HAL Id: hal-00901293

HAL Id: hal-00901293

https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-00901293

Submitted on 1 Jan 1980

HAL is a multi-disciplinary open access archive for the deposit and dissemination of sci- entific research documents, whether they are pub- lished or not. The documents may come from teaching and research institutions in France or abroad, or from public or private research centers.

L’archive ouverte pluridisciplinaire HAL, est destinée au dépôt et à la diffusion de documents scientifiques de niveau recherche, publiés ou non, émanant des établissements d’enseignement et de recherche français ou étrangers, des laboratoires publics ou privés.

VARIATIONS DIURNES ET D’UN JOUR A L’AUTRE DE LA CONCENTRATION DE PLUSIEURS

MÉTABOLITES SANGUINS CHEZ LA CHÈVRE EN LACTATION

P. Bas, Annie Rouzeau, P. Morand-Fehr

To cite this version:

P. Bas, Annie Rouzeau, P. Morand-Fehr. VARIATIONS DIURNES ET D’UN JOUR A L’AUTRE DE LA CONCENTRATION DE PLUSIEURS MÉTABOLITES SANGUINS CHEZ LA CHÈVRE EN LACTATION. Annales de Recherches Vétérinaires, INRA Editions, 1980, 11 (4), pp.409-420.

�hal-00901293�

VARIATIONS DIURNES ET D’UN JOUR A L’AUTRE

DE LA CONCENTRATION ^DE PLUSIEURS MÉTABOLITES SANGUINS CHEZ LA CHÈVRE ^EN LACTATION

P. BAS,

Annie ROUZEAU P. MORAND-FEHR

Laboratoire de Recherches de la Chaire de Zootechnie (INRAJ, Institut National Agronomique

Paris-Grignon,

16, ^rue Claude-Bernard, 75231 Parix Cedex 05, France

Summary

VARIATIONS IN THE CONCENTRATIONS OF CERTAIN BLOOD CONSTITUENTS DURING THE DAY AND FROM DAY TO DAY IN ALPINE GOATS IN MID LACTATION. - In the first

experiment

^blood

samples were

^{taken once a}

fortnight

^at

7 a.m., 10 a.m.,

1 p.m. ^or 4 p.m. In the second

experiment samples

^were taken twice a week at an interval of

1, 2,

^{4 or 7}

days.

Significant

individual variations were observed for

lipids

⁽⁷⁹

%1,

^serum

glutamic

oxalacetic tran- saminase

(SGOT,

⁵⁹

%1,

^urea (40 %) and

glucose

⁽³⁴

%1,

^{but not} for non-esterified

fatty

^acids (NEFA) or

beta-hydroxybutyrate

^(BHB1.

Concentration of the blood constituents

analyzed

^varied

according

^to the time of

sampling

^and

during

^the

week,

except for

lipids,

albuminemia and SGOT. Levels of BHB and

glucose

^{rose stea-}

dily

^{until 1} p.m. whereas urea increased

rapidly

^{from 7 a.m. to 10 a.m.}

By

contrast, NEFA ^de-

creased

strongly

^{between 7 a.m. and 10} p.m.

Concentration of blood

glucose,

^{BHB and NEFA did not} vary with

energetic

balance when nutri- ment

requirements

^were covered.

The results of these

experiments

^{indicate the}

importance

^of

respecting

standardized conditions for blood

sampling

^with

ruminants,

ⁱⁿ

particular regarding

the time of

feeding.

L’état nutritionnel des ruminants a fait

l’objet

de nombreuses recherches dans les domaines

énergétique,

^{azoté et minéral en rai-}

son de ses

répercussions

^{sur leurs}

performan-

ces et de son rôle dans

l’apparition

de troubles

pathologiques. L’appréciation

de l’état nutri- tionnel _par l’intermédiaire des

paramètres

^san-

guins

^s’est

développée

^{au cours de ces derniè-}

res années

(Payne

^et al.,

1970 ;

Rowlands et

a/., 1974 ;

Michel,

^1977).

Ces

analyses

^{se sont révélées}

parfois

^difficiles

à

interpréter

^en raison de l’interférence de ^cer-

tains facteurs _{tels que} l’heure et la

fréquence

des

prélèvements.

Chez les bovins l’heure des repas influencerait la concentration en acides gras ^non estérifiés (AGNE)

(Kronfeld, 1965 ;

Holmes et

Lambourne,

1970) et dans certains cas, la

glycémie

^{(Preston et}

Ndumbe,

19611. ).

Des variations diurnes ont aussi été observées

sur l’urée

(Hagemeister

^et

Unshelm,

1970) ^et

sur l’albumine (Unshelm et

Hagemeister,

19691. ),

La

présente

étude réalisée sur chèvres a

pour

objet

^de

préciser

certaines modalités de

prélèvement

des échantillons

(rythme

^{et heure}

de

prélèvement)

^et

d’analyser

^la variabilité indi- viduelle des métabolites

sanguins

liés à l’état nutritionnel

énergétique

^et azoté afin de _pou- voir mieux

apprécier

^leur

signification

^nutri-

tionnelle.

Les variations de ces

paramètres

^{en fonction}

de l’heure de la

journée

^{ont été}

analysées

^dans

une

première expérience (Expérience

¹⁾ pour estimer le moment où la

signification

^nutrition-

nelle de

chaque

métabolite est la

plus

^{nette et}

éventuellement les variations de cette

signifi-

cation au cours de la

journée.

^{Dans une}

seconde

expérience (Expérience II),

^la

répéta-

bilité des valeurs des

paramètres

^du sang

pré-

levé à des intervalles variables (1

jour,

²

jours,

4

jours,

⁷

jours)

^{et la} variabilité inter-chèvres ont été

analysées

^afin de définir la

fréquence

des

prélèvements

^{et le} nombre d’animaux nécessaires _pour

enregistrer

^les évolutions et les variations

significatives

^de l’état nutrition- nel.

Matériel et Méthodes Animaux

Douze chèvres

âgées

^{de deux ans et}

plus,

de race

alpine participent

successivement aux

deux

expériences.

Elles sont toutes en cin-

quième

mois de lactation au début de la pre- mière

expérience

^et

produisent

de

2,5

^à

4,5 kg

de lait _par

jour.

^Elles

reçoivent

à volonté du foin de luzerne mis à leur

disposition

^{de 7 heu-}

res à 9

heures,

^{de 10} heures à 10 heures trente et de 15 heures à 16 heures. De l’aliment con-

centré

équilibré

pour la lactation est distribué à 9 heures à raison de

0,25 kg

par

kg

^{de lait au-}

dessus

d’une production

de 2

kg

^{et à 15 heu-}

res, de l’aliment concentré

complémentaire

^de

la ration à raison de

0,5 kg.

Chaque expérience comprend

quatre

pério-

des de deux semaines au cours

desquelles

^les

échantillons de sang ^sont

prélevés

^{sur les chè-}

vres selon le _programme

indiqué

^{au tableau I.}

Dans

l’expérience 1,

les

prélèvements

^sont

effectués tous les quatorze

jours

^{à des heures}

différentes dans la

journée

^{et dans}

l’expérience Il,

deux

prélèvements

par

période

^{sont effec-}

tués à intervalle de

1, 2,

4 ou

7 jours

^{à 7 heures}

précises

^{du matin.}

Méthodes

d ânalyse

Aliments

La

composition chimique

des aliments est

analysée

à l’aide des méthodes officielles. La valeur

énergétique

des aliments

exprimée

^en

énergie

métabolisable est estimée

grâce

^aux

formules

proposées

par

Demarquilly

^{et al.}

(1978). Le bilan

énergétique

^{est calculé à}

partir

de

l’énergie

^nette

ingérée

soustraite de l’éner-

gie

nécessaire à l’entretien et à la

production

(Morand-Fehr et

Sauvant,

1978).

Sang

Le sang de la veine

jugulaire

^{est recueilli sur}

héparine

^{(environ 10 UI/ml)}

puis placé rapide-

ment dans la

glace

^{fondante et}

centrifugé

^à

4

°C,

moins d’une heure

après

^le

prélèvement.

Le

plasma

^{est aussitôt}

congelé

à moins 20 °C

jusqu’à l’analyse.

La concentration

plasmatique

^{du béta-}

hydroxybutyrate

^{(BHB) est mesurée} par la méthode de Williamson et

Mellanby

⁽¹⁹⁷⁴⁾

modifiée afin d’utiliser de faibles

quantités

^de

béta-hydroxybutyrate déhydrogénase.

^Un

volume de

plasma

^est

déprotéinisé

par deux volumes d’acide

perchlorique 0,6

^N

puis

^neu- tralisé

après centrifugation

par addition d’un volume de carbonate de

potassium 0,8

^M.

Après

^un passage de 15 minutes au bain de

glace,

^{1 ml de} surnageant ^{est incubé}

pendant cinq

heures à 25 °C en

présence

^de

0,5

^{ml de} tampon

tris-hydrazine (pH 8,5)

^{et de}

0,1

^{ml de}

NAD à 1 % dans le tampon

tris-hydrazine

^con-

tenant

0,0015

^{U.I. de}

béta-hydroxybutyrate déhydrogénase.

L’intensité de

l’absorption

mesurée à 340 ^nm est

comparée

^à celle d’une gamme traitée dans les mêmes conditions. Le coefficient de variation est inférieur à

0,3

% pour des valeurs inférieures à 60

mg/I.

Les

triglycérides

^{(TG) sont} dosés selon la méthode

d’Eggstein

^{et Kuhlmann} (1974). Les acides _gras non estérifiés du

plasma sanguin

(AGNE) ^sont déterminés par la méthode semi-

automatique

^{d’Antonis (1965)} modifiée de la

façon

suivante afin

d’augmenter

^la

précision

du

dosage

^{entre 100 et 200}

meq/I.

^{Dans un}

tube rodé de 40

cm 3 ,

^on

ajoute

successive- ment 3 g d’acide

silicique,

^{20 ml} d’éther diiso-

propylique

^{et deux} billes de verre.

Après

^une

agitation

^{douce de ce}

mélange,

^{1 ml de}

plasma

est

ajouté.

^{Le tube est alors}

agité vigoureuse-

ment à la main

puis

^{au vortex}

jusqu’à

^{l’élimina-}

tion de grumeaux adhérant à la

paroi

^{du tube.}

Après centrifugation,

^une

partie aliquote

(10 ml) du surnageant ^est

évaporée

^{sous vide}

et le résidu est

repris

par 5 ml de chloroforme.

Les acides gras libres ^sont dosés sur l’autoa-

nalyseur

^à

partir

^{de cet}

extrait, après

^transfor-

mation en savons de

cuivre,

par le

dibenzyldi-

thiocarbamate de zinc en solution chloroformi- que à

0,3

^% (P/V)

(Brumby

^et

al.,

1975). De mise en oeuvre

facile,

^cette méthode semble être

beaucoup plus spécifique

que les ^autres méthodes

colorimétriques

^décrites par ailleurs.

Sur dix échantillons à 80

mg/1

^d’AGNE

expri-

més en

poids

^d’acide

palmitique,

^le coefficient de variation est de

4,90

^{%. Il reste} inférieur à 5 % _{pour les} échantillons dont la teneur en

AGNE est

comprise

^entre 50 et 200

mg/I.

L’activité de la SGOT

(Asparate

^amino- transférase) est mesurée par la méthode de Schwartz et

Bodansky

(1974) où le NADH et la malate

déhydrogénase

^{(MDH) sont introduits}

ensemble avec un débit de

0,80

ml/min. Cette solution de NADH et de MDH est réalisée dans le tampon

phosphate ^0,1

^{M dans} les propor- tions suivantes : 100 ml de tampon

phos- phate,

^{120 U.I. de MDH et 25} ml de NADH

(0,025

% dans une solution d’albumine à

0,15

^{% dans le} tampon

phosphate 0,1 M, pH 7,4).

L’urémie est évaluée _par la méthode de Marsh et al. (1965). La

glycémie

^{est détermi-}

née par la méthode de Brown ^et Boston (1961 ) 1

adaptée

par Bas (1976) pour les faibles valeurs des

ruminants,

^la

lipémie

par la méthode de Chabrol et Charonnat (1937) automatisée par Bas (1976) et l’albuminémie _par la méthode

colorimétrique

^{de Ness et al. (1965) dans}

laquelle l’étalonnage

^a été réalisé avec de l’albumine de chèvre.

Résultats

1. lnfluence de la

période

^de

prélèvemeni (Expérience

^/)

L’effet dû à la

période

^de

prélèvement,

c’est-à-dire au stade de lactation, ^{est faible. Il} n’est

significatif

que pour la

lipémie,

^la

glycé-

mie et l’albuminémie (tabl. 21.

2. Variations individuelles

(Expérience

^IJ

Des variations individuelles

significatives

ont été observées sur tous les

paramètres

^étu- diés

excepté

^{sur les AGNE et le BHB (tabl. 2).}

Elles sont très

marquées

^{sur la}

lipémie,

^l’albu-

minémie et la SGOT (58 à 80 %) et dans une

moindre ^{mesure sur}

l’urémie,

^la

triglycéridémie

et la

glycémie

(34 à 40 %1. ).

3. lnfluence de l heure de

prélèvement (Expé-

rience 1)

Les variations dues à l’heure de

prélèvement

sont

significatives

pour ^tous les

paramètres sanguins

^{mesurés sauf} pour les

lipides

^totaux

et la SGOT (tabl. 2). Ces variations sont

importantes

pour les

AGNE, l’urée,

^le

glucose

et surtout pour le BHB dont elles

expliquent près

^{de 75 % de la}

dispersion

^totale.

Alors que la

lipémie

varie très peu ^{au cours} de la

journée,

la concentration

plasmatique

des AGNE baisse fortement entre 7 et 10 heu-

res du

matin, puis plus

faiblement

jusqu’à

13

heures ;

ensuite elle semble rester stable

(figure

1). Seule la différence entre la concen-

tration des échantillons

prélevés

^{à 7 heures et} 10 heures est

significative.

La

triglycéridémie

^{ne varie} pas de la même

façon

^{au cours de la}

journée

que les AGNE.

Elle diminue entre 7 heures et 10 heures de

près

^{de 20}

%,

^retrouve à 13 heures la valeur observée à 7 heures

puis

^{baisse à nouveau à 16 6}

heures d’environ 20 %

(fig.

^{1). La}

glycémie

varie dans des conditions relativement _peu

importantes

^{au cours de la}

journée

^et appa- remment dans le sens inverse de celui des

AGNE. Elle a fortement

augmenté

^{et d’une} manière hautement

significative

^{entre 7 heures}

et 10 heures

puis

^{entre 10 heures et 13 heures}

pour ^se stabiliser ensuite et même

légèrement

diminuer entre 13 heures et 16 heures.

Le

béta-hydroxybutyrate

^a des variations

comparables

à celles de la

glycémie

^{mais beau-}

coup

plus

accentuées. L’urée

présente

^une

augmentation

^très

marquée

^{entre 7 heures et}

10 heures

puis

^décroît

légèrement

^{entre 10}

heures et 13 heures et d’une manière

plus

accusée entre 13 et 16 heures. L’albumine est un

paramètre qui

varie peu ^{au cours} de la

jour-

née. Toutefois à 13 heures, l’albuminémie est

significativement plus

^basse

qu’aux

^autres temps. ^La SGOT semble varier ^en sens

opposé

à l’albuminémie.

4.

Répétabilité

^{entre deux}

prises

de sang effec- tuées à des

jours

différents

(Expérience

^llJ

La valeur des

paramètres sanguins

^des

échantillons

prélevés

^{à des}

jours différents,

varie dans de fortes

proportions

^{et d’une} manière très différente selon la nature des

paramètres (fig.

^2).

A

l’exception

^des

triglycérides,

les valeurs des métabolites à deux

prélèvements espacés

de 24 heures sont très corrélées. Dès que l’intervalle entre les deux

prélèvements

^atteint

48

heures,

^les corrélations sont sensiblement

plus

^faibles.

@Certains métabolites

gardent

^{une corréla-}

tion élevée,

quel

que soit l’intervalle entre les deux

prélèvements.

^{C’est le cas de la}

lipémie

pour

laquelle

le coefficient de corrélation reste

supérieur

^à 0,8, ^{de la} SGOT dont le coefficient de corrélation. ne baisse _que

légèrement

^à

mesure que l’intervalle ^entre les

prélèvements

augmente, ^et de l’albuminémie.

Dans le cas des AGNE, ^la corrélation dimi-

nue

quand

l’intervalle de temps augmente alors

qu’un phénomène

^{inverse s’observe dans}

le cas des

triglycérides.

Pour l’urémie et la

glycémie,

^la corrélation

accuse un minimum pour ^un intervalle de 2 ou

4

jours puis

augmente ^ensuite.

Enfin,

pour des intervalles de 2 à 7

jours,

^les corrélations entre les valeurs du BHB restent faibles.

5. Variations des métabolites

sanguins

^avec

les niveaux de consommation alimentaire et de

production

^laitière

(Expérience

^/)

La ration des chèvres a

largement

^couvert

les besoins d’entretien et de

production

^lai-

tière. Selon les individus et les

périodes,

l’excédent

d’énergie

métabolisable _correspon- dant à la reconstitution des réserves

pendant

la seconde moitié de la lactation a varié de 100 à 1000

Kcal/j.

^{Dans cette}

expérience, quelle

que soit l’heure à

laquelle

^le

prélèvement

^san-

guin

^{a été}

effectué,

^la

glycémie,

^{comme l’indi-}

que le tableau

3,

s’est révélée non

significati-

vement corrélée à

l’énergie

métabolisable

ingérée ^rapportée

^au

poids métabolique (P°

.

75),

^au bilan

énergétique

^{et à la}

production

laitière

excepté

^{dans le cas du}

prélèvement

^de 13 heures où la

glycémie

^{est liée}

positivement

à la

production

^laitière.

Le

béta-hydroxybutyrate

semble varier dans le même sens que

l’énergie ingérée rapportée

au

poids métabolique

(corrélation

significative

à 16 heures) et que la

production

laitière (cor- rélation

significative

^{à 10}

heures,

^tabl. 31.

Pour

chaque

temps ^de

prélèvement,

^les

AGNE sont non

significativement

^{liés au bilan}

énergétique.

^{Ils varient dans le même sens} que

l’énergie

métabolisable

ingérée rapportée

^au

poids métabolique,

^en

particulier

^{à 7 heures. Il}

en est de même pour la

production

laitière où cette relation est

significative

^{à 7 heures.}

L’albuminémie évolue dans le même sens mais de

façon

^non

significative

que les matières azotées totales

ingérées

^{ramenées ou non au}

poids métabolique

(tableau 4). Par contre, la variation de l’urémie a tendance à être _oppo- sée à celle de l’albuminémie ainsi

qu’à

^{celle de}

la matière azotée totale

ingérée.

Cette dernière corrélation est

significative

^{sur les}

prélève-

ments de 10 heures.

Discussion

1.

Signification

^des

paramètres analysés

Les concentrations des métabolites

analysés susceptibles

^de caractériser le métabolisme azoté

(urée,

albumine) ou

énergétique (glu-

cose,

AGNE,

BHB) semblent _peu varier avec

les apports alimentaires ^et les niveaux de _pro- duction. Cela

s’explique

par le stade de lacta-

tion des chèvres en

expérience.

^En

effet,

^dans

cette seconde moitié de la lactation les chèvres étaient en bilan

énergétique

apparent

positif

car elles reconstituaient leurs réserves.

Les teneurs relativement élevées de l’urémie semblent

indiquer qu’une grande quantité

^de

matières azotées de la ration ne sont pas utili- sées. Mais en réalité l’urémie n’est pas corrélée

positivement

^avec

l’apport

^de matières azotées ainsi que divers auteurs l’ont

déjà

^{observé sur} vaches, agneaux ^et brebis (Prewitt et

al., 1971 ;

Preston et

a/., 1965 ;

^{Torrell et}

al.,

19741. Prewitt et al. (1971) ont

remarqué

que la corrélation entre l’urémie et les matières azo-

tées

ingérées

^est

plus

étroite chez les vaches où l’azote

ingérée

^{est en}

léger

^excès par rap- port ^aux besoins

plutôt

que dans le cas de quantités largement excédentaires. Or les chèvres

qui

^ont

ingéré

^le

plus

de matières azo-

tées ont aussi consommé

plus

d’aliments con-

centrés et donc

plus

^d’amidon.

L’augmenta-

tion du rapport ^{amidon sur}

protéines

^{dans la}

ration accroît

probablement

^les

synthèses

pro-

téiques

^{du rumen et} par

conséquent

^diminue

la concentration d’ammoniac dans le rumen,

qui

^{est en} étroite relation avec

l’urémie,

^ce

qui

peut

expliquer

^les faibles corrélations entre l’azote

ingérée

^et l’urémie dans cette

expé-

rience.

Les valeurs observées _{pour la}

glycémie,

^le

BHB et les AGNE sont normales chez des chè-

vres au bilan

énergétique positif.

Mais contrai- rement à certains auteurs

(Hewett, 1974 ;

^Blo-

wey ^et al.,

1973 ;

Holmes et

Lambourne, 1970),

^des corrélations

positives

^{mais non}

significatives

^ont été observées entre la

glycé-

mie et

l’énergie ingérée.

Ces corrélations peu élevées peuvent être dues à ce que, ^comme le pense MacClure (1977) le

glucose

^{est étroite-}

ment lié à

l’énergie

métabolisable

ingérée

^chez

des animaux nourris ad libitum mais que chez des animaux

rationnés,

la

composition

^{de la}

ration est un facteur

prépondérant.

La teneur en AGNE est souvent mesurée pour estimer les bilans

énergétiques négatifs.

Leur taux est élevé en début de lactation chez la

brebis,

^{la vache et} la chèvre (Noble et

al.,

1971 : Decaen et

Journet, 1967 ;

^{Guessous et}

a/., 1974 ; Bas,

^1976). Or dans les

expériences présentes

réalisées en

pleine lactation,

leurs concentrations n’ont

jamais présenté

^{de corré-}

lations

significatives

^{avec le bilan}

énergétique.

Mais si à

jeun,

^leur teneur est en liaison

néga-

tive mais de

façon

^non

significative

^{avec le}

bilan

énergétique,

^{en revanche cette corréla-}

tion devient

positive

^à

partir

^{de 13 heures lors-}

que le _repas du matin est

susceptible

d’influencer la

composition

^du

plasma

^san-

guin.

Cette liaison

positive

^{entre les AGNE et}

l’énergie ingérée, pourrait s’expliquer

par

l’augmentation

^{de la}

triglycéridémie

^consécu-

tive à la

prise

alimentaire et par la part

impor-

tante des AGNE

qui proviendraient

^de

l’hydrolyse

^des

triglycérides exogènes

^(Scow et al., 19721. Une corrélation

positive

^{entre les}

AGNE et le niveau de

production, déjà

^obser- vée en milieu de lactation _par

plusieurs

^cher-

cheurs (Radloff ^et

aL, 1966 ; Pehrson,

1971)

apparaît

^nettement le matin dans

l’expérience après

^la

période

^la

plus longue pendant laquelle

^aucun aliment n’est consommé. Ces observations rendent délicate

l’interprétation

de ce métabolite _pour estimer l’état nutrition- nel

énergétique

du ruminant en lactation

puis-

que ^sa

signification

nutritionnelle semble varier au cours de la

journée.

^{Les faibles}

valeurs de la SGOT sont des valeurs d’ani- maux sains sans affection

hépatique

^{ou mus-}

culaire.

2. Variations individuelles

Des variations

importantes

^des métabolites

sanguins

^{dus à des} facteurs individuels ont été mises en évidence et confirment en les

généra- lisant,

les résultats obtenus par de nombreux auteurs sur

l’albuminémie, l’urémie,

la

glycé-

mie et les AGNE

(Hagemeister

^et

Unshelm, 1970 ; Juhfisz, 1962 ;

^Sauvant et al., 1979).

Les résultats de

l’expérience

1 montrent que pour étudier les variations d’ordre nutritionnel des métabolites

sanguins,

^un nombre relative- ment

important

d’animaux serait nécessaire pour

analyser

^{celles de la}

lipémie,

de l’albumi- némie et de la

SGOT ;

^en

revanche,

^l’étude

des variations des AGNE ou du BHB en

exige-

rait

beaucoup

^{moins. En}

réalité,

^ces résultats permettent ^de conclure que

plus

^{un métabolite}

est influencé par des facteurs

nutritionnels,

moins l’étude de ses variations nécessite d’ani-

maux.

3. Variations au cours de la

journée

^et

signifi-

cation nutritionnelle

La faible évolution de l’albuminémie obser- vée au cours de

l’expérience 1, rappelle

^celle

observée _par Unshelm et

Hagemeister

^(19691.

En

revanche,

^l’urémie s’est fortement modifiée

au cours de la

journée

^{comme l’ont}

déjà

^cons-

taté

Hagemeister

^{et Unshelm (1970).}

Les variations

post-prandiales

^{de la}

glycémie

bien que hautement

significatives

^{sont restées}

faibles et n’ont que ^rarement

dépassé

¹⁰⁰

mg/I.

Ces résultats confirment ceux de Hart-

mann et Lascelles (1965) et de

Coggins et

^Field (1976) et montrent

l’importance

des mécanis-

mes d’homéostasie _pour

réguler

^la

glycémie.

La

légère hyperglycémie post-prandiale

^est

probablement

^{due à la}

production

^d’acides

gras volatils (AGV) dans le rumen et en

parti-

culier d’acide

proprionique qui

^est

glucogéni-

que.

L’optimum

^{de la}

glycémie pourrait

^corres-

pondre

^à

l’absorption

^{maximale d’AGV car,}

d’après

^{Trenkle et Kuhlemeir}

^(1966),

^{la pro-}

duction de ces acides augmente ^très

rapide-

ment dans le rumen

après ingestion

^d’aliments

pour atteindre ^un maximum une à deux heures

après

le repas ^et diminue ensuite lentement

pendant

^{les 8 heures}

qui suivent, puis,

^d’une

manière

plus

accentuée ensuite. Le

jeûne qui

dure

plus

^{de 14 heures} serait donc suffisant pour diminuer la

production

^{d’AGV et donc la}

glycémie

^{du matin.}

La diminution de la

glycémie

^{à 16}

heures,

bien _que

légère,

peut être causée par l’éléva- tion de l’insulinémie déclenchée au début du repas. En

effet,

Hove et Blom (1971) ont mon-

tré

qu’après

^le début d’un _repas, l’insulinémie restait élevée

pendant

^{environ une heure et}

que celle-ci entraînait une diminution concom-

mitante de la

glycémie.

^La

glycémie

augmen- terait ensuite _par l’élévation de la

production

de

glucose

^et par la réduction de l’activité insu-

linique

^{à un} niveau inférieur à celui du matin à

jeûn.

^La

proximité

^{de la}

prise

de sang ^et du début du repas

pourrait expliquer

la diminution de la

glycémie

^observée par

Coggins

^{et Field} (1976)

après

^le repas du matin.

Bien

qu’aucune

corrélation

significative

entre la

glycémie

^{et le taux de BHB}

sanguin

n’ait été

trouvée,

^une similitude dans l’évolu- tion de la concentration de ces métabolites a

été constatée. Comme le BHB

qui représente près

^{de 90} p. 100 des _corps

cétoniques

^totaux

a

toujours

tendance à évoluer dans le même

sens mais de

façon

^non

significative

que le bilan

énergétique ,

il semble

qu’en pleine

^lac-

tation,

^le BHB

endogène

^soit

négligeable

^vis-

à-vis du BHB

exogène

^{formé à}

partir

^du

buty-

rate ruminal. Ce

phénomène paraît

^{en outre}

confirmé _par

l’augmentation importante

^{de la}

concentration du BHB au cours de la

journée.

Parmi les critères utilisés _pour caractériser le métabolisme

lipidique,

^la concentration

plas- matique

des AGNE est celle

qui présente

^la

plus

forte variation au cours de la

journée.

^La

baisse brutale du taux des AGNE

après

^le

repas du matin souvent observée chez les ruminants

(Pehrson,

1971) ^se

prolonge

^entre

10 et 13 heures. De ce

fait,

il se peut que la

lipolyse

^{continue à être inhibée} par ^un apport croissant d’acides gras ^au tissu

adipeux

^et que d’autre part, ^la

lipogénèse

soit activée par ^une

disponibilité plus importante

^de

glucose

^et

donc

d’a-glycérophosphate. D’ailleurs, après

les repas, la

lipogénèse

^{est accrue. Cette}

expli-

cation semble aussi

pouvoir s’appliquer

^{à la}

baisse de la

triglycéridémie

^{entre 7 heures et 10 0}

heures d’une part, ^{et entre} 13 heures et 16 heures d’autre part.

L’activité de la SGOT reste très stable au cours de la

journée

^{et ne} semble donc pas subir ni l’influence de l’alimentation ni celle du

cycle

circadien. Ceci est corroboré _par les résultats de

Healy

^{et Falk (1974) et de Tollers-}

rud et Gedde-Dahl (1971)

qui

n’ont _pas trouvé de variations de la SGOT chez la brebis à

jeun

ni chez la vache au cours de la

journée.

4. Variations de la concentration des métabo- lites

sanguins

^{au cours} d’une semaine Dans des conditions

jugées

^{« stables », la}

concentration d’un métabolite peut ^évoluer très vite chez un même animal. Les consti- tuants

qui

subissent les

plus grandes

^varia-

tions

journalières

^{sont aussi les} moins stables

au cours de la semaine.

Toutefois,

^{à 24 heures} d’intervalle entre deux

prélèvements

de sang, les

paramètres sanguins

^ont peu évolué. Ces résultats permettent d’affirmer _que deux

prélè-

vements

espacés

de 24 heures améliorent peu l’estimation de l’état nutritionnel

énergétique

ou azoté des chèvres mais

qu’un

^seul

prélève-

ment pour caractériser l’état nutritionnel d’une semaine est insuffisant surtout pour le

BHB,

le

glucose

^{et les AGNE.}

Conclusion

A

partir

des résultats obtenus dans ces deux

expériences,

^il

apparaît qu’en pleine ^lactation,

les

paramètres

étudiés n’ont pas la même

signification qu’en

^{début de lactation.}

La concentration

plasmatique

^{des AGNE et}

du BHB

qui

^sont des métabolites souvent utili- sés _pour estimer le bilan

énergétique

^{de l’ani-}

mal est difficile à

interpréter

^en

pleine

^lacta-

tion. Non seulement ^les AGNE et le BHB ne sont pas liés

négativement

^{au bilan}

énergéti-

que, mais une liaison

positive

^{est même nette-}

ment observée à 13 et à 16 heures.

Compte

^tenu des variations de la concentra- tion des métabolites et de leur

signification nutritionnelle,

^{variable au cours de la}

journée,

il peut être utile de les mesurer pour certains d’entre eux à différentes heures de la

journée (BHB, urée, AGNE, glucose).

Comme la fluctuation de ces métabolites peut être

importante

^{au cours d’une}

semaine,

il serait souhaitable d’effectuer deux

prélève-

ments au moins par

semaine,

^{surtout si}

l’analyse

^du

BHB,

^de la

glycémie

^{et des AGNE E}

est

prévue.

Le nombre d’animaux nécessaire pour esti-

mer l’état nutritionnel d’un troupeau ^{doit tenir} compte des variations intra-animal

qui

^sont

élevées pour la

lipémie,

^{l’urémie et même la}

glycémie.

Du fait des différentes sources de

variation, l’interprétation

^{de la}

plupart

des métabolites mesurés

exige

^une standardisation des condi- tions de

prélèvement.

^{De ce}

fait, l’analyse

^des

paramètres sanguins

liés à l’état

énergétique

ou azoté au niveau d’un troupeau de ^chèvres doit s’effectuer sur des échantillons

prélevés rigoureusement

à des heures

fixes,

^{sur un} nombre suffisant d’animaux dont les heures de repas ^sont maîtrisés et ne subissent que peu de variations d’un

jour

^{à l’autre.}

Accepié

pour

publication,

le 14 novembre 1980.

Résumé

La

présente

^{étude a} pour

objet

d’étudier les effets du

rythme

^et de l’heure de

prélèvement

^de

sang chez des chèvres

alpines

^en

plein

^lactation.

Dans une

première expérience,

^le sang ^est

prélevé

à 7

heures,

¹⁰

heures,

^{13 heures ou 16}

heures,

tous les 15

jours.

^{Dans une deuxième}

expérience,

^les

prélèvements

^{ont lieu deux fois} par semaine à des intervalles de 1

jour,

2

jours,

⁴

jours

^{et 7}

jours.

Des variations individuelles

significatives

^{sont notées} pour la

lipémie

(79 % de la

dispersion totale),

l’albuminémie (70

%),

^{la SGOT (59} %1, ^{l’urémie (40 %) et la}

glycémie

⁽³⁴

%),

^{mais non}

pour les AGNE et le BHB.

La concentration des métabolites

analysés

^{évolue en} fonction de l’heure de

prélèvement

^{et au}

cours de la

semaine,

sauf pour la

lipémie,

l’albuminémie et la SGOT. Le BHB et la

glycémie

aug- mentent

régulièrement jusqu’à

^{13 heures alors} que l’urémie a

augmenté

^très

rapidement

^{entre 7}

heures et 10 heures. Par contre, les AGNE ont baissé fortement entre 7 heures et 10 heures.

La concentration

sanguine

^du

glucose,

^{du BHB et des AGNE} n’est pas liée ^au bilan

énergétique lorsque

^{les besoins}

énergétiques

sont couverts.

Les résultats de ces

expériences

^{mettent en} évidence la nécessité de respecter

rigoureusement

des conditions standardisées pour le

prélèvement

de sang des

ruminants,

^{en tenant} compte ^de l’heure des repas.

Références

ANTONIS A., 1965. Semi-automated method for the colorimetric determination of plasma free fatty acids.

J. Lipid Res., 6, 307-312.

BAS P., ^{1976. lnfluence du} propionate ^{de sodium et} de la nicotinamide sur le métabolisme lipidique ^{de la}

chèvre en lactation. Mémoire d’Ingénieur C.N.A.M. Paris.

BLOWEY R.W., ^WOOD D.W., DAVIS J.R., 1973. A nutritional monitoring system ^for dairy herds based on blood glucose, ^urea and albumin levels. Vet. Rec., 92, 691-696.

BROWN M.E., BOSTON M.S., 1961. Ultra-microsugar determination using 2,9 dimethyl, 1,10 phenanthro-

line hydrochloryde (Neocuproïne). Diabete, 10, 60-62.

BRUMBY P.E., ANDERSON M., TUCKLEY B., STORRY J.E., HIBBITT K.G., 1975. Lipid metabolism in the

cow during starvation induced ketosis. Biochem. J., 146, 609-615.

CHABROL E., CHARONNAT R., 1937. Une nouvelle réaction pour l’étude des lipides. L’oléidémie.

Presse Méd., 45, 1713.

COGGINS C.R.E., FIELD A.C. 1976. Diurnal variation in the chemical composition ^of plasma from

lactating ^{beef cows on three} dietary energy intakes. J. Agric. Sci., 86, 595-602.

DECAEN C., JOURNET M., 1967. Évolution au début de la lactation, de la sécrétion des principaux ^acides

gras du lait ^et de la concentration en acides gras libres du sang chez la vache. Ann. Biol. Anim. Biochim.

Biophys., ^{7, 131-143.}

DEMARQUILLY C., ANDRIEU J., ^SAUVANT D., DULPHY J.P., ^1978. Composition ^et valeur nutritive des aliments. /n : Alimentation des ruminants, 469-518, INRA, Versailles.

EGGSTEIN M., KUHLMANN E., 1974. Triglycerides ^and glycerol. Determination after alkaline hydrolysis.

ln : BERGMEYER H.U., Methods of enzymatic analysis, 1825-1831, Verlag Chemie, Weinheim, R.F.A.

GUESSOUS F., ^FEHR P.M., DELAGE J , 1974. Influence de l’acétate et du propionate ^{de sodium}

ajoutés

au

régime

^{avant et} après ^{mise bas sur le} métabolisme, la production ^{et la} composition lipidique ^{du lait de}

chèvre. Ann. Biol Anim. Biochim. Biophys., 14, 251-269.

HAGEMEISTER H., UNSHELM J., ^1970. Individuelle, tages-und

tageszeitabhangige

Schwankungen Blutbestandteilen beim Rind. 8. Mitteilung. ^Das Verhalten der Milchsâure (Laktat), ^der Brenztrauben- sâure (Pyruvat), des Harnstoffs und des Blutzuchers. Zentralbl Veterinaermed. A, 17, ^13-26.

HARTMANN P.E., ^LASCELLES A.K., 1965. Variation in the concentration of lipids ^{and some other}

constituents in the blood plasma ^{of cows at various} stages of lactation. Aust. J. Biol Sci., 18, 114-123.

HEALY P.J., ^FALK R.H., 1974. Values of some biochemical constituents in the serum of clinically ^normal sheep. Aust. Vet. J., 50, 302-305.

HEWETT C., 1974. On the causes and effects of variations in the blood profile of Swedish dairy ^{cattle. Acta}

Vet. Scand. Suppf., 50, 113-125.

HOLMES H.H.G., LAMBOURNE L.J., 1970. The relation between plasma free fatty acid concentration and the

digestible

energy intake

of cattle. Res. Vet. Sci., 11, 27-36.

HOVE K.,

^BLOM A.K.,

1971.

Plasma levels of growth hormone, insulin, sugar and acetoacetate in cattle.

Diurnal variations and response ^to feeding. ^{Acta Vet.} Scand., 12, 460-463.

JUHÀSZ _B., 1962. Die Wirkung ^von Hungern ^{auf den} Ammoniakgehalt ^{und das} pH ^der Pansenflüssigheit sowie auf die Harnstoff, Cholesterin und Zuckerkonzentration im Blut. Acia Vet. Acad. Sci. Hung., 12, 383-395.

KRONFELD D.S., 1965. Plasma non-esterified fatty acid concentrations in the dairy ^{cow :} responses ^to nutritional and hormonal stimuli and significance in ketosis. Vet. Rec., 77, 30-35.

MAC CLURE T.J., ^1977. Effects of food intake and composition ^on the concentration of glucose in the blood of

lactating

cattle. Aust. J. Agric., 28, 333-339.

MARSH W.H., ^FINGERHUT B., ^MILLER H., 1965. Automated and manual direct methods for the determi- nation of blood urea. Clin. Chem., 11, 624-627.

MICHEL M.C., 1977. Rôle des profils métaboliques dans la recherche des causes des maladies de production

dans l’espèce ^{bovine. Point} Vét., 5, 55-61.

MORAND-FEHR P., SAUVANT D., 1978. Caprins. ln : Alimentation des ruminants, ^449-467. INRA, Versailles.

NESS A.T., ^DICKERSON H.C., ^PASTEWKA J.W., ^1965. The determination of human ^serum albumin by ^its specific

binding

of the anionic dye, ^{2 (4’} hydroxybenzene azol-benzoic acid. Clin. Chim. Acta, 12, 532-541.

NOBLE R.C., STEELE W., MOORE J.H., 1971. The plasma lipids ^{of the ewe} during pregnancy and lactation.

Res. Vet. Sci., 12, 47-53.

PAYNE J.M., ^DEW S.M., ^MANSTON R., FAULKS M., ^1970. The ^use of ^a metabolic profile ^{test in} dairy

herds. Vet. Rec., 87, ^150-158. ,

PEHRSON B., 1971. Studies of the blood lipid pattern ⁱⁿ healthy dairy ^{cows. Acta Vet.} Scand., 12, 230-242.

PRESTON T.R., ^NDUMBE R.D., ^1961. Diurnal variations in blood sugar concentration in ruminant calves.

Br. J. Nutr., 15, 281-285.

PRESTON R.L., SCHNAKENBERG D.D., ^PFANDER W.H., ^1965. Protein utilization in ruminants. 1. Blood urea

nitrogen

^{as affected} by protein intake. J. Nutr., 86, 281-288.

PREWITT L.R., KERTZ A.F., LANE A.G., CAMPBELL J.R., WEINMAN D.E., 1971. Effects of dietary protein ^on blood, urine and milk

composition.

Aust. Vet. Res., 32, 393-397.

RADLOFF H.D., SCHULTZ L.H., HOEKSTRA W.G., 1966. Relationship of plasma ^free fatty acids to other blood components ⁱⁿ ruminants under various

physiological

conditions. J. Dairy Sci., 49, ^179-182.

ROWLANDS G.J., ^PAYNE J.M., DEW S.M., MANTON R., ^1974. Individuality ^and

heretability of

^{the blood} composition ^of calves with particular ^{reference to} the selection

of‘sfock

With ifnpioved

growth

potential.

J. Agric. ^Sci. Camb., 82, 473-481.

SAUVANT D., BAS P., MORAND-FEHR P., 1979. Production de chevreaux lourds : Il. Influence du niveau

d’ingestion

^{de lait et} du sevrage ^{sur les} performances ^{et la} composition ^{du tissu} adipeux. ^Ann. Zootech., 28, 73-92.

SCHWARTZ M.K., BODANSKY 0., 1974. GOT and GPT, assay with automatic analysers. ^{/n :} BERGMEYER H.U., Methods of enzymatic analysis, ^768-773. Verlag Chemie, Weinheim, ^R.F.A.

SCOW R.O., HAMOSH M., BLANCHETTE-MACKIE E.J., ^EVANS A.J., ^1972. Uptake ^{of blood}

triglycerides

by ^{various tissues.} Lipids, 7, 497-505.

TOLLERSRUD S., GEDDE-DAHL T.W., 1971. Diurnal and seasonal variations of serum enzyme activity ⁱⁿ cattle and sheep. ^{Acta Vet.} Scand., 12, ^393-401.

TORRELL D.T., HUME I.D., WEIR W.C. 1974. Factors affecting ^{blood urea}

nitrogen

^{and its use as an}

index of the nutritional status of sheep. J. Anim. Sci, 39, 435-440.

TRENKLE A., ^KUHLEMEIR K.V., ^1966. Relationship ^{of rumen} volatile acids blood

glucose

^and plasma ^non

esterified fatty ^{acids in} sheep. ^{J. Anim.} Sci., 25, 1111-1115.

UNSHELM J., HAGEMEISTER H., 1969. Individuelle, tages-und

tageszeitabhângige Schwankungen

^von

Blutbestandteilen beim Rind. 6.

Mitteilung.

^{Das Verhalten der} Gesamteiweisskonzentration und ihre

Komponenten. Zentralbl. Veterinaermed., A, 16, 808-819.

WILLIAMSON D.H., MELLANBY J., 1974. D (-) 3 Hydroxybutyrate. ^{In : BERGMEYER} H.U., Methods of enzymatic analysis, 1836-1839,

Verlag

^Chemie, Weinheim, ^R.F.A.