Not for Sale or Distribution in the United States of America
Panbio Dengue Early ELISA
Cat. No. 01PE40
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INTENDED USE
The Panbio Dengue EARlY EliSA is a dengue NS1 antigen capture EliSA. it is for the qualitative detection of NS1 antigen in serum, used as an aid in the clinical laboratory diagnosis of patients with clinical symptoms consistent with dengue fever. The Panbio Dengue EARlY EliSA should be used in conjunction with other dengue serology.
INTRODUCTION
Dengue virus is a flavivirus found largely in areas of the tropics and sub-tropics. Over half the world’s population lives in regions at risk of potential dengue transmission, making dengue the most important arboviral disease in humans, in terms of morbidity and mortality1. There
are four distinct but antigenically related serotypes of dengue viruses, and transmission is by mosquito, principally Aedes aegypti, Aedes albopictus and Aedes polynesienses.
The clinical manifestations of dengue virus infection are varied, ranging from sub-clinical through to fatal. The disease is graded according to severity as follows: non-specific febrile illness, classic dengue fever, dengue haemorrhagic fever (DhF) (grades i and ii), and dengue shock syndrome (DSS) (grades iii and iV)1. Classic dengue fever is
characterised by the sudden onset of fever with two or more symptoms of: headache, retro-orbital pain, myalgia, arthralgia, rash, haemorrhagic manifestations or leukopenia2. A diphasic febrile course is common as is
insomnia and anorexia with loss of taste or bitter taste. DhF and DSS are severe, potentially fatal complications often associated with infection by a second serotype3.
Earlier diagnosis of dengue allows earlier implementation of supportive
01PE40 Primary Infection Onset of Symptoms Antibod y & Antigen level Time
Dengue infection : immune response
Secondary Infection Onset of Symptoms
Panbio IgG cut off* HAI 1: 2560
Panbio IgM cut off*
Virus Virus
NS1 IgM NS1 IgM
IgG
# Panbio Dengue Duo Cassette and igg Capture EliSA cut-off. Approximately equivalent to hAi titre of 2560.
* Panbio Dengue Duo Cassette and igM EliSA cut-off. ^ igM levels in a secondary infection may be undetectable.
PRINCIPLE
Serum dengue NS1 antigen, when present, binds to anti-NS1 antibodies attached to the polystyrene surface of the microwells. Residual serum is removed by washing, and hRP Conjugated Anti-NS1 MAb is added. After incubation, the microwells are washed and a colourless substrate system, tetramethylbenzidine / hydrogen peroxide (TMB Chromogen) is added. The substrate is hydrolysed by the enzyme and the TMB changes therapy and monitoring. This reduces risk of complications such as DhF
or DSS, especially in countries where dengue is endemic4.
Detection of dengue NS1 antigen by EliSA is a valuable procedure, as it allows detection of infection prior to seroconversion. NS1 antigen can be detected in serum from day 1 after onset of fever and up to day 95,6,7
(see illustration). This compares to igM antibodies that are not detectable until days 3-58,9. Secondary dengue virus infection is characterised by
high igg levels whose peak window of detection is 6-15 days following the onset of illness. This may be accompanied by elevated igM levels10,11.
The Panbio Dengue igg Capture EliSA is set to detect the specific high level of igg antibodies to dengue infection above this threshold. The assay does not detect low level igg antibodies from past exposure typically present in many individuals from endemic regions. For the most accurate dengue diagnosis in patients presenting at various stages of illness, a combination of the Panbio Dengue EARlY EliSA (01PE40), Panbio Dengue igM Capture EliSA (01PE20) and Panbio Dengue igg Capture EliSA (01PE10) should be used
to a blue colour. After stopping the reaction with acid, the TMB turns yellow. Colour development is indicative of the presence of dengue NS1 antigen in the test sample.
MATERIALS PROVIDED
1. Anti-NS1 Antibody Coated Microwells (12x8 wells) - Microwells are coated with Anti-NS1 antibodies. Ready for use. Unused microwells should be resealed immediately and stored in the presence of a desiccant. Stable at 2-8ºC until expiry.
2. HRP Conjugated Anti-NS1 MAb - One bottle 15ml (Orange). horseradish peroxidase conjugated Anti-NS1 monoclonal antibody with preservative (0.1% Proclin™). Ready for use. Stable at 2-8ºC until expiry.
3. Wash Buffer (20x) -One bottle, 60ml of 20x concentrate of phosphate buffered saline (ph 7.2-7.6) with Tween 20 and preservative (0.1% Proclin™). Crystallisation may occur at low temperatures. To correct, incubate at 37ºC until clear. Mix well. Dilute one part Wash Buffer with 19 parts of distilled water. Diluted buffer may be stored for one week at 2-25ºC. 4. Sample Diluent - One bottle, 22ml (Brown). Ready for use. Tris
buffered saline (pH 7.2-7.6) with preservatives (0.1% Proclin™) and additives. Stable at 2-8ºC until expiry.
5. TMB Chromogen (TMB) - One bottle, 15ml. Ready for use. A mixture of 3,3’,5,5'-tetramethylbenzidine and hydrogen peroxide in a citric-acid citrate buffer (ph 3.5-3.8). Stable at 2-8ºC until expiry. 6. Positive Control - One Purple-capped vial, 1.2ml recombinant
antigen (contains 0.1% Proclin™ and 0.005% gentamycin sulphate). Stable at 2-8ºC until expiry.
7. Calibrator - Two Orange-capped vials, 1.5ml recombinant antigen (contains 0.1% Proclin™ and 0.005% gentamycin
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sulphate). Stable at 2-8ºC until expiry.
8. Negative Control - One White-capped vial, 1.2ml human serum (contains 0.1% sodium azide and 0.005% gentamycin sulphate). Stable at 2-8ºC until expiry.
9. Stop Solution - One Red-capped bottle, 15ml. Ready to use. 1M Phosphoric acid. Stable at 2-25ºC until expiry.
Proclin™ 300 is a registered trademark of Rohm and Haas Company.
ADDITIONAL MATERIALS REQUIRED BUT NOT
PROVIDED
1. Accurate adjustable micropipettors with disposable pipette tips (5-1000µl capacity)
2. Deionised water 3. Microplate washing system 4. Microplate reader with 450 nm filter 5. Timer
6. graduated cylinder 7. Flask
8. Test tubes or microplate for dilutions
PRECAUTIONS
FOR IN VITRO DIAGNOSTIC USE
1. All human source material used in the preparation of controls has been tested for antibody to human immunodeficiency virus 1 & 2 (hiV 1&2), hepatitis C (hCV) as well as hepatitis B surface antigen and found to be negative. however no test method can offer complete assurance and all human controls and antigen
9. Some kit components contain sodium azide, which may react with lead or copper plumbing to form highly explosive metal azide compounds. When disposing of these reagents through plumbing fixtures, flush with a large volume of water to prevent azide build-up in drains.
10. Sodium azide inhibits conjugate activity. Clean pipette tips must be used for the conjugate addition so that sodium azide is not carried over from other reagents.
11. hazard information for the components under applicable European Community (EC) Directives is as follows:
Components Hazard Nature
Wash Buffer 20x Concentrate irritant R36/38, R43
irritant Xi
TMB Chromogen irritant R36/37/38
Stop Solution irritant R36/38
Sample Diluent 3 irritant R36/38, R43 Dengue EARlY EliSA Anti-NS1
hRP Conjugate irritant R36/38, R43 Dengue EARlY EliSA Positive
Control irritant R36/38, R43
Dengue EARlY EliSA Calibrator irritant R36/38, R43 Dengue EARlY EliSA Negative
Control harmful R22, R32, R43
harmful Xn Dengue EARlY EliSA Anti-NS1
Coated Microwells Not Considered hazardous
should be handled as potentially infectious material. The Centers for Disease Control and Prevention and the National institutes of health recommend that potentially infectious agents be handled at Biosafety level 212.
2. This test should be performed on serum only. The use of whole blood, plasma or other specimen matrix has not been established. 3. icteric or lipaemic sera, or sera exhibiting haemolysis or microbial
growth should not be used. 4. Do not heat-inactivate sera.
5. All reagents must be equilibrated to room temperature (20-25ºC) before commencing the assay. The assay will be affected by temperature changes. Do not remove microwells from closed bag until they have reached room temperature (20-25ºC).
6. Dispense reagents directly from bottles using clean pipette tips. Transferring reagents may result in contamination.
7. Unused microwells should be resealed immediately and stored in the presence of desiccant. Failure to do this may cause erroneous results.
8. Substrate System:
(a) As TMB is susceptible to contamination from metal ions, do not allow the substrate system to come into contact with metal surfaces.
(b) Avoid prolonged exposure to direct light.
(c) Some detergents may interfere with the performance of the TMB.
(d) The TMB may have a faint blue colour. This will not affect the activity of the substrate or the results of the assay.
FOR FURTHER SAFETY INFORMATION PLEASE REFER TO THE SAFETY DATA SHEETS (SDS) AVAILABLE FROM STANDARD DIAGNOSTICS, INC.
SPECIMEN COLLECTION AND PREPARATION
Blood obtained by venipuncture should be allowed to clot at room temperature (20-25ºC) and then centrifuged according to the Clinical and laboratory Standards institute (ClSi - Approved Standard - Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture, h3).
The serum should be separated as soon as possible and refrigerated (2-8ºC) or stored frozen (≤ -20ºC) if not tested within two days. Self-defrosting freezers are not recommended for storage. The use of icteric sera or sera exhibiting haemolysis, lipaemia or microbial growth is not recommended. The ClSi provides recommendations for storing blood specimens, (Approved Standard - Procedures for the handling and Processing of Blood Specimens, h18).
TEST PROCEDURE
Note: Ensure all reagents are equilibrated to room temperature (20-25ºC) before commencing assay. Performing the assay outside the time and temperature ranges provided may produce invalid results. Assays not falling within the established time and temperature ranges must be repeated.
Control and Sample Predilution
1. Remove the required number of microwells from the foil sachet and insert into strip holder. Five microwells are required for Positive Control (P), Negative Control (N) and Calibrator (CAl) in triplicate. Ensure the remaining unused microwells are resealed tightly in the foil sachet in the presence of desiccant.
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2. Using suitable test tubes or a microtitre plate, dilute the Positive Control, Negative Control, Calibrator, and patient samples. Add 75µl Sample Diluent to 75µl of sample. Mix well. The final dilution of the sample is 1 in 2.
Do not vortex Controls. Controls contain glycerol. Ensure proper mixing of diluted Controls. Mix well by inversion or gentle pipetting. Vortexing is not effective
ELISA PROCEDURE
N P CAL CAL CAL 1 2 3 9 10 11 6 7 8 4 51. Pipette 100µl diluted test samples and Controls into their respective microwells.
2. Cover plate and incubate for 1 hour at 37°C ± 1°C. 3. Wash six (6) times with diluted Wash Buffer (refer
to washing procedure).
4. Pipette 100µl hRP Conjugated Anti-NS1 MAb into each well.
5. Cover plate and incubate for 1 hour at 37°C ± 1°C. 6. Wash six (6) times with diluted Wash Buffer (refer
to washing procedure).
7. Pipette 100µl of TMB into each well.
8. incubate for 10 minutes at room temperature (20-25°C), timing from the first addition. A blue colour will develop.
9. Pipette 100µl of Stop Solution to all wells in the same sequence and timing as the TMB addition. Mix well. The blue colour will
on absorbent paper towel to ensure all Wash Buffer is removed.
QUALITY CONTROL
Each kit contains Calibrator, Positive and Negative Controls. Acceptable values for these are found on the accompanying specification sheet. The Negative and Positive Controls are intended to monitor for substantial reagent failure. The Positive Control will not ensure precision at the assay cut-off. The test is invalid and must be repeated if the absorbance readings of either the Controls or the Calibrator do not meet the specifications. if the test is invalid, patient results cannot be reported. Quality Control (QC) requirements must be performed in conformance with local, state, and/or federal regulations or accreditation requirements and your laboratory’s standard QC procedures.
it is recommended that the user refer to ClSi C24-A and 42 CFR 493.1256 for guidance on appropriate QC practices.
CALCULATIONS
IMPORTANT NOTE: The calibration factor is batch specific and is detailed in the specification sheet. Obtain the calibration factor value before commencing calculations.
1. Calculate the average absorbance of the triplicates of the Calibrator and multiply by the calibration factor. This is the Cut-off Value.
2. An index value can be calculated by dividing the sample absorbance by the Cut-off Value (calculated in step (1) above). Alternatively,
3. Panbio Units can be calculated by multiplying the index value (calculated in step (2) above) by 10.
change to yellow.
10. Within 30 minutes read the absorbance of each well at a wavelength of 450 nm with a reference filter of 600-650 nm. Note: if a dual wavelength spectrophotometer is available, set the
reference filter between 600-650 nm. Reading the microwells at 450 nm without a reference filter may result in higher absorbance values due to background.
WASHING PROCEDURE
Efficient washing to remove uncomplexed sample or components is a critical requirement of the EliSA procedure.
A. Automated Plate Washer (1) Completely aspirate all wells.
(2) Fill all wells to rim (350 µl) during wash cycle.
(3) On completion of six (6) washes, invert plate and tap firmly on absorbent paper towel to ensure all Wash Buffer is removed. (4) Automated plate washers must be well maintained to ensure
efficient washing. Manufacturer’s cleaning instructions should be followed at all times.
B. Manual Washing
(1) Discard contents of plate in appropriate waste container. (2) Fill wells with Wash Buffer using a suitable squeeze bottle. Avoid
bubbling of Wash Buffer as this may reduce wash efficiency. Discard Wash Buffer from wells immediately.
(3) Refill wells with Wash Buffer and discard immediately. (4) Repeat step (3) another four times. This will make a total of six (6)
washes with Wash Buffer.
(5) After the final wash, discard contents of wells and tap the plate
Index Value = Sample Absorbance Cut-off Value
Example: Sample A Absorbance = 0.949
Sample B Absorbance = 0.070
Mean absorbance of Calibrator = 0.802 Calibration Factor = 0.62
Cut-off Value = 0.802 x 0.62 = 0.497
Sample A (0.949/0.497) = 1.91 index value Sample B (0.070/0.497) = 0.14 index value Panbio Units = Index Value X 10
Sample A 1.91 X 10 = 19.1 Panbio Units Sample B 0.14 X 10 = 1.4 Panbio Units
INTERPRETATION OF RESULTS
The cut-off has been determined using endemic and non-endemic populations from Australia, honduras and Thailand.
Diagnosis of Dengue Infection: The Panbio Dengue EARlY EliSA assesses the presence of dengue NS1 antigen in a patient’s serum. A positive result (>11 Panbio Units) is indicative of either an active primary or secondary dengue infection. if differentiation between primary and secondary infection is required, the Panbio Dengue igM Capture EliSA (01PE20) and Panbio Dengue igg Capture EliSA (01PE10) should be used.
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EXPECTED VALUES
The dengue NS1 antigen is only detected in patient serum early in the course of disease, between days 1-9 after onset of clinical signs5,6,7.
Once anti-NS1 igg antibodies are produced (generally corresponding to defervescence) NS1 is no longer detectable in serum. The Panbio Dengue EARlY EliSA is therefore a marker of acute active infection only. Outside of this window, dengue infection must be diagnosed using alternative serological assays.
Primary dengue infection is characterised by the presence of significant or rising levels of igM 3-5 days after the onset of infection, which can persist for 3-5 months. Secondary infection is characterised by high igg levels detectable as early as 3 days following the onset of infection, which may be accompanied by elevated igM levels10,11. in
early infections and some secondary infections detectable levels of igM antibodies may be low. The Panbio Dengue EARlY EliSA however, helps detect early presence of antigen in serum. Where symptoms persist, it is recommended that patients be re-tested serologically no later than 14 days after the first specimen.
PERFORMANCE CHARACTERISTICS
Study Site 1
235 retrospective sera from individuals of various ages and both genders were tested on the Panbio Dengue EARlY EliSA at a well reputed research centre in Vietnam. The samples were collected from patients presenting with symptoms of dengue and were characterised by a combination of PCR, virus culture and igg and igM EliSA. Samples from the following groups were included: 47 specimens from patients with no virological or serological evidence of acute or recent dengue, and 188 specimens
INDEX PANBIO UNITS RESULT
<0.9 <9 Negative
0.9 – 1.1 9 – 11 Equivocal
>1.1 >11 Positive
RESULT INTERPRETATION
Negative
No detectable dengue NS1 antigen. The result does not rule out dengue infection. This sample should be tested by serology. if this sample is negative and dengue infection is still suspected, a follow up sample should be taken and tested, using serology, no later than 14 days after the initial sample was taken.
Equivocal
Equivocal samples should be repeated. Samples that remain equivocal after repeat testing should be repeated by an alternative method or another sample should be collected.
Positive
Presence of detectable dengue NS1 antigen. Dengue serology assays should be performed on follow-up samples to confirm dengue infection.
The following is a recommended way of reporting the results obtained: “The following results were obtained with the Panbio Dengue EARlY EliSA. Values obtained with different methods may not be used interchangeably. The magnitude of the measured result, above the
cut-from patients with laboratory confirmed dengue. The positive samples were from patients with primary (49) and secondary (139) dengue resulting from infections by dengue virus serotypes 1, 2 and 3. The data is summarised in Table 1.
Table 1 –Study Site 1
Sensitivity and Specificity of Panbio Dengue EARLY ELISA Panbio Dengue EARLY ELISA
Dengue Status Positive Equivocal Negative Total
Acute Dengue infection 146 0 42 188
Dengue Negative 3 0 44 47
Total 149 0 86 235
95% CI*
Sensitivity (Dengue Positive) Specificity Total Agreement = 146/188 = 44/47 = 190/235 = 77.7% = 93.6% = 80.9% 71.7 – 83.6% 82.5 – 98.7% 75.8 – 85.9% * Confidence interval Study Site 2
257 patients demonstrating fever symptoms (≤ 5 days post onset of symptoms) were recruited into a study being conducted by a reference laboratory in Thailand. The samples were tested for acute dengue and were characterised as 75 dengue positive and 182 dengue negative. The positive samples were from infections with dengue virus serotypes 1, 2, 3 & 4. All of the samples were tested on the Panbio Dengue EARlY EliSA. The data is summarised in Table 2.
off, is not indicative of the total amount of antigen present.” The result should be reported as positive, negative or equivocal, and not as a numerical value.
TEST LIMITATIONS
1. The clinical diagnosis must be interpreted with clinical signs and symptoms of the patient. The results from this kit are not by themselves diagnostic and should be considered in association with other clinical data and patient symptoms.
2. Screening of the general population should not be performed. The positive predictive value depends on the likelihood of the virus being present. Testing should only be performed on patients with clinical symptoms or when exposure is suspected.
3. Serological cross-reactivity across the flavivirus group is common (i.e. between dengue 1, 2, 3 & 4, Murray Valley encephalitis, Japanese encephalitis, Yellow fever and West Nile viruses). These diseases must be excluded before confirmation of diagnosis. 4. The performance characteristics have not been established for
visual result determination.
5. All sera demonstrating a positive result by the Panbio Dengue EARlY EliSA test should be referred to a reference laboratory for confirmation of dengue positivity and epidemiological recording. 6. The Panbio Dengue igM Capture EliSA (01PE20) and Panbio
Dengue igg Capture EliSA (01PE10) are most convenient for igM and igg determination. They both follow the same capture method, so both igM and igg are determined using a common method and common serum dilution. They can also be used for presumptive differentiation between primary and secondary dengue infection.
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Table 2 –Study Site 2
Sensitivity and Specificity of Panbio Dengue EARLY ELISA Panbio Dengue EARLY ELISA
Dengue Status Positive Negative Total
Acute Dengue infection 57 18 75
Dengue Negative 3 179 182
Total 60 197 257
95% CI*
Sensitivity (Dengue Positive) Specificity Total Agreement = 57/75 = 179/182 = 236/257 = 76.0% = 98.4% = 91.8% 64.8 – 85.1% 95.3 – 99.7% 87.8 – 94.9% * Confidence interval
REPRODUCIBILITY
The reproducibility of the Panbio Dengue EARlY EliSA was established by testing 8 samples three times each, on three kit batch numbers, on three different days. Within-run, between day, between batch and total precision were estimated by analysis of variance (ANOVA Type ii) and are presented in Table 3.
Table 3
Panbio Dengue EARLY ELISA Precision Measures (Using Index Value*)
Within Between Day Between Batch Total Sample n *Mean *SD CV *SD CV *SD CV *SD CV Positive Calibrator Negative #1 #2 #3 #4 #5 #6 #7 #8 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 3.22 1.71 0.22 5.72 5.02 3.94 1.44 1.58 1.85 0.83 0.88 0.16 0.05 0.03 0.31 0.17 0.25 0.08 0.09 0.14 0.03 0.07 5.0% 2.7% 11.4% 5.4% 3.4% 6.4% 5.3% 5.9% 7.5% 3.6% 7.6% 0.05 0.00 0.02 0.29 0.12 0.13 0.06 0.00 0.09 0.00 0.02 1.7% 0.0% 9.0% 5.1% 2.4% 3.4% 4.0% 0.0% 5.0% 0.0% 2.3% 0.17 0.20 0.05 0.39 0.12 0.02 0.06 0.08 0.11 0.04 0.02 5.3% 11.4% 21.4% 6.7% 2.4% 0.5% 3.9% 4.8% 6.1% 4.7% 2.2% 0.22 0.17 0.05 0.51 0.22 0.28 0.10 0.11 0.18 0.04 0.07 6.8% 9.8% 22.4% 8.9% 4.4% 7.0% 7.1% 7.0% 10.0% 5.3% 8.0%
All values are calculated from index values (Cut-off using OD) SD = Standard Deviation; CV = Coefficient of Variation Note: Standard Deviation results have been rounded to two decimal
places for tabulation purposes.
* index value is calculated by dividing the sample absorbance by the cut-off value.
CROSS-REACTIVITY
A panel of 390 specimens from patients with confirmed diseases other than dengue was tested to establish the analytical specificity of the Panbio Dengue EARlY EliSA. The specimens were from patients with diseases that have potential for cross-reactivity. Each of the specimens included in the study were characterised with respect to disease diagnosis prior to analysis with the Panbio Dengue EARlY EliSA. Minimal
cross-reactivity was observed across 390 specimens. Refer to Table 4 for a summary of results.
Table 4
Cross-reactivity Analysis Panbio Dengue EARLY ELISA Disease Type* Total Specimens Positive Result
Epstein-Barr virus 28 0/28 Malaria 26 0/26 Anti-nuclear antibody 16 0/16 Rheumatoid factor 26 1/26 hepatitis A 30 0/30 leptospirosis 20 0/20
West Nile virus 10 0/10
Scrub typhus 7 2/7 Chikungunya 32 1/32 hepatitis B 30 5/30 hepatitis C 26 0/26 Q Fever 24 0/24 influenza 32 0/32
Ross River virus 23 0/23
Cytomegalovirus 20 0/20
Rubella 20 0/20
Rubeola 20 0/20
Total 390 9/390
* Characterisation based on serology.
Date issued : 2013.08 01PE40-06-En-1
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Non destiné à la vente ou à la distribution aux États-Unis
Panbio Dengue Early ELISA
Cat. No. 01PE40
FRANçAiS
PANBIO DENGUE EARLY ELISA 01PE40
1. Add 75µl of Sample Diluent to 75µl of each sample and the Controls. Final dilution is 1 in 2.
4. Wash the assay plate six (6) times.
5. Add 100 hRP Conjugated Anti-NS1 MAb into each well on the assay plate.
6. Cover plate and incubate 1 hour at 37°C ± 1°C. 2. Add 100µl of diluted samples and Controls to assay plate.
3. Cover plate and incubate for 1 hour at 37°C ± 1°C 7. Wash the assay plate six (6) times, After the final wash, add 100µl TMB per well and incubate at room temperature(20-25°C) for 10 minutes. Stop the reaction with 100µl Stop Solution and read at 450nm (Reference 600-650 nm).
- Antigen
Do not vortex controls. Mix well by inversion or gentle pipetting.
Antigen α-NS1 antibody ASSAY PLATE HRP HRP HRP HRP HRP HRP HRP HRP
French
French
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INDICATION
le kit Panbio Dengue EARlY EliSA est un test EliSA de capture de l’antigène NS1 de la dengue. il est destiné à la détection qualitative de l’antigène NS1 dans le sérum et contribue au diagnostic clinique en laboratoire des patients qui présentent des symptômes cliniques correspondants à ceux de la dengue. le test Panbio Dengue EARlY EliSA doit être utilisé en association avec d’autres tests sérologiques de la dengue.
INTRODUCTION
la dengue est un flavivirus présent essentiellement dans les régions tropicales et subtropicales. Plus de la moitié de la population mondiale vit dans des régions à risque de transmettre la dengue, ce qui fait de cette dernière la maladie arbovirale la plus importante chez les humains en termes de morbidité et de mortalité1. il existe quatre sérotypes
distincts du virus de la dengue liés antigéniquement dont la transmission s’effectue principalement par l’intermédiaire d’un moustique, en particulier des genres Aedes aegypti, Aedes albopictus et Aedes polynesienses.
l’infection par le virus de la dengue donne lieu à des manifestations cliniques variables, allant de formes infracliniques à des formes létales. la maladie est classée en fonction de sa sévérité comme suit : maladie fébrile non spécifique, dengue classique, dengue hémorragique (Dh) (niveaux i à ii) et dengue avec syndrome de choc (DSC) (niveaux iii à iV)1. la dengue classique se caractérise par une montée de fièvre
soudaine accompagnée d’au moins deux des symptômes suivants : maux de tête, douleur rétro-orbitaire, myalgie, arthralgie, éruption cutanée, manifestations hémorragique et leucopénie2. l’évolution
biphasique de la fièvre est tout aussi fréquente que l’insomnie et l’anorexie qui s’accompagne d’une agueusie ou d’une amertume. la dengue hémorragique et la dengue avec syndrome de choc sont des complications graves, potentiellement mortelles, souvent associées à une infection par un deuxième sérotype3.
le diagnostic précoce de la dengue permet d’accélérer la mise en œuvre du traitement de soutien et de la surveillance, réduisant ainsi le risque de complications (telles que la Dh et la DSC), notamment dans les pays où la dengue est endémique4.
la détection de l’antigène NS1 de la dengue par le test EliSA est une procédure utile qui permet d’identifier l’infection avant la séroconversion. l’antigène NS1 peut être détecté dans le sérum dès le premier jour qui suit le début de la fièvre et jusqu’au neuvième jour5,6,7
(voir l’illustration). En comparaison, les anticorps igM ne sont pas détectables avant les jours 3 à 58,9. l’infection secondaire par le virus
de la dengue se caractérise par des taux d’igg élevés, dont la plage de détection maximale se situe entre 6 et 15 jours après l’apparition de la maladie, et qui peuvent s’accompagner de taux d’igM élevés10,11. le
test Panbio Dengue igg Capture EliSA est prévu pour détecter le taux élevé d’anticorps igg spécifiques contre l’infection par la dengue au-dessus de ce seuil. l’analyse ne détecte pas les faibles taux d’anticorps igg qui sont typiquement présents chez de nombreux sujets des régions endémiques en raison d’expositions antérieures. Pour optimiser le diagnostic de la dengue chez les patients présentant des stades variés de la maladie, il est nécessaire d’utiliser à la fois le test Panbio Dengue EARlY EliSA (01PE40), le test Panbio Dengue igM Capture EliSA (01PE20) et le test Panbio Dengue igg Capture EliSA (01PE10).
01PE40
Infection primaire Apparition des symptômes
Taux d’anticorps et d’antigène
Temps
Infection par le virus de la dengue : réponse immunitaire
Infection secondaire Apparition des symptômes
PValeur seuil d’IgG de Panbio* Test d’inhibition de l’hémagglutination (IHA) 1: 2 560
Valeur seuil d’IgM de Panbio*
Virus Virus
NS1 IgM NS1 IgM
IgG
# Seuil de Panbio Dengue Duo Cassette et igg Capture EliSA. Approximativement équivalent à un titre d’inhibition de l’hémagglutination (ihA) de 2 560.
* Seuil de Panbio Dengue Duo Cassette et igM EliSA.
^ il est possible que les taux d’igM d’une infection secondaire soient indétectables.
PRINCIPE
lorsqu’il est présent dans le sérum, l’antigène NS1 de la dengue se lie aux anticorps anti-NS1 recouvrant la surface en polystyrène des micropuits. le sérum résiduel est éliminé par lavage, puis un anticorps monoclonal anti-NS1 conjugué à de la hRP est ajouté. Après
incubation, les micropuits sont lavés et un substrat incolore, composé de tétraméthylbenzidine/peroxyde d’hydrogène (chromogène TMB), est ajouté. le substrat est hydrolysé par l’enzyme et le chromogène TMB devient bleu. Une fois la réaction stoppée par l’acide, le chromogène TMB devient jaune. le changement de couleur indique la présence de l’antigène NS1 de la dengue dans l’échantillon testé.
MATÉRIEL FOURNI
1. Micropuits recouverts d’anticorps anti-NS1 (12 x 8 puits) - les micropuits sont recouverts d’anticorps anti-NS1. Prêts à l’emploi. les micropuits inutilisés doivent être immédiatement rescellés et conservés avec un agent déshydratant. Stable entre 2 et 8ºC jusqu’à la date de péremption.
2. Anticorps monoclonal anti-NS1 conjugué à de la HRP – Un flacon de 15 ml (orange). Anticorps monoclonal anti-NS1 conjugué à de la peroxydase de raifort avec conservateur (0,1 % de Proclin™). Prêt à l’emploi. Stable entre 2 et 8ºC jusqu’à la date de péremption.
3. Tampon de lavage (20x) – Un flacon de 60 ml de tampon phosphate salin concentré 20x (ph 7,2-7,6), contenant du Tween 20 et un conservateur (0,1 % de Proclin™). Une cristallisation peut se produire à basse température. Pour corriger cet effet, incuber à 37ºC jusqu’à éclaircissement de la solution. Bien mélanger. Diluer un volume de tampon de lavage avec 19 volumes d’eau distillée. le tampon dilué peut être conservé pendant une semaine à une température comprise entre 2 et 25ºC.
4. Diluant d’échantillon – Un flacon de 22 ml (marron). Prêt à l’emploi. Solution saline tamponnée au tris (ph 7,2-7,6) avec conservateurs (0,1 % de Proclin™) et additifs. Stable entre 2 et
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8ºC jusqu’à la date de péremption.
5. Chromogène TMB (TMB) – Un flacon de 15 ml. Prêt à l’emploi. Mélange de 3,3’,5,5’-tétraméthylbenzidine et de peroxyde d’hydrogène dans un tampon citrate-acide citrique (ph 3,5-3,8). Stable entre 2 et 8 ºC jusqu’à la date de péremption.
6. Contrôle positif – Un flacon avec bouchon violet, contenant 1,2 ml d’antigène recombinant (contient 0,1 % de Proclin™ et 0,005 % de sulfate de gentamycine). Stable entre 2 et 8 ºC jusqu’à la date de péremption.
7. Étalon – Deux flacons avec bouchon orange, contenant 1,5 ml d’antigène recombinant (contient 0,1 % de Proclin™ et 0,005 % de sulfate de gentamycine). Stable entre 2 et 8 ºC jusqu’à la date de péremption.
8. Contrôle négatif – Un flacon avec bouchon blanc, contenant 1,2 ml de sérum humain (contient 0,1 % d’azoture de sodium et 0,005 % de sulfate de gentamycine). Stable entre 2 et 8 ºC jusqu’à la date de péremption.
9. Solution d’arrêt - Un flacon avec bouchon rouge de 15 ml. Prête à l’emploi. Acide phosphorique 1 M. Stable entre 2 et 25 ºC jusqu’à la date de péremption.
Proclinä™ 300 is a registered trademark of Rohm and Haas Company.
MATÉRIEL SUPPLÉMENTAIRE NÉCESSAIRE MAIS
NON FOURNI
1. Micropipettes réglables de précision avec embouts jetables (capacité de 5 à 1 000 µl)
2. Eau déionisée
3. Système de lavage de microplaque
4. lecteur de microplaque avec filtre de 450 nm 5. Minuteur
6. Cylindre gradué 7. Flacon
8. Tubes à essai ou microplaques pour les dilutions
MISES EN GARDE
POUR USAGE DIAGNOSTIQUE IN VITRO
1. Toutes les matières d’origine humaine utilisées dans la préparation des contrôles ont été soumises au dépistage des anticorps dirigés contre les virus de l’immunodéficience humaine 1 et 2 (Vih 1 et 2), de l’hépatite C (VhC) ainsi que l’antigène de surface de l’hépatite B. Tous les résultats se sont révélés négatifs. Néanmoins, aucune méthode de test n’est véritablement fiable à 100 % ; aussi tous les antigènes et contrôles humains doivent être considérés comme des produits potentiellement infectieux. Aux États-Unis, les Centres de contrôle et de prévention des maladies et les instituts nationaux de la santé recommandent de manipuler les agents potentiellement infectieux en appliquant les mesures de biosécurité de niveau 212.
2. l’analyse doit être effectuée sur du sérum uniquement. l’utilisation de sang total, de plasma ou d’une autre matrice d’échantillon n’a pas été testée.
3. Ne pas utiliser de sérum ictérique, lipémique, hémolysé ou présentant une prolifération microbienne.
4. Ne pas inactiver le sérum à la chaleur.
5. Tous les réactifs doivent être stabilisés à température ambiante (20 à 25ºC) avant le début du test. les variations de température affectent le test. Ne pas retirer les micropuits de leur pochette
fermée avant qu’ils aient atteint la température ambiante (20 à 25ºC).
6. Distribuer les réactifs en les prélevant directement dans les flacons à l’aide d’embouts de pipette propres. le transfert des réactifs peut entraîner une contamination.
7. les micropuits inutilisés doivent être immédiatement rescellés et conservés avec un agent déshydratant. le non-respect de cette consigne peut fausser les résultats.
8. Substrat :
(a) le chromogène TMB pouvant être contaminé par les ions métalliques, ne pas mettre le substrat en contact avec des surfaces métalliques.
(b) Éviter toute exposition prolongée à la lumière directe. (c) Certains détergents peuvent altérer les performances du
TMB.
(d) le TMB peut être de couleur bleu pâle. Cette coloration n’affecte pas l’activité du substrat, ni les résultats du test.
9. Certains composants du kit contiennent de l’azoture de sodium qui peut réagir avec les canalisations en cuivre ou en plomb pour former des composés d’azotures métalliques hautement explosifs. lors de la mise au rebut de ces réactifs dans les éviers, rincer abondamment à l’eau afin d’éviter toute accumulation d’azoture dans les canalisations.
10. l’azoture de sodium inhibe l’activité du conjugué. Utiliser des embouts de pipette propres pour ajouter du conjugué afin d’éviter toute contamination par l’azoture de sodium présent dans d’autres réactifs.
11. Conformément aux directives de la Communauté européenne (CE) en vigueur, les risques associés aux composants sont signalés comme suit :
Composants Nature du risque
Tampon de lavage concentré 20x irritant R36/38, R43
irritant Xi Chromogène TMB irritant R36/37/38
Solution d’arrêt irritant R36/38 Diluant d’échantillon 3 irritant R36/38, R43 Conjugué hRP anti-NS1 de
Dengue EARlY EliSA irritant R36/38, R43 Contrôle positif de Dengue EARlY
EliSA irritant R36/38, R43
Étalon de Dengue EARlY EliSA irritant R36/38, R43 Contrôle négatif de Dengue EARlY
EliSA Nocif R22, R32, R43
Nocif Xn Micropuits recouverts d’anti-NS1
de Dengue EARlY EliSA
Considéré comme n’étant pas dangereux
POUR PLUS D’INFORMATIONS SUR LA SÉCURITÉ, CONSULTER LES FICHES DE DONNÉES DE SÉCURITÉ DISPONIBLES AUPRÈS DE STANDARD DIAGNOSTICS, INC.
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PRÉLÈVEMENT ET PRÉPARATION DES
ÉCHANTILLONS
laisser le sang obtenu par ponction veineuse coaguler à température ambiante (20 à 25 ºC). le centrifuger ensuite selon la procédure édictée par le Clinical and laboratory Standards institute (ClSi - Approved Standard - Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens par Venipuncture, h3).
le sérum doit être séparé dès que possible et réfrigéré (entre 2 et 8 ºC) ou congelé (≤ -20ºC) s’il n’est pas analysé dans les deux jours. les congélateurs à dégivrage automatique sont déconseillés pour la conservation. l’utilisation de sérum ictérique, hémolysé, lipémique ou présentant une prolifération microbienne est déconseillée. le ClSi a émis des recommandations pour la conservation des échantillons sanguins (Approved Standard - Procedures for the handling and Processing of Blood Specimens, h18).
PROCÉDURE DU TEST
Remarque: s’assurer que tous les réactifs sont stabilisés à température ambiante (entre 20 et 25ºC) avant de commencer le test. Tout test réalisé en dehors des plages limites de temps et de température peut donner lieu à des résultats non valides. les tests réalisés en dehors des plages limites de temps et de température doivent être recommencés. Prédilution des échantillons et contrôles
1. Extraire le nombre requis de micropuits du sachet en aluminium et les insérer dans le support de bandelettes. Cinq micropuits sont nécessaires pour le contrôle positif (P), le contrôle négatif (N) et l’étalon (CAl) en trois séries. Veiller à conserver les micropuits
inutilisés avec un agent déshydratant et à bien refermer le sachet en aluminium qui les contient.
2. Dans des tubes à essai (ou une plaque de microtitration) appropriés, diluer le contrôle positif, le contrôle négatif, l’étalon et les échantillons patients. Ajouter 75 µl de diluant d’échantillon à 75 µl d’échantillon. Bien mélanger.
La dilution finale de l’échantillon est de 1/2.
Ne pas mélanger les contrôles au vortex. les contrôles contiennent du glycérol. Mélanger les contrôles dilués de manière appropriée. Bien mélanger par retournement ou par pipetage délicat. le mélange au vortex n’est pas efficace.
PROCÉDURE ELISA
N P CAL CAL CAL 1 2 3 9 10 11 6 7 8 4 51. Pipeter 100 µl d’échantillon patient dilué ainsi que les contrôles dans leurs micropuits respectifs. 2. Couvrir la plaque et incuber pendant 1 heure à
37ºC ±1ºC.
3. laver à six (6) reprises avec le tampon de lavage dilué (se reporter à la procédure de lavage). 4. Pipeter 100 µl d’anticorps monoclonal anti-NS1
conjugué à de la hRP dans chaque puits. 5. Couvrir la plaque et incuber pendant 1 heure à
37ºC ± ºC.
6. laver à six (6) reprises avec le tampon de lavage dilué (se reporter à la procédure de lavage).
7. Pipeter 100 µl de TMB dans chaque puits.
8. incuber pendant 10 minutes à température ambiante (20 à 25 ºC), à compter du premier ajout. Une couleur bleue se développe. 9. Pipeter 100 µl de solution d’arrêt dans tous les puits en
respectant le même ordre et les mêmes délais que pour l’ajout du TMB. Bien mélanger. la couleur passe du bleu au jaune. 10. Dans les 30 minutes qui suivent, mesurer le niveau d’absorbance
de chaque puits à une longueur d’onde de 450 nm, avec un filtre de référence de 600-650 nm.
Remarque: si un spectrophotomètre à double longueur d’onde est disponible, régler le filtre de référence entre 600 et 650 nm. Toute mesure effectuée sur les micropuits à 450 nm sans filtre de référence risque de générer des valeurs d’absorbance élevées en raison du bruit de fond.
PROCÉDURE DE LAVAGE
la procédure EliSA requiert un lavage efficace afin d’éliminer tout échantillon ou composant nu.
A. Laveur de plaques automatique (1) Aspirer la totalité du contenu de tous les puits.
(2) Remplir tous les puits jusqu’à la limite (350 µl) au cours du cycle de lavage.
(3) Une fois les six (6) lavages effectués, retourner la plaque et la tapoter fermement sur du papier absorbant afin d’éliminer toute trace du tampon de lavage.
(4) les laveurs de plaques automatiques doivent être bien entretenus afin de garantir un lavage efficace. les instructions de nettoyage du fabricant doivent être systématiquement respectées.
B. Lavage manuel
(1) Mettre au rebut le contenu de la plaque dans le conteneur de déchets approprié.
(2) Remplir les puits de tampon de lavage à l’aide d’une pissette. Éviter toute formation de bulles au niveau du tampon de lavage, au risque de compromettre l’efficacité du lavage. Mettre immédiatement au rebut le tampon de lavage utilisé dans les puits.
(3) Remplir une nouvelle fois les puits avec le tampon de lavage, puis les vider immédiatement.
(4) Répéter l’étape (3) à quatre autres reprises. Au total, les puits auront été lavés six (6) fois avec le tampon de lavage. (5) Après le dernier lavage, mettre le contenu des puits au rebut et
tapoter la plaque sur du papier absorbant afin d’éliminer toute trace du tampon de lavage.
CONTRÔLE QUALITÉ
Chaque kit contient un étalon, ainsi que des contrôles positif et négatif. les valeurs acceptables pour chacun d’eux sont indiquées sur la fiche technique fournie. les contrôles négatif et positif visent à surveiller toute défaillance importante au niveau du réactif. le contrôle positif ne garantit pas la précision à la valeur seuil du test. le test n’est pas valide et doit être répété si les mesures d’absorbance des contrôles ou de l’étalon ne correspondent pas aux spécifications. Si le test n’est pas valide, les résultats du patient ne peuvent pas faire l’objet d’un compte-rendu. la procédure de contrôle qualité (CQ) doit être appliquée conformément à la réglementation locale, nationale ou internationale en vigueur, et/ou aux conditions d’agrément et aux procédures de CQ en vigueur dans le laboratoire de l’utilisateur.
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l’utilisateur doit consulter les normes ClSi C24-A et 42 CFR 493.1256 pour obtenir des conseils sur les pratiques adéquates en matière de contrôle qualité.
CALCULS
REMARQUE IMPORTANTE : le facteur d’étalonnage est spécifique au lot il est détaillé dans la fiche technique. Se munir de la valeur de facteur d’étalonnage avant de commencer les calculs.
1. Calculer l’absorbance moyenne des trois séries d’étalon et multiplier le résultat par le facteur d’étalonnage. la valeur obtenue correspond à la valeur seuil.
2. Pour obtenir la valeur d’index, diviser l’absorbance de l’échantillon par la valeur seuil (calculée à l’étape (1) ci-dessus).
Sinon,
3. Pour calculer les unités Panbio, multiplier la valeur d’index (calculée à l’étape (2) ci-dessus) par 10.
Valeur d’index = absorbance de l’échantillon Valeur seuil
Exemple: Absorbance de l’échantillon A = 0,949 Absorbance de l’échantillon B = 0,070
Absorbance moyenne de l’étalon = 0,802 Facteur d’étalonnage = 0,62 Valeur seuil = 0,802 x 0,62 = 0,497
Échantillon A (0.949/0.497) = valeur d’index de 1,91 Échantillon B (0.070/0.497) = valeur d’index de 0,14
Unités Panbio = valeur d’index x 10
Échantillon A 1.91 X 10 = 19.1 unités Panbio Échantillon B 0.14 X 10 = 1.4 unités Panbio
INTERPRÉTATION DES RÉSULTATS
la valeur seuil a été déterminée d’après des populations endémiques et non endémiques issues d’Australie, du honduras et de Thaïlande. Diagnostic d’infection causée par le virus de la dengue : le test Panbio Dengue EARlY EliSA détermine la présence de l’antigène NS1 de la dengue dans le sérum d’un patient. Un résultat positif (> 11 unités Panbio) indique une infection primaire ou secondaire active par le virus de la dengue. Si une différenciation entre l’infection primaire et l’infection secondaire est nécessaire, le test Panbio Dengue igM Capture EliSA (01PE20) et le test Panbio Dengue igg Capture EliSA (01PE10) doivent être utilisés.
INDEX UNITÉS PANBIO RÉSULTAT
<0.9 <9 Négatif
0.9 – 1.1 9 – 11 Équivoque
>1.1 >11 Positif
RÉSULTAT INTERPRÉTATION
Négatif
Absence d’antigène NS1 de la dengue détectable. le résultat ne permet pas d’éliminer l’infection par la dengue. Cet échantillon doit faire l’objet d’un test sérologique. Si l’échantillon est négatif mais qu’une infection par la dengue est toujours suspectée, un échantillon de suivi doit être prélevé et soumis à un test sérologique dans les 14 jours qui suivent le prélèvement de l’échantillon initial.
Équivoque
les échantillons équivoques doivent être réanalysés. les échantillons qui demeurent équivoques après répétition du test doivent être de nouveau testés à l’aide d’une méthode différente, ou de nouveaux échantillons doivent être prélevés.
Positif
Présence de l’antigène NS1 de la dengue détectable. D’autres tests sérologiques de la dengue doivent être effectués sur des échantillons de suivi afin de confirmer l’infection par la dengue.
la formulation suivante est recommandée pour présenter les résultats obtenus : « les résultats suivants ont été obtenus avec le test Panbio Dengue EARlY EliSA. Ces valeurs ne sont pas interchangeables avec celles obtenues par d’autres méthodes. l’amplitude du résultat mesuré au-delà de la valeur seuil n’est pas représentative de la quantité
totale d’antigènes présente. » le résultat doit être rapporté comme étant positif, négatif ou équivoque et non pas sous la forme de valeur numérique.
LIMITES DE LA PROCÉDURE
1. le diagnostic clinique doit être établi sur la base des symptômes et signes cliniques présentés par le patient. les résultats de ce kit ne constituent pas un diagnostic en soi et doivent être interprétés conjointement à d’autres données cliniques et aux symptômes présentés par le patient.
2. Aucun dépistage ne doit être effectué sur la population générale. la valeur prédictive positive dépend de la probabilité de la présence du virus. Des tests doivent être réalisés uniquement chez les patients présentant des symptômes cliniques correspondant au virus ou dans le cas où une exposition au virus serait suspectée.
3. les réactions sérologiques croisées sont fréquentes dans le groupe des flavivirus (c’est-à-dire entre les virus de sérotypes 1, 2, 3 et 4 de la dengue, de l’encéphalite de Murray Valley, de l’encéphalite japonaise, du virus de la fièvre jaune ou du virus du Nil occidental). Ces maladies doivent donc être exclues avant toute confirmation du diagnostic.
4. les caractéristiques de performance n’ont pas été établies pour la détermination visuelle des résultats.
5. Tous les sérums présentant un résultat positif avec le test Panbio Dengue EARlY EliSA doivent être envoyés à un laboratoire de référence pour confirmation de la présence du virus de la dengue et enregistrement épidémiologique.
6. le test Panbio Dengue igM Capture EliSA (01PE20) et le test Panbio Dengue igg Capture EliSA (01PE10) sont optimaux pour
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identifier la présence d’anticorps igM et igg. ils utilisent tous les deux la même méthode de capture, de sorte que la présence d’igM et d’igg est déterminée à l’aide d’une seule technique et d’une seule dilution de sérum. Ces tests peuvent également être utilisés dans le cadre de la différenciation présomptive entre l’infection primaire et l’infection secondaire par le virus de la dengue.
VALEURS ATTENDUES
l’antigène NS1 de la dengue est détecté uniquement dans le sérum du patient, à un stade précoce de la maladie, soit entre les jours 1 à 9 suivant l’apparition des signes cliniques5,6,7. Dès lors que des anticorps
igg anti-NS1 sont produits (ce qui correspond généralement à la défervescence), l’antigène NS1 n’est plus détectable dans le sérum. Par conséquent, le test Panbio Dengue EARlY EliSA constitue un marqueur d’infection aiguë active uniquement. Au-delà de ce délai, l’infection par le virus de la dengue doit être diagnostiquée à l’aide d’autres tests sérologiques.
Une infection primaire par le virus de la dengue se caractérise par la présence de taux élevés ou croissants d’igM 3 à 5 jours après l’apparition de l’infection, lesquels peuvent persister pendant 3 à 5 mois. Une infection secondaire se caractérise par des taux élevés d’igg détectables dès le troisième jour suivant l’apparition de l’infection et qui peuvent s’accompagner d’une élévation des taux d’igM10,11. Dans le
cadre des infections précoces et de certaines infections secondaires, les taux détectables d’anticorps igM peuvent être faibles. le test Panbio Dengue EARlY EliSA contribue toutefois à détecter la présence précoce de l’antigène dans le sérum. Si les symptômes persistent, il est recommandé d’effectuer un nouveau test sérologique dans les 14 jours qui suivent le prélèvement du premier échantillon.
CARACTÉRISTIQUES DE PERFORMANCE
Site d’étude 1
Au total, 235 échantillons rétrospectifs de sérum provenant de sujets de différents âges et des deux sexes ont été analysés avec le test Panbio Dengue EARlY EliSA, dans un centre de recherche réputé du Vietnam. les échantillons ont été prélevés chez des patients présentant des symptômes de la dengue et ont été caractérisés par une combinaison de méthodes alliant un test PCR, une culture de virus et des tests EliSA de capture des igg et des igM. les échantillons des groupes suivants ont été inclus : 47 échantillons issus de patients sans signe virologique ou sérologique de dengue aiguë ou récente et 188 échantillons provenant de patients souffrant d’une dengue confirmée par des tests biologiques. les échantillons positifs provenaient des patients atteints d’une dengue primaire (49) et secondaire (139) résultant d’infections par les sérotypes 1, 2 et 3 du virus de la dengue. les données sont présentées dans le tableau 1.
Tableau 1 – Site d’étude 1
Sensibilité et spécificité du test Panbio Dengue EARLY ELISA Panbio Dengue EARLY ELISA
État de la dengue Positif Équivoque Négatif Total infection aiguë par la
dengue 146 0 42 188
Négatif pour la dengue 3 0 44 47
Total 149 0 86 235
95% IC*
Sensibilité (positif pour la dengue) Spécificité Concordance totale = 146/188 = 44/47 = 190/235 = 77.7% = 93.6% = 80.9% 71.7 – 83.6% 82.5 – 98.7% 75.8 – 85.9% * intervalle de confiance Site d’étude 2
Au total, 257 patients présentant des symptômes de fièvre (5 jours après l’apparition des symptômes) ont participé à une étude menée par un laboratoire de référence en Thaïlande. les échantillons ont été testés pour la dengue aiguë ; 75 ont été caractérisés comme positifs pour la dengue et 182 comme négatifs. les échantillons positifs provenaient d’infections par les sérotypes 1, 2, 3 et 4 du virus de la dengue. Tous les échantillons ont été analysés à l’aide du test Panbio Dengue EARlY EliSA. les données sont présentées dans le tableau 2.
Tableau 2 – Site d’étude 2
Sensibilité et spécificité du test Panbio Dengue EARLY ELISA Panbio Dengue EARLY ELISA
État de la dengue Positif Négatif Total
infection aiguë par la dengue 57 18 75
Négatif pour la dengue 3 179 182
Total 60 197 257
95% IC*
Sensibilité (positif pour la dengue) Spécificité Concordance totale = 57/75 = 179/182 = 236/257 = 76.0% = 98.4% = 91.8% 64.8 – 85.1% 95.3 – 99.7% 87.8 – 94.9% * intervalle de confiance
REPRODUCTIBILITÉ
la reproductibilité du test Panbio Dengue EARlY EliSA a été déterminée en testant 8 échantillons trois fois chacun, avec trois numéros de lots différents, sur trois jours. la précision intra-série, inter-jours, inter-lots ainsi que la précision totale ont été évaluées par analyse de variance (ANOVA type ii) et sont présentées dans le tableau 3.
Tableau 3
Mesures de la précision du test Panbio Dengue EARLY ELISA (à l’aide de la valeur d’index*)
Intra-série Inter-jours Inter-lots Total Échantillon n *Moyenne *É.T. CV *É.T. CV *É.T. CV *É.T. CV Positif Étalon Négatif #1 #2 #3 #4 #5 #6 #7 #8 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 3.22 1.71 0.22 5.72 5.02 3.94 1.44 1.58 1.85 0.83 0.88 0.16 0.05 0.03 0.31 0.17 0.25 0.08 0.09 0.14 0.03 0.07 5.0% 2.7% 11.4% 5.4% 3.4% 6.4% 5.3% 5.9% 7.5% 3.6% 7.6% 0.05 0.00 0.02 0.29 0.12 0.13 0.06 0.00 0.09 0.00 0.02 1.7% 0.0% 9.0% 5.1% 2.4% 3.4% 4.0% 0.0% 5.0% 0.0% 2.3% 0.17 0.20 0.05 0.39 0.12 0.02 0.06 0.08 0.11 0.04 0.02 5.3% 11.4% 21.4% 6.7% 2.4% 0.5% 3.9% 4.8% 6.1% 4.7% 2.2% 0.22 0.17 0.05 0.51 0.22 0.28 0.10 0.11 0.18 0.04 0.07 6.8% 9.8% 22.4% 8.9% 4.4% 7.0% 7.1% 7.0% 10.0% 5.3% 8.0%
Toutes les valeurs sont calculées à partir de la valeur d’index (valeur seuil déterminée à l’aide de la DO).
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Remarque: les résultats de l’écart-type ont été arrondis à deux décimales pour la constitution du tableau.
* la valeur d’index est calculée en divisant la valeur d’absorbance de l’échantillon par la valeur seuil.
RÉACTIVITÉ CROISÉE
Un panel de 390 échantillons provenant de patients atteints de maladies confirmées autres que la dengue a été testé afin d’établir la spécificité analytique du test Panbio Dengue EARlY EliSA. Ces échantillons ont été prélevés sur des patients atteints de maladies pouvant produire une réaction croisée. Chacun des échantillons inclus dans l’étude a été caractérisé en fonction du diagnostic pathologique avant de procéder à l’analyse avec le test Panbio Dengue EARlY EliSA. Une réactivité croisée minimale a été observée dans les 390 échantillons. Consulter le tableau 4 pour connaître les résultats.
Tableau 4
Analyse de la réactivité croisée avec Panbio Dengue EARLY ELISA
Type de maladie* Total des échantillons Résultat positif
Fièvre fluviale du Japon 7 2/7
Chikungunya 32 1/32
hépatite B 30 5/30
hépatite C 26 0/26
Fièvre Q 24 0/24
grippe 32 0/32
Virus de la rivière Ross 23 0/23
Cytomégalovirus 20 0/20
Rubéole 20 0/20
Rougeole 20 0/20
Total 390 9/390
* Caractérisation basée sur la sérologie.
Date issued : 2013.08 01PE40-06-Fr-1
Type de maladie* Total des échantillons Résultat positif
Virus d’Epstein-Barr 28 0/28 Paludisme 26 0/26 Anticorps antinucléaire 16 0/16 Facteur rhumatoïde 26 1/26 hépatite A 30 0/30 leptospirose 20 0/20
Virus du Nil occidental 10 0/10
PANBIO DENGUE EARLY ELISA 01PE40
1. Ajouter 75 µl de diluant d’échantillon à 75 µl de chaque échantillon et aux contrôles. 2. la dilution finale de l’échantillon est de 1/2.
4. laver la plaque d’analyse six (6) fois.
5. Ajouter 100 µl d’anticorps monoclonal anti-NS1 conjugué à la hRP dans chaque puits de la plaque d’analyse.
6. Couvrir la plaque et incuber pendant 1 heure à 37ºC ±1ºC. 2. Ajouter 100 µl d’échantillons dilués et de contrôles dans la
plaque d’analyse.
3. Couvrir la plaque et incuber pendant 1 heure à 37ºC ±1ºC. 7. laver la plaque d’analyse six (6) fois. Après le dernier lavage, ajouter 100 µl de chromogène TMB par puits et incuber à température ambiante (entre 20 et 25ºC) pendant 10 minutes. interrompre la réaction avec 100 µl de solution d’arrêt et lire le résultat à une longueur d’onde de 450 nm (filtre de référence de 600-650 nm).
- Antigène
Ne pas mélanger les contrôles au vortex. Bien mélanger par retournement ou par pipetage délicat.
Antigène Anticorps α-NS1 PLAQUE D’ANALYSE HRP HRP HRP HRP HRP HRP HRP HRP
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Prohibida su venta o distribución en Estados Unidos de América
Panbio Dengue Early ELISA
Cat. No. 01PE40
Esp
añol
Esp
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USO PREVISTO
El ensayo EliSA para la detección precoz del dengue de Panbio es un ensayo EliSA para la captura del antígeno NS1 del dengue. Se utiliza para la detección cualitativa del antígeno NS1 en suero como ayuda para el diagnóstico en laboratorios clínicos de pacientes con síntomas clínicos indicativos de fiebre del dengue. El ensayo EliSA para la detección precoz del dengue de Panbio debe utilizarse junto con otros análisis serológicos para el dengue.
INTRODUCCIÓN
El virus del dengue pertenece a la familia de los flavivirus, que se encuentra en regiones extensas de los trópicos y los subtrópicos. Más de la mitad de la población mundial vive en regiones con riesgo de una posible transmisión del dengue, lo que lo convierte en la enfermedad causada por arbovirus más importante en seres humanos, en términos de morbididad y mortalidad1. Existen cuatro serotipos del virus del
dengue claramente diferenciados pero antigénicamente relacionados que se transmiten por medio de mosquitos hembra, principalmente los de las especies Aedes aegypti, Aedes albopictus y Aedes polynesienses. la infección por el virus del dengue presenta manifestaciones clínicas variadas, desde asintomáticas a mortales. la enfermedad puede clasificarse en función de su gravedad en los siguientes tipos: enfermedad febril no específica, fiebre del dengue clásico, fiebre del dengue hemorrágico (FDh) (grados i y ii) y síndrome de choque por dengue (SCD) (grados iii y iV)1. la fiebre del dengue clásico se caracteriza
por la aparición repentina de fiebre, que se manifiesta junto con dos o más de los siguientes síntomas: cefalea, dolor retroorbitrario, mialgia, artralgia, exantema, manifestaciones hemorrágicas o leucopenia2. Es
frecuente una evolución febril bifásica, así como insomnio y anorexia con pérdida del sentido del gusto o un sabor amargo. la fiebre hemorrágica del dengue y el síndrome de shock por dengue son complicaciones graves potencialmente mortales que a menudo se asocian a la infección por un segundo serotipo3.
El diagnóstico precoz del dengue permite administrar un tratamiento sintomático y una monitorización tempranas. Esto reduce el riesgo de complicaciones tales como la fiebre hemorrágica del dengue o el síndrome de shock del dengue, especialmente en los países en los que el dengue es endémico4.
la detección del antígeno NS1 del dengue con el ensayo EliSA es un procedimiento muy útil, ya que permite detectar la infección antes de que tenga lugar la seroconversión. El antígeno NS1 se puede detectar en el suero desde el día 1 tras el inicio de la fiebre y hasta el día 95,6,7 (véase
la ilustración). En contraste, los anticuerpos igM no son detectables hasta los días 3-58,9. la infección secundaria por virus del dengue
se caracteriza por altos niveles de igg, con un intervalo de detección óptimo entre 6 y 15 días después del comienzo de la enfermedad, que pueden estar acompañados de niveles elevados de igM10,11. El ensayo
EliSA de captura de anticuerpos igg contra el dengue de Panbio está diseñado para detectar los altos niveles de anticuerpos igg específicos de la infección por dengue por encima de este umbral. El ensayo, sin embargo, no detecta las concentraciones bajas de anticuerpos igg de exposiciones pasadas que, con frecuencia, presentan muchos sujetos procedentes de regiones endémicas. Para obtener el diagnóstico más exacto posible del dengue en pacientes que acudan en varias etapas de la enfermedad, conviene combinar el ensayo EliSA para la detección precoz del dengue de Panbio (01PE40), el ensayo EliSA de captura
de anticuerpos igM contra el virus del dengue de Panbio (01PE20) y el ensayo EliSA de captura de anticuerpos igg contra el virus del dengue de Panbio (01PE10).
01PE40
Primoinfección Inicio de los síntomas
Nivel de antígenos y anticuerpos
Tiempo
Infección por dengue : respuesta inmunitaria
Infección secundaria Inicio de los síntomas
Puntos de corte de IgG de Panbio* IH 1:2 560
Puntos de corte de IgM de Panbio*
Virus Virus
NS1 IgM NS1 IgM
IgG
# Puntos de corte del cartucho de dengue Duo y del ensayo EliSA de captura de igg de Panbio.
Equivale aproximadamente a un título de 2 560 en la prueba de inhibición de hemaglutinación (ih).
* Puntos de corte del cartucho de dengue Duo y del ensayo EliSA de captura de igM de Panbio.
^ los niveles de igM en una infección secundaria pueden ser indetectables.
PRINCIPIO
Cuando está presente, el antígeno sérico NS1 del dengue se une a los anticuerpos anti-NS1 ligados a la superficie de poliestireno de los micropocillos. El suero restante se elimina mediante lavado y se agrega anticuerpo monoclonal (MAb) anti-NS1 conjugado con peroxidasa de rábano (hRP). Después del período de incubación, los micropocillos se lavan y se agrega un sistema de sustrato incoloro de tetrametilbencidina y peróxido de hidrógeno (cromógeno de TMB). la enzima hidroliza el sustrato y la TMB se vuelve de color azul. Después de detener la reacción con ácido, la TMB se vuelve de color amarillo. los cambios de color indican la presencia del antígeno NS1 del dengue en la muestra de la prueba.
MATERIALES SUMINISTRADOS
1. Micropocillos recubiertos de anticuerpos anti-NS1 (12 x 8 pocillos): los micropocillos están recubiertos de anticuerpos anti-NS1. listo para usar. los micropocillos sin usar deben volver a sellarse inmediatamente y guardarse en presencia de un secante. Estable entre 2 y 8°C hasta su caducidad.
2. MAb anti-NS1 conjugado con HRP: un frasco de 15 ml (naranja). Anticuerpo monoclonal anti-NS1 conjugado con peroxidasa de rábano con conservante (Proclin™ al 0,1%). listo para usar. Estable entre 2 y 8°C hasta su caducidad.
3. Tampón de lavado (20x): un frasco de 60 ml de solución salina tamponada con fosfato (ph 7,2-7,6) concentrada 20x con Tween 20 y conservante (Proclin™ al 0,1%). A temperaturas bajas puede producirse cristalización. Para corregirla, incube a una temperatura de 37°C hasta que desaparezca. Mezcle bien. Diluya una parte del tampón de lavado concentrado con 19 partes de
Esp
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Esp
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- 30 -
- 31 -
agua destilada. El tampón diluido puede almacenarse durante una semana entre 2 y 25°C.
4. Diluyente para muestra: un frasco de 22 ml (marrón). listo para usar. Solución salina tamponada con Tris (ph 7,2-7,6) con conservantes (Proclin™ al 0,1%) y aditivos. Estable entre 2 y 8°C hasta su caducidad.
5. Cromógeno TMB (TMB): un frasco de 15 ml. listo para usar. Una mezcla de 3,3’,5,5'-tetrametilbencidina y peróxido de hidrógeno en un tampón de citrato-ácido cítrico (ph 3,5-3,8). Estable entre 2 y 8°C hasta su caducidad.
6. Control positivo: un vial de tapón morado con 1,2 ml de antígeno recombinante (contiene Proclin™ al 0,1% y sulfato de gentamicina al 0,005%). Estable entre 2 y 8°C hasta su caducidad.
7. Calibrador: dos viales de tapón naranja con 1,5 ml de antígeno recombinante (contiene Proclin™ al 0,1% y sulfato de gentamicina al 0,005%). Estable entre 2 y 8 °C hasta su caducidad.
8. Control negativo: un vial de tapón blanco con 1,2 ml de suero humano (contiene acida sódica al 0,1% y sulfato de gentamicina al 0,005%). Estable entre 2 y 8°C hasta su caducidad. 9. Solución de parada: un frasco de tapón rojo con 15 ml. listo
para usar. Ácido fosfórico 1M. Estable entre 2 y 25°C hasta su caducidad.
Proclin™ 300 es una marca registrada de Rohm and Haas Company.
MATERIALES ADICIONALES NECESARIOS NO
SUMINISTRADOS
1. Micropipetas de precisión ajustables con puntas de pipeta desechables (capacidad 5-1000 µl)
2. Agua desionizada
3. Sistema de lavado de microplacas 4. lector de microplacas con un filtro de 450 nm 5. Cronómetro
6. Probeta graduada 7. Matraz
8. Tubos de ensayo o microplaca para diluciones
PRECAUCIONES
PARA USO DIAGNÓSTICO IN VITRO
1. Todas las muestras de origen humano utilizadas en la preparación de los controles han dado resultados negativos en las pruebas para los virus 1 y 2 de la inmunodeficiencia humana (Vih 1 y 2), el virus de la hepatitis C (VhC) y el antígeno de superficie de la hepatitis B. Sin embargo, ningún método ofrece una garantía completa y todos los controles y antígenos humanos deben manipularse como material potencialmente infeccioso. los Centers for Disease Control and Prevention y los National institutes of health recomiendan manipular los agentes potencialmente infecciosos en laboratorios de contención biológica de nivel 212.
2. Esta prueba solo debe realizarse con suero. No se ha establecido el uso de sangre completa, plasma u otras matrices de muestras. 3. No se deben utilizar sueros ictéricos o lipidémicos o sueros que
presenten hemólisis o crecimiento microbiano. 4. No inactive los sueros con calor.
5. Todos los reactivos deben estar estabilizados a temperatura
ambiente (entre 20 y 25°C) antes de comenzar el ensayo. los cambios de temperatura afectan al ensayo. No saque los micropocillos de la bolsa cerrada hasta que hayan alcanzado la temperatura ambiente (entre 20 y 25°C).
6. Dispense los reactivos directamente de los frascos utilizando puntas de pipeta limpias. Al transferirlos pueden contaminarse. 7. los micropocillos sin usar deben volver a sellarse inmediatamente
y guardarse en presencia de un secante. Si no se lleva a cabo este paso pueden obtenerse resultados erróneos.
8. Sistema de sustrato:
(a) Dado que la TMB se puede contaminar con iones metálicos, no permita que el sistema de sustrato entre en contacto con superficies metálicas.
(b) Evite una exposición prolongada a la luz directa. (c) Algunos detergentes pueden interferir con el rendimiento
de la TMB.
(d) la TMB puede presentar un tenue color azulado, lo que no afecta a la actividad del sustrato ni a los resultados del ensayo.
9. Algunos componentes del kit contienen acida sódica, que puede reaccionar con las tuberías de plomo o cobre y formar compuestos de acidas metálicas altamente explosivos. Al desechar estos reactivos por las tuberías, hágalo vertiendo una gran cantidad de agua con el fin de evitar que la acida se acumule en las cañerías.
10. la acida sódica inhibe la actividad del conjugado. Para agregar el conjugado deben utilizarse puntas de pipeta limpias, de forma
que no se transfiera acida sódica de otros reactivos.
11. la información de riesgo de los componentes conforme a las correspondientes Directivas de la Comunidad Europea (CE) es la siguiente:
Componentes Naturaleza del riesgo
Tampón de lavado concentrado 20x irritante R36/38, R43
irritante Xi
Cromógeno TMB irritante R36/37/38
Solución de parada irritante R36/38 Diluyente para muestra 3 irritante R36/38, R43 Anti-NS1 conjugado con hRP del
ensayo EliSA para la detección precoz del dengue
irritante R36/38, R43 Control positivo del ensayo EliSA
para la detección precoz del dengue irritante R36/38, R43 Calibrador del ensayo EliSA para la
detección precoz del dengue irritante R36/38, R43 Control negativo del ensayo EliSA
para la detección precoz del dengue Nocivo R22, R32, R43
Nocivo Xn Micropocillos recubiertos de
anti-NS1 del ensayo EliSA para la detección precoz del dengue
No se considera peligroso
PARA MÁS INFORMACIÓN DE SEGURIDAD, CONSULTE LA HOJA DE DATOS DE SEGURIDAD DISPONIBLE EN STANDARD DIAGNOSTICS, INC.
