BIOTECNOLOGIA BACHARELADO EM
Métodos de Extração e Purificação
de
Ácidos Nucleicos
Reação em cadeia da polimerase (PCR); Clonagem;
Transcritos (RT)
Digestão com enzimas de restrição; Construção de bibliotecas genômicas; Diagnósticos;
Análises forenses, clínicas, de solo e ambientais.
Aplicações na Biologia Molecular?
Quantidade Qualidade – pureza e integridade 02 A T C C G T A C G C Nucleotídeos Sequências específicas
Ligação fosfodiéster
Características físico-químicas
RNA DNA 03Extração e Isolamento
de
DNA
04Tipos de DNA
Eucariotos: DNA nuclear; DNA mitocondrial; DNA cloroplastos; Procariotos: DNA genômico; DNA plasmidial; 05Etapas básicas p/ extração de DNA
1. Lise celular → métodos físicos, químicos e enzimáticos.
2. Remoção de lipídios, membrana e restos celulares → detergentes /
centrifugação.
3. Desproteinização do extrato celular → proteases.
4. Remoção de RNA → nucleases (RNases).
5. Precipitação/agregação/eluição → DNA
6. Quantificação e análise
06
Escolha do método de extração de DNA
Critérios:
Tipo de material biológico; Eficiência do método de extração; Rendimento → processos downstream; Capacidade de remoção de contaminantes; Qualidade e pureza;
Custo; Tempo.
07
Amostras para a extração de DNA
Cuidados: Escolha Manuseio Limpeza Acondicionamento Estocagem Uso 08
Equipamentos básicos
09
Principais componentes utilizados nos
protocolos de extração do DNA
Soluções tamponantes:
• Lise / extração • Solubilização / Manutenção Inibidores de desoxirribonucleases Detergentes Proteases Ribonucleases Fenol Clorofórmio Álcoois Sais e agentes caotrópicos Sílica
10
Tampões
Lise e extração:
• TE (Tris-HCl 10 mM, pH 8.0, NaCl 100 mM, EDTA 1 mM) • STES ou STET→ SDS ou Triton X-100 (0.5-5%)
Solubilização:
• Tampão TE ou H2O ultrapura estéril
pH ideal:
• Manutenção → integridade molecular • Estabilidade
• Inibição → desoxirribonucleases
11
EDTA
Ácido etileno diaminotetracético → agente quelante
–Cátions bivalentes → Ca2+ e Mg2+
–Nucleases, metaloproteases, serino e cisteinoproteases. – Estável
–< 1 mM
Detergentes
Tampão STE dodecil ou laurilsulfato de sódio (SDS) ou Triton X-100Lise → permeabilizando / desarranjando a membrana
[5-10%]
Interagem e removem proteínas → DNA
Sais
•
Acetato de sódio /amônio e Hidróxido/Cloreto de sódio
–Íons + (Na) → neutralizam cargas – (grupos P). –Repulsão → agregação molecular
–Neutralização/estabilização de cargas → ↓ solubilidade em H2O
–Dissociação de proteínas 14
Proteases
Proteinase K → serino-protease: Nucleases 1974 → Tritirachim album K → Keratin ligação peptídica adjacente→ grupo carboxílico de aa:
28,9 KDa
Ca2+ → estabilidade enzimática
pH 8,0 (Estável → 4-12) ↑Atividade 50-60oC
Compatibilidade: SDS, EDTA, Triton; Características: 15 Polipeptídeo Fragmentos R = aromático ou alifático
Ribonucleases
Ligações fosfodiéster doRNA hibridizado DNA (RNA:DNA duplex) 16 4 pb → atividade catalítica. Mg+ . 17,9 KDa. 1 folha β e 4 hélices . 37 °C. Estável ↑ temperaturas. pH → 7,6 - 9,1.
Rnases H comerciais → E. coli.
Características:
Ribonucleases
17
Ribonuclease A (Rnase A) → Ligações fosfordiéster do RNA:
• 13,7 KDa;
• Íons →atividade catalítica • 60 °C. (Estável → 100 °C) • pH 7,6. (Atividade → pH 6 à 10) • Extração e isolamento de DNA; • Rnases A comerciais → pancreas bovino. Características:
Fenol
•Desnaturação/Precipitação → Proteínas •Precipitação → Lipídeos
•DNA → fase aquosa (pH neutro/básico) •Tamponado (pH 8) → Danos pela ação oxidante
Separação DNA/RNA Fase aquosa Interfase Fase orgânica 18 Proteínas Proteínas Lipídeos
Clorofórmio
•Desnaturação/precipitação → Proteínas, lipídios, polissacarídeos • Somente clorofórmio → Remoção do fenol residual
• Uso em conjunto → Fenol/Clorofórmio/Álcool isoamílico (25:24:1 v/v)
19 Proteína+DNA
Precipitado
Álcoois
Álcool isoamílico
• Desidratação
• Contaminantes → fase orgânica • Redução → espuma
Etanol
• Desidratação • DNA → ↓ Solubilidade. • ↓ temperatura → ↓ Solubilidade• Etanol 70% → Contaminantes residuais (ex.:fenol)
Polifenois β-mercaptoetanol ou Ditiotreitol Polivinilpirrolidona (PVP) Polivinilpolipirrolidona (PVPP)
Antioxidantes
21Passos básicos da extração de DNA
1. Lise celular → métodos físicos, químicos e enzimáticos. 2. Remoção de lipídios, membrana e restos celulares 3. Desproteinação do extrato celular
4. Remoção de RNA 5. Precipitação/agregação 6. Eluição/solubilização → DNA
7. Quantificação e análise
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Métodos de lise mais utilizados para E. coli
•
Lise enzimática
– Lisozima (250 U/L)→ 20-30 min, 37 oC.
– Tampão Tris-HCl 10 mM pH 8.0, NaCl 100 mM, EDTA 1 mM – SDS ou Triton X-100 5%
•
Lise enzimática + Lise mecânica
•
Lise mecânica
– Ultrassom→ Pulsos alternados (10-15 seg)
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Passos básicos da extração de DNA
1. Lise celular → rompimento da célula para acessar o DNA (métodos físicos,químicos e enzimáticos).
2. Remoção de lipídios, membrana e restos celulares 3. Desproteinação do extrato celular
4. Remoção de RNA 5. Precipitação/agregação 6. Eluição/solubilização → DNA 7. Quantificação e análise Método do Fenol/Clorofórmio 24
Passos básicos da extração de DNA
1. Lise celular → rompimento da célula para acessar o DNA (métodos físicos,químicos e enzimáticos).
2. Remoção de lipídios, membrana e restos celulares 3. Desproteinação do extrato celular
4. Remoção de RNA 5. Precipitação/agregação
6. Eluição/solubilização → DNA
7. Quantificação e análise
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Solubilização e armazenagem do DNA
•
Após a remoção do álcool
–Secagem do DNA→ T.A.
•
Água ultrapura ou Tampão TE
–Tampão TE→ Tris-HCl 100 mM, pH 7,4, EDTA 1 mM – Estéril / DNAse-free → livre de contaminantes – Colunas de desalinização
•
Armazenamento
–Freezer → - 20 oC
26
Kits comerciais para a extração
de DNA
27
Extração de DNA (E. coli) - convencional
1) Clareamento da cultura → Tampão STE + centrifugação2) Lise celular →Ressuspensão (pellet) tampão STE c/ SDS + lisozima (10 mg/mL) 3) Adição → proteinase K (20 mg/mL).
4) Incubação → 37°C (2-3 H) ou 56 a 65°C (1 h) sem agitação. Centrifugação. 5) Tratamento c/ RNAse A → 37°C
6) Adição → Feno/clorofórmio/álcool isoamílico (25:24:1), 7) Coleta e transferência da Fase aquosa → DNA
8) Adição → solução NaCl 5 M ou acetato de sódio 3 M (pH 5,2) 9) Precipitação c/ isopropanol → -20°C por 3 h,
10)Centrifugação → à 12000×g por 10 mim; 11) Lavagem do precipitado → Etanol 70% 12) Reidratação → agua estéril ou tampão TE
Referência: Sambrook and Russel, 2001
Tempo total
> 4 horas
Escolha do kit de Extração de DNA
Critérios:
Origem do material biológico; Método de preparação da amostra; Intenção de uso→ processos downstream; Quantidade da amostra; Rendimento; Automatização do processo; Custo; Tempo; Simplicidade do processo. 29
Kits de extração de DNA baseados na
extração orgânica
Solventes → fenol, colorofórmio, etanol Sais ou agentes caotrópicos → [NaCl] ↑ Resíduos → afetar processos downstreams Easy-DNA (Invitrogen)
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Extração de DNA (E. coli) - Kit
Wizard Genomic DNA Purification kit Lise celular
Precipitação de proteínas e remoção de macromolécula Precipitação do DNA Remoção do etanol e Reidratação Clareamento /peletização
Tempo total
~ 50 min
31Kits de extração baseados em matrizes de
sílica
Adsorção → membranas/superfícies/partículas de sílica Colunas mini-spin
Vantagens → rapidez, rendimento, automatização
DNeasy Mini Spin Column (Qiagen)
Matrizes de Sílica - Princípio
Ponte catiônica[Na
+]↑
pH<7Ligação
Eluição
[Na
+]↓
33DNeasy Kit (Mini spin Colunm)
DNA bacteriano Lise celular, homogenização e adição do etanol Tempo total ~ 40 min Ligação do DNA a membrana DNeasy (Mini spin colunm)
Lavagem da coluna
Eluição do DNA
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Kits baseados na separação magnética
Partículas/membrana → anticorpos e grupos funcionaisEtanol ou isopropanol
Vantagens → rapidez, rendimento, automatização
Magnetic Beads Genomic DNA Extraction Kit (Geneaid)
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Magnetic Beads Genomic DNA extraction
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Lise celular Interação
Remoção Campo magnético Eluição Análise da purificação
Kits de extração baseados na troca iônica
Grupos P (-) → matriz cromatográfica (+)Gradiente salino → [NaCl] Isolamento de plasmídios
PureLink® HiPure Plasmid DNA Purification kit (Invitrogen)
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Extração de DNA plasmidial
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Que fator é determinante para diferenciar a extração do DNA gênômico da extração do DNA plamidial em bactérias?
Pergunta
A intensidade do método de lise:
Total Parcial
DNA plasmidial DNA genômico
DNA plasmidial
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Kits utilizados para extração do DNA
plasmidial e suas vantagens
Extração de RNA
41Tipos de RNA
42Extração de RNA
Cuidados básicos: 43Passos básicos para a extração de RNA
1. Processamento e lise celular ↓ Temperatura;2. Inativação das nucleases → agentes químicos e desnaturação das proteínas com fenol e clorofórmio;
3. Remoção dos restos celulares e precipitação das proteínas desnaturadas por centrifugação.
4. Recuperação dos ácidos nucleicos por precipitação com etanol;
5. Fracionamento do DNA e RNA por solubilização diferencial sob alta concentração de sal. Vários métodos empregam a precipitação seletiva usando cloreto de lítio (LiCl).
Métodos para a extração de RNA
1. Extração orgânica com fenol/clorofómio2. Extração de RNA o reagente Trizol (Invitrogen®)
3. Extração de RNA utilizando o reagente Brazol® (LGC Biotecnologia) 4. Extração de RNA utilizando os kits de purificação como: Wizard
Isolation RNA System (Promega®)
45
Extração de RNA com fenol
46
Solução monofásica →Fenol-isotiocianato de guanidina Clorofómio; Isopropanol; H2O RNase-free
TRIZOL
47 Trizol (1 mL) 50 mg tecidos/células Maceração Tratamento com protease e DNaseExtração de RNA com TRIZOL
Coluna de sílica – mini-spin Ponte catiônica
[Na
+]↑
pH<7
Ligação
Eluição
[Na
+]↓
RNAExtração de RNA com Kits
51
Solubilização e armazenagem do RNA
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O que diferencia a purificação de DNA e RNA em colunas de sílica já que o princípio de ligação a matriz é o mesmo?
Perguntas
O tratamento prévio com DNases e RNases: