RESUMO EXPANDI DO
121
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Centro de Genética
Biologia Molecular
e Fitoquímica,
Biologia Molecular,
CP 28,
CEP 13012
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970
,
Campinas,
SP
,
Brasi
l.
E-ma
i
l: henok@iac.sp.gov.br
RESUMO
Visando à otimização da diagnose molecular de plântulas de cana-de-açúcar, tentou-se desen-volver iniciadores específicos para escaldadura e ferrugem alaranjada, assim como a comparação da PCR comum e a PCR em Tempo Real (PCR/TR) de maior resolução, importante para doenças com grande período de latência, como as causadas por: 1- Bactérias, (a) raquitísmo-da-soqueira
(Leifsonin
xyli subsp. Xyli) e (b) escaldadura(Xanthomonas
aibilineans);
2- Vírus, (a) amarelinho(Sugarc.ane
Yellow Leal Vírus);
(b) mosaico(Sugarcane Mosaic
Vírus) e
(c) fijivirus (fijídisease vírus);
3- fungo, (a) carvão
(Sporisorium
scitamineum)
e (b) ferrugem alaranjada(Puccinia kueh/tii).
As plântulas foram obtidas do quarentenário do lAC Os iniciadores da literatura para cana-de-açúcar detectaram especificamente o raquitismo, amarelinho, mosaico e fijivirus, enquanto os desenvol-vidos para PCR/TR para as mesmas doenças, incluindo a escaldadura e ferrugem alaranjada, possibilitarama
detecção com maior diluição das amostras. Os iniciadores da ferrugem alaran-jada, além de não detectarem a ferrugem marrom., também diferenciaram a ferrugem branca do milho. Os da escaldadura não foram específicos somente para o gênero Erunnia, enquanto que os da literatura não diferenciaram também outras espécies dos gênerosKanthomonas,
Pseudomonas,
Enoinia,
Stenotrophomona
ePantoea.
A otimização das diluições para PCR/TR a partir de cDNA foi de apenas lOX.Porém, para extratos de DNA de pLanta, foi maior, de lOOX a lOOOX,indicando a maior sensibilidade do método. Dos 28 pares de iniciadores testados, os melhores para o agente causal de cada doença e curvas de diluições (com eficiência de PCR de 1,05 a 1,28) são apresentados. PALA VRAS-CHA VE: Raquitismo-da-soqueira, amarelinho, mosaico, fijivirus, carvão, ferrugemalaranjada.
ABSTRACT
OPTIMIZA TION OF MOLECULAR DIAGNOSIS FOR VIRUS, BACTERIA AND FUNGUS lN SUGARCANE. Aiming for optimizing the Jnolecular diagnosis of sugarcane seedlings, the development of specific primers for scald and oré}nge rust has been tested, as well the comparison of common PCR and the RT/PCR
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hígher resolution (Real Time PCR), important for diseases with extended latent period), such as those caused by: 1 - Bactéria, (a) ratoon stunting disease(Leifsonin
xyli subsp. xyli) and (b) sugarcane leaf scald(Xanthomonas albilineans)
2 - Viruses, (a) yellowing(Sugarcane Yellow Leal Virus),
(b) mosaic(Sugarcane Mosaic Vírus)
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3 - Fungus, (a) smut (Sporisoriumscitamineum)
and (b) orange rust(Puccinia
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Xanthomonas, Pseudomtmas,
Enuinia,
Stenotrophomonas
andPantoea.
The optimization of cONA dilutions for RT /PCR about 10X,but for plant DNA extract, was greater, from 100X to 1000X,2Embrapa Meio Ambiente, Jaguariúna, SP, Brasil.
3Embrapa Biotecnologia, Brasília, DF;, Brasil
·Centro de Tecnologia Canavieira, Piracicaba, SP, Brasil. "Auxílio financeiro - CNPq/MAPA Edital no.64/2008. -Bolsista CNPq.
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11
0
43
7AmF2
ACCGC
r
CAC
G
A
AG
GAATGTC
61
5
0
lF
eLR
F
CC
fT
AGT
AA
C
G
G
CGA
G
T
GAA
77
42
67AmR2
ACCACfCGCCGAGT
C
TCTCl'
61
50
77FeLR
AA TTA
C
AACTCAG
A
CTCCfT
77
42
32AmF
ACGCGC
T
A
ACCG
TCCTAGACA
1
0
8 5
6
5
01
F
e
LF
TnG
A
TG
G
AATGC
f
T
AAG
ATTCAGGAA
153 50
139AmR
CG
C
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1
0
8
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6S3F
e
L
R
AC
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C
GC
A
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A
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TT
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153
5
0
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110
4857
F
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L
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T
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66
42
320MosR
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4812
2
F
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C
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G
T
66
4
2
286MosF
C
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CC
A
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A
69
4
9
5
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A
C
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A
G
GATGTTG
141 44
354.M.osR
AGGC
A
T
AC
CG
CGCTAAGCfA
69
49
7
1
2
Fe
L
R
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C
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141 44
R
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DO
S
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m
e
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ni
c
iador
pa
r
a aumento
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d
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r
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27E
scF /5
71
E
s
c
R com ane
-la
m
en
to
a 64
()
C p
o
r 40 segundos.
N
a
Fi
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n
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s
f
ra
gmentos
amplif
i
cado
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c
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pr
i
m
e
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Es
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5
7
1EscR com duas condiç
õ
es
:
A
-a
ne
l
am
e
nto
a
64
°
C por 40 s
e
gundo
s
e B
-
anelamento
a 6
2
"<
:
p
or 4
0
segundos
,
onde se ver
if
ica a
amplifi-cação
d
o
fr
ag
men
t
o
de 544pb a
p
enas
pelo DN A da
Xant
h
omona
s
aibiii
ne
an
s
(8) e da provável
Erun
ni
a
sp
.
(9), p
or
q
ue
o
B
L
AST dos fragmentos
das bactérias 3,
7 e 9, não foi
conc
l
u
s
i
v
o,
i
ndicando
se
r
ou o gêne
r
o
P
an
t
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a
ou
Erwini
a
.
Como em alguma
repetiç
ã
o
de
re
a
çã
o
,
a bactér
ia
7 amplificou o fragmento
de 544pb
,
en
quanto
a
bactéria
6
(Pantoea sp
.
jEnt
e
roba
c
t
er
sp.
)
n
un
ca
ampl
i
ficou
o
fragmento
esperado.
Prova
v
e
l
-mente, a
ba
c
t
ér
ia 9
é
do g
ên
ero
E
n
oi
n
i
a
, a
m
e
no
s
que a
b
a
c
t
é
r
i
a
6
s
e
j
a
uma enterobacter,
o que
i
nd
ic
ar
i
a a não
esp
e
c
i
fi
c
i
dade
em
r
elação
àP
ant
oea
.
Porém
,
também
;
a
ba
ctéri
a 9 pode
s
er uma Xanthomona
s
albilineans,
i
nd
ic
ando
que o par de primer 27EscF/571EscR
foi
es
pe
c
í
f
i
co
em rel
a
ção
ao
s
gênero
s
estudados.
Em
t
emperat
u
ra
de anelamento
a 60
"
C por 1 minuto
,
observou
-
se
a amplificação
de vários
fragmentos
,
s
e
n
d
o c
omum pa
r
a todos os gêneros
,
a ampl
i
ficação
de c
e
rca
d
e
400 pb obser
v
ada
na Figura
1 para as
ba
c
t
éri
as
3
e
4
que nunc
a a
m
p
l
ificar
am
o fr
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e
nt
o
e
sperado
,
mesmo
s
endo
a
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4 uma
K
a
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o-m
on
a
.
Portant
o
,
o par d
e i
n
ic
iador
27E
scF
/571
E
scR
rep
re
senta
um a
va
nço
,
poi
s
os da lite
r
atura
,
como
o
prim
er
de D
AVIES
e
t ai
.
(2008) da Figu
ra
2
,
não di
fe
-ren
ci
ou
e
sp
é
cies dos gên
e
ros
Eno
inia
, Kan
thom
o
na
s,
P
se
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a
s,
S
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otro
ph
om
ona
e P
ani
oea.
Para
-
a
ferrugem
alaranjada
,
o pa
r
de iniciado
r
FL57F /FL7I
.
2R somente f
o
i esp
e
cífico com anelamen
-to a 65
°
C
.
.
l
i
!0
:
30 segundos
.
E
sse
s i
n
ici
adores
,
al
ém
de não detectarem
a ferrugem
marrom
,
da me
s
ma
forma que os da
l
iteratura
(
A
rME,
2006
;
S
AWAZA[(]
et
al
.
, 20
1
0)
,
também
d
i
fere
nc
iaram
a
f
errugem
branca
do milho com o aumento
da tempe
r
atu
r
a
e
menor
tempo de ane
l
arnento
.
Todas as 40 amostras
testadas com
o P
CR foram
confi
r
madas
em tempo real
.
Todos os
i
n
i
c
i
adores tes
-tados perm
i
tiram
a ampl
i
ficaç
ã
o
de produt
o
s. Porém
,
do
s
cerca de 28 p
a
res de in
i
ciador
e
s,
os melhores pa
r
a
cada doença
e curvas
de dilu
i
ç
õ
es
r
eali
z
adas
com
fragmentos
amplif
i
cado
s
donados
em
plasm
í
deos
estão
a
presentados
com as
T
ab
e
las 2 a 8 de di
l
uição
com os CT
(
threshold
c
y
ele) e eficiência de PCR ob
-tidos (o coefi
c
iente
R
2
observado
par
a
todos
f
oi d
e
0(99) para ferrugem
alaranjada
(2)
,
fiji (3), mosaico
(4)
,
amarelinho
(5)
,
raqu
i
tismo
(
6)
,
esca
l
dadur
a
(7
)
e carvão (8)
.
Fig
.
l- Perfil de fragmentos amplificados usando
-
se o par de primer 27EscF/571EscR em duas condições de
anelamen-to A: 64°C/40s e B
:
62
"
C/40s, e o DNA das bactérias: 1
:
-Pseudomonl1s pie
c
ogtoesicida; 2-Pseudoxantlwmonas
sltwonensis
;
3
-
Envinía sp/panto
e
a sp.;
4-Kanihomonas sp
.
;.5-Stenotrophomonas
maliophilia
;
6
-
Panto
e
a spjEnterobacter
sp.;
7-Erunnia sp/
Pantoea sp
.
; 8
-
Xanthomonas albilinean
s
; 9-Xanthomonas alullineans/En
o
inia sp
.
/panto
e
a sp
.
; 10-controle negativo
;
P- Padrão
de 100pb (Ludwig Biotec)
.
Fig
.
2 - Perfil de PCR de fragmentos amplificados com os primers de Dx
v
is
e
r
aI.,1998e o DNA das bactérias: 1 e
2,con-trole positivo de folha infectada com escaldadura;
3-controle negativo de folha sadia; 4-
Pseudoxanthomonas
suuionen
s
i
s
ou sp.; S
-
Pantoea sp
.
/ Erunnia sp.; 6
-
Panioe
á
sp/Enuínia
'sp: 7-Xaitlhomonas sp.; 8-Pseudomonas putida/P
.
sp., 9-Pantoea
agglomeransjP
.
sp
.
; 10-Stenotrophomonas
maltophilia; 11- XanthomolUls albílineans; 12- Xanthomonas albilinean
s;
13
-
Xanthcr
mona
s
albilineans
;
14-Pantoea sp
.
f
Erunn ia sp.; 15-Pantoea sp/En
u
inia
sp.
Tabela
2 -Dados da curva de diluição para o iniciador 57FLF/ll2F.LR para a ferrugem alaranjada
.
Detector
Diluição
cr
No
.
copia plasmídeo Log no
.
plasmfdeo
FL57/122
100
.
000
20,00
36.000
.
000
7,56
FL57/122
1
.
000
.
000
23,88
3
.
600.000
6,56
FL57/122
1
.
000
.
000
24
,
18
3
.
600.000
6
,
56
FL57/122
10
.
000.000
26,26
360
.
000
5
,
56
FL57/122
10.000
.
000
26,26
360.000
5
,
56
FL57/122
100.000
.
000
29,36
36.000
4
,
56
FL57/122
100
.
000
.
000
29,36
36.000
4,56
FL57/122
1.000
.
000.000
32,27
3.600
3,56
FL57/122
10.000
.
000.000
35,23
360
2
,
56
FL57/122
NTC
Indeterminado
FL57j122NTC
lndeterminado
A curva
de diluição
forneceu
a eficiência
de
PCR de
1,12
.
A leitura
dos CTs de 5 diluições
de
DNA de amostra
de ferrugem
laranja
:
20X
para
5/ ~L; 100X/ 5,0/ ~L; 100X/l
,
0/
~L; lOOOX/5,0/
~L;
1000/1,0/IlL,
forneceram
os respectivos
CT
de
34,52; 26,05; 25,73; 26,26
e
28,36,
indicando
a otimização
na faixa
das diluições
de
100X
a
1
.
000X.
de 1,14 e 1,13. As amostras de cDNA do amarelinho mostraram os melhores resultados com 1 J.1Lsem diluição até 2-5 IlL de amostra diluída ~penas 10X, indicando novamente que para amostras de cDNA não foi possível fazer muita diluição.
Foi observada para o iniciador 128EscF /257EscR da escaldadura a eficiência PCR del,12, enquan-to para os iniciadores 343CarF / 443CarvR e 261CarvF/354CarvR do carvão e as respectivas eficiências de PCR de 1,18 e 1,20.
CONCLUSÃO
Os
iniciadores da literatura para cana-de-açúcar detectaram especificamente o raquitismo, amareli-nho, mosaico e fijivirus, enquanto os desenvolvidos para PCR/TR para as mesmas doenças, incluindo a escaldadura e ferrugem alaranjada, possibilitaram a detecção com maior diluição das amostras.O par de iniciadores FL57F /FL712R desen-volvido para ferrugem
alaranjada,
além de não detectar a ferrugem marrom, também diferenciou a ferrugem branca do milho. O par de iniciadores 27EscF/571EscR para escaldadura somente não foi específico para o gêneroEnoinia,
enquanto os da lite-ratura não diferenciam também espécies dos gênerosXanthomona
s,
Pseudomonas,
Erunnia,
Stenotrophomona
e
Panioea.
A otimização das diluições para PCR/TR
a
partir de cDNA foi de apenas 10X, porém, para extratos de DNA de planta, foi bem maior, de 100X a 1000X, indicando a maior sensibilidade do método.REFE~NClAS
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e
fungo em cana-de-açúcar.Summa
.Phytop~tJUJlogica.v.36, Resumo 217, 2010b. Supplement.SMITH, G.R.; VAN DE VELDE,
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Archives of Virology
,
v.153, n.6, p.l031-1039, 2008.Foi
observada
para
o
iniciador
32,33, indicando que as leituras a partir do
cDNA
332FijiF
j
441FijiR do fijivirus a eficiência de PCR
não permitiram muita diluição.
de 1,09, enquanto para os iniciadores do mosaico,
Foram
observadas
para
os iniciadores
286MosF1j355MosR1 e 287MosF j354MosR, as
32AmarFj139ArnarjR
e 7ArnarF2j67AmarR2, as
respectivas eficiência PCR de 1,0~ e 1,05. Para 51!L
respectivas eficiências PCR de 1,19e 1,28,enquanto
de cDNA de 5 amostras de mosaico diluídas 10X.
para os iniciadores do raquitismo 334RaqF/ 439RaqR
foram observados os CTs de 31,22; 31,55; 31,50;
e 363RaqF/439RaqR
,
as respectivas eficiências PCR
Tabela 3-Dados da curva de diluição para o iniciador 332FijiF / 441FijiR do fijivirus 286MosF1/355MosRl do mosaico.
Detector Diluição CT No. cópia Logplasm Detector Diluição CT No. cópia Log.
Plasmfdeo plasmfdeo plasm
Fij332/491 1.000.000 19,93 4.000.000 6,6 Mos286/354 1.000.000 20,55 2.500.000 6,31
Fij332/491 1.000.000 20,14 4.000.000 6,6 Mos286/354 1.000.000 21,02 2.500.000 6,31
Fij332/491 10.000.000 23,58 400.000 5,6 Mos286/354 10.000.000 24,00 250.000 5,31
Fij332/491 10.000.000 24,24 400.000 5,6 Mos286/354 10.000.000 24,00 250.000 5,31
Fij332/491 100.000.000 26,11 40.000 4,6 Mos286/354 100.000.000 27,41 25.000 4,31
Fij332/491 l00.0m.OOO 26,8 40.000 4,6 Mos286/354 100.000.000 27,41 25.000 4,31
Fij332/491 1.000.000.000 29,23 4.000 3,6 Mos2B6/354 1.000.000.000 30,33 2.500 3,31
Fij332/491 1.000.000.000 29,23 4.000 3,6 Mos286/354 1.000.000.000 30,33 2.500 3,31
fij332/491 10.סס0000000 32,04 400 2,6 Mos286/354 10.סס0000000 33,55 250 2,31
Fij332/491 10.000000<XXJ 33,06 400 2,6 Mos286/354 10.סס0000000 33,72 250 2,31
Fij332/491 NTC Indeterm Mos286/354 NTC Indeterm
Fij332/491 NTC Indeterm Mos286/354 NTC lndeterm
Tabela 4 - Dados da curva de diluição para o indiciador 32AmarF /139Amar/R do amarelinho.
Detector Diluição
cr
No. cópia Log Detector Diluição CT No. cópia Logplasmplasm plasm plasmldeo
Am32/139 100.000 18,42 34.000.000 7,53 Raq334/439 100.000 17,81 2.970.000 6,47 Am32/139 100.000 18,46 34.000.000 7,53 Raq334/439 100.000 18,21 2.970.000 6,47 Am32/139 1.000.000 21,26 3.400.000 6,53 Raq334/439 1.000.000 20,38 297.000 5,47 Am32/139 1.000.000 20,63 3.400.000 6,53 Raq334/439 1.000.000 20,38 297.000 5,47 Am32/139 10.000.000 23,30 340.000 5,53 Raq334/439 10.000.סס00 23,14 29.700 4,47 Am::l2/139 10.000.000 23,09 340.000 5,53 Raq334/439 •.10.000.סס00 23,14 29.700 4,47 Am32/139 1.00.000.000 26,34 34.000 4,53 Raq334/439 100.000.000 25,39 2.970 3,47 Am32/139 100.000.000 26,21 34.000 4,53 Rag334/439 100.000.000 25,39 2.970 3,47 Am32/139 1.000.000.00 29,40 3.400 3,53 Raq334/439 ,1·000·000.000 29,41 297 2,47 Am32/139 10.00.000.000 32,40 340 2,53 Raq334/439 1.000.000.000 29,41 297 2,47
Am32/139 NTC 38,51 Raq334/ 43~~ NTC indeterm
Am32/139 NTC 37,58 Raq334/439 NTC indeterm
Tabela 5-Dados da curva de diluição para o iniciador 128EscF /257EscR da escaldadura,
Detector Diluição CT No. cópia Logplasm Detector Diluição CT No. cópia Logplasm
plasmideo plasmideo Escl28/258 1.000.000 18,80 3.500.000 6,54 261/354 10.000.000 18,80 180.000 6,26 Esc128/257 1.000.000 18,80 3.500.000 6,54 261/354 10.000.000 18,80 180.000 6,26 Escl28/257 10.000.000 21,40 350.000 5,54 261/354 100.000.000 21,46 18.000 5,26 Esc128/257 10.000.000 22,09 350.000 5,54 261/354 100.000.000 22,09 18.000 5,26 Esc128/257 100.000.000 25,00 35.000 4,54 261/354 1.000.000.000 25.59 1.800 4,26 EscI28/257 100.000.000 25,00 35.000 4,54 261/354 1.000.000.000 25,63 1.800 4,26 Esc128/257 1.000.000.000 28,10 3.500 3,54 261/354 10.000.000.000 30,07 180 3,26 Escl28/257 1.000.000.000 28,90 3.500 3,54 261/354 10.000.000.000 30,07 180 3,36 Esc128/257 10.000.000.000 31,08 350 2,54 261/354 100.000.000.000 35,59 18 2,26 Esc128/257 10.000.000.000 31,08 350 2,54 261/354 100.000.000.000 30,07 18 2,26 Escl28/257 NTC 37,8 261/354 NTC indeterm
EscI28/257 NTC Indeterm 261/354 NTC indeterm