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PARTIÇÃO DE ANTOCIANINAS DA POLPA DE AÇAÍ (Euterpe oleracea M.) EM SISTEMA AQUOSO BIFÁSICO ETANOL/SULFATO DE AMÔNIO

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PARTIÇÃO DE ANTOCIANINAS DA POLPA DE AÇAÍ (Euterpe

oleracea

M.)

EM

SISTEMA

AQUOSO

BIFÁSICO

ETANOL/SULFATO DE AMÔNIO

A. C. A. SIQUEIRA1, E. S. de BRITO2, I. J. SILVA Jr1, H. B. SANT’ANA1

1

Universidade Federal do Ceará, Centro de Tecnologia, Departamento de Engenharia Química

2

Embrapa Agroindústria Tropical E-mail para contato: hbs@ufc.br

RESUMO – Sistema aquoso bifásico (SAB) formado por etanol e sulfato de amônio foi utilizado na partição de antocianinas da polpa de açaí. O diagrama de fase foi obtido por cloud-point e densimetria para as linhas de amarração a 25 °C. A partição foi realizada com diferentes valores de comprimentos de linhas de amarração (CLA) e destes, o que apresentou maior coeficiente de partição, variou-se a razão de volume das fases (VR).

Após o equilíbrio, foram medidas as concentrações de antocianinas e açúcares totais de cada fase através das metodologias do pH diferencial e do fenol-sulfúrico, respectivamente. O CLA de 45,24% m/m apresentou o maior coeficiente de partição de antocianinas (KA = 2,30) e menor concentração de açúcares totais na fase topo (246,19

mg/L). Para VR < 2,08, foi obtido KA > 1. Através de LCMS, foi identificada a cianidina

3-O-rutinosídeo na polpa de açaí. Após a partição com CLA = 45,24% m/m e VR = 1,29,

o rendimento de antocianinas na fase topo foi de 74,76% m/m.

1. INTRODUÇÃO

Com o aumento dos consumidores que procuram alimentos obtidos a partir de fontes naturais, as indústrias de alimentos tem se dedicado a incluir ingredientes naturais em seus produtos, incluindo corante a base de antocianinas em alternativa a corantes sintéticos devido à cor atrativa das mesmas e suas características fisiológicas funcionais. As antocianinas constituem o maior e mais importante grupo dos pigmentos naturais hidrossolúveis (He e Giusti, 2010) e são responsáveis pela coloração vermelha, azul e roxa em frutas, legumes e plantas ornamentais (Brito et al., 2007; Pascual-Teresa et al., 2010) além de proporcionarem benefícios à saúde, pois possuem atividade antioxidante, atuam na prevenção de doenças cardiovasculares, possuem atividade anticarcinogênica e antimicrobiana e antitumoral, ajudam no controle da diabetes tipo 2 e melhoram a visão (He e Giusti, 2010).

Plantas tropicais podem ser fontes para alimentos de grandes benefícios à saúde do homem por apresentarem compostos antioxidantes, como ácido ascórbico e compostos fenólicos (Hanamura et al., 2005). O açaizeiro é uma palmeira bastante comum nas várzeas e margens dos rios na região amazônica e seu fruto, o açaí, ganhou destaque nos últimos anos por apresentar benefícios à saúde

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devido a sua composição fitoquímica e sua capacidade antioxidante, uma vez que possuem compostos fenólicos como antocianinas, flavonas e ácidos fenólicos, além de ser rico em carboidratos, fibras, vitaminas E, proteínas, minerais e apresentar alto valor energético (Lichtenthäler et al., 2005; Pacheco-Palencia e Talcott, 2009).

Para a extração de antocianinas, geralmente utilizam-se solventes orgânicos como metanol ou acetona, o que exige um grande consumo de tempo e reagentes, além da toxicidade dos mesmos, limitando seu uso. Técnicas de extração como ultrassom, extração com fluido supercrítico e extração por membranas também tem sido utilizadas, mas são de alto custo, pois necessitam de equipamentos específicos e consomem muita energia. Sistemas aquosos bifásicos (SABs) tem sido uma alternativa a esses métodos. É considerada uma técnica atóxica por possuir alto teor de água. Sistemas formados por álcoois e sais tem substituído SABs formados por polímeros-polímeros e polímeros-sais devido à sua alta capacidade de extração, baixo custo e condições brandas de processo (Wu et al., 2011,Wu et al., 2014).

Esse trabalho tem como objetivo estudar o efeito do comprimento da linha de amarração e do volume das fases na partição de antocianinas da polpa de açaí utilizando um sistema aquoso bifásico formado por etanol e sulfato de amônio e identificar as antocianinas presentes após a partição por meio de cromatografia líquida acoplada a espectrometria de massas (LC-MS).

2. METODOLOGIA

2.1. Diagrama de fases

A curva binodal do sistema etanol + sulfato de amônio foi obtida através do método cloud-point e as linhas de amarração foram obtidas por densimetria. O comprimento da linha de amarração (CLA) foi calculado pela Equação 1

 

2

1/2 2 2 2 1 1 F T F T C C C C CLA    (1) em que C1 é a concentração de etanol, C2 a concentração de sulfato de amônio e os sobrescritos T e F

representam a fase topo e fase fundo, respectivamente.

2.2. Partição em sistema aquoso bifásico

Foram pesadas quantidades predeterminadas de solução de sulfato de amônio, etanol, água e polpa de açaí, fazendo com que o sistema tivesse uma base de 100% m/m. Esses componentes foram agitados em vórtex por 1 min e deixados em repouso em banho termostatizado a 25°C por 24 horas até que houvesse completa separação das fases. As fases topo e fundo foram coletadas, seus volumes anotados e analisadas as concentrações de antocianinas e açúcares.

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2.3. Concentração de antocianinas e açúcares

A concentração de antocianinas foi determinada pelo método do pH diferencial, como descrito por Fuleki e Francis, (1968) e foi calculada e expressa como cianidina-3-O-glicosídeo. Os açúcares foram determinados pelo método do fenol-sulfúrico como descrito por Dubois et al. (1956) e os resultados foram expressos em glicose.

3. RESULTADOS

3.1. Diagrama de fases

A Figura 1 nos mostra o diagrama de fases do sistema etanol e sulfato de amônio que foi determinado para predizer o volume e a razão das composições das duas fases. O comportamento do diagrama de fases foi similar ao diagrama obtido por Wu et al. (2011). A curva binodal divide o diagrama de fases em duas áreas, na qual, acima da curva, temos a região bifásica e abaixo, a região monofásica. O diagrama de fases nos fornece ainda, as linhas de amarrações com suas respectivas composições globais. 0 5 10 15 20 25 30 35 40 0 10 20 30 40 50 % m/m E TAN OL % m/m SULFATO DE AMÔNIO

Figura 1 – Diagrama de fases para o sistema etanol + sulfato de amônio.

3.2. Efeito do comprimento da linha de amarração e razão de volume das fases

Comprimento da linha de amarração: Para avaliar o efeito do comprimento da linha de amarração na partição das antocianinas da polpa de açaí, foram realizadas partições cujos valores de CLA foram de 34,65, 41,77, 54,24 e 50,24 % m/m. Segundo Asenjo e Andrews (2011), o aumento do CLA aumenta o teor de etanol e sulfato de amônio no sistema, o que reduz o conteúdo de água no mesmo tornando-o mais hidrofóbico, como mostrado na Tabela 1. De acordo com Wu et al. (2011) e Wu et al. (2014), as antocianinas particionam para a fase rica em etanol (fase topo) porque possuem afinidade com solventes polares, portanto, o aumento da concentração de etanol na fase topo faz com que ocorra um aumento da concentração de antocianinas na mesma, mas como observado na Figura 2 (a) isso não ocorreu. Houve um aumento da concentração de antocianinas na fase topo, seguido de

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uma queda nesses valores. Segundo Wu et al. (2011) e Wu et al. (2014), o aumento da concentração de etanol diminuiu o coeficiente de partição dos açúcares e aumentou o coeficiente de partição das antocianinas, como podemos observar na Figura 2 (c). Portanto, o CLA escolhido para estudar o efeito da razão de volume das fases foi o de 45,24%, que apresentou maior coeficiente de partição de antocianinas (2,30), menor concentração de açúcares na fase topo (246,19 mg/L) e maior rendimento de antocianinas na fase topo (74,76 % m/m), o que pode ser visto na Figura 2 (a) e (b).

Tabela 1 – Composição global e composição das fases em função do CLA

CLA (%m/m) Composição Global Composição Fase topo Composição Fase fundo Etanol (%m/m) Sulfato de amônio (%m/m) Etanol (%m/m) Sulfato de amônio (%m/m) Etanol (%m/m) Sulfato de amônio (%m/m) 35,65 25,2 17,5 39,70 7,07 11,66 27,42 41,77 26,4 17,9 43,84 5,43 9,89 29,76 45,24 27,2 18,0 45,94 4,72 9,04 30,87 50,24 28,4 18,3 49,16 3,77 7,85 32,36 (a) 34 36 38 40 42 44 46 48 50 6 8 10 12 14 16 CLA (% m/m) C A (mg/ L) 0 100 200 300 400 500 C S (mg/ L) (b) 34 36 38 40 42 44 46 48 50 20 30 40 50 60 70 80 CLA (% m/m) R A (% m/ m) 20 30 40 50 60 R S (% m/ m) (c) 34 36 38 40 42 44 46 48 50 1,5 1,6 1,7 1,8 1,9 2,0 2,1 2,2 2,3 CLA (% m/m) K A 0,56 0,58 0,60 0,62 0,64 0,66 0,68 0,70 K S

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Figura 2 – (a) efeito do CLA nas concentrações de antocianinas (CA) e açúcares (CS) (b) efeito do

CLA no rendimento de antocianinas (RA) e açúcares (RS); Símbolos (■ antocianinas fase topo, ■

antocianinas fase fundo, ■ açúcares fase topo, ■ açúcares fase fundo); (c) efeito do CLA nos

coeficientes de partição de antocianinas e açúcares; Símbolos (■ antocianinas, ■ açúcares)

Razão do volume das fases: De acordo com Wang et al. (2010), a fração mássica de etanol na fase topo aumenta com a adição de sulfato de amônio, o que podemos observar na Tabela 3. A Figura 3 (a) mostra que ocorreu um aumento na concentração de açúcares na fase fundo (de 351,16 para 710,44 mg/L) com o aumento de VR (de 0,23 para 7,77). Chandrasekhar e Raghavarao (2015), em seu estudo

de separação e concentração de antocianinas de jamelão em SAB composto por polietileno glicol e sulfato de magnésio, observaram que o aumento da VR aumentou o rendimento de antocianinas e

diminuiu os coeficientes de partição das antocianinas e dos açúcares. Isso pode ser observado na Figura 3 (b), onde o aumento de VR aumentou o rendimento de antocianinas na fase topo (de 36,41

para 86,66% m/m) e da Figura 3 (c), cujo aumento de VR causou diminuição no coeficiente de

partição das antocianinas (de 2,60 para 0,83) e no coeficiente de partição dos açúcares (de 0,89 para 0,50).

Tabela 3 – Composição global e composição das fases da VR

VR Composição Global Composição Fase topo Composição Fase fundo Etanol (%m/m) Sulfato de amônio (%m/m) Etanol (%m/m) Sulfato de amônio (%m/m) Etanol (%m/m) Sulfato de amônio (%m/m) 7,77 38,74 9,66 39,71 7,07 11,41 27,75 2,08 31,87 14,56 40,24 6,84 10,98 28,32 0,56 21,89 21,62 41,20 6,40 10,51 28,95 0,23 15,79 25,81 41,73 6,23 10,19 29,37 (a) 0 2 4 6 8 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 VR C A (mg/ L) 200 300 400 500 600 700 C S (mg/ L) (b) 0 2 4 6 8 10 20 30 40 50 60 70 80 90 VR R A (% m/ m) 10 20 30 40 50 60 70 R S (% m/ m)

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(c) 0 2 4 6 8 0,5 1,0 1,5 2,0 2,5 3,0 VR K A 0,4 0,5 0,6 0,7 0,8 0,9 1,0 K S

Figura 3 – (a) efeito do VR nas concentrações de antocianinas (CA) e açúcares (CS) (b) efeito do

VR no rendimento de antocianinas (RA) e açúcares (RS); Símbolos (■ antocianinas fase topo, ■

antocianinas fase fundo, ■ açúcares fase topo, ■ açúcares fase fundo); (c) efeito do VR nos

coeficientes de partição de antocianinas e açúcares; Símbolos (■ antocianinas, ■ açúcares)

3.3. Perfil de antocianinas na polpa de açaí após extração em SAB

O CLA escolhido para a avaliação do das antocianinas foi o de 45,24% m/m. A Figura 4 (a) e (b) mostra os cromatrogramas da polpa de açaí e da polpa de açaí após extração em SAB, respectivamente. Foi identificado a ciadinida-3-O-rutinosídeo com íon molecular m/z 595 e fragmentos m/z 287 e 449. A cianidina-3-O-rutinosídeo foi identificada em polpa de açaí liofilizada por Gôuvea et al. (2010) e em morus, por Wu et al. (2011). Estudos como os de Gallori et al.(2004), Lichtenthäler et al. (2005) e De Rosso et al. (2008) identificaram as principais antocianinas presentes no açaí como cianidina-3-O-glicosídeo e cianidina-3-O-rutinosídeo. Segundo De Rosso et al. (2008), a cianidina-3-O-rutinosídeo representa 88% do conteúdo total de antocianinas e a cinidina-3-O-glicosídeo, representa 12%. Não foi detectada a cianidina-3-O-glicosídeo na polpa de açaí.

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Figura 4 – (a) Cromatograma do LC-MS da polpa de açaí; (b) cromatograma do LC-MS da polpa de açaí após extração em SAB – fase topo e (c) espectro de massa no modo positivo da

cianidina-3-O-rutinosídeo da polpa de açaí após extração em SAB – fase topo

4. CONCLUSÃO

A extração e identificação de antocianina da polpa comercial de açaí foram realizadas nesse estudo. A maior diferença entre coeficiente de partição de antocianinas e de açúcares foi alcançada no CLA de 45,24% m/m e razão de volume das fases de 1,29. Nessas condições, o rendimento de antocianinas na fase topo (fase rica em etanol) foi de 74,76% m/m e o rendimento de açúcares na fase fundo (fase rica em sulfato de amônio) foi de 56,97% m/m. A análise no LC-MS identificou a antocianina cianidina-3-O-rutinosídeo da polpa de açaí antes e após partição em sistema aquoso bifásico formado por etanol e sulfato de amônio.

5. REFERÊNCIAS

ASENJO, J. A.; ANDREWS, B. A. Aqueous two-phase systems for protein separation: A perspective. Journal of Chromatography A, v. 1218, p. 8826– 8835, 2011.

BRITO, E. S.; ARAÚJO, M. C. P.; ALVES, R. E.; CARKEET, C.; CLEVIDENCE, B. A.; NOVOTNY, J. A. Anthocyanins present in selected tropical fruits: acerola, jambolão, jussara, and guajiru. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 55, p. 9389–9394, 2007.

CHANDRASEKHAR, J.; RAGHAVARAO, K. S. M.S. Separation and concentration of anthocyanins from jamun: an integrated process. Chemical Engineering Communications, v. 202, p. 1368-1379, 2015.

DE ROSSO, V. V.; HILLEBRANDB, S.; MONTILLAB, E. C.; BOBBIO, F. O.; WINTERHALTERB, P.; MERCADANTEA, A. Z. Determination of anthocyanins from acerola (Malpighia emarginata DC.) and açai (Euterpe oleracea Mart.) by HPLC–PDA–MS/MS. Journal of Food Composition and Analysis, v. 21, p. 291–299, 2008.

DUBOIS, M., GILLES, K. A., HAMILTON, J. K., REBERS, P. A., SMITH,F. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Analytical Chemistry,v. 8,n. 3, p. 350-356, 1956.

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FULEKI, T.; FRANCIS, F. J. Quantitative methods for anthocyanins. 2. Determination of total anthocyanin and degradation index for cranberry juice. Journal of Food Science, v. 33, p. 78-83, 1968.

GALLORI, S.; BILIA, A. R. ; BERGONZI, M. C.; BARBOSA, W. L. R.; VINCIERI, F. F. Polyphenolic constituents of fruit pulp of Euterpe oleracea Mart. (Açaí palm). Chromatographia, v. 59, n.11/12, p. 739-743, 2004.

GOUVÊA, A. C. M. S.; ARAÚJO, M. C. P.; SCHULZ, D. F.; PACHECO, S.; GODOY, R. L. O.; CABRAL, L. M. C. Anthocyanins standards (glucoside and cyanidin-3-O-rutinoside) isolation from freeze-dried açaí (Euterpe oleraceae Mart.) by HPLC. Ciência e Tecnologia de Alimentos, v. 32(1),p. 43-46, 2010.

HANAMURA, T.; HAGIWARA, T.; KAWAGISHI, H. Structural and functional characterization of polyphenols isolated from acerola (Malpighia ermanginata D.C.) fruit. Bioscience, Biotechonology and Biochemistry, v. 69, n. 2, p. 280-286, 2005.

HE, J.; GIUSTI, M. M. Anthocyanins: natural colorants with health-promoting properties. Annual Review of Food Science Technology, v. 1, p. 163-87, 2010.

LEE, J. H.; CHOUNG, M. G. Identification and characterization of anthocyanins in the antioxidant activity-containing fraction of Liriope platyphylla fruits. Food Chemical, v. 127, p. 1686-1693, 2011.

LICHTENTHÄ LER, R.; RODRIGUES, R. B.; MAIA, J. G. S.; PAPAGIANNOPOULOS, M.; FABRICIUS, H.; MARX, F. Total oxidant scavenging capacities of Euterpe oleracea Mart. (Açaí) fruits. International Journal of Food Sciences and Nutrition, v. 56, n. 1, p. 53-64, 2005. PACHECO-PALENCIA, L. A.; DUNCAN, C. H. E.; TALCOT, S. T. T., Phytochemical composition and thermal stability of two commercial açai species, Euterpe oleracea and Euterpe precatoria. Food Chemistry,v. 115, p. 1199–1205, 2009.

PASCUAL-TERESA, S.; MORENO, D. A.; VIGUERA, C. G. Flavanols and anthocyanins in cardiovascular health: a review of current evidence. International Journal Molecular Science, v. 11, p. 1679-1703, 2010.

WANG, Y. W.; YAN, Y.; HU, S.; HAN, J.; XU, X. Phase diagrams of ammonium sulfate + ethanol/1-propanol/2-propanol + water aqueous two-phase systems at 298.15 k and correlation. Journal of Chemical Engineering Data, v. 55, p. 876-881, 2010.

WU, X.; LIANG, L.; ZOU, Y.; ZHAO, T.; ZHAO, J.; LI, F.; YANG, L. Aqueous two-phase extraction, identification and antioxidant activity of anthocyanins from mulberry (Morus atropurpurea Roxb.). Food Chemistry, v. 129, p. 443–453, 2011.

WU, Y.; WANG, Y; ZHANG , W.; HAN, J.; LIU, Y.; HU, Y.; NI, L. Extraction and preliminary purification of anthocyanins from grape juice in aqueous two-phase system. Separation and Purification Technology, v. 124, p. 170–178, 2014.

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