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A citotoxicidade dos sistemas microparticulados foi avaliada em função do tempo de incubação de diferentes concentrações de fármaco livre e quantidade equivalente do mesmo nas micropartículas. Estudos relatam que esse parâmetro influencia diretamente na interação do fármaco com as células e, consequentemente, na viabilidade celular (KANG et al., 2008; SANTOS et al., 2010). Foram avaliados os sistemas 1:3 MTX/PLA, MTX/PLA-PLUF127 e MTX/PLA- PLUF68 75:25, no intuito de correlacionar o ensaio de viabilidade celular com o estudo de liberação in vitro.

Legenda: *p < 0,05, comparado a micropartículas de PLA sem fármaco.

Na Figura 38, observou-se que as micropartículas de PLA sem fármaco mostraram viabilidade celular acima de 80%, nas concentrações estudadas, em 24 e

Figura 38 - Viabilidade de células Vero E6 cultivadas com micropartículas de PLA sem fármaco, metotrexato e sistemas MTX/PLA, em diferentes concentrações, por 24 e 48 horas (n = 4).

48 horas de incubação. É importante ressaltar que estas não apresentaram efeito sobre a proliferação de células Vero E6. Isso pode ser confirmado também pela literatura que fornece informações sobre a biocompatibilidade do PLA (GARLOTTA, 2001; MANSOUR et al., 2010; LUCKACHAN; PILLAI, 2011; LASPRILLA et al., 2012).

Por outro lado, o aumento da concentração do fármaco livre e dentro da micropartícula levou a uma diminuição da viabilidade celular. O efeito citotóxico do metotrexato, em relação às micropartículas de PLA sem fármaco (p < 0,05), ocorreu devido à inibição da atividade da enzima dihidrofolato redutase, interferindo no processo de divisão mitótica das células (RUBINO, 2001; WARREN; GRIFFITHS, 2008; FDA, 2013). Além disso, o MTX apresentou maior citotoxicidade em relação ao sistema 1:3 MTX/PLA até 24 horas. Após esse período, houve uma diminuição do número de células viáveis, indicativo de uma liberação prolongada do MTX no meio. Esse resultado corroborou com o ensaio de liberação in vitro, no qual a taxa do fármaco liberado foi de 70% nas primeiras 24 horas, atingindo 80% até 48 horas de estudo.

Figura 38 - Viabilidade de células Vero E6 cultivadas com blendas poliméricas PLA-PLUF127 75:25, PLA-PLUF68 75:25, metotrexato, sistemas MTX/PLA-PLUF127 e MTX/PLA-PLUF68 75:25, em diferentes concentrações, por 24 e 48 horas (n = 4).

Na Figura 39, observou-se que as blendas PLA-PLU apresentaram viabilidade celular acima de 80% durante o período de 24 a 48 horas. No entanto, foi possível observar uma tendência ao aumento de biocompatibilidade (> 95% do número de células viáveis), em relação ao PLA, nas primeiras 24 horas. A modificação da superfície da matriz hidrofóbica do PLA a partir de grupos hidrofílicos de poli (óxido de etileno) aumenta a biocompatibilidade do sistema (KISS; BERTÓTI; VARGHA-BUTLER, 2002).

Os sistemas MTX/PLA-PLUF127 e F68 apresentaram uma liberação prolongada do fármaco, o que pode ser visualizado pela diminuição do número de células viáveis, após 24 horas, em relação ao fármaco livre, diferentemente do estudo de liberação in vitro, no qual o fármaco foi liberado completamente em apenas 30 minutos. A discordância dos resultados pode ter ocorrido devido às diferenças físico-químicas no microambiente em que se encontravam as micropartículas em cada tipo de estudo.

Em experimentos em cultura de células, a presença de um complexo de proteínas e antibióticos pode influenciar o pH e, consequentemente, a ionização do fármaco, mas a relação entre a massa de micropartículas e o volume de meio de dissolução é mais determinante na velocidade de fármaco liberado. Portanto, o menor volume de meio, comparado ao ensaio de liberação in vitro, foi responsável pelo intumescimento do PLU, o qual se manteve na matriz, retardando a liberação do fármaco. Isso pode ter ocorrido devido ao comportamento termogelificante do Pluronic® à temperatura de 37°C (ESCOBAR-CHÀVEZ et al., 2006; PATEL, H.; PATEL, R.; PATEL, M., 2009), diminuindo a taxa de difusão do fármaco para o meio. O uso de poloxâmeros vem sendo investigado como formador de matriz in situ, através da formação de gel, para uso em sistemas de liberação de fármacos (GUO et al., 2007; MOEBUS; SIEPMANN; BODMEIER, 2009; BONACUCINA et al., 2011).

O efeito da liberação lenta do fármaco sobre o número de células viáveis em função do tempo foi mais pronunciado com o aumento da concentração de metotrexato no meio, por isso a viabilidade celular pode ser melhor avaliada na concentração máxima de 1 μg/mL.

Legenda: *p < 0,05, comparado ao metotrexato.

Na Figura acima, observou-se que a porcentagem de células viáveis dos sistemas microparticulados apresentaram diferença estatística (p < 0,05), comparado ao metotrexato. Portanto até 24 horas, uma quantidade insuficiente de fármaco foi liberada, não atingindo a ação citotóxica. Após esse período, as micropartículas liberaram uma porcentagem de fármaco equivalente à dose do MTX testado, o que tornou semelhante o número de células viáveis das amostras. Comparando os sistemas contendo Pluronic® F127 e F68, não foi possível observar diferenças significativas na taxa de liberação do fármaco, corroborando com o resultado do ensaio in vitro.

Figura 40 - Viabilidade de células Vero E6 cultivadas com metotrexato e sistemas 1:3 MTX/PLA, MTX/PLA-PLUF127 e MTX/PLA-PLUF68 75:25, na concentração de 1 μg/mL, por 24 e 48 horas.

6 CONCLUSÕES

As micropartículas de PLA contendo diferentes concentrações fármaco- polímero (1:10; 1:4,5; 1:3) e blendas poliméricas PLA-PLU, com distintas variáveis polímero-copolímero (25:75; 50:50; 75:25), foram obtidas com sucesso por spray

drying devido à alta eficiência de encapsulação dos sistemas, utilizando metodologia

analítica validada para o doseamento do metotrexato.

Quanto à distribuição do tamanho das partículas, os diferentes sistemas microparticulados apresentaram-se uniformes e com baixa polidispersão, em um intervalo de 3 a 5 μm. Em relação à morfologia, a presença do fármaco na matriz de PLA e a razão polímero:copolímero 75:25, em blendas PLA-PLU, foram determinantes para a obtenção de partículas mais esféricas, parâmetro importante na velocidade de liberação do fármaco.

Os resultados do DRX e da análise térmica mostraram que o metotrexato encontra-se disperso na matriz amorfa de PLA e nas blendas PLA-PLU, sendo confirmado principalmente pela ausência de picos cristalinos do fármaco e do seu ponto de fusão, enquanto que o tipo e a concentração de Pluronic® influenciaram a miscibilidade das blendas obtidas. A análise térmica mostrou maior miscibilidade em blendas contendo Pluronic® F127. Além disso, não foi possível observar ligações químicas entre o MTX e o PLA pela análise de FTIR. Por outro lado, a presença de fármaco favoreceu interações MTX-PLU.

No estudo de liberação in vitro do fármaco, as micropartículas de PLA contendo metotrexato apresentaram um perfil de liberação prolongada, com cinética envolvendo mecanismos de difusão e erosão, enquanto foi possível modular a velocidade de liberação do mesmo a partir de blendas poliméricas contendo PLU. Além disso, no ensaio de viabilidade celular, foi possível observar a liberação lenta do fármaco no meio, a partir de sistemas contendo PLA e blendas PLA-PLU. Diante disso, estes sistemas são promissores carreadores de fármacos biodegradáveis e biocompatíveis para modificar a velocidade de liberação do MTX com potencial para a aplicação em estudos in vivo.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ALEXANDRIDIS, P.; TSIANOU, M. Block copolymer-directed metal nanoparticle morphogenesis and organization. European Polymer Journal, v.47, p.569-583, 2011.

AGHBASHLO, M.; MOBLI, H.; RAFIEE, S., MADADLOU, A. Energy and exergy analyses of the spray drying process of fish oil microencapsulation. Biosystems

Engineering, v.111, n.2, p.229-241, 2012.

BAJPAI, A.K.; SHUKLA, S.K.; BHANU, S.; KANKANE, S. Responsive polymers in controlled drug delivery. Progress in Polymer Science, v.33, n.11, p.1088-1118, 2008.

BRASIL. AGÊNCIA NACIONAL DE VIGILÂNCIA SANITÁRIA (ANVISA). Resolução

– RE nº 899, 29 de maio de 2003. Guia para validação de métodos analíticos e

bioanalíticos. D.O.U. – Diário Oficial da União; Poder Executivo, 02 de junho de 2003.

BANERJEE D; MAYER-KUCKUK, P; CAPIAUX, G; BUDAK-ALPDOGAN, T; GORLICK, R; BERTINO, J.R. Novel aspects of resistance to drugs targeted to dihydrofolate reductase and thymidylate synthase. Biochimica et Biophysica Acta, v.1587, n.2-3, p.164-173, 2002.

BATRAKOVA, E.V.; KABANOV, A.V. Pluronic Block Copolymers: Evolution of Drug Delivery Concept from Inert Nanocarriers to Biological Response Modifiers. Journal

of Controlled Release, v.130, n.2, p.98-106, 2008.

BENITA, S. Microencapsulation: Methods and Industrial Applications. 2. ed. New York: CRC Press, 2006. 747p.

BETE®. Spray Dry Manual. Bete fog Nozzle, Inc., 2005. 24 p. Disponível em:

<http://www.bete.com/pdfs/BETE_SprayDryManual.pdf>. Acesso em: 10 mar. 2013.

BERKLAND, C.; KIM, K.K.; PACK, D.W. PLG Microsphere Size Controls Drug Release Rate through Several Competing Factors. Pharmaceutical Research, v. 20, n.7, 2003.

BITTENCOURT, H.N.S.; BRUNSTEIN, C.G. Fármacos antineoplásicos. In: FUCHS, F.D.; WANNMACHER, L; FERREIRA, M.B. Farmacologia Clínica: Fundamentos da terapêutica racional. 3. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2006. p.502-531.

BHANDARI, B. R.; HOWES, T. Implication of glass transition for the drying and stability of dried foods. Journal of Food Engineering, v.40, n.1, p.71-79, 1999.

BLASI, P.; D’SOUZA, S.S.; SELMIN, F.; DELUCA P.P. Plasticizing effect of water on poly(lactide-co-glycolide). Journal of Controlled Release, v.108, p.1-9, 2005.

BONACUCINA, G.; CESPI, M.; MENCARELLI, G.; GIORGIONI, G.; PALMIERI, G.F. Thermosensitive Self-Assembling Block Copolymers as Drug Delivery Systems.

Polymers, v.3, p.779-811, 2011.

BRAGAGNI, M.; BENEITEZ, C.; MARTÍN, C.; LA OSSA, D.H.P.; MURA, P.A.; GIL- ALEGRE, M.E. Selection of PLA polymers for the development of injectable

prilocaine controlled release microparticles: Usefulness of thermal analysis.

International Journal of Pharmaceutics, v.441, n.1-2, p.468-475, 2013.

BOLETIM INFORMATIVO BÜCHI. Training Papers Spray Drying. Switzerland: Büchi Labortechnik AG, 2002. p.1-19.

CAL, K.; SOLLOHUB, K. Spray Drying Technique I: Hardcare and Process Parameters. Journal of Pharmaceutical Sciences, v.99, n.2, p.575-586, 2010.

CARDOSO, S.G. et al. Determinação Quantitativa de Tenoxicam em comprimidos por Espectrofotometria no Ultravioleta. Acta Farmacéutica Banaerense, v.25, n.2, p.262-266, 2006.

CARRETERO, G. et al. Guidelines on the Use of Methotrexate in Psoriasis. Actas

Dermo-Sifiliográficas, v.101, n.7, p.600-613, 2010.

ÇELIK, M.; WENDEL, S.C. Spray Drying and Pharmaceutical Applications. In: Parikh, D.M. Handbook of Pharmaceutical Granulation Technology. 2ª ed. Pinehurst, North Carolina: Executeve, 2005. p.129-157.

CHADHA, R.; ARORA, P.; KAUR, R.; SAINI, A.; SINGLA, M. L.; JAIN, D. S. Characterization of solvatomorphism of methotrexate using thermoanalytical and other techniques. Acta Pharmaceutics, v.59, n.3, p.245-247, 2009.

CHANDAK, A.R.; VERMA, P.R.P. Design and Development of Hydroxypropyl Methycellulose (HPMC) Based Polymeric Films of Methotrexate: Physicochemical and Pharmacokinetic Evaluations. The Pharmaceutical Society of Japan, v.128, n.7, p.1057-66, 2008.

CHEN, A.; WANG, G.Y.; WANG, S. B.; LI, L.; LIU, Y.G.; ZHAO, C. Formation of methotrexate-PLLA-PEG-PLLA composite microspheres by microencapsulation through a process of suspension-enhanced dispersion by supercritical CO2. International Journal of Nanomedicine. v.7, p.3013–22, 2012.

CHLÁDEK, J.; MARTINKOVÁ, J.; SIMKOVÁ, M.; VANECKOVÁ, J.; KOUDELKOVÁ, V.; NOCZICKOVÁ, M. Pharmacokinetics of low doses of methotrexate in patients with psoriasis over the early period of treatment. European Journal of Clinical

Pharmacology, v.53, p.437-444, 1998.

CHOW, A.H.; TONG, H.H.; CHATTOPADHYAY, P.; SHEKUNOV, B.Y. Particle engineering for pulmonary drug delivery. Pharmaceutical Research, v.24, p.411- 437, 2007.

COREM-SALKMON, E.; RAM, Z.; DANIELS, D.; PERLSTEIN, B; LAST, D.;

SALOMON, S.; TAMAR, G.; SHNEOR, R.; GUEZ, D.; MARGEL, S.; MARDOR, Y. Convection-enhanced delivery of methotrexate-loaded maghemite nanoparticles.

International Journal Nanomedicine, v.6, p.1595-02, 2011.

COSTA, P.J.C. Avaliação in vitro da lioequivalência de formulações farmacêuticas.

Revista Brasileira de Ciências Farmacêuticas, v.38, n.2, abr./jun., 2002.

COSTA, P.; LOBO, J.M.S. Modeling and comparison of dissolution profiles.

European Journal of Pharmaceutical Sciences, v.13, p.123-133, 2001.

DHANIKULA, R.S.; HILDGEN, P. Influence of molecular architecture of polyether-co- polyester dendrimers on the encapsulation and release of methotrexate.

Biomaterials, v.28, p.3140-52, 2007.

DONG, Y.D.; BOYD, B.J. Applications of x-ray scattering in pharmaceutical science.

International Jornal of Pharmaceutics, v.417, n.1-2, p.101-111, 2011.

ESCOBAR-CHÁVEZ, J.J.; LÓPEZ-CERVANTES, M.; NAÏK, A.; KALIA, Y.N.; QUINTANAR-GUERRERO, D.A.; GANEM-QUINTANAR. Applications of

thermoreversible Pluronic F-127 gels in pharmaceutical formulations. Journal of

Pharmaceutical Sciences. v.9, n.3, p.339-358, 2006.

EHTEZAZI, T; WASHINGTON, C. Controlled release of macromolecules from PLA microspheres: using porous structure topology. Journal of Controlled Release, v.68 p.361-372, 2000.

BRASIL. FARMACOPEIA BRASILEIRA. 5ª ed., v.2. Brasília: Editora Fiocruz, 2010.

FLORES, J.R.; PEÑALVO, G.C.; MANSILLA, A.E.; GÓMEZ, M.J.R. Capillary electrophoretic determination of methotrexate, leucovorin and folic acid in human urine. Journal of Chromatography B, v.819, p.141-147, 2005.

FOOD AND DRUG ADMINISTRATION (FDA). Inactive Ingredient Search for

Approved Drug Products. Website, 2013. Disponível em:

<http://www.accessdata.fda.gov/scripts/cder/iig/index.cfm>. Acesso em: 13 jul. 2013.

FOOD AND DRUG ADMINISTRATION. Material Safety Data Sheet; Methotrexate

Injection USP from Hospira Healthcare Corporation. USA, 2009. 9 p. Disponível

em: < http://www.bdipharma.com/MSDS/-Hospira/Methotrexate_Injection_USP.pdf>. Acesso em: 10 jan. 2013.

FOOD AND DRUG ADMINISTRATION. Prescribing information; Methotrexate

Injection USP from Hospira Healthcare Corporation. Canada, 2012. 43 p.

Disponível em:

<http://www.fda.gov/downloads/Drugs/DrugSafety/DrugShortages/UCM294829.pdf>. Acesso em: 08 jan. 2013.

FORMARIZ, T.P.; WANCZINSKI, B.J.; SILVA JÚNIOR, A.A.; SCARPA, M.V.; OLIVEIRA, A.G.D. Biotecnologia de sistemas coloidais aplicável na otimização do efeito terapêutico de fármacos usados no tratamento do câncer. Infarma, v.16, n.1-2, p.44-57, jan/fev. 2004.

FORMARIZ, T.P.; SARMENTO, V.H.V.; SILVA-JUNIOR, A.A.; SCARPA, M.V.; SANTILLI, C.V.; OLIVEIRA, A.G. Doxorubicin biocompatible O/W microemulsion stabilized by mixed surfactant containing soya phosphatidylcholine. Colloids and

Surfaces B: Biointerfaces, v.51, p.54-61, 2006.

FREDENBERG, S.; WAHLGREN, M.; RESLOW, M.; AXELSSON, A. The mechanisms of drug release in poly(lactic-co-glycolic acid)-based drug delivery

systems—A review. International Journal of Pharmaceutics, v.415, p.34-52, 2011.

FREITAS, M.N.; MARCHETTI, J.M. Nimesulide PLA microspheres as a potential sustained release system for the treatment of inflammatory diseases. International

Journal of Pharmaceutics, v.295, p.201-211, 2005.

FU, Y.J.; SHYU, S.S.; SU, F.H.; YU, P.C. Development of biodegradable co-poly (D,L- lactic/glycolic acid) microspheres for the controlled release of 5-FU by the spray drying method. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, v.25, n.4, p.269-279, 2002.

FUKUSHIMA, K.; KIMURA, Y. An efficient solid-state polycondensation method for synthesizing stereocomplexed poly(lactic acid)s with high molecular weight. Journal

of Polymer Science Part A: Polymer Chemistry, v.46, p.3314–22, 2008.

GARLOTTA, D.A. Literature Review of Poly(Lactic Acid). Journal of Polymers and

GAIGNAUX, A.; RÉEFF, J.; SIEPMANN, F.; SIEPMANN, J.; VRIESE, C.; GOOLE, J.; AMIGHI, K. Development and evaluation of sustained-release clonidine-loaded PLGA microparticles. International Journal of Pharmaceutics, v.437, p.20-28, 2012.

GAVINI, E.; CHETONI, P.; COSSU, M.; ALVAREZ, M.G.; SAETTONE, M. F.; GIUNCHEDI, P. PLGA microspheres for the ocular delivery of a peptide drug, vancomycin using emulsification/spray-drying as the preparation method: in vitro/ in vivo studies. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics, v.57, n.2, p.207-212, 2004.

GAVINI, E.; MANUNTA, L.; GIUA, S.; ACHENZA, G.; GIUNCHEDI, P. Spray-Dried Poly(D,L-Lactide) Microspheres Containing Carboplatin for Veterinary Use: In Vitro and In Vivo Studies. AAPS PharmSciTech, v.6, n.1, p.E108-E114, 2005.

GHEBREMESKEL, A. N.; VEMAVARAPU, C.; LODAYA, M. Use of surfactants as plasticizers in preparing solid dispersions of poorly soluble API: Selection of polymer– surfactant combinations using solubility parameters and testing the processability.

International Journal of Pharmaceutics, v.328, p.119-129, 2007.

GIBALDI, M., FELDMAN, S. Establishment of sink conditions in dissolution rate determinations – theoretical considerations and application to non disintegrating dosage forms. Journal of Pharmaceutical Sciences, v.56, p.1238-1242, 1967.

GIFFORD, A. J.; KAVALLARIS, M.; MADAFIGLIO, J.; MATHERLY, L. H.;

STEWART, B.W.; HABER, M.; NORRIS, M.D. P-glycoprotein-mediated methotrexate resistance in ccrf-cem sublines deficient in methotrexate accumulation due to a point mutation in the reduced folate carrier gene. International Journal of Cancer, v.78, p.176-181, 1998.

GONG, J.; JAISWAL, R.; MATHYS, J-M.; COMBES, V.; GRAU, G.E.R.; BEBAWY, M. Microparticles and their emerging role in cancer multidrug resistance. Cancer

Treatment Reviews, v.38, p.226-234, 2012.

GUO, D.D.; MOON, H.S.; AROTE, R.; SEO, J.H.; QUAN, J.S.; CHOI, Y.J.; CHO, C.S. Enhanced anticancer effect of conjugated linoleic acid by conjugation with Pluronic F127 on MCF-7 breast cancer cells. Cancer Letters, v.254, p.244-254, 2007.

HERNANDEZ-BALDIZON, S. How to Effectively Use Methotrexate in Rheumatoid Arthritis? Reumatología Clínica, v.8, n.1, p.42-45, 2012.

INTERNATIONAL CONFERENCE ON HARMONISATION OF TECHNICAL

REQUERIMENTS FOR REGISTRATION OF PHARMACEUTICALS FOR HUMAN USE. Validation of Analytical Procedures: Text and Methodology Q2 (R1), 1996. 13 p.

ISKANDAR, F.; GRADON, L.; OKUYAMA, K. Control of the morphology of

nanostructured particles prepared by the spray drying of a nanoparticle sol. Journal

of Colloid and Interface Science, v.265, p.296–303, 2003.

JEONG J.C.; LEE, J; CHO, K. Effects of crystalline microstructure on drug release behavior of poly(Ɛ-caprolactone) microspheres. Journal of Controlled Release, v.92, p.249-258, 2003.

JINGOU, J.; SHILEI, H.; WEIGI, L.; DANJUN, W.; TENGFEI, W.; YI, X. Preparation, characterization of hydrophilic and hydrophobic drug in combine loaded

chitosan/cyclodextrin nanoparticles and in vitro release study. Colloids and

Surfaces B: Biointerfaces, v.83, n.1, p.103-107, 2011.

KANG, Y.; WUA, J.; YIN, G.; HUANG, Z.; YAO, Y.; LIAO, X.; CHEN, A.; PU, X.; LIAO, L. Preparation, characterization and in vitro cytotoxicity of indomethacin-loaded PLLA/PLGA microparticles using supercritical CO2 technique. European Journal of

Pharmaceutics and Biopharmaceutics, v.70, p.85-97, 2008.

KISS, E; BERTÓTI, I.; VARGHA-BUTLER, E.I. XPS and Wettability Characterization of Modified Poly(lactic acid) and Poly(lactic/glycolic acid) Films. Journal of Colloid

and Interface Science, v.245, p.91-98, 2002.

LASPRILLA, A.J.R.; MARTINEZ, G.A.R.; LUNELLI, B.H.; JARDINI, A.L.; MACIEL- FILHO, R. Poly-lactic acid synthesis for application in biomedical devices — A review. Biotechnology Advances, v.30, p.321-328, 2012.

LEE J.B.; YOON, J.J.; LEE, D.S.; PARK, T.G. Photo-crosslinkable, thermo-sensitive and biodegradable Pluronic hydrogels for sustained release of protein. Journal of

Biomaterials Science, Polymer Edition, v.15, n.12, p.1571-1583, 2004.

LI, X.; ANTON, N.; ARPAGAUS, C; BELLETEIX, F.; VANDAMME, T. F.

Nanoparticles by spray drying using innovative new technology: The Büchi Nano Spray Dryer B-90. Journal of Controlled Release, v.147, p.304-310, 2010.

LIANG, L.; JACKSON, J.; MIN, W.; RISOVIC, V.; WASAN, K.M.; BURT, H.M. Methotrexate loaded poly(L-lactic acid) microspheres for intra-articular delivery of methotrexate to the joint. Journal of Pharmaceutical Sciences, v.93, n.4, p.943- 956, 2004.

LIANG, L.S.; SALO, P.T.; HART, D.A.; BURT, H.M. Intra-articular treatment of inflammatory arthritis with microsphere formulations of methotrexate:

pharmacokinetics and efficacy determination in antigen-induced arthritic rabbits.

LIM, J. S.; PARK K.; CHUNG, G. S.; KIM, J.H. Effect of composition ratio on the thermal and physical properties of semicrystalline PLA/PHB-HHx composites.

Materials Science and Engineering C, v.33, p.2131-37, 2013.

LINDENBERG, M.; KOPP, S.; DRESSMAN, J.B. Classification of orally administered drugs on the World Health Organization Model list of Essential Medicines according to the biopharmaceutics classification system. European Journal of Pharmaceutics

and Biopharmaceutics, n.58, p.265-278, 2004.

LOH, C.H.; WANG, R.; SHI, L.; FANE, A. G.; Fabrication of high performance polyethersulfone UF hollow fiber membranes using amphiphilic Pluronic block

copolymers as pore-forming additives. Journal of Membrane Science, v.380, p.114- 123, 2011.

LOPES, W.A.; FASCIO, M. Esquema para interpretação de espectros de

substâncias orgânicas na região do infravermelho. Química Nova, v.27, n.4, p.670- 673, 2004.

LOPES, C.M.; LOBO, J.M.S.; COSTA, P. Formas farmacêuticas de liberação modificada: polímeros hidrofílicos. Revista Brasileira Ciências Farmacêuticas, v.41, n.2, p.143-154, 2005.

LUCKACHAN, G.E.; PILLAI, C.K.S. Biodegradable Polymers - A Review on Recent Trends and Emerging Perspectives. Journal of Polymers and the Environment, v.19, p.637-676, 2011.

LYU, S-P.; SPARER, R.; HOBOT, C.; DANG, K. Adjusting drug diffusivity using miscible polymer blends. Journal of Controlled Release, n.102, p.679–687, 2005.

MANADAS, R.; PINA, M.E.; VEIGA, F. A dissolução in vitro na previsão da absorção oral de fármacos em formas farmacêuticas de liberação modificada. Revista

Brasileira de Ciências Farmacêuticas, v.38, n.4, out./dez., 2002.

MANSOUR, H.M.; SOHN, M.S.; AL-GHANANEEM, A.; DELUCA, P.P. Materials for Pharmaceutical Dosage Forms: Molecular Pharmaceutics and Controlled Release Drug Delivery Aspects. International Journal of Molecular Sciences, v.11, p.3298- 3322, 2010.

MASTERS, K. Spray Drying: An Introduction to Principles, Operational Practice and Applications. London: Leonard Hill Books, 1972. 668 p.

MATSUMOTO, A.; MATSUKAWA, Y.; SUZUKI, T.; YOSHINO, H. Drug release characteristics of multi-reservoir type microspheres with poly(dl-lactide-co-glycolide) and poly(dl-lactide). Journal of Controlled Release, v.106, p.172-180, 2005.

MEI, L.; ZHANG, Y.; ZHENG, Y.; TIAN, G.; SONG, C.; YANG, D.; CHEN, H.; SUN, H.; TIAN, Y.; LIU, K.; LI, Z.; HUANG, L. A Novel Docetaxel-Loaded Poly (Ɛ-

Caprolactone)/Pluronic F68 Nanoparticle Overcoming Multidrug Resistance for Breast Cancer Treatment. Nanoscale Research Letters, v.4, p.1530-39, 2009.

MEI, L.; ZHANG, Z.; ZHAO L.; HUANG, L.; YANG, X.L.; TANG, J.; FENG, S.S. Pharmaceutical Nanotechnology for Oral Delivery of Anticancer Drugs. Advanced

Drug Delivery Reviews, v.65, p.880-890, 2013.

MOEBUS, K.; SIEPMANN, J.; BODMEIER, R. Alginate–poloxâmero microparticles for controlled drug delivery to mucosal tissue. European Journal of Pharmaceutics

and Biopharmaceutics, v.72, p.42-53, 2009.

MOSMANN, T. Rapid colorimetric assay of cellular growth and survival: application to proliferation in cytotoxity assays. Journal of Immunological Methods, v.65, p.55- 63, 1983.

MULYE, N. V.; TURCO, S. J. A simple model based on first order kinetics to explain release of highly water soluble drugs from porous dicalcium phosphate dehydrate matrices. Drug Development and Industrial Pharmacy, v.21, n.8, p.943-953, 1995.

NAIR, R.; NYAMWEYA, N.; GO¨NEN, S.; MARTI´NEZ-MIRANDA, L.J.; HOAG, S.W. Influence of various drugs on the glass transition temperature of poly

(vinylpyrrolidone): a thermodynamic and spectroscopic investigation. International

Journal of Pharmaceutics, v.225, p.83–96, 2001.

NAMPOOTHIRI, K.M.; NAIR, N.R.; JOHN, R.P. An overview of the recent developments in polylactide (PLA) research. Bioresource Technology, v.101, p.8493–8501, 2010.

NANDIYANTO, A.B.D.; OKUYAMA, K. Progress in developing spray-drying methods for the production of controlled morphology particles: From the nanometer to

submicrometer size ranges. Advanced Powder Technology, v.22, p.1-19, 2011.

OLIVEIRA, A.R.; MOLINA, E.F.; MESQUITA, P.C.; FONSECA, J.L.C.; ROSSANEZI, G.; PEDROSA, M.F.F.; OLIVEIRA, A.G.; SILVA-JÚNIOR, A.A. Structural and thermal properties of spray-dried methotrexate-loaded biodegradable microparticles. Journal

of Thermal Analysis and Calorimetry, v.112, p.555-565, 2013.

OLIVEIRA, M. A.; YOSHIDA, M. I.; GOMES, E.C.L. Análise térmica aplicada a fármacos e formulações farmacêuticas na indústria farmacêutica. Quimica Nova, v.34, n.7, p.1224-30, 2011.

PALAZZO, F.; GIOVAGNOLI, S.; SCHOUBBEN, A.; BLASI, P.; ROSSI, C.; RICCI, M. Development of a spray-drying method for the formulation of respirable microparticles containing ofloxacin–palladium complex. International Journal of Pharmaceutics, v.440, p.273-282, 2013.

PARAJÓ, Y.; D’ANGELO, I.; HORVÁTH, A.; VANTUS, T.; GYÖRGY, K.; WELLE, A.; GARCIA-FUENTES, M.; ALONSO, M.J. PLGA:poloxâmero blend micro- and nanoparticles as controlled release systems for synthetic proangiogenic factors.

European Journal of Pharmaceutical Sciences, v.41, p.644-649, 2010.

PARK, T.G.; COHEN, S.; LANGER, R. Poly(L-lactic acid)/Pluronic Blends:

Characterization of Phase Separation Behavior, Degradation, and Morphology and Use as Protein-Releasing Matrices. Macromolecules, n.25, p.116-122, 1992.

PAUDEL, A.; WORKU, Z.A.; MEEUS, J.; GUNS, S.; MOOTER, G.V.D.

Manufacturing of solid dispersions of poorly water soluble drugs by spray drying: Formulation and process considerations. International Journal of Pharmaceutics, v.453, p.253-284, 2013.

PATTARINO, F.; GIOVANNELLI, L.; BELLOMI, S. Effect of poloxamers on nifedipine microparticles prepared by Hot Air Coating technique. European Journal of

Pharmaceutics and Biopharmaceutics, v.65, p.198-203, 2007.

PATEL, H.R.; PATEL, R.P.; PATEL, M.M. Poloxamers: A pharmaceutical excipients with therapeutic Behaviors. International Journal of PharmTech Research, v.1, n.2, p.299-303, 2009.

PATEL, H.V.; PATEL, B.G.; PATEL, V.A. Preparation and Physicochemical Characterization of Methotrexate PLGA Microparticles. International Journal of

Pharmaceutical Research, v.2, n.1, p.75-81, 2010.

PATEL, R.P.; PATEL, M.P.; SUTHAR, A.M. Spray drying technology: an overview.

Indian Journal of Science and Technology, v.2, n.10, p.44-47, 2009.

PATRÍCIO, T.; BÁRTOLO, P. Thermal stability of PCL/PLA blends produced by physical blending process. Procedia Engineering, v.59, p.292-297, 2013.

PEZZINI, B.R.; SILVA, M.A.S.; FERRAZ, H.G. Formas farmacêuticas sólidas orais de liberação prolongada: sistemas monolíticos e multiparticulados. Revista

Brasileira Ciências Farmacêuticas, v.43, n.4, p.491-502, out./dez., 2007.

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