Foi constatado aumento no peso testicular dos animais tratados com Heteropterys aphrodisiaca e Anemopaegma arvense nas maiores concentrações por gavagem e por ad libitum devido ao incremento no tecido intertubular que refletiu na função androgênica o que ocasionou aumento do peso corporal como um efeito anabolizante.
Os rendimentos indicativos da eficiência do processo espermatogênico e a capacidade de suporte das células de Sertoli em relação à espermátides arredondadas, não foram significativamente alterados em nenhum dos tratamentos propostos.
Nos grupos submetidos às infusões ad libitum, as alterações registradas para os parâmetros biométricos, para as populações de espermatócitos primários em paquíteno e espermátides arredondadas por secção transversal foram mais efetivas que os grupos submetidos aos tratamentos por gavagem.
Nas concentrações usadas, os extratos de H. aphrodisiaca e A. arvense não promoveram efeitos tóxicos, tendo em vista o aumento da massa corporal e as condições sanitárias observadas em todos os animais submetidos aos diferentes tratamentos utilizados.
Referências bibliográficas
Abdel-Magied, E.M., Abdel-Rahman, H.A., Harraz, F.M. 2001. The effect of aqueous estracts of Cynomorium coccineum and Withania somnifera on testicular development in immature Wistar rats. Journal of Ethnopharmacology 75, 1-4.
Abercrombie, M. 1946. Estimation of nuclear populations from microtome sections. The Anatomical Record 94, 238-248.
Adaikan, P.G., Gauthaman, K., Prasad, R.N., Ngai, S.C. 2000. Proerectile pharmacological effects of Tribulus terrestris extract on the rabbit corpus cavernous. Annals of Academy Medicine Singapore 29, 22-26.
Albuquerque, U.P., Hanazaki, N. 2006. As pesquisas etnodirigidas na descoberta de novos fármacos de interesse médico e farmacêutico: fragilidade e perspectivas. Revista Brasileira de Farmacognosia 16, 687-689.
Almeida, L.M., Weiss, R.R., Castro, C.S., Buchele, J. 2000. Quantificação histológica da espermatogênese de ratos Wistar tratados com Dimetil Sulfóxido. Archives of Veterinary Science 5, 129-135.
Amann, R.P. 1970. Sperm production rates. In: Johnson, A.D., Gomes, W.R., Vandemark, N.L. (Ed.). The testis. New York: Academic Press, p.433-482.
Amann, R.P., Almquist, J.O. 1961. Reproductive capacity of daidy bulls. I. Technique for direct measurement of gonadal and extra-gonadal sperm reserves. Journal Dairy Science 44, 1537-1543.
Ang, H.H., Cheang, H.S., Yusof, A.P. 2000. Effects of Eurycoma longifolia Jack (Tongkat Ali) on the initiation of sexual performance of inexperienced castrated male rats. Experimental Animals 49(1), 35-38.
Ang, H.H., Cheang, H.S. 2001. Effects of Eurycoma longifolia Jack on lavatory any muscle in both uncastrated and testosterone-stimulated castrated intact male rats. Archives of Pharmacal Research 24(5), 437-440.
Ang, H.H., Ikeda, S., Gan, E.K. 2001. Evaluation of the potency activity of aphrodisiac in Eurycoma longifolia Jack. Phytotherapy 15(5), 435-436.
Ang, H.H., Ngai, T.H. 2001. Aphrodisiac evaluation in non-copulator male rats after chronic administration of Eurycoma longifolia Jack. Fundam. Clinical Pharmacology 15(4), 265-268.
Ang, H.H., Sim, M.K. 1997. Eurycoma longifolia Jack enhances libido in sexually experienced male rats. Experimental Animals 46(4), 87-90.
Ang, H.H., Sim, M.K. 1998a. Eurycoma longifolia increases sexual motivation in sexually naive male rats. Archives of Pharmacal Research 21(6), 779-781.
Ang, H.H., Sim, M.K. 1998b. Eurycoma longifolia Jack and orientation activities in sexually experienced male rats. Biological and Pharmaceutical Bulletin 21(2), 153-155. Arletti, R., Benelli, A., Cavazzuti, E., Scarpetta, G., Bertolini, A. 1999. Stimulating property of Turnera diffusa and Pfaffia paniculata extracts on the sexual-behavior of male rats. Psychopharmacology 143, 15-19.
Berndtson, W.E. 1977. Methods for quantifying mammalian spermatogenesis: a review. Journal Animal Science 44, 818-83.
Burgos, R.A., Caballero, E.E., Sánchez, N.S., Schoeder, R.A., Wikman, G.K., Hancke, J.L. 1997. Testicular toxicity assesment of Andrographis paniculata dried extract in rats. Journal of Ethnopharmacology 58, 219-224.
Capasso, R., Izzo, A.A., Pinto, L.; Bifulco, T., Vitobello, C., Mascolo, N. 2000. Phytotherapy and quality of herbal medicines. Fitoterapia 71, 58-65.
Carvalho, A.C.B., Balbino, E.E., Maciel, A., Perfeito, J.P.S. 2008. Situação do registro de medicamentos fototerápicos no Brasil. Revista Brasileira de Farmacognosia 18, 314- 319.
Castro, A. C. S., Berndtson, W. E., Cardoso, F. M. 1997. Cinética e quantificação da espermatogênese: bases morfológicas e suas aplicações em estudos da reprodução de mamíferos. Revista Brasileira de Reprodução Animal 21, 25-34.
Chauhan, A., Agarwal, M.; Kushwaha, S.; Mutreja, A. 2007. Suppression of fertility in male albino rats following the administration of 50 % ethanolic extract of Aegle marmelos. Contraception 76, 474-481.
Chen, X. 1996. Cardiovascular protection by ginsenosides and their nitric oxide releasing action. Clinical and Experimental Pharmacology Physiology 23(8), 728-732. Chen, X., Lee, T.J. 1995. Ginsenosides-induced nitric oxide-mediated relaxation of the rabbit corpus cavernosum. British Journal of Pharmacology 115(1), 15-18.
Cícero, A.F.G., Piacente, S., Plaza, A., Sala, E., Arletti, R. Pizza, C. 2002. Hexanic Maca extract improves rat sexual performance more effectively than methanolic and chloroformic Maca extracts. Andrologia 34, 177-179.
Correa, M.P. 1984. Dicionário das plantas úteis do Brasil e das exóticas cultivadas. Rio de Janeiro-RJ: Ministério da Agricultura/Instituto Brasileiro de Desenvolvimento Florestal, 293p.
Departamento de Veterinária, UFV. Nomas para o uso de animais em ensino, pesquisa e extensão. Disponível em: <http//www.ufv.br/dvt>.
De Rooij, D. G., Janssen, J. M. 1987. Regulation of the density spermatogonia in the seminiferous epithelium of the chinese hamster: I. Undiferentiated spermatogonia. The Anatomical Record 217, 124-130.
De Rooij, D. G., Lok, D., 1987. Regulation of the density of spermatogonia in the seminiferous epithelium of the chinese hamster: II. Differentiating spermatogonia. The Anatomical Record 217, 131-136.
De Rooij, D. G. 1998. Stem cells in the testis. International Journal of Experimental Pathology 79, 67-80.
Dimech, G.S., Gonçalves, E.S., Araujo, A.V., Arruda, V.M., Baratella-Evêncio, L., Wanderley, A.G. 2006. Avaliação do extrato hidroalcólico de Mentha crispa sobre a performance reprodutiva em ratos Wistar. Revista Brasileira de Farmacognosia 16, 152- 157.
El-Thaer, T.S., Matalka, K.Z., Taha, H.A., Badwan, A.A. 2001. Ferula harmonis ‘zallouh’ and enhancing erectile function in rats efficacy and toxicity study. International Journal of Impotence Research 13(4), 246-251.
Espínola, E.B., Dias, R.F., Mattei, R. 1997. Pharmacological activity of guarana in: Laboratory animals. Journal of Ethnopharmacology 55, 223-229.
Ferreira, S.H. 1998. Medicamentos a partir de plantas medicinais no Brasil. Rio de Janeiro-RJ: Academia Brasileira de Ciências. 132 p.
França, L.R., Becker-Silva, S.C., Chiarini-Garcia, H. 1999. Spermatogenic cycle length in goats. Tiss. & Cell 31, 3.
França, L.R., Parreira, G.G., Gates, R.J., Russell, D.L. 1998. Hormonal regulation of spermatogenesis in the hypophysectomized rat: quantitation of germ-cell population and effect of elimination of residual testosterone after long-term hypophysectomy. Journal of Andrology 19, 335-342.
França. L.R., Russell, L.D. 1998. The tests of domestic mammals. In: Male reproduction; a multidisciplinary overview. España: Ed. Madrid. Churchill Comunictions Europe, Cap. 16, p.198-219.
Galduróz, J.C.F., Carlini, E.A. 1994. Acute effectes of the Paulinia cupana, “guaraná” on cognition of normal volunteer. Journal Medical, São Paulo-SP 112, 607-611.
Galvão, S.M.P., Marques, L.C., Oliveira, M.G.M., Carlini, E.A. 2002. Heteropterys aphrodisiaca (extract BST0289): a Brazilian plant that improves memory in aged rats. Journal of Ethnopharmacology 79, 305-311.
Gillis, C.N. 1997. Panax ginseng pharmacology: a nitric oxide link? Biochemical Pharmacology 54(1), 1-8.
Godinho, CL. 1999. Análise histométrica do testículo e duração da espermatogênese em gatos (Felis domestica) sexualmente maduros. Dissertação de mestrado. Universidade Federal de Minas Gerais, Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte-MG, 124p. Gonzales, G.F., Ruiz, A., Gonzales, C., Villegas, L., Cordova, A., 2001. Effect of Lepidium meyenii (maca) roots on spermatogenesis of male rats. Journal of Andrology 3, 231-233.
Gonzalez, G.F., Córdova, A., Veja, K., Chung, A., Villena, A., Góñez, G., Castillo, S. 2002. Effect of Lepidium meyenii (maca) on sexual desire and its absent relationship with serum testosterone levels in adult healthy men. Andrologia 34, 367-372.
Gonzales, C., Rubio, J., Gasgo, M., Nieto, J., Yucra, S., Gonzales, G.F. 2006. Effecto of short-term and long-term treatments whith theree ecotypes of Lepium meyenii (Maca) on spermatogenesis in rats. Journal of Ethnopharmacology 103, 448-454.
Griswold, M. D. 1995. Interaction between germ cells and Sertoli cells in the testis. Biology of Reproduction 52, 211-216.
Guarim Neto, G. 1996. Plantas medicinais do Estado de Mato Grosso. Brasília-DF: ABEAS, UFMT. Instituto de Biociências, 72p.
Gupta, R.S., Chaudhary, R, Yadav, R.K., Verma, S., Dobhal, M.P. 2005. Effect of Saponins of Albizia lebbeck (L.) Benth bark on the reproductive system of male albino rats. Journal of Ethnopharmacology 96, 31-36.
Gupta, R.S., Kachhawa, J.B.S. 2007. Evaluation of contraceptive activity of methanol extract of Dendrophthoe falcata stem in male albino rats. Journal of Ethnopharmacology 112, 215-218.
Guraya, S.S. 1987. Seminiferous epithelium, In: Guraya, S.S. (Ed.). Biology of spermatogenesis and spermatozoa in mammals. Berlin Heidelbrg: Springer-Verlarg. Hess, R.A., França, L.R. 2005. History of the Sertoli cell discovery. In: Michael, K. Skinner Michael, D. Griswold. (Ed.). Sertoli cell biology. Washington-DC: Elsivier Academic Press, p.3-18.
Hiremath, S.P., Badami, S., Swamy, H.K.S., Patil, S.B., Londonkar, R.L. 1997. Antiandrogenic effect of Striga orobanchioides. Journal of Ethnopharmacology 56, 55- 60.
Huckins, C. 1978. The morphology and kinetics of spermatogonial degeneration in normal adult rats: an analysis using a simplified classification of the germinal epithelium. The Anatomical Record 190, 905-26.
Islam, M. W., Tariq, M., Ageel, A. M., Al-Said, M. S., Al-Yhya, A. M. 1991. Effect of Salvia haematodes on sexual behaviors of male rats. Journal of Ethnopharmacol 33, 67- 72.
Johnson, L., Petty, C.S., Neves, W.B. 1981. A new approach to qualification of spermatogenesis and its application to germinal cell attrition during human spermatogenesis. Biology Reproduction 25, 217-226.
Johnson, L., Varner, D.D., Roberts, M.E., Smith, T.L., Keillor, G.E., Scrutchfield, W.L. 2000. Efficiency of spermatogenesis: A comparative approach. Animal Reproduction Science 60, 471-180.
Kim, H.J., Woo, D.S., Lee, G., Kim, J.J. 1998. The relaxation effects of ginseng saponin in rabbit corporal smooth muscle: is it a nitric oxide donor? British Journal of Urology 82(5), 744-748.
Lapa, A.J., Souccar, C., Lima-Ladman, M.T.R., Godinho, R.O., Nogueira, T.C.M.L. 2007. Farmacologia e toxicologia de produtos naturais. In: Simões, C.M.O., Schenkel, E.P., Gosmann, G., Mello, J.C.P., Mentz, L.A., Petrovick, P.R. (Ed.). Farmacognosia: da planta ao medicamento. 6. ed. Porto Alegre-RS: Editora da UFRGS, p.247-288. Leite, F.L.G., Paula, T.A.R., Matta, S.L.P., Fonseca, C.C., Neves, M.T.D., Barros, J.B.G. 2006. Cycle and duration of the seminiferous epithelium in puma (Puma concolor). Animal Reproduction Science 91, 307-316.
Leite, J.P.V. 2009. Desenvolvimento da Fitoterapia. In: Leite, J.P.V. (ed.) Fitoterapia - Bases Científicas e Tecnológicas. São Paulo-SP: Ed. Atheneu, p.3-20.
Lorenzi H., Matos F.J.A. 2002. Plantas medicinais do Brasil - Nativas e exóticas. São Paulo-SP: Editora Nova Odessa. Instituto Plantarum de Estudos da Flora Ltda., 512p. Mali, P.C., Ansari, A.S., Chaturvedi, M. 2002. Antifertility effect of chronically administred Martynia annua root extract on male rats. Journal of Ethnopharmacology 82, 61-67.
Malini, T., Manimaran, R.R., Arunakaran, J., Aruldhas, M.M., Govindarajulu, P. 1999. Effects of piperine on testis of albino rats. Journal of Ethnopharmacology 64, 219-225. Mattei, R., Dias, R.F., Espinola, E.B., Carlini, E.A., Barros, S.B.M. 1998. Guaraná (Paulinia cupana); toxic behavioral efeects in laboratory animals and antioxidant activity in vitro. Journal of Ethnopharmacology 60, 111-116.
Mazaro, R., Di Stasi, L.C., Kempinas, W.G. 2002. Effects of the hydromethanolic extract of Austroplenckia populnea (Celastraceae) on reproductive parameters of male rats. Contraception 66, 205-209.
Melis, M.S. 1999. Effects of chronic administration of Stevia rebaudiana on fertility in rats. Journal of Ethnopharmacology 167, 157-161.
Montanari , T., Carvalho, J.E., Dolder, H. 1998. Effect of Maytenus ilicifolia Mart. Ex. Reiss on spermatogenesis. Contraception 57, 335-339.
Moundipa, F.P., Kamtchouing, P., Koueta, N., Tantchou, J., Foyang, N.P.R., Mbiapo, F.T. 1999. Effects of aqueous extracts of Hibiscus macranthus and Basella alba in mature rat testis function. Journal of Ethnopharmacology 65, 133-139.
Nocerino, E.; Amato, M., Izzo, A.A. 2000. The aphrodisiac and adaptogenic properties of ginseng. Fitoterapia 71, 1-5 (Supplement, 1).
Orisakwe, O.E., Husaini, D.C., Afonne, O.J. 2004. Testicular effects of sub-chronic administration of Hibiscus sabdariffa calyx aqueous extract in rats. Journal of Ethnopharmacology 18, 295-298.
Orth, J.M. 1982. Proliferation of Sertoli cells in fetal and postnatal rats: a quantitative autoradiographic study. The Anatomical Record 203, 485-492.
Orth, J. M., Gunsalus, G. L., Lamperti, A. A. 1988. Evidence from Setoli cell-depleted rats indicates that spermatid number in adults depends on numbers of Sertoli cells produced during perinatal development. Endocrinology 122, 787-794.
Paula, T.A.R., França, L.R., Garcia, H.C. 1999. Seminiferous ephitelium cycle and its duration in capybaras (Hydrochoerus hydrochaeris). Tissue & Cell 31, 327-334.
Peters, V.M., Carmo, P.S., Guerra, M.O. 1985. Efeito do barbatimão (Stryphnodendron polliphyllum M.) sobre o peso de órgãos do sistema reprodutor de ratos adultos e a produção de espermatozóides viáveis. Revista Brasileira de Ciências Morfológicas 2, 45-47.
Pitman, V. 1996. Fitoterapia. As plantas medicinais e a saúde. Lisboa: Estampa, 188p. Pott, A., Pott, V.J. 1994. Plantas do Pantanal. Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária do Pantanal. Corumbá-MS: Embrapa-SPI, 320p.
Ratnasooriya, W.D., Dharmasiri, M.G. 2002. Effects of Terminalia catappa seeds on sexual behaviour and fertility of male rats. Asian Journal of Andrology 2(3), 213-219. Rizzini, C.T. 1983. Efeitos psicotrópicos de plantas brasileiras parte II: aspectos botânicos. Ciência e Cultura, São Paulo-SP 35, 434-438.
Rodrigues, V.E.G., Carvalho, D.A. 2001. Plantas medicinais no domínio dos Cerrados. Lavras-MG: UFLA, 180p.
Roosen-Runge, E.C. 1973. Germinal-cell loss in normal metazoan spermatogenesis. Journal of Reproduction and Fertility 35, 339-348.
Russell, L.D., Ettlin, R.A., Sinha Hikim, A.P., Clegg, E.D. 1990. Mammalian spermatogenesis. In: Russell, D.L., Ettlin, R.A., Sinha Hikim, A.P., Clegg, E.D. (Ed.). Histological and histopathological evaluation of the testis. Bolesta: Cache River Press. Cap. 1, 1-40.
Russell, L.D., Peterson, R.N. 1984. Determination of the elongate spermatid-Sertoli cell ratio in various mammals. Journal of Reproduction and Fertility 70, 635-641.
Sandroni, P. 2001. Aphrodisiacs past and present: a historical review. Clinical Autonomic Research 11, 303-307.
Santos, R.L. 1999. Morte celular por apoptose no testículo. Revista Brasileira de Reprodução Animal (4)23, 486-499.
Sharpe, R.M. 1994. Regulation of spermatogenesis. In. Knobil, E., Neil, J.D. (Ed.). The phisiology of reproduction, 2. ed. New York: Raven Press, p.1363-1434.
Silveira e Sá, R.C., Leite, M.N., Oliveira, L.E.G., Toledo, M.M., Greggio, T.C., Guerra, M.O. 2006. Preliminary assessment of Rosmarinus officinalis toxicity on male Wistar rats’ organs and reprodutive system. Revista Brasileira de Farmacognosia 16, 324-332. Sinha, R. 1990. Post-testicular antifertility effects of Abrus precatorius seed extract in albino rats. Journal of Ethnopharmacology 28, 173-181.
Sook Oh, M., Yang, W.M., Chang, M.S., Park, W., Kim, D.R., Lee, H.K., Kim, W.N., Park, S.K. 2007. Effects of Rubus coreanus on sperm parameters and cAMP-responsive element modulator (CREM) expression in rats testes. Journal of Ethnopharmacology 114, 463-467.
Steinberger, A., Steinberger, E. 1971. Replication pattern of Sertoli cells in maturing rat testis in vivo and in organ culture. Biology of Reproduction 4, 84-87.
Subramoniam, A., Madhavachandran, V., Rajasekharan, S., Pushpangadan, P. 1997. Aphrodisiac property of Trichopus zeylanicus extract in male mice. Journal of Ethnopharmacology 57, 21-27.
Swerdloff, R. S., Lue, Y., Wang, C., Rajavashisth, T., Sinha-Hikin, A. 1998. Hormonal regulation of germ cell apoptosis. In: Zirkin, B. R. (Ed). Germ cell development, division, disruption and death. New York: Inc. Springer-Verlag.
Taha, S. A.; Ageel, A. M.; Islam, M. W.; Ginawi, O. T. 1995. Effect of (-)-cathinone, a psychoactive alkaloid from khat (Catha edulis Forsk.) and caffeine on sexual behaviour in rats. Pharmacology Research 5, 31, 299-303.
Trentini, A.M.M. 1997. A auto-regulamentação na produção de fitoterápicos. In: Bonfim, J.R.A., Mercucci, V.L. (Org.). A construção da política de medicamentos. São Paulo-SP: Hucitec, 213-215.
Verna, P.K., Sharma, A., Joshi, S.C., Gupat, R.S., Dixit, V.P. 2005. Effect of isolated fractions of Barleria prionitis root methanolic extract on reproductive function male rats: preliminary study. Fitoterapia 76, 428-432.
Yakubu, M.T., Akanji, M.A., Oladiji, A.T. 2008a. Effects of oral administration of aqueous extract of Fadogia agrestis (Schweinf. Ex Hiern) stem on some testicular function indices of male rats. Journal of Ethnopharmacology 115, 288-292.
Yakubu, M.T., Akanji, M.A., Oladiji, A.T., Adesokan, A.A. 2008b. Androgenic potentials of aqueous extract of Massularia acuminate (G. Don) Bullock ex Hoyl. Stem in male Wistar rats. Journal of Ethnopharmacology 118, 508-513.
Zheng, B. L.; He, K.; Kim, C. H.; Rogers, L.; Shao, Y.; Huang, Z. Y.; Lu, Y.; Yan, S. J.; Qien, L. C.; Zheng, Q. Y. 2000. Effect of a lipidic extract from Lepidium meyenii on sexual behavior in mice and rats. Urology, 55, 598-602.
Efeito do extrato de Heteropterys aphrodisiaca (nó-de-cachorro) e Anemopaegma
arvense (vergateza) sobre a reserva e a produção espermática de ratos Wistar
adultos tratados cronicamente
Resumo: No Brasil, o uso das plantas medicinais constitui uma forma direta de
obtenção de medicamentos e com base nos saberes e práticas “tradicionais” ocupam lugar de destaque no tratamento de doenças. Entre várias utilidades, o afrodisíaco desperta interesse especial da população e substâncias de diversas espécies são consumidas com esta finalidade. Neste sentido, no estado brasileiro do Mato Grosso as espécies Heteropterys aphrodisiaca O. Mach. (nó-de-cachorro) e a Anemopaegma arvense (Vell.) Stellfeld & J.F. Souza (vergateza) se destacam. O objetivo deste trabalho foi avaliar os efeitos do extrato das raízes destas espécies sobre o testículo e o processo espermatogênico de ratos Wistar, especialmente os efeitos sobre a reserva e a produção espermática de animais tratados. Foram utilizados 72 ratos em idade reprodutiva, divididos em sete grupos. Destes, cinco grupos foram tratados por meio de gavagem diária durante 56 dias consecutivos; os animais do grupo-controle receberam 0,5 mL de solução salina e os outros quatro grupos receberam 0,5 mL de extratos obtidos das duas espécies de plantas, em duas concentrações distintas, 12,5 e 25 g diluídas em 100 mL de água. Outros dois grupos foram tratados com infusões das plantas pelo mesmo período, sendo 20 mL do extrato de menor concentração diluídos em 80 mL de água consumidos ad libitum. O extrato de H. aphrodisiaca na menor concentração, administrado por gavagem, promoveu aumentos no peso corporal, na proporção volumétrica do intertúbulo, no volume intertubular, no diâmetro tubular e espessura do epitélio seminífero. Adicionalmente, os grupos tratados com a maior concentração de H. aphrodisiaca por gavagem e com a infusão ad libitum da mesma planta, mostraram aumentos no peso dos testículos, do parênquima testicular e no peso das glândulas vesiculares. O extrato de A. arvense na menor concentração, administrado por gavagem, promoveu aumentos no diâmetro e na espessura do epitélio seminífero. O extrato desta planta na maior concentração, administrado por gavagem e o grupo tratado ad libitum, mostraram aumentos significativos no peso corporal, dos testículos, do parênquima testicular, das glândulas vesiculares e no volume do tecido intertubular. O comprimento total de túbulos por metro e por grama de testículo, a reserva espermática total e por grama de testículo e a produção espermática diária e produção espermática diária por grama de testículo foram menores em todos os tratamentos, comparados ao grupo-controle. Conclui-se que o aumento do tecido intertubular e das glândulas vesiculares refletiu nos parâmetros biométricos avaliados e que a perda em comprimento dos túbulos seminíferos foi determinante para a diminuição da reserva e produção espermática nos animais tratados.
Palavras-chave: espermatogênese; fitoterapia; glândula vesicular; reserva e produção
Effect of the extract of Heteropterys aphrodisiaca (nó-de-cachorro) and
Anemopaegma arvense (vergateza) about the reserve the spermatic
production of rats Wistar treated adults chronically
Abstract: In Brazil, the use of the medicinal plants constitutes a direct form of
medicine attainment and based on the “traditional” knowledge and practices they occupy a prominence place in the treatment of illnesses. Between some utilities, the aphrodisiac awakens special interest of the population and substances of diverse species are consumed with this purpose. In this sense in the state of Mato Grosso the species Heteropterys aphrodisiaca O. Mach. (nó-de-cachorro) and the Anemopaegma arvense (Vell.) Stellfeld & J.F. Souza (vergateza) stand out. 72 male rates Wistar in reproductive age were divided into seven groups. Five groups were exposed to daily gavage for 56 consecutive days; the animals of the control group received 0.5 ml of salt solution and the other four groups received 0.5 mL of extracts obtained from the two species in two different concentrations 12.5 g and 25 g diluted in 100 mL of water. Two groups had been treated with infusion of the two species for the same period, being 20 mL of the extract with lesser concentration diluted in 80 mL of water consumed ad libitum. The extract of H. aphrodisiaca in the lesser concentration caused significant increase in the corporal weight, in the intertubular volume, in the tubular diameter and in the thickness of the seminiferous. Besides, the groups treated with larger concentrations of the extract and with the infusion ad libitum of the same plant, had shown increase in the testicular weight, in the testicular parenchyma, in the vesicular glands weight. The animals treated with the lesser concentration of A. arvense registered an increase in the diameter and thickness of the seminiferous tubule. Similar increases were also registered in animals treated with larger concentration of the extract of A. arvense by gavage and in the group treated with the ad libitum infusion of the same plant, which, additionally, showed significant increases in the corporal weight, testicular weight, testicular parenchyma weight, vesicular glands weight, in the intertubular tissue volume. The total tubules length by meter and gram of testicle, the total spermatic reserve and by testicle gram and the diary spermatic production and diary spermatic production by testicle gram were lesser in every treatments, compared to the control group. Concludes that the increase of the intertubular tissue and vesicular glands reflected in the increase of the biometric parameters evaluated and that the length loss of seminiferous tubules was determinative for the reduction of reserve and production spermatic of animals treated.
Key-words: phytotherapy; spermatogenesis; vesicular gland; reserve and spermatic
1. Introdução
Em várias regiões do Brasil, o consumo de substâncias vegetais como medicamento está fortemente inserido no hábito popular e o uso de plantas como fonte direta de medicamentos é uma prática cotidiana. Diversos trabalhos etnobotânicos registram este saber e também relatam as estratégias do etnoconhecimento para o aproveitamento dos recursos vegetais como fontes de medicamentos (Correa, 1984; Pott & Pott, 1994; Guarim Neto, 1996; Lorenzi & Matos, 2002; Carvalho et al., 2008).
O tratamento de doenças com substâncias vegetais, sempre ocupou lugar de destaque e faz parte do hábito popular que envolve os saberes e práticas “tradicionais” (Albuquerque & Hanazaki, 2006). Entretanto, diante do potencial das plantas medicinais no campo terapêutico e da riqueza da flora medicinal do Brasil, um número reduzido de estudos foi realizado a partir de investigação científica. Martins et al. (2003) descrevem que, das cerca de 200.000 espécies vegetais que possam existir no Brasil, pelo menos a metade pode ter alguma propriedade terapêutica útil à população. Entretanto, menos de 1 % dessas espécies com potencial foi motivo de estudos adequados. Ainda assim, mesmo sem a comprovação científica, o que existe na prática é uma grande comercialização de produtos contendo substâncias ou compostos de centenas de espécies vegetais que são utilizadas há décadas na medicina popular.