Aulas passadas
Células 1: Procariotos e eucariotos
Células, tecidos e orgãos
Reinos filogenéticos
Compartimentalização em sistemas biológicos
- rompimento e fracionamento celular
QBQ2451- 2013
Célula 2: Marcadores químicos de organelas
- microscopia
Célula animal
Cada organela tem uma função e produz proteínas específicas: marcadores
Diversas possibilidades de marcação de estruturas celulares para:
1. investigar as suas funções
2. localizá-las (identificação e isolamento)
3. acompanhar eventos celulares (influxo de Ca+2, reconhecimento, determinadas
ações biológicas, p.ex.)
Enzima Golgi-residente humana N-acetilgalactosaminiltransferase-2 Histonas/DNA Myristoylation/palmitoylation Lck tyrosine kinase Receptores proteicos Monômero de tubulina MAP4 Calreticulina KDEL Succinato desidrogenase Hexoquinases (citoesqueleto) (citoesqueleto)
Técnicas de visualização/localização de estruturas celulares:
microscopia
Tipo de
Microscopia Resolução Tipo de Feixe O que mede Estado da amostra
Ótica 0,2 Luz branca
(visível) Luz absorvida ou refletida molhadas ou Amostras fixadas Eletrônica (transmissão ou de varredura) 0,05 Feixe de
elétrons transmitidos, Elétrons secundários,
raios X
Amostras secas e fixadas
Aumento de contraste: melhoria da imagem obtida!
microscopias de campo claro, campo escuro, fluorescência, contraste de fase Geralmente para células intactas
visualizar organelas com grande definição e até mesmo estruturas intraorganelas. Também permite obter informações multidimensionais
(a) Microscópio óptico composto.(b) microscópios eletrônicos
Tipos: microscopias de campo claro, campo escuro, fluorescência, invertida, de transmissão confocal (microscopia de varredura confocal) e de polarização.
Microscopia de campo claro Microscopia de contraste de fase Microscopia de campo escuro Largura média = 8-10 µm Dihidrocloreto de (4',6-diamidino-2-fenilindole: se liga a DNA
Marcadores químicos coloridos ou fluorescentes
substituiram os radioisótopos
• Marcadores coloridos:
aumento de contraste na microscopia de campo claro
• Marcadores fluorescentes fluorescência permite:
maior sensibilidade
variabilidade de cor
Reveladores de organelas: corantes ou fluorescentes
Compostos orgânicos que coram ou fluorescem estruturas nas células com base em suas naturezas químicas.
Muitos: básicos: carregados + interação com estruturas carregadas – (ác. nucleicos, carboidratos ácidos, superfícies celulares)
Exemplos incluem:
1. Rastreador para mitocôndria
2. Corantes de ácidos nucleicos para núcleo
3. Lisorastreador e lisosensor para compartimentos ácidos 4. Corantes lipofílicos para membranas
5. Rastreador para retículo endoplasmático
6. Conjugados de ceramida para complexo de Golgi
Células vivas LBPAE incubadas simultaneamente com:
MitoTracker® Deep Red FM -mitocôndrias
LysoTracker® Green DND-26 -lisossomas Hoechst 33342 - núcleolo
Exemplos de corantes:
azul de metileno, cristal violeta, safranina
Bactérias: Gram + ou -?
Para Complexo de Golgi N1154 NBD-ceramide
D3521 BODIPY® FL ceramide D7540 BODIPY® TR ceramide
Para Mitocôndria
Mais populares:
M7510 MitoTracker® Orange CMTMRos
M7512 Mitotracker® RED CMXROS 578/599 Add live and fix
M22425 MitoTracker® Red 580 580/644
M22426 MitoTracker® Deep Red 633 640/662 Células vivas e fixáveis:
M7514 MitoTracker® Green FM
Formas fluorogênicas reduzidas; menos retido; melhor para células vivas: M7511 MitoTracker® Orange CM-H2TMRos
M7513 MitoTracker® Red CM-H2XRos Mais eficientes:
Rhodamine 123 (R-302), TMRM (T668), TMRE (T-669). Though these remain popular.
Formatted for High Content Screening/ HCS H10295 HCS Mitochondrial Health Kit
Para Retículo endoplasmático E34251 ER-Tracker™ Green
E34250 ER-Tracker™ Red
Boa fixação, mas sem permeabilização intensa
D273 DiOC6(3)
Usado para células vivas e fixadas com glutaraldeído Limitado para certos tipos de célula
(corante dependente de concentração) Muito fototóxico
Para Núcleos celulares
Não são específicos para só um tipo de núcleo. Dependendo das condições de “marcação”, o corante também pode aparecer no citoplasma.
Somente alguns entram em células vivas devido à polarização da membrana plasmática.
H1399 Hoechst 33342
S7578 SYTO® 16 S7575 SYTO® 13 D1306 DAPI
A1301 Acridine orange
Aglutinina de germen de trigo AlexaFluor 594
CellMask™ Orange CellMask™ Deep Red Para Membrana Plasmática
• células 293 MSR marcadas por 1 min em meio completo, lavadas e submetidas à coleta de imagem
• ~100% de marcação do total de células após 1-10 min de incubação
Produção de organelas fluorescentes
pq produzem proteinas recombinantes fluorescentes
+
1) Experimentos de co-localização: localização de alvo intracelular de um bioativo
2) Tráfico celular
3) Indução ou repressão da expressão gênica
Anticorpos marcados com fluorescentes (radioativos)
Anti-Calreticulina detectada com AF488 secundário, Mitotracker Red e DAPI
(os últimos são referências na microscopia)
Etapas
- Determinar sequência do antígeno/parte dela (peptídeo) produzida na célula de interesse (humana, p.ex.)
- Produzir anticorpo 1º. contra o antígeno em coelho ou cavalo (o anticorpo 1o. não é
marcado)
-Produzir anticorpo 2º. (contra o 1º.) e marcá-lo -Ligar o 1º. com antígeno e anticorpo 2º.
marcado com AF488 ao complexo (reconhece o anticorpo 1º. de coelho ou cavalo; não liga o antígeno humano)
-Ligação dele ao anticorpo 1º. possibilita a visualização da organela associada ao
antígeno
Células mortas
Possibilidades para estudar função ou localizar alvo
de interesse em organelas celulares
1) Introdução de “reveladores” marcadores = corantes ou fluorescentes que reagem com proteínas específicas ou outros alvos moleculares, p. ex. ácidos nucleicos (mais indicados para localizar tais proteínas e alvos)
2) Detecção de proteínas específicas (antígenos) marcadores = anticorpos (mais indicados para entender função)
3) Uso de microscopias adequadas
Células vivas ou fixadas!
Cuidados para uso de células vivas (manter a sua integridade):
1) Garantir que o tecido (células) foi incubado em condições apropriadas 2) Usar o mínimo de reagente revelador
3) Se possível, não expor as células à excitação de luz, principalmente na presença de reagente revelador
4) Se não, usar a menor excitação de luz possível
Referências bibliográficas:
1) Invitrogen Corporation, Eugene OR.
http://www.invitrogen.com/site/us/en/home/Products-and-Services/Applications/Cell-
Analysis/Cellular-Imaging/Fluorescence-Microscopy-and-Immunofluorescence-IF/Organelle-Stains-for-Fluorescence-Imaging-Selection-Guide.html 2) http://www.sanidadanimal.info/cursos/inmun/segun2.htm
3) Nelson D.L & Cox M.M. Lenhinger – Principles of Biochemistry, Fourth Edition , 2005
4) B. Alberts e col., Molecular Biology of the Cell, Garland Science, 5th. Edition, Cap. 9, 2008
5) Microbiologia de Brock, M.T. Madigan, J.M. Martinko, P.V. Dunlap, D.P.Clark, 12ª. edição, 2010.