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Study of recovery and stability of derivatized gliphosate and AMPA in soil using national resins.

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Academic year: 2017

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ESTUDO DE RECUPERAÇÃO DE GLIFOSATO E AMPA DERIVADOS EM SOLO UTILIZANDO-SE RESINAS NACIONAIS

Tomaz Alves de Souza, Marcia Helena de Rizzo da Matta*, Émerson Montagner e Adley Bergson Gonçalves de Abreu Departamento de Química, Centro de Ciências Exatas e Tecnologia, Universidade Federal de Mato Grosso do Sul, CP 549, 79070-900 Campo Grande - MS, Brasil

Recebido em 18/8/05; aceito em 31/10/05; publicado na web em 11/8/06

STUDY OF RECOVERY AND STABILITY OF DERIVATIZED GLIPHOSATE AND AMPA IN SOIL USING NATIONAL RESINS. In the present paper we studied the recoveries of glyphosate, N-(phosphonomethyl)glycine (GLY) and its major metabolite, (aminomethyl)phosphonic acid (AMPA) in soil using national (Brazilian) ion-exchange resins, derivatization by a mixture of trifluoroacetic anhydride and trifluoroethanol and analyses by GC-MS. The quantification limits were 12 ng.g-1 for both compounds and the methodology

showed a range of recuperation from 85 to 94% with coefficients of variation (CV) ranging from 4.07 to 6.91% for GLY. For AMPA, the mean recoveries ranged from 87 to 102% with CVs ranging from 5.81 to 6.99%. Additional studies showed that, due to the instability of the derivatized compounds, they must be analysed keeping constant time between derivatization and analysis, preferably less than 24 h. Keywords: glyphosate; AMPA; GC/MS.

INTRODUÇÃO

No Brasil, o cerrado é uma região muito diferenciada, pois as-socia grande biodiversidade a uma aparência árida decorrente, em grande parte, de solos pobres e ácidos e da ocorrência de apenas duas estações climáticas: uma seca e outra chuvosa. O relevo, pre-dominantemente plano, facilita o uso de máquinas agrícolas que desmatam rapidamente grandes extensões de área natural. É uma região que abriga vasta diversidade de espécies e importantes baci-as hidrográficbaci-as, motivo pelo qual sua rápida ocupação torna-se preocupante, podendo gerar impactos ambientais irreversíveis1. Uma

das principais ameaças à biodiversidade do cerrado é a monocultura intensiva de grãos2, onde a soja, com seus insumos, representa a

principal cultura em área plantada (6.391.013 ha), totalizando 46,67% de representação no Brasil3.

O glifosato, N-(fosfonometil)-glicina, GLI, é um herbicida não seletivo, sistêmico, pós-emergente, representando atualmente 60% do mercado mundial de herbicidas não seletivos. Sua elevada efici-ência na eliminação de ervas daninhas e o fato de possuir uma baixa toxicidade aos que o manipulam são responsáveis pelo seu grande sucesso4. Na região do cerrado brasileiro, figura entre os principais

agrotóxicos utilizados na cultura da soja, com uma quantidade apro-ximada de 0,5 a 1,0 kg/ha ou L/ha2. O GLI é classificado como uma

glicina substituída5 e também como um herbicida organofosforado,

sem, no entanto, afetar o sistema nervoso da mesma maneira que outros organofosforados (em geral inseticidas inibidores da enzima acetilcolinesterase) e, apesar de ser citado como pouco tóxico, há evidência de efeitos deletérios no ambiente após seu uso prolongado, principalmente devido à resistência adquirida por algumas espécies de ervas4. Adicionalmente, é necessário atentar-se para outro risco,

visto que a formulação mais comercializada no País contém um surfactante com significativa ação irritativa dermatológica6,

conheci-do como POEA (polietoxietileno amina)7.

O modo primário de ação do GLI é a inibição competitiva da 5-enolpiruvilchiquimato-3-fosfato sintase (EPSPS), interferindo na produção de aminoácidos aromáticos e outros compostos

aromáti-cos em plantas, as quais, quando tratadas com este herbicida, não conseguem produzir os aminoácidos aromáticos necessários para sua sobrevivência4.

O ácido aminometilfosfônico (AMPA) é o principal metabólito do GLI, decorrente da sua degradação por ação microbiológica8,9. Embora tenha toxicidade baixa (sua DL

50 é de

8.300 mg kg-1), é mais persistente que o GLI. Estudos estimam

sua meia-vida em solo entre 119 e 958 dias enquanto que pes-quisadores encontraram tempos de meia-vida inferiores a 3 dias para o GLI10. Por isso, torna-se importante o desenvolvimento de

métodos de extração e análise tanto para GLI como para AMPA. Devido à alta polaridade do GLI e sua tendência em formar espéci-es iônicas, a maioria dos procedimentos de extração do herbicida ba-seiam-se em reações ácido-base, onde o composto, inicialmente ligado a espécies iônicas do solo através do grupo fosfato, passa, então, a interagir com os íons da solução. Desta forma, nos processos de extra-ção, são utilizadas, geralmente, soluções de bases fortes, sais de bases fortes, bases fracas ou ácidos fracos, seguindo-se, na maioria das ve-zes, de etapas de retenção/eluição em resinas de troca iônica11. A

efici-ência do processo de extração do GLI e do AMPA está diretamente relacionada ao tipo de solo. Em geral, as melhores recuperações são observadas em solos com alto teor de matéria orgânica, enquanto que para solos argilosos e minerais, devido à elevada competitividade pe-los sítios iônicos do solo, a eficiência do processo de extração fica comprometida, resultando em menores recuperações12. A utilização da

cromatografia líquida de alta eficiência (CLAE) com detector de UV-visível na determinação do GLI e seus metabólitos não é apropriada, devido ao fato deste herbicida não possuir em sua molécula agentes cromóforos observáveis satisfatoriamente neste detector, o que dificul-ta a identificação e quantificação; entredificul-tanto, a utilização desdificul-ta mesma técnica com detector de fluorescência, seguida da derivação pós-colu-na do GLI em um composto fluorescente, tem sido utilizada13, sendo

este o procedimento recomendado pela Agencia de Proteção Ambiental dos Estados Unidos (EPA)14. A técnica de cromatografia gasosa de alta

resolução (CGAR), utilizando detectores específicos ou acoplada à espectrometria de massas (CG-EM), também pode ser empregada para determinação de GLI e seus metabólitos15-18; porém, para este tipo de

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de compostos voláteis, visto que os analitos apresentam elevada pola-ridade e pouca volatilidade, o que faz com que o processo de prepara-ção da amostra seja demorado e trabalhoso4. Várias outras técnicas

analíticas para determinação de GLI e AMPA foram descritas, tais como cromatografia em camada delgada19, polarografia20,

ressonân-cia magnética nuclear de 31P 21, espectrofotometria22 e eletroforese23.

Quanto à derivação, o GLI pode ser considerado um caso es-pecial, devido à sua natureza polar e alta solubilidade em água, o que limita a possibilidade de se usar técnicas padrão de deriva-ção, empregadas freqüentemente para análise posterior por CG24.

O uso de misturas de anidridos fluorados e álcoois perfluorados fornece derivados do GLI e AMPA, que podem ser detectados por CG-EM com sensibilidade e seletividade elevadas17. Geralmente,

o processo envolve o uso de anidrido trifluoroacético (TFAA) e trifluoroetanol (TFE)15,25, TFAA e diazometano26, e ácido

heptafluorobutírico (HFBA) e 2-cloroetanol27, sendo que no

pri-meiro caso, a reação de derivação é feita com excesso de TFAA e TFE devido ao fato de que as etapas de formação dos compostos derivados são de equilíbrio e, com este excesso, a reação deslo-car-se-á no sentido de formar compostos derivados, como mostra a Figura 1.

A presente pesquisa propôs-se avaliar um procedimento de derivação do GLI e AMPA com TFAA e TFE, a partir de amostras de solo, utilizando-se, nas etapas preliminares de purificação, resi-nas trocadoras de íons de fabricação nacional, por serem de custo bem inferior às importadas, comumente utilizadas neste processo. Baseando-se em uma pesquisa que utilizou os mesmos reagentes18,

procedeu-se às análises cromatográficas dos derivados no período máximo de uma semana. Adicionalmente, devido aos derivados obtidos serem citados como pouco estáveis, e não existirem dados na literatura sobre esta questão, optou-se por avaliar também a es-tabilidade dos compostos derivados em dois tipos de armazenamento em função do tempo decorrido após as derivações. Uma vez que tais parâmetros influenciam diretamente nos resultados obtidos, o estudo aqui realizado é de grande importância, pois uma análise efetuada, utilizando-se os derivados de GLI e AMPA apresentados na Figura 1, sem o conhecimento da estabilidade destes compos-tos, pode levar a resultados imprecisos.

PARTE EXPERIMENTAL Reagentes, soluções e materiais

Os padrões de GLI (98%) e AMPA (10 ng µL-1), ambos certifi-cados, foram adquiridos de Dr. Ehrenstorfer GmbH (Augsburg,

Germany). Foi preparada solução estoque de 1009 mg L-1 de GLI

em água deionizada, solução intermediária de GLI com concentra-ção de 100 mg L-1 e soluções de trabalho de 1 mg L-1, tanto para GLI

quanto para AMPA.

Na extração do GLI e AMPA do solo foi utilizada solução (1,0 mol L-1) de NaOH (Dinâmica, 97%) e no processo de purificação

com resinas trocadoras de íons, Amberlite IRA-420 (Cl-) e Amberlite

IR-120 (Na+), ambas da Synth, utilizou-se como eluente solução

(6,0 mol L-1) de HCl (36,9%, Mallinckrodt); como solventes,

fo-ram utilizados o metanol (99,5%) da Science e acetato de etila (99,9%) da Merck, e água ultra-purificada (Milli-Q®). Os reagentes anidrido trifluoroacético (TFAA) (99,5%), da Vetec, e trifluoroetanol (TFE) (99%), da J. T. Baker, foram utilizados na derivação.

Coleta, caracterização e preparação das amostras

Para os estudos de recuperação, amostras simples de solo foram coletadas na profundidade de 0-10 cm no campus da Universidade Federal de Mato Grosso do Sul, em área de Reserva Particular do Patrimônio Natural (RPPN); sendo a amostra composta armazenada em sacos de polietileno em local seco, sob abrigo de luz. Amostras de laboratório foram caracterizadas pelo IAGRO, Departamento de Ins-peção e Defesa Agropecuária de Mato Grosso do Sul. As amostras foram peneiradas em malha de 2 mm e secas ao ar. Foram determina-das as umidades gravimétrica e residual do solo utilizado28.

Amostras, contendo 10 g do solo, foram fortificadas com 12, 36 e 60 ng g-1 de GLI e AMPA e, após um período de aproximadamente

24 h, foram submetidas ao processo de extração do GLI e AMPA.

Extração do GLI e AMPA

As amostras foram tratadas por 30 min com 25 mL de NaOH (1,0 mol L-1) em ultra-som, sendo posteriormente centrifugadas

por 10 min em centrífuga (Cole-Parmer) a 3400 rpm.

O sobrenadante de cada amostra foi filtrado em papel de filtro qualitativo, sendo adicionada a cada extrato uma alíquota de 4,2 mL de HCl concentrado, ajustando-se o pH para 2 e o volume com-pletado com água ultrapura até 200 mL. As amostras foram mantidas à temperatura ambiente por um período de 3 h para que ocorresse a decantação de partículas que se encontravam em suspensão. Reti-rou-se uma alíquota de 50,0 mL da parte superior de cada extrato para purificação.

Purificação com resinas trocadoras de íons

Colunas de vidro com 1,5 cm de diâmetro e 18 cm de compri-mento foram empacotadas com 8,0 mL de resina catiônica, Amberlite IR-120. A resina foi condicionada com a adição seqüencial de 20,0 mL de água deionizada, 40,0 mL de HCl (0,2 mol L-1) e 1,0 mL de

HCl (6,0 mol L-1), descartando-se todo o eluato. As alíquotas de 50,0

mL dos extratos foram adicionadas nas colunas e eluídas com 1 × 2,8 mL e 2 × 3,7 mL de HCl (6,0 mol L-1) sob fluxo de 2 mL min-1, repetindo-se o procedimento. Os eluatos foram coletados em recipi-entes apropriados, sendo a eles adicionados 6,0 mL de NaOH (10,0 mol L-1) e o pH ajustado na faixa de 6-8.

Outras colunas de vidro, com as mesmas especificações das anteriores, foram empacotadas com 4,0 mL de resina aniônica, Amberlite IRA-420, sendo condicionadas com 3 × 2,5 mL de HCl (6,0 mol L-1) e 1,0 mL de HCl concentrado, descartando-se todo o

eluato. Os eluatos tratados com a resina catiônica foram adiciona-dos a estas colunas sob fluxo de 2 mL min-1, repetindo-se este

pro-cedimento. As substâncias retidas nesta coluna foram eluídas com 1 × 1,0 mL e 2 × 2,0 mL de HCl 6,0 mol L-1. As amostras foram

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coletadas em balões de fundo redondo e levadas à secura em evaporador rotativo (TE-120, Tecnal) a 60 ºC e pressão de -500 mmHg. Em seguida, adicionou-se a cada uma delas 5,0 mL de água purificada e evaporou-se à secura novamente. Retomou-se o volume de cada amostra para 1,0 mL, com uma mistura água-metanol-HCl (160-40-2,7) (v/v/v), para impedir que o GLI e o AMPA ficassem adsorvidos nas paredes dos balões, sendo então transferidas para ampolas de vidro.

Derivação e análise cromatográfica das amostras

As amostras contidas nas ampolas de vidro, do item anterior, foram evaporadas à secura sob fluxo de nitrogênio, e adicionados 800 µL de TFAA e 400 µL de TFE. Após lacrarem-se as ampolas, estas foram colocadas em estufa a 100 °C, por 1 h. Após atingirem a temperatura ambiente, secou-se novamente sob fluxo de nitrogê-nio e retomou-se as amostras a 1,0 mL com acetato de etila, sendo então encaminhadas para a análise cromatográfica, utilizando-se o modo de monitoramento de íons selecionados (modo SIM). Cada amostra foi injetada 5 vezes.

Para construção das curvas analíticas, utilizou-se, para a deri-vação, a adição de padrões nas concentrações de 30, 60, 90, 150 e 300 µg L-1 de AMPA e GLI diretamente nas ampolas, as quais

foram secas sob fluxo de nitrogênio. Em seguida, efetuou-se a adição 800 µL de TFAA e 400 µL de TFE e, depois de lacradas as ampolas, estas foram colocadas em estufa a 100 °C, por 1 h. Após atingirem a temperatura ambiente e serem abertas, foram secas novamente sob fluxo de nitrogênio e o volume das mesmas reto-mado a 1,0 mL com acetato de etila, reservando-se então, sob re-frigeração, até o momento da análise. Cada amostra foi injetada 7 vezes no modo SIM.

Avaliação da estabilidade do GLI e AMPA derivados

Amostras, em triplicatas, derivadas de 250 µg L-1 de GLI e AMPA

foram divididas em duas alíquotas, sendo uma armazenada em freezer (-2 oC) e outra em geladeira (5 oC). Acompanhou-se a

degra-dação dos compostos derivados, via área de integração no CG/EM, por um período de 15 dias nos dois meios de armazenamento.

Equipamento

As análises foram realizadas em um cromatógrafo a gás mode-lo GC-17A com detector de massa QP-5000, da Shimadzu, equipa-do com uma coluna capilar VA-608 da Varian de 30 m de compri-mento, 0,32 mm de diâmetro interno e 0,5 µm de espessura do filme. Foi injetado 1 µL de cada amostra no modo sem divisão de amostra (“splitless”). A temperatura do injetor foi de 260 ºC, a da interface foi de 260 ºC e a da coluna inicialmente foi de 70 ºC por 2 min, em seguida foi elevada para 270 ºC (28,8 ºC min-1), sendo esta

última mantida por 6 min. A pressão na coluna foi de 20 kPa e o fluxo de 1,5 mL min-1, utilizando-se como gás de arraste hélio

ultrapuro (White Martins). O espectrômetro de massas foi operado na modalidade de impacto de elétrons (EI). Os íons monitorados foram m/z 238, 260, 411 para o GLI e m/z 246 e 302 para o AMPA.

RESULTADOS E DISCUSSÃO Análise do solo

O conhecimento das propriedades físico-químicas do solo é de suma importância em análises de pesticidas, pois fatores como pH, teores de argila e matéria orgânica podem influenciar de forma significativa nas recuperações dos analitos. Na Tabela 1 estão os dados referentes à análise do solo utilizado, efetuada pelo IAGRO. Conforme a Tabela 1, o solo, proveniente de área de cerrado nativo, foi classificado como argiloso, pois tem teor de argila maior que 35%.

A interpretação de teores de micronutrientes no solo é assunto polêmico no âmbito de pesquisadores de solos, não havendo ainda um consenso sobre o tema que facilite o entendimento. As cultu-ras, diferentes tipos de manejos e classes de solos são fortes complicadores. Os teores na planta são mais consensuais e de uso geral na agronomia, pois a planta reflete melhor a disponibilidade dos mesmos. O ferro é um elemento que ora aparece nas várias tabelas de interpretação, ora não. Este é um elemento abundante em nossos solos, com poucos problemas de deficiência, e apresenta dificuldades na determinação/interpretação, pois é muito influenci-ado pelo estinfluenci-ado de óxido-redução do meio.

A literatura pesquisada29 classifica os teores encontrados de Fe,

Mn, Zn e Cu como altos, o que é característico para solos de cerra-do2. No entanto, o teor de Al é classificado como baixo, o que não é

comum neste tipo de solo; porém, a literatura30 apresenta resultados

de análise de solo coletados na mesma região com teores de alumí-nio também muito baixos.

Um dos primeiros trabalhos8 sobre adsorção de GLI a íons

mi-nerais concluiu que o herbicida é mais facilmente adsorvido em so-los argiso-losos que em arenosos por íons metálicos na seguinte ordem Ca2+ < Mn2+ < Zn2+ < Mg2+ < Fe3+ < A13+ sendo, portanto possível a

adsorção do GLI na matriz estudada devido aos altos teores de alguns destes íons. Adicionalmente, a quantidade considerável de cobre (II) também pode ocasionar a complexação do GLI, visto que a presença deste íon aumenta a adsorção do herbicida ao solo, devido à maior habilidade do complexo formado de ser adsorvido se comparado com o GLI livre31. Como o teor de fósforo é muito baixo, isto sugere que

não há competição significativa entre o GLI e os íons fosfato pelos sítios de adsorção específica do solo32.

Avaliação do método

O método descrito constitui uma alternativa eficaz para a de-terminação de GLI e AMPA em solo com a vantagem, sobre outros métodos similares, de usar resinas de menor custo, produzidas no Brasil. A pesquisa do GLI em diversas matrizes é de grande impor-tância devido a este herbicida ser o mais vendido no mundo e, tam-bém, devido à liberação do plantio da soja transgênica no nosso País, a qual é resistente ao GLI, o que pode acarretar um uso indiscriminado deste herbicida.

A análise cromatográfica por CG-EM apresentou boa seletividade, como pode ser observado na Figura 2.

Os limites de detecção (LD) e de quantificação (LQ) do

equipa-Tabela 1. Análise do solo utilizado

pH Textura M. O. P K Fe Mn Zn Al Ca+Mg Cu Granulometria (%)

% mg/cm3 mg/dm3 mg/dm3 mg/dm3 mg/dm3 mg/dm3 mg/dm3 mg/dm3 Argila Silte Areia

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mento foram calculados através da relação sinal/ruído de 3 e 10 vezes, respectivamente. Os valores de LD e LQ, relativos ao equi-pamento nas condições analíticas utilizadas, foram, para ambos GLI e AMPA, de 10 e 30 ng mL-1, respectivamente. Os valores de

LD e LQ relativos ao método foram, respectivamente, de 4 e 12 ng g-1, tanto para GLI quanto para AMPA. Indicando, assim, que o

mé-todo é adequado para detectar e quantificar o herbicida e seu metabólito em baixos níveis de concentração.

As curvas analíticas do GLI e AMPA mostraram boa linearidade e coeficientes de correlação significativos, como se observa na Ta-bela 2. O intervalo linear de trabalho foi de 30 a 300 µg L-1 para

GLI e AMPA.

As amostras, fortificadas, em triplicatas, em três níveis de con-centração (GLI e AMPA)- baixo, médio e alto- foram analisadas também em triplicada, sendo os dados obtidos exibidos na Tabela 3. Observa-se pela Tabela 3 que o método empregado possui uma boa precisão, pois o coeficiente de variação percentual é inferior a 15% em todos os níveis de fortificação.

As recuperações variaram entre 85-94% para o GLI e 87-102% para AMPA, sendo consideradas como resultados exce-lentes, visto que se encontram na faixa de recuperação, entre 70-120%, recomendada pela EPA14. O método apresentou boas

recupe-rações, mesmo se utilizando amostras de solo com significativos teores de minerais.

As resinas trocadoras de íons mostraram-se tão ou mais eficien-tes no processo de purificação que suas similares Chelex 100 e AG 1-X8 utilizadas em um trabalho com metodologia de análise seme-lhante ao descrito nesse artigo18. Isso pode ser observado

compa-rando-se os resultados de recuperação, pois além dos teores de mi-nerais presentes no solo, as resinas também influenciam diretamente no resultado da análise pois, se a troca iônica entre a resina e GLI e AMPA não for suficientemente eficiente, ocorrerão perdas do analito nesta etapa e a análise ficará comprometida. As resinas nacionais mostram-se uma excelente alternativa às resinas importadas, devi-do a terem uma eficiência muito boa, com a vantagem de terem um custo muito menor.

Avaliação da estabilidade dos derivados de GLI e AMPA As Figuras 3 e 4, a seguir, são relativos à avaliação da estabili-dade do GLI e do AMPA derivados nos dois meios de armaze-namento, freezer (-2 oC) e geladeira (5 oC).

Tanto GLI como AMPA apresentam picos com áreas maiores após passadas 24 h da derivação com TFAA e TFE, não importando onde fiquem armazenados. Isso pode ser devido ao fato de que a reação demore um determinado intervalo de tempo para se deslocar no sen-tido do composto derivado, com possíveis influências do solvente utilizado, bem como da temperatura, sendo, portanto, necessários estudos cinéticos neste sentido. A dependência da temperatura pode ser observada nas Figuras 3 e 4, onde a área obtida para os derivados é maior quando estes são armazenados a uma temperatura maior, 5 °C (geladeira), que quando são armazenados a –2 °C (freezer).

Aplicando-se o Teste t de Student sobre as médias dos resulta-dos obtiresulta-dos, pode-se afirmar que, para o armazenamento a um perí-odo maior que uma semana, não há diferença significativa com 95% de confiança entre as áreas de GLI e AMPA derivados nos dois tipos de armazenamento, embora haja diminuição na área dos picos devi-do à degradação devi-dos derivadevi-dos. Porém, o pico de maior área (após 24 h), tanto para GLI derivado quanto para AMPA derivado, é mai-or quando estes são armazenados em geladeira. Pmai-ortanto, para se obter melhores resultados com o método proposto, as amostras de-Figura 2. Cromatograma de AMPA e GLI

Tabela 3. Eficiência da recuperação obtida, para GLI e AMPA Nível de fortificação Recuperação (%) C.V. (%)

(ng g-1) GLI AMPA GLI AMPA

12 85 87 6,91 5,81

36 88 91 6,07 6,99

60 94 102 4,07 6,33

Tabela 2. Curvas analíticas para GLI e AMPA

Composto Curva analítica Coeficiente de correlação (r)

GLI y = 345,35x – 2481,22 0,99874

AMPA y = 272,45x – 236,97 0,99955

Figura 3. Acompanhamento da degradação do GLI derivado nos dois meios de armazenamento

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vem ser armazenadas em geladeira por 24 h, quando então devem ser imediatamente analisadas.

CONCLUSÕES

O método de determinação de GLI e AMPA por CG-EM pro-posto mostrou-se bastante eficiente, com boa linearidade, precisão e reprodutibilidade. As recuperações foram satisfatórias mesmo utilizando-se um solo com altos teores de minerais, os quais podem interferir na análise. Acredita-se também que esta mesma metodologia possa ser utilizada de forma eficiente em solos com baixos teores de minerais. O processo de purificação dos extratos, com as resinas trocadoras de íons Amberlite IR-120 e Amberlite IRA-420, mostrou-se eficaz, indicando ser esta técnica mais eco-nômica que outras indicadas na literatura, as quais aumentam significantemente o custo desta etapa da análise.

Quanto à estabilidade, sugere-se que os derivados neste tipo de estudo sejam analisados cromatograficamente após exatamente o mesmo período decorrido após o término do processo de deriva-ção, de preferência em 24 h, para que não haja diferença nos resul-tados devido à instabilidade dos derivados.

AGRADECIMENTOS

Ao apoio da UFMS, do CNPq, da CAPES, da FUNDECT/MS e do IAGRO/MS.

REFERÊNCIAS

1. http://www.eco.unicamp.br/ecoeco/artigos/encontros/downloads/mesa2/ 4.pdf, acessada em Fevereiro 2005.

2. Oliveira-Filho, E. C.; Lima, J. E. F. W.; Potencial de Impacto da

Agricultura sobre os Recursos Hídricos na Região do Cerrado,

EMBRAPA-CPAC: Planaltina, 2002, Documentos 56.

3. Garagorry, F. L.; Rego, A. M.; AGROTEC: base relacional de dados de

estatísticos. Estrutura de dados, EMBRAPA: Brasília, 1997; Chaib Filho,

H.; Garagorry, F. L.; Junqueira, N.; Anais do 17o Congresso Brasileiro de

Fruticultura, Belém, Brasil, 2002; Garagorry, F. L.; Chaib Filho, H.;

Junqueira, N.; Anais do 17o Congresso Brasileiro de Fruticultura, Belém,

Brasil, 2002.

4. Amarante Jr., O. P.; Santos, T. C. R.; Brito, N. M.; Ribeiro, M. L.; Quim.

Nova 2002, 25, 589.

5. http://www.nortox.com.br/arquivos/pdf/pdf_bula_13.pdf, acessada em Outubro 2005.

6. http://www.agr.unicamp.br/tomates/pdfs/eftoxic.pdf, acessada em Fevereiro 2005.

7. Gehin, A.; Guillaume, Y. C.; Millet, J.; Guyon, C.; Nicod, L.; Int. J. Pharm.

2005, 288, 219.

8. Sprankle, P.; Meggitt, W. F.; Penner, D.; Weed Sci. 1975,23, 229.

9. Rueppel, M. L.; Brightwell, B. B.; Schaefer, J.; Marvel, J. T.; J. Agric. Food

Chem. 1977, 30, 517; Zaranyika, M. F.; Nyandoro, M. G.; J. Agric. Food Chem. 1993, 41, 838.

10. http://www.aracruz.com/microbacia/shared/relatorio_1997.pdf, acessada em Outubro 2005.

11. Amarante Jr., O. P.; Santos, T. C. R.; Brito, N. M.; Ribeiro, M. L.; Quim.

Nova 2002, 25, 420.

12. Thompson, D. G.; Cowell, J. E.; Daniels, R. J.; Staznik, B.; Macdonald, L. M.; J. AOAC Int.1989,72, 355.

13. Miles, C. J.; Leong, G.; LCGC North Am. 1992, 10, 452; Abdullah, M. P.;

Daud, J.; Hong, K. S.; Yew, C. H.; J. Chromatogr., A 1995, 697, 363.

14. Environmental Protection Agency (EPA); Drinking Water Methods From

Methods for the Determination of Organic Compounds in Drinking Water,

Supplement I, EPA/600/4-90/020. Methods and Guidance for Analysis of

Water, 1990.

15. Deyrup, C. L.; Chang. S.; Weintraub, R. A.; Moye, A.; J. Agric. Food Chem.

1985,33, 944.

16. Roy, D. N.; Konar, S. K.; J. Agric. Food Chem. 1989,37, 441; Eberbach,

P. L.; Douglas, L. A.; J. Agric. Food Chem. 1991,39, 1776; Tsunoda, N.;

J. Chromatogr., A 1993,637, 167; Kataoka, H.; Ryu, S.; Sakiyama, N.;

Makita, M.;J. Chromatogr., A 1996,726, 253; Stalikas, C. D.; Konidari,

C. N.; J. Chromatogr., A 2001,907, 1; Kudzin, Z. H.; Gralak, D. K.;

Drabowicz, J.; Luczak, J.; J. Chromatogr., A 2002,947, 129; Kudzin, Z.

H.; Gralak, D. K.; Andrijewski, G.; Drabowicz, J.; Luczak, J.; J.

Chromatogr., A 2003,998, 183.

17. Alferness, P. L.; Iwata, Y.; J. Agric. Food Chem. 1994,42, 2751.

18. Börjesson, E.; Torstensson, L.; J. Chromatogr., A 2000,886, 207.

19. Young, J. C.; Khan, S. V.; Marriage, P. B.; J. Agric. Food Chem. 1977, 25,

918; Bunyatyan, Y. O. A.; Gevorgyan, A.; A. Gig. Sanit. 1984, 5, 43.

20. Friestad, H. O.; Bronstad, J. O.; J. AOAC Int. 1985, 68, 76.

21. Dickson, S. J.; Meinhold, R. H.; Beer, I. D.; Koelmeyer, T. D.; J. Anal.

Toxicol.1988, 12, 284.

22. Daniele, P. G.; De Stefano, C.; Prenesti, E.; Sammartano, S.; Talanta1997,

45, 425; Zhemchuzhin, S. G.; Gorobets, R. P.; Zh. Anal. Khim. 1989, 44,

741.

23. Cikalo, M. G.; Goodall, D. M.; Matthews, W.; J. Chromatogr., A 1996, 745,

189; Chang, S. Y.; Liao, C.; J. Chromatogr., A 2002, 959, 309; Goodwin,

L.; Startin, J. R.; Keely, B. J.; Goodall, D. M.; J. Chromatogr., A 2003,

1004, 107.

24. Tadeo, J. L.; Sánchez-Brunete, C.; Pérez, R. A.; Fernández, M. D.; J.

Chromatogr., A 2000, 882, 175.

25. Roy, D. N.; Konar, S. K.; Banerjee, S.; Charles, D. A.; Can. J. Forest. Res.

1989,19, 842; Konar, S. K.; Roy, D. N.; Anal. Chim. Acta1990,229, 277.

26. Seiber, J. N.; Mcchesney, M. M.; Kon, R.; Leavitt, R. A.; J. Agric. Food

Chem. 1984, 32, 678.

27. Guinivan, R. A.; Thompson, N. P.; Wheeler, W. B.; J. Assoc. Off. Anal.

Chem.1991, 74, 842.

28. Brady, N. C.; Natureza e propriedades dos solos, 6a ed., Livraria Freitas

Bastos S.A.: Rio de Janeiro, 1983.

29. Malavolta, E.; Kliemann, H. J.; Desordens nutricionais no cerrado,

POTAFOS: Piracicaba, 1985.

30. Mothci, E. P.; Amaral, J. A. M.; Santos, R. D.; Levantamento de

reconhecimento-detalhado e aptidão agrícola dos solos da área do centro

Nacional de Pesquisa de Gado de Corte, Mato Grosso do Sul, EMBRAPA/

SNLCS: Rio de Janeiro, 1979.

31. Morillo, E.; Undabeytia, T.; Maqueda, C.; Ramos, A.; Chemosphere2000,

40, 103; Morillo, E.; Undabeytia, T.; Maqueda, C.; Ramos, A.;

Chemosphere2002, 47, 747.

Referências

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