universidade Federal Rural de Pernambuco, 2005. p.377-398. MUNIZ, M. F. S., ANDRADE, F. W. R., QUEIROZ, F. M., MOURA FILHO, G. & MENEZES, M. Caracterização de isolados de Phytophthora drechsleri, agente causal da podridão mole de raízes de mandioca. Fitopatologia Brasileira. v.31, p.195-198. 2006.

OLIVEIRA, M.A.; FIORINE, R.A. Análise de crescimento em mudas de mandioca (Manihot esculenta Crantz) provenientes de estacas em diferentes recipientes para cultivo. Revista Raízes e Amidos Tropicais. Botucatu, v. 2, p.12-26, 2006.

SCHUTTER, M. E.; DICK, R. P. Comparison of fatty acid methyl ester (FAME) methods for characterizing microbial communities. Soil Science Society of America Journal, Madison, v. 64, p. 1659-1668, 2000.

SOUZA, R.B.; TARGINO, I. Perfil da produção familiar rural na Paraíba. In: Encontro nacional de Geografia agrária, 19. São Paulo. Anais...São Paulo- Unioeste. 2009.

SOUZA, C. Acumulação de fitomassa em variedades de mandioca submetidas a diferentes épocas de corte. Tese (Doutorado em Agronomia) Centro de Ciências agrárias, Universidade Federal da Paraíba. 2009. 146f.

(17)

TABATABAI, M.A. & BREMNER, J.M. Distribution of total and available sulfur in selected soils and soil profiles. Agron. J., 64:40-44, 1972.

TATE, K. R.; ROSS, D. J.; FELTHAM, C. W. A direct extraction method to estimate soil microbial C: effects of experimental variables and some different calibration procedures. Soil Biology Biochemistry, Oxford, v.20, p.329-335, 1988.

VANCE, E. D.; BROOKS, P. C.; JENKINSON, D. S. An extraction method for measuring soil microbial biomass C. Soil Biology Biochemistry, v.19, p.703-707, 1987.

Referências

Documentos relacionados

Legibilidade e leiturabilidade das bulas de medicamentos presentes no tratamento de pacientes cardíacos / Vera Lopes de Abreu Lima ; orientador: Anamaria

O PNLD é realizado de forma alternada, atendendo de forma diferente os segmentos de Educação Infantil, anos iniciais do Ensino Fundamental, anos finais do Ensino

Baseados em Hoffmann (1995) entendemos que, ao longo do tempo, a avaliação classificatória e punitiva serviu mais para apontar falhas, discriminar e selecionar do que para

É dentro dessa discussão que trabalharemos com a metodologia de pesquisa de campo com abordagem qualitativa, de natureza exploratória, tendo como foco observar as

(d) caminho contínuo, devidamente protegido, proporcionado por portas, corredores, halls, passagens externas, balcões, vestíbulos, escadas, rampas ou outros

Gláucia Maria Luna Tavares (C.H. 48 horas/Mês) Flávia Ferreira de Menezes (C.H. 24 horas/Mês) Carlos Henrique Pontes Ribeiro (C.H. 24 horas/Mês) Aline Cristiane Araújo Chalegre (C.H.

Estudo de dispostivos FACTS para o amortecimento de oscilações eletromecânicas no sistema elétrico sul-sudeste brasileiro.. PK10 9

M INISTÉRIO DA E DUCAÇÃO Universidade Federal Rural de Pernambuco - UFRPE. Unidade Acadêmica de Educação a Distância e Tecnologia Licenciatura em Pedagogia