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Aula- Extração e purificação de ácidos nucleicos (2017)

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(1)

BIOTECNOLOGIA BACHARELADO EM

Métodos de Extração e Purificação

de

Ácidos Nucleicos

 Reação em cadeia da polimerase (PCR); Clonagem;

 Transcritos (RT)

Digestão com enzimas de restrição; Construção de bibliotecas genômicas; Diagnósticos;

Análises forenses, clínicas, de solo e ambientais.

Aplicações na Biologia Molecular?

Quantidade Qualidade – pureza e integridade 02 A T C C G T A C G C Nucleotídeos Sequências específicas

Ligação fosfodiéster

Características físico-químicas

RNA DNA 03

Extração e Isolamento

de

DNA

04

(2)

Tipos de DNA

Eucariotos: DNA nuclear; DNA mitocondrial; DNA cloroplastos; Procariotos: DNA genômico; DNA plasmidial; 05

Etapas básicas p/ extração de DNA

1. Lise celular → métodos físicos, químicos e enzimáticos.

2. Remoção de lipídios, membrana e restos celulares → detergentes /

centrifugação.

3. Desproteinização do extrato celular → proteases.

4. Remoção de RNA → nucleases (RNases).

5. Precipitação/agregação/eluição → DNA

6. Quantificação e análise

06

Escolha do método de extração de DNA

Critérios:

Tipo de material biológico; Eficiência do método de extração; Rendimento → processos downstream; Capacidade de remoção de contaminantes; Qualidade e pureza;

Custo; Tempo.

07

Amostras para a extração de DNA

Cuidados: Escolha Manuseio Limpeza Acondicionamento Estocagem Uso 08

(3)

Equipamentos básicos

09

Principais componentes utilizados nos

protocolos de extração do DNA

 Soluções tamponantes:

• Lise / extração • Solubilização / Manutenção  Inibidores de desoxirribonucleases  Detergentes  Proteases  Ribonucleases  Fenol  Clorofórmio  Álcoois  Sais e agentes caotrópicos

 Sílica

10

Tampões

 Lise e extração:

• TE (Tris-HCl 10 mM, pH 8.0, NaCl 100 mM, EDTA 1 mM) • STES ou STET→ SDS ou Triton X-100 (0.5-5%)

 Solubilização:

• Tampão TE ou H2O ultrapura estéril

 pH ideal:

• Manutenção → integridade molecular • Estabilidade

• Inibição → desoxirribonucleases

11

EDTA

Ácido etileno diaminotetracético → agente quelante

–Cátions bivalentes → Ca2+ e Mg2+

–Nucleases, metaloproteases, serino e cisteinoproteases. – Estável

–< 1 mM

(4)

Detergentes

Tampão STE dodecil ou laurilsulfato de sódio (SDS) ou Triton X-100

Lise → permeabilizando / desarranjando a membrana

[5-10%]

Interagem e removem proteínas → DNA

Sais

Acetato de sódio /amônio e Hidróxido/Cloreto de sódio

–Íons + (Na) → neutralizam cargas – (grupos P). –Repulsão → agregação molecular

–Neutralização/estabilização de cargas → ↓ solubilidade em H2O

–Dissociação de proteínas 14

Proteases

Proteinase K → serino-protease:  Nucleases 1974 → Tritirachim album  K → Keratin

 ligação peptídica adjacente→ grupo carboxílico de aa:

 28,9 KDa

 Ca2+ → estabilidade enzimática

 pH 8,0 (Estável → 4-12)  ↑Atividade 50-60oC

 Compatibilidade: SDS, EDTA, Triton; Características: 15 Polipeptídeo Fragmentos R = aromático ou alifático

Ribonucleases

Ligações fosfodiéster do

RNA hibridizado DNA (RNA:DNA duplex) 16  4 pb → atividade catalítica.  Mg+ .  17,9 KDa.  1 folha β e 4 hélices .  37 °C. Estável ↑ temperaturas.  pH → 7,6 - 9,1.

 Rnases H comerciais → E. coli.

Características:

(5)

Ribonucleases

17

Ribonuclease A (Rnase A) → Ligações fosfordiéster do RNA:

• 13,7 KDa;

• Íons →atividade catalítica • 60 °C. (Estável → 100 °C) • pH 7,6. (Atividade → pH 6 à 10) • Extração e isolamento de DNA; • Rnases A comerciais → pancreas bovino. Características:

Fenol

•Desnaturação/Precipitação → Proteínas •Precipitação → Lipídeos

•DNA → fase aquosa (pH neutro/básico) •Tamponado (pH 8) → Danos pela ação oxidante

Separação DNA/RNA Fase aquosa Interfase Fase orgânica 18 Proteínas Proteínas Lipídeos

Clorofórmio

•Desnaturação/precipitação → Proteínas, lipídios, polissacarídeos • Somente clorofórmio → Remoção do fenol residual

• Uso em conjunto → Fenol/Clorofórmio/Álcool isoamílico (25:24:1 v/v)

19 Proteína+DNA

Precipitado

Álcoois

Álcool isoamílico

• Desidratação

• Contaminantes → fase orgânica • Redução → espuma

Etanol

• Desidratação • DNA → ↓ Solubilidade. • ↓ temperatura → ↓ Solubilidade

• Etanol 70% → Contaminantes residuais (ex.:fenol)

(6)

Polifenois  β-mercaptoetanol ou Ditiotreitol  Polivinilpirrolidona (PVP)  Polivinilpolipirrolidona (PVPP)

Antioxidantes

21

Passos básicos da extração de DNA

1. Lise celular → métodos físicos, químicos e enzimáticos. 2. Remoção de lipídios, membrana e restos celulares 3. Desproteinação do extrato celular

4. Remoção de RNA 5. Precipitação/agregação 6. Eluição/solubilização → DNA

7. Quantificação e análise

22

Métodos de lise mais utilizados para E. coli

Lise enzimática

– Lisozima (250 U/L)→ 20-30 min, 37 oC.

– Tampão Tris-HCl 10 mM pH 8.0, NaCl 100 mM, EDTA 1 mM – SDS ou Triton X-100 5%

Lise enzimática + Lise mecânica

Lise mecânica

– Ultrassom→ Pulsos alternados (10-15 seg)

23

Passos básicos da extração de DNA

1. Lise celular → rompimento da célula para acessar o DNA (métodos físicos,

químicos e enzimáticos).

2. Remoção de lipídios, membrana e restos celulares 3. Desproteinação do extrato celular

4. Remoção de RNA 5. Precipitação/agregação 6. Eluição/solubilização → DNA 7. Quantificação e análise Método do Fenol/Clorofórmio 24

(7)

Passos básicos da extração de DNA

1. Lise celular → rompimento da célula para acessar o DNA (métodos físicos,

químicos e enzimáticos).

2. Remoção de lipídios, membrana e restos celulares 3. Desproteinação do extrato celular

4. Remoção de RNA 5. Precipitação/agregação

6. Eluição/solubilização → DNA

7. Quantificação e análise

25

Solubilização e armazenagem do DNA

Após a remoção do álcool

–Secagem do DNA→ T.A.

Água ultrapura ou Tampão TE

–Tampão TE→ Tris-HCl 100 mM, pH 7,4, EDTA 1 mM – Estéril / DNAse-free → livre de contaminantes – Colunas de desalinização

Armazenamento

–Freezer → - 20 oC

26

Kits comerciais para a extração

de DNA

27

Extração de DNA (E. coli) - convencional

1) Clareamento da cultura → Tampão STE + centrifugação

2) Lise celular →Ressuspensão (pellet) tampão STE c/ SDS + lisozima (10 mg/mL) 3) Adição → proteinase K (20 mg/mL).

4) Incubação → 37°C (2-3 H) ou 56 a 65°C (1 h) sem agitação. Centrifugação. 5) Tratamento c/ RNAse A → 37°C

6) Adição → Feno/clorofórmio/álcool isoamílico (25:24:1), 7) Coleta e transferência da Fase aquosa → DNA

8) Adição → solução NaCl 5 M ou acetato de sódio 3 M (pH 5,2) 9) Precipitação c/ isopropanol → -20°C por 3 h,

10)Centrifugação → à 12000×g por 10 mim; 11) Lavagem do precipitado → Etanol 70% 12) Reidratação → agua estéril ou tampão TE

Referência: Sambrook and Russel, 2001

Tempo total

> 4 horas

(8)

Escolha do kit de Extração de DNA

Critérios:

 Origem do material biológico;  Método de preparação da amostra;  Intenção de uso→ processos downstream;  Quantidade da amostra;  Rendimento;  Automatização do processo; Custo; Tempo;  Simplicidade do processo. 29

Kits de extração de DNA baseados na

extração orgânica

Solventes → fenol, colorofórmio, etanol Sais ou agentes caotrópicos → [NaCl] ↑ Resíduos → afetar processos downstreams Easy-DNA (Invitrogen)

30

Extração de DNA (E. coli) - Kit

Wizard Genomic DNA Purification kit Lise celular

Precipitação de proteínas e remoção de macromolécula Precipitação do DNA Remoção do etanol e Reidratação Clareamento /peletização

Tempo total

~ 50 min

31

Kits de extração baseados em matrizes de

sílica

Adsorção → membranas/superfícies/partículas de sílica Colunas mini-spin

Vantagens → rapidez, rendimento, automatização

DNeasy Mini Spin Column (Qiagen)

(9)

Matrizes de Sílica - Princípio

Ponte catiônica

[Na

+

]↑

pH<7

Ligação

Eluição

[Na

+

]↓

33

DNeasy Kit (Mini spin Colunm)

DNA bacteriano Lise celular, homogenização e adição do etanol Tempo total ~ 40 min Ligação do DNA a membrana DNeasy (Mini spin colunm)

Lavagem da coluna

Eluição do DNA

34

Kits baseados na separação magnética

Partículas/membrana → anticorpos e grupos funcionais

Etanol ou isopropanol

Vantagens → rapidez, rendimento, automatização

Magnetic Beads Genomic DNA Extraction Kit (Geneaid)

35

Magnetic Beads Genomic DNA extraction

36

Lise celular Interação

Remoção Campo magnético Eluição Análise da purificação

(10)

Kits de extração baseados na troca iônica

Grupos P (-) → matriz cromatográfica (+)

Gradiente salino → [NaCl] Isolamento de plasmídios

PureLink® HiPure Plasmid DNA Purification kit (Invitrogen)

37

Extração de DNA plasmidial

38

Que fator é determinante para diferenciar a extração do DNA gênômico da extração do DNA plamidial em bactérias?

Pergunta

A intensidade do método de lise:

Total Parcial

DNA plasmidial DNA genômico

DNA plasmidial

39

Kits utilizados para extração do DNA

plasmidial e suas vantagens

(11)

Extração de RNA

41

Tipos de RNA

42

Extração de RNA

Cuidados básicos: 43

Passos básicos para a extração de RNA

1. Processamento e lise celular  ↓ Temperatura;

2. Inativação das nucleases → agentes químicos e desnaturação das proteínas com fenol e clorofórmio;

3. Remoção dos restos celulares e precipitação das proteínas desnaturadas por centrifugação.

4. Recuperação dos ácidos nucleicos por precipitação com etanol;

5. Fracionamento do DNA e RNA por solubilização diferencial sob alta concentração de sal. Vários métodos empregam a precipitação seletiva usando cloreto de lítio (LiCl).

(12)

Métodos para a extração de RNA

1. Extração orgânica com fenol/clorofómio

2. Extração de RNA o reagente Trizol (Invitrogen®)

3. Extração de RNA utilizando o reagente Brazol® (LGC Biotecnologia) 4. Extração de RNA utilizando os kits de purificação como: Wizard

Isolation RNA System (Promega®)

45

Extração de RNA com fenol

46

Solução monofásica →Fenol-isotiocianato de guanidina  Clorofómio;  Isopropanol;  H2O RNase-free

TRIZOL

47 Trizol (1 mL) 50 mg tecidos/células Maceração Tratamento com protease e DNase

Extração de RNA com TRIZOL

(13)

Coluna de sílica – mini-spin Ponte catiônica

[Na

+

]↑

pH<7

Ligação

Eluição

[Na

+

]↓

RNA

Extração de RNA com Kits

51

Solubilização e armazenagem do RNA

52

O que diferencia a purificação de DNA e RNA em colunas de sílica já que o princípio de ligação a matriz é o mesmo?

Perguntas

O tratamento prévio com DNases e RNases:

Referências

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