DORMÊNCIA
Existem algumas espécies cujas sementes não germinam quando as condições climáticas são normalmente favoráveis para o crescimento das plântulas. Estas sementes são denominadas de dormentes (Egley, 1986) e têm a sua germinação distribuída no tempo (Carvalho & Nakagawa, 1983; Popinigis, 1977), prejudicando a obtenção de um stand ou favorecendo a perpetuação de espécies cujo interesse agrícola ainda não foi estabelecido.
O solo é o local onde existem as maiores quantidades de sementes armazenadas e aguardando o momento propício para a germinação (Egley, 1986). A germinação ou a continuação da dormência vai depender das condições microclimáticas do solo ou mesmo da própria semente.
São reconhecidos dois tipos de dormência e que são a dormência primária e a secundária (Carvalho & Nakagawa, 1983; Popinigis, 1977 e Mayer & Poljakoff-Mayber, 1975). A primária já se encontra instalada por ocasião da colheita. Ela impede a viviparidade (Popingis, 1977) enquanto que a secundária ocorre após a superação da primária (Karsen, 1980/81) e pode ser provocada por condições adversas durante o início do processo germinativo (Laboriau, 1983; Karsen, 1980/81; Popinigis, 1977; Mayer & Poljakoff-Mayber, 1975).
As causas possíveis da dormência são os embriões imaturos ou rudimentares, a impermeabilidade à água e ao oxigênio, as restrições mecânicas, o embrião dormente e as combinações destas causas (Popinigis, 1977; Mayer & Poljakoff-Mayber, 1975). Os embriões rudimentares são encontrados em orquídeas. Observa-se uma massa de células não diferenciadas no centro da estrutura (Popinigis, 1977) cujo desenvolvimento depende de condições especiais, inclusive a simbiose com fungos do gênero Aspergillus e Penicillum.
Sementes impermeáveis à água são constituídas de um tegumento estruturado por células em paliçadas, cobertas por uma cutícula e reforçadas na parte inferior por células denominadas de osteosclereideos. O controle da perda de água se dá pelo hilo, cujas células da camada de contrapaliçada, ao absorverem à água obstruem a fissura hilar, impedindo a reidratação (Carneiro,
1980; Popinigis, 1977; Hyde, 1954). Para que a impermeabilidade à água seja superada, os métodos de escarificação têm proporcionado um melhor desempenho germinativo dos lotes. A escarificação pode ser feita com o uso de equipamentos constituídos de partes abrasivas (Carneiro, 1980; Neme, 1966) e pelo atrito das sementes contra superfícies ásperas (Almeida, 1979; Aranovich & Ribeiro, 1965). Na regulagem dos escarificadores é necessário considerar as rotações no eixo do cilindro, o poder abrasivo das lixas, o tempo de escarificação, o volume de sementes em relação ao volume do cilindro além da espécie vegetal cujas sementes estão sendo escarificadas (Carneiro et alii, 1987; Carneiro, 1980; Neme, 1966). Os resultados da escarificação mecânica de sementes de calopogônio, em laboratório, podem ser visto na tabela 8.
TABELA 8. Médias da percentagem de ocorrências germinativas, obtidas de acordo com as rotações no eixo do cilindro, as lixas, as rotações no eixo e os tempos de duração da escarificação, no teste padrão de germinação.
Rotações Lixas (nº) Tempo (seg)
rpm 40 120 60 120
640 67,64 94,83 79,72 83,39 1000 59,26 63,69 72,55 49,80 1400 27,36 32,19 34,71 24,93
C. V. 30,10
A escarificação mecânica rompe a camada de células do estrofíolo, permitindo que ocorra a entrada de água por este local (Hyde, 1954). Existe a nível de mercado, um escarificador dimensionado para sementes de soja perene
Glycine javanica L. e que opera em fluxo contínuo permitindo a escarificação de
qualidade de sementes de outras leguminosas forrageiras necessitam ser investigados. O Laboratório de Análise de Sementes da Universidade Estadual de Maringá dispõe de uma unidade que está à disposição de interessados para maiores esclarecimentos.
Outra possibilidade é o uso do ácido sulfúrico, cuja concentração e a duração do tratamento tem influencia no poder germinativo, conforme pode ser visto na Tabela 9.
TABELA 9. - Médias da percentagem de ocorrências germinativas de sementes de calopogônio, obtidas de acordo com as concentrações de ácido sulfúrico e tempo de tratamento, no teste padrão de germinação.
Concentração Tempo (min.)
N 15 30 60
36 81,83 75,79 38,95 18 43,97 71,06 79,09 09 19,21 15,26 20,18
C. V. 36,68 N – Concentração da solução, em Normalidade
O ácido sulfúrico dissolve a camada da contra paliçada, permitindo a embebição (Burns, 1959). Posteriormente, o tratamento das sementes com uma solução concentrada de carbonato de cálcio ajuda as eliminar o ácido que permanece junto ao tegumento e que pode prejudicar o desenvolvimento das plântulas. A principal dificuldade no uso do ácido sulfúrico se deve aos resíduos produzidos durante a maceração. Falta um sistema mais tecnificado para a sua utilização. O tratamento de maiores quantidades pode se tornar um problema, inclusive ambiental.
O tratamento com soda cáustica (20%) tem proporcionado bons resultados para calopogonio, centrosema, leucena, siratro, puerária e estilozantes. O tempo de tratamento varia de uma hora para a leucena a cinco minutos para estilozantes (Seiffert, 1982).
A água quente também tem sido utilizada e o binômio tempo/temperatura da
água tem de ser considerado. Normalmente, a temperatura de 800C é a que
melhora a permeabilidade, mas com baixa eficiência (Carneiro, 1985; Seiffert,
1982). A nível de campo é o método mais fácil de ser executado. Acima de 800C
os efeitos são prejudiciais à qualidade fisiológica (Gray, 1962).
Algumas espécies produzem sementes impermeáveis ao oxigênio. É o caso de Brachiaria decumbens Stapf (Whiteman & Mendra, 1982) cuja remoção da lema, palea e glumas, proporcionou até 96 % de germinação contra 7 % no caso das intactas. Além disso, a retirada destas estruturas permitiu a obtenção de um máximo de germinação em seis dias e não vinte e um, normalmente recomendados pelas regras de análise. Os resultados de germinação de sementes intactas e extraídas das estruturas podem ser vistos na Tabela 10.
TABELA 10 - Médias de percentagem de ocorrências germinativas obtidas com e sem a presença da cobertura protetora das sementes, ao sexto, décimo e vigésimo dias após a montagem do teste padrão de germinação.
Dias após a montagem
Cobertura 6º 13º 26º
Presença 00,28 01,03 01,03 Ausência 95,41 95,41 95,41
Juntamente com a impermeabilidade ao oxigênio, observa-se a restrição mecânica, comum em Paspalum notatum Flugge (Popinigis, 1977) e na própria
Brachiaria decumbens Stapf (Whiteman & Mendra, 1982), conforme Tabela 11.
TABELA 11 - Imersão de sementes de Brachiaria decumbens Stapf em 1M de H2O2.
Tratamento Germinação (%)
Controle 30,70 24 h em H2O2 50,40
48 h em H2O2 54,80
O aumento do tempo de exposição à maior pressão de oxigênio não proporcionou aumento na germinação das sementes de Braquiaria decumbens Stapf.
No caso de embriões dormentes, a sede está no próprio embrião. É o resultado de condições fisiológicas, ainda não totalmente elucidadas. Ocorre a presença de inibidores químicos (POPINIGIS, 1977), onde a coumarina é considerada como sendo um inibidor natural de germinação (Mayer & Poljakoff-Mayber, 1975). Outro importante inibidor é o ácido abscisico cuja presença pode ser detectada em sementes e frutos. A concentração necessária para provocar efeitos inibitórios está entre 5 e 100 ppm (Mayer & Poljakoff-Mayber, 1975).
Um produto bastante utilizado, também em laboratório, é o nitrato de
potássio (KNO3) a 0,2 %. Os resultados são excelentes para a germinação de
Brachiaria humidícola (Rendle) Schweick (Carneiro, 1985). A utilização de
lâmpadas fluorescentes do tipo luz do dia, em salas de germinação, atende àquelas espécies que necessitam de luz para a germinação. São lâmpadas facilmente adquiridas no mercado.
Antes do teste padrão de germinação, tem sido utilizado água aquecida à 40º C durante 48 horas para o caso das variedades de Oryza sativa L. (IRGA 408, 409 e CICA 9) e o pré-resfriamento a 5 ou 10 ºC para as variedades de Triticum
A dormência, na maioria das vezes, é causada por mais de um mecanismo. Sementes de estilozantes (Burin, 1979) e capim braquiária (Whiteman & Mendra, 1982) possuem dormência embrionária quando novas e impermeabilidade do tegumento e restrições mecânicas, respectivamente, quando mais velhas. No caso de grandes culturas e gramíneas forrageiras, não é comum fazer tratamento para o plantio. O que normalmente é feito é a espera até a época normal de semeadura para que ocorram transformações fisiológicas pós-colheita nas sementes permitindo a germinação normal. O elevado grau de impurezas contidas nos lotes de sementes de gramíneas, impedem que tratamentos de sucesso em laboratórios possam ser utilizados para a semeadura a campo.
Finalmente, deve ser lembrado que o local de produção das sementes e as condições edafoclimáticas podem influenciar no grau de dormência existente em cada lote. Por isso, é recomendável uma averiguação preliminar da percentagem de ocorrências germinativas para uma posterior recomendação de quebra de dormência. Antes da utilização de um determinado método, recomenda-se verificar os seus efeitos na percentagem de ocorrências germinativas e no aparecimento de sementes mortas ou trincadas por efeito de danos mecânicos.
