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Na expressão de kisspeptina, foi demonstrado maior reatividade na superfície epitelial do grupo controle, enquanto KISS1R apresentou expressão fraca a nula em todos os grupos. Nas regiões de glândulas profundas e miométrio, a kisspeptina foi expressa de forma moderada igualmente em todos os grupos enquanto Kiss1R apresentou marcação nula a fraca em todos os grupos.

Em humanos, a expressão de KISS1 / KISS1R está localizada principalmente em células epiteliais e estromais do útero, mas não do miométrio (Cejudo et al., 2012). Em felinos, foi observado maior expressão de Kiss1 no útero em diestro enquanto KISS1R apresentou maior expressão durante o período de proestro/estro (Santos et al., 2020). Em cães foi demonstrada expressão de Kiss/Kiss1R em células ovarianas (Cielesh et al., 2016).

Além de seu papel essencial na secreção de LH, a kisspeptina também está envolvida no controle da secreção de prolactina (Aquino et al., 2019).A kisspeptina aumenta a secreção de prolactina através da inibição de neurônios dopaminérgicos tuberoinfundibulares, no entanto essa ação exige níveis elevados de estradiol (Ribeiro et al., 2014). Em um estudo utilizando células luteais de ratos demosntrou que a kisspeptina promove a secreção de progesterona das células luteais por meio do aumento de enzimas esteroidogênicas (Peng et al., 2013).

Na cadela, a luteinização das células começa antes da ovulação, juntamente com um aumento no nível de secreção de progesterona (Chastant-Maillard et al., 2011 ). Alguns autores sugerem que a kisspeptina tem um papel importante na secreção de progesterona (Gaytán et al., 2009) . Acredita-se que a kisspeptina produzida possa atuar nas células da granulosa agindo para síntese e secreção de progesterona também em caninos. (Cielesh et al., 2017).

A nível central, estudos indicam que neurônios kisspeptinérgicos participem do controle da secreção de prolactina, pois durante a lactação há uma redução da

expressão de KiSS1, período de maior secreção de prolactina(Yamada et al., 2012). A nível local, a expressão da kisspeptina e do seu receptor nos ovários e útero em diferentes estágios ovarianos, indicam possíveis ações locais na função oocitária, esteroidogênese , remodelação ovariana dentro do ovário e adenogênese dentro do útero (Tanyapanyachon et al., 2018).

Foi observado no útero de cadelas não gestantes após ovulação alta expressão de kisspeptina enquanto que no útero de cadelas gestante alta expressão de Kiss1R. ( Schäfer‐Som et al., 2016). Dessa forma, sugere-se que o sistema Kiss/Kiss1R exerce um papel importante no processo de decidualização (Zhang et al., 2014).

A expressão de KISS1R foi fracamente expressa em todas as regiões uterinas, independente dos grupos tratados. A expressão de KISS1R é modulada pela atuação do estrógeno, devido sua ação direta sobre os neurônios dopaminérgicos. Foi observado que a kisspeptina estimula a secreção de prolactina, mediante suplementação estrogênica. (Szawkaet al., 2010.)

Podemos correlacionar essas informações ao período estral em que as cadelas se encontravam, levando em consideração que no diestro os níveis de estrógeno são mais baixos. Além disso, outro dado do nosso trabalho que chama atenção foi à baixa expressão dos receptores de estrógeno semelhantes aos resultados de KISS1R, reafirmando então as interações endócrinas entre estrógeno

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7 CONCLUSÕES

Os altos níveis de prolactina, causados pelo quadro de hiperprolactinemia, ainda que fisiológico, nos quadros de pseudogestação em cadelas modificam a expressão de mediadores hormonais no útero, favorecendo um ambiente uterino impróprio para a fertilidade.

A ação do Cloridrato de Piridoxina controla as alterações provocadas pela hiperprolactinemia, modulando de forma benéfica a expressão de mediadores hormonais no útero de cadelas, preservando assim a fertilidade dessas fêmeas.

REFERÊNCIAS

AGHAJANOVA,L.; STAVREUS-EVERS,A.; LINDEBERG,M.;LANDGREN,B.M.; SPARRE, L.S.; HOVATTA,O.; Thyroid-stimulating hormone receptor and

thyroid hormone receptors are involved in human endometrial physiology,

Fertility and Sterility. v.95,p.230-237, 2011.

APPARÍCIO, M. VICENTE,W.R.R; Reprodução e Obstetrícia em cães e

gatos.. – São Paulo:MedVet, 2015.

AQUINO, N.S.S.; ILONA C KOKAY, CAROLINA THÖRN PEREZ, SHARON R LADYMAN, PATRICIA C HENRIQUES, JUNEO F SILVA, CHRISTIAN

BROBERGER, DAVID R GRATTAN, RAPHAEL E SZAWKA, .;Kisspeptin Stimulation of Prolactin Secretion Requires Kiss1 Receptor but Not in

Tuberoinfundibular Dopaminergic Neurons. Endocrinology. v.160, p.522–533, 2019.

BANKS, W.J. Sistema reprodutor feminino. Histologia veterinária aplicada. 2. ed. São Paulo: Manole, 1992.

BOLE-FEYSOT, C.; GOFFIN, V.; EDERY, M.; BINART, N.; KELLY, PA.; Prolactin (PRL) and its receptor: actions, signal transduction pathways and phenotypes observed in PRL receptor knockout mice. Endocr Rev.

19(3):p.225-68,1998.

CARDOSO, R.C.S.; Infertilidade na cadela e na gata. Ciência Animal, 22(1): p.235-247, 2012.

CARVALHO, A.M.H.; SANTOS, A.D.F.; SILVA,C.M.; Indução do estro e métodos para controle das fases do ciclo estral em cadelas. Ciência Animal. v.30, p.117-129, 2020.

CEJUDO, R.A.; PINTO, F.M.; DORTA, I.; ALMEIDA, T.A.; HERNANDEZ, M.; ILLANES, M.; Análise da expressão de neurocinina B, kisspeptina e seus receptores cognatos NK3R e KISS1R no trato genital feminino

humano. Fertility and sterility. v.97,p.1213–9, 2012.

CIELESH, M.E.; MCGRATH, B.M.; SCOTT, C.J.; NORMAN, S.T.; STEPHEN, C.P.; The localization of kisspeptin and kisspeptin receptor in the canine ovary during different stages of the reproductive cycle. Reprod Domest

Anim;52(Suppl 2):p.24-8, 2017.

CHASTANT-MAILLARD, S.; VIARIS,L.C.; DE CHEBROUT MARTINE, T.S.; MEYLHEUC,T.; FONTBONNE, A.; CHODKIEWICZ,M.; SAINT-DIZIER,M.; REYNAUD, K.; O oócito canino: características incomuns

da maturação in vivo e in vitro . Reproduction, Fertility and

Development. v23 , p.391-402, 2011.

CONCANNON, P.W.; Reproductive cycles of the domestic bitch. Animal Reproduction Science, v. 124, n. 3, p. 200-210, 2011.

35

DETTI, L.; UHLMANN, R.A.; FLETCHER, N.M.; DIAMOND, M.P.; SAED, G.M.; Vias de sinalização endometrial durante a estimulação ovariana para tecnologia de reprodução assistida. Fertility and sterility. v.100, p.889-894,2013.

DIAGONE, K.V.; Histologia e morfometria do aparelho reprodutor de

fêmeas submetidas à ovariosalpingo-histerectomia (Canis familiaris, Linnaeus, 1758). 58p. Dissertação (mestrado) - Universidade Estadual

Paulista, Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias, 2005.

FELDMAN, E.C.; NELSON, R.W.; Canine and feline endocrinology and

reproduction. 3 ed. Philadelphia: W. B. Saunders, 2004.

GALABOVA,G.; EGERBACHER,M.; AURICH,J.E.; LEITNER,M.; WALTER,E. U.;Morphological changes of the endometrial epithelium in the bitch during metoestrus and anoestrus. Reproduction in Domestic Animals, v. 38, p. 415-420, 2003.

GAYTÁN, F.; GAYTÁN, M.; CASTELLANO, J.M.; ROMERO, M.; ROA, J.; APARICIO, B.; GARRIDO, N.; SÁNCHEZ-CRIADO, J.E.; MILLAR, R.P.; PELLICER, A.; FRASER, H.M.; TENA-SEMPERE, M.; KiSS-1 in the mammalian ovary: distribution of kisspeptin in human and marmoset and alterations in KiSS-1 mRNA levels in a rat model of ovulatory dysfunction. J

Physiol Endocrinol Metab. p.520-31,2009.

GRATTAN, D. 60 YEARS OF NEUROENDOCRINOLOGY: The hypothalamo-prolactin axis .Journal of Endocrinology, v.226,p.101-122, 2015.

GOBELLO, C.; CONCANNON, P.W.; VERSTEGEN, J.; Pseudopreñez canina: Una revisión. Recent Advances in Small Animal Reproduction. 2001. GOBELLO, C.; DE LA SOTA, R.L.; GOYA, R.G.; A review of canine pseudocyesis. Reprodution in Domestic Animals. v.36,p.283-8, 2002.

GOSSLER, V. S. A.; Relação dos constituintes do sistema IGF, receptores

esteroidais no útero e hormônios esteroides séricos de cadelas no diestro cíclico. 70f. Tese (Doutorado em Fisiopatologia e Saúde Animal) -

Universidade do Oeste Paulista, Presidente Prudente, 2019.

GROSDEMOUGE, I.; BACHELOT, A.; LUCAS, A.; BARAN, N.; KELLY, PA.; BINART, N.; Effects of deletion of the prolactin receptor on ovarian gene expression. Reprod Biol Endocrinol. 2003.

HARALABOS,N.V.; CONSTANTINOS,M.B.; ALEXANDROS,S.; PHILIPPOS,S.; ANASTASIA,I.S.; ELIAS,K.; Serum estradiol-17β, progesterone and respective uterine cytosol receptor concentrations in bitches with spontaneous pyometra,

Theriogenology. v.62, p.614-623, 2004.

HULCHIY, M.; ZHANG, H,; CLINE, J.M.; HIRSCHBERG, A.L.; SAHLIN, L.; Receptores para o hormônio liberador de tireotropina, hormônio estimulador da tireoide e hormônios da tireoide no útero de macacos: efeitos do tratamento de longo prazo com hormônios sexuais, Menopausa. Journal of the North

KOLSTER, K.A.; PANCIERA, D.L.; PURSWELL, B.J.; VERSTEGEN, J.P.; MAKIEVA, S.; SAUNDERS, P.T.;, NORMAN, J.E.; Controle da secreção de prolactina no hipotireoidismo canino. Clinical Theriogenology. v.2,p.185-190, 2010.

KOTANI, M. , DETHEUX, M. , VANDENBOGAERDE, A. , COMMUNI, D. , VANDERWINDEN, JM , LE POUL, E.; PARMENTIER, M. O gene

supressor de metástase KiSS-1 codifica kisspeptinas, os ligantes naturais do receptor acoplado à proteína G GPR54 órfão . Journal of Biological

Chemistry. v.276, p.34631 – 34636, 2001.

JANSSENS, L.A. Treatment of pseudopregnancy with bromocriptin, an ergot alkaloid. The Veterinary Record, v. 119, p. 172-174, 1986.

MARTINS, L.R.; LOPES, M.D.; Pseudopregnancy in the bitch. Rev Bras

Reprod Anim. v.29, n.3/4, p.137-141, 2005.

MARTINS, B.B.; Atividade secretória e histologia uterina de cadelas

prépúberes com ablação parcial do desenvolvimento das glândulas endometriais. 51p. Dissertação (Mestrado em Ciências Veterinárias) - Centro

de Ciências Agrárias, Universidade Federal do Espírito Santo, 2013. MONTEZANO, A.C.I.; RITA C.A. TOSTES, R.C.A.; Nuclear receptors, membrane receptors and second messengers. Revista Brasileira de

Hipertensão. vol.12, p.84-88, 2005.

OLIVEIRA, E.C.S.; MARQUES JÚNIOR, A.P.; NEVES, M.M.; Endocrinologia reprodutiva e controle da fertilidade da cadela – revisão. Archives of

Veterinary Science v. 8, n. 1, p. 1-12, 2003.

NASCIMENTO, A.S.;. Interações dos receptores nucleares com seus

ligantes: Estudos estruturais do receptor de hormônio tireoidiano, do receptor

de mineralocorticóide e do receptor ativado por proliferadores peroxissomais. 2009. Tese (Doutorado em Física Aplicada) - Instituto de Física de São Carlos, University of São Paulo, São Carlos, 2009.

NARUKAWA, S.; KANZAKI, H.; INOUE, T.; IMAI, K.; HIGUCHI, T.;

HATAYAMA, H.; KARIYA, M.; MORI, T.; Androgens induce prolactin production by human endometrial stromal cells in vitro. J Clin Endocrinol Metab. p.165-8,1994.

PENG, J.; TANG, M.; ZHANG, B.P.; ZHANG, P.; ZHONG, T.; ZONG, T.; Kisspeptin. stimulates progesterone secretion via the Erk1/2 mitogen-activated protein kinase signaling pathway in rat luteal cells. Fertility and sterility. v.99, p.1436-43, 2013.

PRIEDKALNS, J.; Sistema reprodutor feminino. Histologia veterinária. Zaragoza: Acribia, 1982.

RAMOS, J.L.G.; RAMOS, C.L.F.G.; CUNHA, I.C.N.; CARVALHO, E.C.Q.; SHIMODA, E.; LUZ, M.R.; Análise histomorfométrica do útero na espécie

37

canina do nascimento aos seis meses de idade. Arquivo Brasileiro de

Medicina veterinário e Zootecnia. v.67, p.41-48, 2015.

RIBEIRO, A.B.; LEITE, C.M.; KALIL. B.; FRANCI, C.R.; ANSELMO, J.A.; SZAWKA, R.E.; Kisspeptina regula neurônios dopaminérgicos tuberoinfundibulares e secreção de prolactina de maneira dependente de estradiol em ratos machos e fêmeas. Journal of Neuroendrocrinology. v.27, p 88-99, 2014.

RODRÍGUEZ-CASTELÁN, J.; ANAYA-HERNÁNDEZ, A.; MÉNDEZ-TEPEPA, M.; MARTÍNEZ-GÓMEZ, M.; CASTELÁN, F.; CUEVAS-ROMERO,

E.; Distribuição do hormônio tireoidiano e receptores de tireotropina em tecidos reprodutivos de coelhas adultas, Endocrine Research.v.42, p.59-7, 2017. RODRÍGUEZ-CASTELÁN, J.; MORALES, A.D.M.; MEDINA,A.G.P.;

PÉREZ,D.Z.; ROMANO,M.C.; TEPEPA, M.M.; LOZANO, M.E.; ARROYO,C.I.; ROMERO, C.E,; Hypothyroidism induces uterine hyperplasia and inflammation related to sex hormone receptors expression in virgin rabbits,Life Sciences. v.230,p.111-120, 2019.

ROOT, A.L.; PARKIN, T.D.; HUTCHISON, P.; WARNES, C.; YAM, P.S. Canine pseudopregnancy: an evaluation of prevalence and current treatment protocols in the UK. . BMC Veterinary Research. v14,p.170. 2018.

SAMPAIO NETO, L.F.; FERRO, M.C.; GARCIA,L.; RIBEIRO, B.C.; Receptores de progesterona e estradiol e Ki-67 no estroma e no epitélio de endometriose superficial e profunda. J Bras Patol Med Lab. v.56, p.1-6, 2020.

SANDERS SL, STOUFFER RL, BRANNIAN JD; Produção de andrógenos por subpopulações de células lúteas de macaco em diferentes estágios do ciclo menstrual. J Clin Endocrinol Metab. v.2, p.591-6, 1996.

SANTOS,L.C.; CORDEIRO, J.M.A.; SANTANA,L.S.; SANTANA, L.R.; SANTOS,B.R.; BARBOSA,E.M.; SILVA,T.Q.M.; CORRÊA,J.M.X.;

LAVOR,M.S.L.; SILVA,E.B.; OCARINO,N.M.; SERAKIDES,R.; SILVA,J.F.; .Piometra e o ciclo estral modulam a expressão uterina do sistema kisspeptina e de fatores angiogênicos e imunológicos em gatos. Biology of

Reproduction., 2020.

SZAWKA, R. E.; RIBEIRO, A.B.; LEITE, R. M.; HELENA, C. V.; FRANCI,C.R.; ANDERSON,G.M.;HOFFMAN,G.E.; ANSELMO-FRANCI, J.A.; Kisspeptin Regula a Liberação de Prolactina através de Neurônios Dopaminérgicos Hipotalâmicos, Endocrinology. v.151.p.3247–3257,2010.

SILVA, E.S.M.; MEIRA, C.; Expressão endometrial de receptores de estradiol e progesterona em éguas cíclicas, gestantes e acíclicas tratadas com hormônios esteroidais. Revista Científica De Medicina Veterinária. n.22, 2014.

SILVA,J.F.; OCARINO,N.M.; SERAKIDE,R.; Hormônios tireoidianos e reprodução feminina. Biologia da Reprodução. v.99, p.907–921,2018.

SILVA, M.C.; A influência do cloridrato de piridoxina no ciclo reprodutivo

de cadelas e seus efeitos sobre a pseudogestação. Tese Doutorado.2019.

SILVA, T.S.M.; Hipotireoidismo em cães: relato de caso. Trabalho de Conclusão de Curso. Universidade Federal do Recôncavo da Bahia.2017. SLAYDEN,O.D.; NIHAR, R.N.; BURTON, K.A.; CAMERON, S.T.; CRITCHLEY, H.O.D.; BAIRD, D.T.; BRENNER,R.M.; Progesterone Antagonists Androgen Receptor Expression in the Rhesus Macaque and Human Endometrium. The

Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism ,.v.86, p.2668-2679, 2001.

SCHÄFER ‐ SOMI, S.; KAYA, D .; SÖZMEN, M.; BECERIKLISOY,

H.B.; AĞAOĞLU, A.R.; FINDIK, M .; HAEFTEN, T.; ASLAN, S.; Kisspeptina ‐ 10 e o receptor 54 acoplado à proteína G são diferencialmente expressos no útero canino grávido e nas células trofoblásticas. Reproduction in Domestic

Animals. v.52,p.123-129,2016.

TANYAPANYACHON, P.; AMELKINA, O.; CHATDARONG, K.; The expression of kisspeptin and its receptor in the domestic cat ovary and uterus in different stages of the ovarian cycle. Theriogenology v.117, p.40-48, 2018.

VERMEIRSCH H, SIMOENS P, LAUWERS H, CORYN M.

Immunohistochemical detection of estrogen receptors in the canine uterus and their relation to sex steroid hormone levels. Theriogenology. Mar;51(4):p.729-43. 1999.

ZHANG, P.; TANG, M.; ZHONG, T.; LIN, Y.; ZONG, T.; ZHONG, C.; ZHANG, B.; REN, M.; KUANG, H.; Expression and function of kisspeptin during mouse decidualization. PLoS One. v.9, p 2014.

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