UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA
“JÚLIO DE MESQUITA FILHO”
Instituto de Biociências –
Campus
de Botucatu
Pós-Graduação em Ciências Biológicas – AC: Zoologia
ESTRUTURA DA COMUNIDADE DE AVES EM DOIS FRAGMENTOS
FLORESTAIS NO INTERIOR DO ESTADO DE SÃO PAULO, BRASIL
FREDERICO AUGUSTO MARTIGNON OVINHA
UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA
“JÚLIO DE MESQUITA FILHO”
Instituto de Biociências –
Campus
de Botucatu
Pós-Graduação em Ciências Biológicas – AC: Zoologia
ESTRUTURA DA COMUNIDADE DE AVES EM DOIS FRAGMENTOS
FLORESTAIS NO INTERIOR DO ESTADO DE SÃO PAULO, BRASIL
FREDERICO AUGUSTO MARTIGNON OVINHA
Orientador: Prof. Dr. Reginaldo José Donatelli
Dissertação apresentada ao Curso de Pós-Graduação do Instituto de Biociências da Universidade Estadual Paulista – UNESP – Campus de Botucatu, como parte dos requisitos para a obtenção do título de Mestre em Ciências Biológicas - Área de concentração: Zoologia.
FICHA CATALOGRÁFICA ELABORADA PELA SEÇÃO TÉC. AQUIS. TRATAMENTO DA INFORM.
DIVISÃO DE BIBLIOTECA E DOCUMENTAÇÃO - CAMPUS DE BOTUCATU - UNESP BIBLIOTECÁRIA RESPONSÁVEL: ROSEMEIRE APARECIDA VICENTE Ovinha, Frederico Augusto Martignon.
Estrutura da comunidade de aves em dois fragmentos florestais no interior do estado de São Paulo, Brasil / Frederico Augusto Martignon Ovinha. – Botucatu : [s.n.], 2011
Dissertação (mestrado) – Universidade Estadual Paulista, Instituto de Biociências de Botucatu.
Orientador: Reginaldo José Donatelli Capes: 20400004
1. Ave - População. 2. São Paulo (SP). 3. Florestas - Conservação.
ϯ
À Renatha Almeida de Araújo,
ϰ
AGRADECIMENTOS
Ao Prof. Dr. Reginaldo José Donatelli, por todas as oportunidades, pela orientação e pelos valorosos ensinamentos.
Ao Sr. Toninho Maia por permitir a realização desta pesquisa em sua propriedade.
Ao Dr. Leopoldo Andrade de Figueiredo e à Dra. Maria Eugênia Zerlotti Mercadante por permitirem a realização desta pesquisa na área do Instituto de Zootecnia.
À Profa. Dra. Carolina Demetrio Ferreira pelas oportunidades e pelo incentivo.
Aos companheiros de campo Césão, Fer, Flávio e Marcelo “Marcelinhooo” Ocara, pelos ensinamentos, troca de informação e por estarem sempre dispostos a adubar a vida! Agradeço também ao Gil Brother Away, ao Micuim e aos filhos da Madonna.
À Renatha Almeida de Araújo por viver comigo e, ainda assim, me amar! Obrigado por dividir sua vida comigo. Sonho que se sonha junto é realidade. Te amo, sua linda!
À todos que fazem minha vida mais feliz: meus pais, Flávio e Ângela; minha irmã Érika, meu cunhado Gian e meu sobrinho Heitor (no prelo); meu irmão Rafael e minha cunhada Verônica; meu sogro Irapuan; minha sogra Simone e ao Cícero.
ϱ
6HQKRUID]HLPHLQVWUXPHQWRGHYRVVDSD]
2QGHKRXYHUyGLRTXHHXOHYHRDPRU
2QGHKRXYHURIHQVDTXHHXOHYHRSHUGmR
2QGHKRXYHUGLVFyUGLDTXHHXOHYHDXQLmR
2QGHKRXYHUG~YLGDTXHHXOHYHDIp
2QGHKRXYHUHUURTXHHXOHYHDYHUGDGH
2QGHKRXYHUGHVHVSHURTXHHXOHYHDHVSHUDQoD
2QGHKRXYHUWULVWH]DTXHHXOHYHDDOHJULD
2QGHKRXYHUWUHYDVTXHHXOHYHDOX]
Ð0HVWUHID]HLTXHHXSURFXUHPDLV
FRQVRODUTXHVHUFRQVRODGR
FRPSUHHQGHUTXHVHUFRPSUHHQGLGR
DPDUTXHVHUDPDGR
3RLVpGDQGRTXHVHUHFHEH
pSHUGRDQGRTXHVHpSHUGRDGR
ϲ
Estrutura da comunidade de aves em dois fragmentos florestais no interior do estado de São Paulo, Brasil.
RESUMO
ϳ
Structure of bird communities of two forest fragments located in the middle of São Paulo state, Brazil.
ABSTRACT
ϴ
LISTA DE FIGURAS
Figura 1. Imagem aérea da paisagem em que a Mata dos Maias está inserida...16
Figura 2.Climatograma (temperaturas médias mensais e pluviosidade mensal) do município de Quatá, SP. ...17
Figura 3. Imagem aérea da paisagem em que a Mata do Instituto de Zootecnia está inserida...18
Figura 4. Climatograma (temperatura média mensal e pluviosidade mensal) do Instituto de Zootecnia, município de Sertãozinho, SP, de janeiro a dezembro de 2010...19
Figura 5. Curva cumulativa da riqueza de espécies observadas na MM e na MIZ....27
Figura 6. Ordenação decrescente do índice pontual de abundância das espécies de aves registradas na MM e na MIZ...29
Figura 7. Possível corredor ecológico ligando a MM a fragmento vizinho (FV)...35
ϵ
LISTA DE TABELAS
Tabela 1. Comparação entre a riqueza específica, o tempo de amostragem e o local de estudo entre os diferentes trabalhos. ...26
Tabela 2. Número e porcentagem de espécies nas classes de frequência de ocorrência das aves registradas nos fragmentos e áreas adjacentes...27
Tabela 3. Relação das 10 espécies de aves mais abundantes na MM e na MIZ ...29
Tabela 4. Categorias alimentares da comunidade de aves da MM e da MIZ em termos de riqueza (R) e abundância (A)...31
ϭϬ
LISTA DE ANEXOS
Anexo 1. Exemplo de planilha utilizada no levantamento quantitativo...44
ϭϭ
SUMÁRIO
1 - INTRODUÇÂO ... 12
2 - MATERIAIS E MÉTODOS ... 16
2.1 ÁREAS DE ESTUDO ... 16
2.1.1 Mata dos Maias... 16
2.1.2 Mata do Instituto de Zootecnia ... 18
2.2LEVANTAMENTO QUALITATIVO ... 19
2.3 LEVANTAMENTO QUANTITATIVO ... 20
2.4 ANÁLISE DOS DADOS ... 21
3 RESULTADOS E DISCUSSÃO ... 25
3.1 RIQUEZA DE ESPÉCIES ... 25
3.2ABUNDÂNCIA DAS ESPÉCIES ... 28
3.3DIVERSIDADE ... 30
3.4 CATEGORIAS ALIMENTARES ... 31
4 CONSIDERAÇÕES FINAIS ... 35
5 REFERÊNCIAS ... 37
ANEXOS ... 43
ϭϮ
1 - INTRODUÇÂO
O uso de áreas florestais surgiu há alguns milhares de anos com a população nativa (Dean 1995), porém o histórico de devastação no Brasil teve início com a chegada dos portugueses e sua colonização de exploração no início do século XVI. (Tófoli 2006). Desde então, a cobertura florestal original vem sendo continuamente degradada e modificada.
Segundo Wilson (1994), a principal ameaça à diversidade tem sido a perda de habitats provocada pela destruição ou alteração de ambientes naturais. A avifauna residente nos fragmentos pode ser fortemente afetada por fatores como as dimensões e isolamento da área, distância de outros fragmentos, efeito de borda, mudanças físicas e bióticas, além da influência da paisagem circundante (Bierregard
et. al. 1992, Andrén 1994, Almeida 2002). Fragmentos com pequena diversidade de habitats interiores apresentam menor probabilidade de manter uma alta diversidade de espécies e populações e a maior parte destas populações possivelmente não sobreviverá posteriormente. O próprio processo de fragmentação e diminuição das populações das espécies presentes no fragmento coloca as mesmas em risco de extinção estocástica (Pires 1995).
A taxa com que o homem altera as paisagens naturais é muito maior do que a perturbação natural dos ecossistemas (Tabarelli e Gascon 2005) e maior que a produção científica sobre preservação (Pozza 2002), mesmo com o aumento do quadro de profissionais de conservação, que tornou o país líder mundial em conservação da biodiversidade (Mittermeier et al. 2005).
O Brasil possui uma das maiores biodiversidades do planeta, disputando o título de nação de maior riqueza biológica com a Indonésia (Mittermeier et al. 2005). Acredita-se que cerca de 13% de toda a biota mundial pode ser encontrada no Brasil (Lewinsohn e Prado 2005). Com dimensões continentais e grande amplitude latitudinal, o Brasil apresenta seis biomas distintos, sendo que dois deles, o Cerrado e a Mata Atlântica, figuram entre os 25 hotspots de biodiversidade mundial, por possuírem grande diversidade biológica e altos índices de endemismo (Mittermeier
ϭϯ
O conjunto de ecossistemas representados por savanas, matas, campos e matas de galeria que ocorrem no Brasil Central é comumente chamado de Cerrado (Eiten 1977, Ribeiro et. al. 1981). Originalmente com dois milhões de km2, é o segundo maior bioma brasileiro, ocupando 21% do território nacional (Klink e Machado 2005).
De acordo com Mittermeier et. al. (1999), somente 20% das áreas de Cerrado permanecem inalteradas e apenas 1,2% se encontram em unidades de preservação. Estima-se que, se as taxas de desmatamento se mantiverem em 1,1% ao ano, o Cerrado desaparecerá em 2030 (Machado et. al. 2004). A fragmentação florestal acometeu à Mata Atlântica de forma semelhante.
A Mata Atlântica estendia-se por toda a costa brasileira, avançando ao leste do Paraguai e nordeste da Argentina. Apresentando diferentes fisionomias e formações florestais que variam de florestas Ombrófilas nas regiões costeiras a floresta Estacional Semidecídua no interior do país. Originalmente possuía 1,5 milhões de km2 e abrangia 17 estados brasileiros (Fundação SOS Mata Atlântica e INPE, 2008).
A ocupação do território brasileiro se iniciou nas regiões costeiras, onde se desenvolveu o maior pólo industrial do país e que atualmente abriga cerca de 60% da população do país (Viana e Tabanez 1996, Fundação SOS Mata Atlântica e INPE 2002). Consequentemente, quase toda a cobertura florestal original foi destruída e seus remanescentes encontram-se extremamente fragmentados e sob forte pressão antrópica. Apesar de possuir uma das maiores biodiversidades do planeta, restam apenas 7,6% da vegetação original da Mata Atlântica (Morelatto e Haddad 2000, Myers et. al. 2000, Oliveira-Filho e Fontes 2000, Tófoli 2006, Fundação SOS Mata Atlântica e INPE, 2008). A situação é ainda mais grave em regiões com maior concentração populacional.
ϭϰ
território e devido ao aumento das ações antrópicas como desmatamentos para colonização, construção de estradas e a ampliação das áreas de plantio e pastagens teve sua área original reduzida a pouco mais de 1%, restritos a pequenas manchas. (São Paulo 1999, Durigan et al. 2004, Motta-Junior et al. 2008). Enquanto a Mata Atlântica, que originalmente cobria 83% do estado, teve sua área reduzida a 13,94%. A Floresta Estacional Semidecidual é o ecossistema mais ameaçado do Domínio Florestal Atlântico; menos 2% desta formação ainda está intacta e menos de 1% se encontra protegida em unidades de conservação (Viana e Tabanez 1996, Viana et. al. 1997, Cullen et. al. 2001). Em algumas regiões do estado, o Cerrado e a Mata Atlântica se encontram, estas regiões são chamadas de áreas de tensão ecológica (IBGE 2004).
De forma geral, a vegetação natural paulista remanescente está altamente fragmentada. Apenas 0,5% dos fragmentos apresentam mais de 500 ha, enquanto 80,2% possuem menos de 20 ha (Nalon et.al. 2008). Esta fragmentação pode afetar negativamente a avifauna como mostram os estudos de Willis (1979), Vielliard e Silva (1990), Aleixo e Vielliard (1995), Anjos e Boçon (1999), Anjos (2006), Donatelli
et al. (2004, 2007).
O estado de São Paulo possui 792 espécies de aves, o que representa 43,23% da avifauna brasileira. A avifauna paulista é relativamente bem amostrada, já que existem inventários na maioria dos municípios, fato que não descarta a necessidade de monitoramento da avifauna nas regiões que apresentem condições críticas para a conservação (Silva e Silveira 2006). O monitoramento destas áreas é importante para a compreensão de como as comunidades de aves reagem a paisagens fragmentadas. Muitas espécies de aves são consideradas boas indicadoras de qualidade ambiental em ambientes terrestres (Stotz et. al. 1996). Neste sentido, é possível avaliar as condições do ambiente e sua capacidade de preservar a biodiversidade original através da análise de como as aves reagem à fragmentação florestal (Gimenes e Anjos 2003).
ϭϱ
observação em campo; 3- algumas espécies de aves apresentam uma estreita relação com o tipo de ambiente e seu estado de conservação, fato esse que permite a realização de inferências sobre a situação de outros grupos de espécies ou outros grupos faunísticos.
Tendo em vista o panorama de fragmentação florestal no interior do Estado de São Paulo e a situação precária de muitas espécies de aves que habitam estes fragmentos, faz-se necessário um maior esforço no monitoramento da avifauna em remanescentes florestais, tanto em unidades de conservação quanto em propriedades privadas.
Desta forma, o presente estudo teve como objetivos:
- Analisar a estrutura das comunidades de aves de dois fragmentos e áreas circundantes por meio de dados qualitativos, como riqueza e frequência de ocorrência;
- Analisar quantitativamente as comunidades de aves em dois fragmentos por meio dos índices de diversidade e abundância;
- Analisar a estrutura tróficas das comunidades de aves;
ϭϲ
2- MATERIAIS E MÉTODOS
2.1 Áreas de Estudo
2.1.1 Mata dos Maias
A Mata dos Maias (22º19’S; 50º45’W) está localizada no Município de Quatá, região oeste do estado de São Paulo (Figura 1), na Província Geomorfológica do Planalto Ocidental Paulista, nas Zonas do Médio Parapanema e do Peixe (Maciel 2011).
Figura 1. Imagem aérea da paisagem em que a Mata dos Maias está inserida. Fonte: Google Earth.
ϭϳ
por planaltos e chapadas desenvolvidos sobre rochas sedimentares com altitude média de 550 m (IBGE 2006).
O fragmento estudado está inserido em uma região de contato entre os Biomas Mata Atlântica e Cerrado, com predomínio de atividades agrárias e áreas antropizadas com vegetação secundária. A mata dos Maias possui aproximadamente 350 ha e está localizada em meio a uma fazenda de criação de gado. Sua vegetação é composta tanto por elementos de Cerrado como de Floresta Estacional Semidecidual, já que está localizada em uma área de transição entre estes domínios.
Em meio à paisagem composta por culturas de cana-de-açúcar e bovinocultura, a área de estudo figura como abrigo para muitas espécies animais, como: onça-parda, jaguatirica, mão-pelada, tatus, gambá, cotia entre outros, sendo algumas destas espécies, consideradas ameaçadas de extinção. Lianas são comuns nas bordas e em clareiras e, em alguns pontos, não possui estratificação bem definida.
O Município de Quatá apresenta clima classificado por Köppen como sendo do tipo Aw, definido como tropical quente com chuvas de verão, temperatura média de 23°C e pluviosidade média inferior a 2.000mm/ano (Figura 2).
Ϭ ϱ ϭϬ ϭϱ ϮϬ Ϯϱ ϯϬ Ϭ ϱϬ ϭϬϬ ϭϱϬ ϮϬϬ ϮϱϬ
:ĂŶ &Ğǀ DĂƌ ďƌ DĂŝ :ƵŶ :Ƶů ŐŽ ^Ğƚ KƵƚ EŽǀ Ğnj
ƚĞŵƉ ĞƌĂƚƵ ƌĂ ;Σ Ϳ Ɖƌ ĞĐŝƉ ŝƚĂĕĆŽ ;ŵŵͿ ŵĞƐĞƐ ƉƌĞĐŝƉŝƚĂĕĆŽ;ŵŵͿ ƚĞŵƉĞƌĂƚƵƌĂ;ΣͿ
2.1.2 Mata do Instituto d
A mata do Institu fragmentos que compõe centro da cidade. A áre pertence à unidade ge Ribeirão Preto situada no
Figura 3. Imagem aérea da Google Earth.
As formas de rele amplas e baixas, com médias estão entre 2% e por basaltos e os solos s Terra Roxa Estruturada n
A mata do Instituto como ocorre na Mata do
de Zootecnia
uto de Zootecnia (21º09’S; 48º05’W) (F e a Reserva Biológica de Sertãozinho, ea de estudo está contida no Planalto O eomorfológica denominada de Patama o interflúvio Mogi-Pardo (Invernizzi 2001)
paisagem em que a Mata do Instituto de Zootecn
evo são denudacionais, constituídas basi topos tabulares. A altitude é de 540 m e 10%. Esta unidade de relevo é constit são do tipo Latossolo Roxo, nos terrenos nas vertentes mais inclinadas (Invernizzi
o de Zootecnia apresenta aproximadame os Maias, está localizada em meio à pais
ϭϴ
Figura 3) é um dos distante 15 km do Ocidental Paulista e ares Estruturais de ).
nia está inserida. Fonte:
camente por colinas m e as declividades
tuída litologicamente s mais aplainados, e
2001).
ϭϵ
culturas de cana-de-açúcar e bovinocultura. Observa-se a presença de lianas e considerável efeito de borda. Ainda assim, os remanescentes florestais do interior paulista são imprescindíveis para a manutenção de diversas espécies animais.
O Município de Sertãozinho apresenta clima do tipo Aw pela classificação de Köppen, definido como tropical quente com chuvas de verão, temperatura média de 22,7°C e pluviosidade média inferior a 2.000mm/ano (Figura 4).
2.2 Levantamento qualitativo
A finalidade deste levantamento é fornecer a listagem mais completa possível da avifauna da área a ser estudada. Através do estudo qualitativo é possível conhecer a riqueza da comunidade de aves avaliada.
Ϭ ϱ ϭϬ ϭϱ ϮϬ Ϯϱ ϯϬ Ϭ ϱϬ ϭϬϬ ϭϱϬ ϮϬϬ ϮϱϬ ϯϬϬ ϯϱϬ
:ĂŶ &Ğǀ DĂƌ ďƌ DĂŝ :ƵŶ :Ƶů ŐŽ ^Ğƚ KƵƚ EŽǀ Ğnj
ƚĞŵƉ ĞƌĂƚƵ ƌĂ ;Σ Ϳ Ɖƌ ĞĐ ŝƉ ŝƚ Ăĕ ĆŽ ;ŵ ŵ Ϳ ŵĞƐĞƐ ƉƌĞĐŝƉŝƚĂĕĆŽ;ŵŵͿ ƚĞŵƉĞƌĂƚƵƌĂ;ΣͿ
ϮϬ
O levantamento qualitativo foi realizado mensalmente no período de janeiro a dezembro de 2010. Foram realizadas caminhadas no entorno das áreas amostradas ao longo do dia e início da noite, incluindo o período da amostragem quantitativa, totalizando aproximadamente 100 horas de observação por área estudada. As aves foram identificadas visualmente, com auxílio de binóculos (Nikon 8x40) e a confirmação de suas identificações, quando necessário, foi baseada em guias de identificação (Peña e Rumboll 1998, Mata et al. 2006, Ridgely e Tudor 2009). As espécies também foram identificadas por meio de suas manifestações sonoras, registradas com auxílio de um gravador Sony TCM-5000 EV e microfone Sennheiser ME67 direcional e gravador digital Panasonic RR-US450 e microfone direcional Yoga Ht-81. As gravações foram depositadas no acervo sonoro do Laboratório de Vertebrados da UNESP de Bauru.
2.3 Levantamento quantitativo
O levantamento quantitativo foi realizado através da amostragem por pontos de contagem. Esta metodologia foi desenvolvida por Blondel et al. (1970) e adaptada para as regiões tropicais por Vielliard e Silva (1990). Esta metodologia consiste em registrar todos os indivíduos detectados em um determinado período de tempo, em pontos pré-estabelecidos com distância fixa entre si, sorteados antes do início da amostragem (Blondel et al. 1970). Este levantamento permite estabelecer parâmetros populacionais como o Índice Pontual de Abundância (IPA), índice de diversidade das áreas e equidistribuição, para posterior comparação com espécies de outras áreas (Almeida 2002).
Ϯϭ
que não foram identificadas prontamente tiveram suas vocalizações registradas e identificadas posteriormente.
2.4 Análise dos dados
A frequência de ocorrência (FO) das espécies, expressa em porcentagem, é a relação entre o número de visitas nas quais determinada espécie foi observada e o número total de visitas (Vielliard e Silva 1990). Para o cálculo deste índice utilizou-se os dados obtidos no levantamento qualitativo. Este índice pode indicar o status (ocasional, residente, migrante) da espécie de acordo com o valor obtido. Os dados para o cálculo desta análise foram obtidos de acordo com a fórmula:
FO =
ࡺ
ࡺ࢚
x 100FO = frequência de ocorrência
No = número de visitas em que a espécie foi observada Nt = número total de visitas a campo
As espécies foram designadas a uma categoria de abundância segundo adaptação de Rodrigues et al. (2005). Foram consideradas: abundantes - espécies registradas entre 75,1% e 100% das visitas a área, isto é, com frequência de ocorrência entre 75,1% e 100%; comuns - com frequência de ocorrência entre 50,1% e 75%; escassas - com frequência de ocorrência entre 25,1% e 50%; raras - com frequência de ocorrência de até 25%.
Para verificar a similaridade qualitativa entre os fragmentos estudados, utilizou-se o coeficiente de similaridade de Sørensen (Cs). O coeficiente Cs foi calculado seguindo a fórmula (Valentin 2000):
Cs =
ࢇ
ࢇା࢈ାࢉ
Cs = coeficiente de similaridade de Sørensen
ϮϮ
b = número total de espécies da área “1”
c = número total de espécies da área “2”
O índice pontual de abundância (IPA) por espécie amostrada relaciona a média de contatos de determinada espécie com o número total de amostras. Deste modo é possível estimar a proporção de cada espécie na comunidade. É um valor relativo, comparável somente entre medidas da mesma espécie em datas, locais e comunidades diferentes (Aleixo e Vielliard 1995).
Segundo Almeida (2002), o IPA pode variar com a real abundância da espécie e também com o padrão de atividade e distribuição de cada uma. Portanto, é necessário o conhecimento da biologia de cada espécie para uma análise mais complexa de populações de aves, pois algumas possuem naturalmente baixa densidade populacional ou não são tão distintas. O IPA foi calculado através do levantamento quantitativo das espécies pelo Método de Amostragem por Pontos através da fórmula:
IPA =
ࡺ
ࡺࢇ
IPA = índice pontual de abundância
Ni = número de contatos da espécie “i”
Na = número total de amostras (pontos x visitas)
Devido aos baixos valores, os dados de abundância apresentados correspondem ao IPA x 100 (Aleixo 1999, Silva e Vielliard 2000, Ubaid 2009).
O índice de diversidade de Shannon-Wiener (H’) foi utilizado para expressar a diversidade das comunidades de aves encontrada nos fragmentos. Este índice indica como se comporta um sistema ecológico baseado em dois componentes: a riqueza e a abundância relativa das espécies. O H’ foi calculado seguindo a fórmula:
H’ =
െ σሺǤ ܔܖǤ ሻ
Ϯϯ pi = proporção dos indivíduos da espécie “i” em relação ao número total de indivíduos da comunidade
ln = logaritmo neperiano.
Assim, quanto maior for a riqueza e mais semelhante for o número de indivíduos de cada espécie, maior será a diversidade da comunidade. Os valores deste índice não ultrapassam 5,0 (Krebs 1999).
A equidistribuição avalia a distribuição numérica das espécies na comunidade observada. A distribuição das espécies estará mais próxima da relação logarítmica natural quanto mais próximo de um for o valor encontrado. O índice de equidistribuição é importante para comparar o índice de diversidade de Shannon-Wiener de áreas distintas, pois representa a relação entre a diversidade observada (H’) e a diversidade máxima (H’max) possível para o mesmo numero de espécies (Almeida 2002).
Através do índice de equidistribuição é possível conhecer o quanto de riqueza uma área pode abrigar, em função da abundância de espécies. A equidistribuição apresenta um valor compreendido entre zero e um. O valor é máximo quando todas as espécies são igualmente abundantes e aproxima-se de zero quanto menos equilibrada for a distribuição numérica das espécies (Allegrini 1997). Este índice é determinado pela fórmula:
E = ࡴƍ
ࡴƍࢇ࢞
E: Índice de equidistribuição
H’: Índice de diversidade de Shannon-Wiener
H’max: Diversidade ideal caso as espécies sejam repartidas numericamente.
Ϯϰ
alimentam de frutos, sementes e grãos; insetívoros – dieta composta por insetos e artrópodes; nectarívoros – espécies que se alimentam de néctar e pequenos artrópodes; onívoros – espécies cuja dieta é baseada em diversas fontes alimentares em proporções semelhantes.
Os nomes científicos e a ordenação taxonômica adotados, tanto nas relações de espécies, quanto nas matrizes taxonômicas, seguirão o Comitê Brasileiro de Registros Ornitológicos – CBRO (2011).
Ϯϱ
3 RESULTADOS E DISCUSSÃO
3.1 Riqueza de espécies
O levantamento qualitativo registrou 151 espécies de aves distribuídas em 48 famílias, 27 não-Passeriformes e 21 Passeriformes na mata dos Maias (MM) e 162 espécies divididas em 46 famílias, 27 não-Passeriformes e 19 Passeriformes na mata do Instituto de Zootecnia (MIZ) (Anexo 2).
As famílias Passeriformes mais representativas em relação à riqueza na MM foram Tyrannidae (23), Thraupidae (8), Emberizidae (6) e Icteridae (6). Entre as famílias não-Passeriformes, as mais representativas foram Columbidae (8) e Picidae (8). Na MIZ, as famílias Passeriformes mais representativas foram Tyrannidae (22), Thraupidae (10) e Emberizidae (9). A família não-Passeriformes mais representativa foi Ardeidae (9). A maior representatividade dos Tyrannidae nas áreas de estudo concorda com outros estudos realizados na região tropical (Donatelli et al. 2004, 2007).
A riqueza das áreas amostradas apresenta valores semelhantes a outros levantamentos realizados no interior paulista (Tabela 1). Aleixo e Vielliard (1995) registraram 134 espécies, em 23 meses de amostragem, na Mata de Santa Genebra (251 ha). Almeida et al. (1999) pesquisando a avifauna em fragmentos de mata ciliar na bacia do rio Jacaré-Pepira identificaram 130 e 151 em fragmentos de 40 e 30 ha, respectivamente. Pozza e Pires (2003) trabalharam em dois fragmentos florestais, onde registraram 172 espécies na Fazenda Santa Cecília (100 ha) e 145 na Estação Ecológica de São Carlos (75 ha). Enquanto o levantamento realizado por Donatelli et al. (2007) na fazenda Rio das Pedras (350 ha) registrou 180 espécies. A maior riqueza observada na MIZ deve estar relacionada a presença de outros fragmentos próximos.
Ϯϲ
Tabela 1. Comparação entre a riqueza específica, o tempo de amostragem e o local de estudo entre os diferentes trabalhos.
Local Área (ha) espécies Nº de Amostragem Tempo de Fonte
Mata de Santa Genebra 251 134 23 meses Aleixo e Vielliard (1995)
Mata da Fazenda Santa
Eliza 40 130 12 meses Almeida et al. (1999)
Mata da Fazenda Morro
Chato 30 151 12 meses Almeida et al. (1999)
Fazenda Santa Cecília 100 172 12 meses Pozza e Pires (2003)
Estação Ecológica de
São Carlos 75 145 12 meses Pozza e Pires (2003) Mata da Fazenda Rio
das Pedras 350 180 12 meses Donatelli et al. (2007)
Mata dos Maias 350 151 12 meses presente estudo
Mata do IZ 250 162 12 meses presente estudo
Segundo Vielliard e Silva (1990), a riqueza específica em matas de planalto do interior paulista é de 280 espécies e qualquer redução neste valor pode ser interpretada em função de perturbações ambientais, desde que o levantamento seja razoavelmente completo.
Tanto a MM como a MIZ estão inseridas em fazendas de criação de gado, circundadas por pastos e culturas de cana-de-açúcar, que atuam diretamente sobre a composição e riqueza original destes remanescentes. Os fragmentos ainda sofrem ação do efeito de borda, mais acentuado na MIZ, tais como presença de plantas invasoras devido à luminosidade, aumento de temperatura e invasão de espécies de borda.
Ϯϳ Segundo o SEMA (2008), algumas espécies encontradas na MM estão ameaçadas de extinção no estado de São Paulo: Pilherodius pileatus, Jabiru mycteria e Campephilus melanoleucos; e outras quase ameaçadas como: Penelope superciliaris, Mycteria americana, Amazona aestiva, Casiornis rufus, Antilophia galeata e Gnorimopsar chopi. As aves da MIZ ameaçadas no estado são:
Pilherodius pileatus, Busarellus nigricollis, Amazona amazonica, Tachornis squamata e Campephilus melanoleucos; e as quase ameaçadas são: Mycteria americana, Synallaxis albescens, Casiornis rufus e Gnorimopsar chopi.
De acordo com os valores obtidos pela frequência de ocorrência (F.O.) (Tabela 2), a classe mais representativa para os fragmentos foi a 0 – 25%. As espécies registradas em todas as visitas (F.O. 100%) correspondem a 14,8% na MIZ e 13,2% na MM, enquanto que as espécies observadas apenas uma vez nas áreas correspondem a 11,7% na MIZ e 20,5 na MM.
Classe de F.O. (%)
0-25 (%) 25,1-50 (%) 50,1-75 (%) 75,1-100 (%) 100 (%) única vez
MIZ
nº de
espécies 52 25 34 51 24 19
% relativa 32,1 15,4 21,0 31,5 14,8 11,7
MM
nº de
espécies 45 39 28 39 20 31
% relativa 29,8 25,8 18,5 25,8 13,2 20,5 Figura 5. Curva cumulativa da riqueza de espécies observadas na MM e na MIZ.
Ϯϴ
Alguns estudos realizados em fragmentos florestais no interior paulista apresentaram valores similares em relação às espécies com 100% de frequência de ocorrência. Nessa categoria são encontradas espécies conspícuas e abundantes, além de espécies com grande capacidade de adaptação à ambientes modificados. Vielliard e Silva (1990) registraram que 10% da avifauna da fazenda Rio Claro estavam presentes em todas as visitas. Maciel (2011) registrou que 11,17% da avifauna da Mata do Peixe estavam presentes em todas as amostras. As proporções de espécies de aves com 100% de F.O. nos dois fragmentos amostrados por Donatelli et al. (2007) foram 8% e 12%. Esses autores sugerem que a escassez de recursos alimentares e a perda de habitats específicos podem ser responsáveis pelos baixos percentuais de espécies com 100% de F.O..
A maior parte da avifauna (55,6%) da MM e uma parcela considerável da avifauna (47,5%) da MIZ foram registradas em até 50% das visitas. Segundo Donatelli et al. (2007), a baixa porcentagem de espécies com 100% de F.O. e a alta porcentagem com F.O. menor que 50% podem representar um baixo índice de indivíduos nas populações das espécies na comunidade. Outro fator que pode gerar baixa F.O. é a dificuldade de detecção de determinadas espécies, como alguns troquilídeos.
As áreas apresentam 123 espécies em comum. O coeficiente de similaridade de Sørensen foi de 0,68. Esse valor é relativamente alto e pode estar relacionado com a semelhança das áreas adjacentes às matas, já que as fisionomias destas são dissimilares.
3.2 Abundância das espécies
Ϯϵ Ϭ͕ϬϬ ϱϬ͕ϬϬ ϭϬϬ͕ϬϬ ϭϱϬ͕ϬϬ ϮϬϬ͕ϬϬ ϮϱϬ͕ϬϬ
ϭ ϭϭ Ϯϭ ϯϭ ϰϭ ϱϭ ϲϭ ϳϭ
/W EƷŵĞƌŽĚĞĞƐƉĠĐŝĞƐ DD Ϭ͕ϬϬ ϱϬ͕ϬϬ ϭϬϬ͕ϬϬ ϭϱϬ͕ϬϬ ϮϬϬ͕ϬϬ ϮϱϬ͕ϬϬ
ϭ ϭϭ Ϯϭ ϯϭ ϰϭ ϱϭ ϲϭ ϳϭ
/W
EƷŵĞƌŽĚĞĞƐƉĠĐŝĞƐ D/
20km da MM. A diferença entre as médias encontradas por Maciel (2011) e este estudo pode ser explicada pela ausência parcial de dossel na MM e em boa parte da MIZ, o que facilita a contagem de bandos de psitacídeos e columbídeos que utilizam os fragmentos e elevam as médias dos contatos por amostra.
O IPA das espécies da MIZ variou entre 0,42 (um contato) e 149,17 (358 contatos) (Figura 6), sendo que as dez espécies mais abundantes (Tabela 3) correspondem a 58,9% do total de contatos. Na MM o IPA variou entre 0,45 (um contato) e 215,45 (474 contatos) (Figura 6). Os contatos das dez espécies mais abundantes (Tabela 3) equivalem a 61,5% do total de contatos.
D/ DD
Espécies IPA Espécies IPA
Patagioenas picazuro 149,17 Patagioenas picazuro 215,45
Thamnophilus pelzelni 97,50 Thamnophilus pelzelni 150,00
Brotogeris chiriri 95,00 Basileuterus flaveolus 65,91
Taraba major 49,58 Brotogeris chiriri 53,64
Aratinga auricapillus 48,75 Aratinga leucophthalma 48,18
Amazona amazonica 42,50 Herpsilochmus atricapillus 39,55
Synallaxis frontalis 42,08 Basileuterus culicivorus 37,27
Pitangus sulphuratus 37,92 Turdus leucomelas 35,45
Coragyps atratus 37,08 Hemitriccus margaritaceiventer 29,55
Tangara sayaca 36,25 Coragyps atratus 25,91
Tabela 3. Relação das 10 espécies de aves mais abundantes na MM e na MIZ .
ϯϬ
A espécie mais abundante nas duas áreas foi Patagioenas picazuro, que sozinha corresponde a 18,9% dos contatos da MM e 13,8% dos contatos da MIZ. Esta espécie ocorre do nordeste ao Rio Grande do Sul, incluindo áreas centrais do país e ampliam sua distribuição e densidade populacional acompanhando desmatamentos (Sick 1997). A segunda espécie mais abundante nas áreas foi
Thamnophilus pelzelni com 234 contatos na MIZ e 330 contatos na MM. Estas duas espécies também figuram na lista dos maiores IPAs em outros fragmentos do interior paulista (Almeida 2002, Maciel 2011).
A distribuição dos IPAs das localidades estudadas mostra que existe um grande número de espécies com baixos valores de IPA enquanto poucas espécies apresentam valores de IPAs elevados. Este padrão também é observado em outros levantamentos por pontos de escuta realizados em áreas fragmentadas do interior do estado (Vieilliard e Silva 1990, Aleixo e Vieilliard 1995, Almeida et al. 1999, Pozza e Pires 2003, Donatelli et al. 2007, Ubaid 2009, Maciel 2011). De acordo com Almeida et al. (1999), alguns fatores como comportamento conspícuo e vocalizações constantes e/ou de longo alcance podem contribuir para que algumas espécies apresentem elevados valores de IPA.
3.3 Diversidade
O índice de diversidade encontrado na MIZ foi H’= 3,46, com variação de H’= 2,84 em julho a H’= 3,52 em dezembro. Na MM o índice de diversidade foi H’= 3,36, variando de H’= 2,78 em junho a H’= 3,44 em janeiro.
ϯϭ
O índice de diversidade possibilita a comparação de áreas distintas ou a avaliação da mesma área em diferentes épocas, através dele é possível identificar o grau de heterogeneidade das áreas, baseando-se na proporção numérica de cada espécie da comunidade. Para avaliar a distribuição numérica das comunidades observadas foi utilizado o índice de Equidistribuição (E).
O valor encontrado foi de E= 0,80 para MIZ e E= 0,77 na MM. Estes valores indicam que as espécies registradas nos fragmentos apresentam distribuição pouco equilibrada devido ao fato de algumas espécies possuírem elevada abundância enquanto a maioria apresentou abundância abaixo da média. Os valores calculados neste estudo estão próximos aos valores obtidos por Almeida (1997) – 0,73 e 0,74 e Maciel (2011) – 0,79.
3.4 Categorias alimentares
As categorias alimentares estão distribuídas de forma semelhante nas localidades estudadas em relação à riqueza. As aves insetívoras apresentaram maior representatividade (MM - 39,07% e MIZ - 39,51%), seguidas pelas onívoras, que foram 6,30% mais representativas na MM (Tabela 4). A MIZ apresentou riqueza semelhante entre os carnívoros (27 spp.) e frugívoros (26 spp.), enquanto que na MM os frugívoros e carnívoros correspondem, respectivamente, a 15,23% e 11,26% da riqueza específica. Os nectarívoros correspondem a menos de 5% e Coragyps atratus foi a única ave detritívora observada nas duas áreas.
Categorias MM MIZ
R % A % R % A %
Carnívoro 17 11,26 35 1,40 27 16,67 34 1,31
Detritívoro 1 0,66 57 2,27 1 0,62 89 3,44
Frugívoro 23 15,23 883 35,22 26 16,05 985 38,05
Insetívoro 59 39,07 1016 40,53 64 39,51 1040 40,17
Nectarívoro 7 4,64 58 2,31 7 4,32 22 0,85
Onívoro 44 29,14 458 18,27 37 22,84 419 16,18
Totais 151 100 2507 100 162 100 2589 100
ϯϮ
As proporções das categorias tróficas variam quando analisadas em relação à abundância no interior das matas. Os insetívoros continuam sendo a categoria mais representativa nos fragmentos com 1016 contatos na MM e 1040 na MIZ. As famílias mais representativas desta categoria são Tyrannidae e Thamnophilidae, sendo que somente Thamnophilus pelzelni representa 31,7% na MM e 23% na MIZ da abundância total dos insetívoros. Os frugívoros apresentaram valores próximos aos insetívoros e foram representados na sua maior parte pelas famílias Psittacidae e Columbidae. Os onívoros correspondem a 18,27% (MM) e 16,18% (MIZ), enquanto as categorias alimentares restantes não atingem 6% dos contatos.
De modo geral, as proporções das guildas corroboram com outros estudos realizados em fragmentos florestais no estado de São Paulo (Motta Junior 1990, Pozza 2002, Maciel 2011) e segue o padrão para matas da região neotropical, apresentando superioridade específica dos insetívoros (Sick 1997). Este panorama é esperado pelo fato dos insetívoros englobarem grande parte das famílias de maior representatividade numérica do estado de São Paulo: Tyrannidae (76), Furnariidae (36) e Thamnophilidae (34) (Figueiredo 2002).
Em oposição ao observado em ambientes preservados, os onívoros foram a segunda categoria mais representativa neste trabalho. Este parece ser o panorama mais comum em áreas fragmentadas (Willis 1979) que, aparentemente, favorecem as espécies com maior plasticidade alimentar. Deste modo, hábitos alimentares generalistas seriam uma forma de minimizar a deficiência de recursos alimentares em fragmentos florestais. Willis (1979) observou que existe uma tendência de redução dos frugívoros diante do crescimento dos onívoros em pequenos fragmentos.
ϯϯ
(Galetti et al. 2000). Os frugívoros de grande e médio porte são aves de interesse especial para a conservação. Estes são os primeiros a desaparecer em matas alteradas por não conseguirem suprir suas exigências alimentares ao longo do ano (Almeida 2002).
Nas áreas estudadas foram detectados frugívoros ameaçados e quase ameaçados para o estado de São Paulo. Na MIZ observou-se a presença de pequenos grupos de Amazona amazonica em todas as visitas. Aparentemente esta espécie utilizava um eucaliptal próximo ao fragmento como dormitório. Na MM foi registrado em 63,6% das visitas o jacupemba (Penelope superciliaris), a presença desta espécie e do papagaio-verdadeiro (Amazona aestiva) indica que o fragmento está relativamente bem conservado. Entre os representantes de médio porte destaca-se Patagioenas picazuro que foi a ave mais abundante em ambas as áreas. Segundo Ubaid (2009), o elevado crescimento populacional desta espécie está relacionado à sua capacidade de explorar recursos em diversos ambientes, inclusive o florestal.
Os carnívoros foram representados na sua maior parte pelos Accipitridae e Falconidae. Um registro importante para esta categoria foi o gavião-belo (Busarellus nigricollis) na MIZ. Esta espécie, aparentemente regular, mas com poucos registros (Willis e Oniki 1993) está ameaçada para o estado de São Paulo. Espécies carnívoras de maior porte podem ser afetadas negativamente em áreas modificadas, pois necessitam de uma grande área de vida e um ecossistema equilibrado, onde a abundância de suas presas permaneça estável (Aleixo 1999). Espécies carnívoras estão entre as mais sensíveis aos efeitos da fragmentação florestal e, deste modo, seriam as mais vulneráveis à extinção local em pequenos fragmentos (Donatelli et al. 2007).
ϯϰ
ϯϱ
4 CONSIDERAÇÕES FINAIS
O levantamento qualitativo proporcionou uma listagem da avifauna presente nos fragmentos estudados: A Mata do Instituto de Zootecnia, no município de Sertãozinho e a Mata dos Maias, em Quatá. Os remanescentes estudados apresentaram padrões de riqueza e diversidade semelhante a outros estudos realizados em áreas fragmentadas no interior paulista.
A presença de aves ameaçadas de extinção no estado de São Paulo associada à raridade de fragmentos maiores que 100 ha evidenciam a necessidade de monitoramento frequente destas áreas. Estudos futuros poderão avaliar, ao longo dos anos, a dinâmica populacional destas espécies, incluindo extinções locais.
Ambas as áreas possuem fragmentos próximos que, se conectados através de corredores ecológicos, aumentariam significantemente as suas áreas, favorecendo o deslocamento de espécies florestais. Na MM uma simples recuperação da mata ciliar do córrego adjacente ao fragmento (Figura 7) restabeleceria o corredor ecológico natural entre os remanescentes.
ϯϲ
A Reserva Biológica de Sertãozinho é composta por quatro fragmentos, sendo a MIZ o maior deles. A recuperação da mata ciliar do córrego destacado (Figura 8) auxiliaria o deslocamento das aves entre os fragmentos da reserva.
Estudos como esse possibilitam um conhecimento preliminar das comunidades de aves e um diagnóstico parcial dos fragmentos estudados, podendo servir de base para planos de manejos das áreas.
ϯϳ
5 REFERÊNCIAS
ALEIXO, A. Effects of selective logging on a BIRD community in the Brazilian Atlantic Forest. The Condor,v.101, p.537-548.1999.
ALEIXO, A., VIELLIARD, J.M.E. Composição e dinâmica da avifauna da mata de Santa Genebra, Campinas, São Paulo, Brasil. Revista Brasileira de Zoologia,v. 12,n. 3, p.493-511. 1995.
ALLEGRINI, M.F. Avifauna como possível indicador biológico dos estádios de regeneração da Mata Atlântica. 161p. Dissertação (Mestrado em Ciência Ambiental) - Universidade de São Paulo, São Paulo. 1997.
ALMEIDA, M. E. C. Estrutura de comunidade de aves em dois remanescentes florestais na bacia do Rio Jacaré-Pepira, SP. 83 f. Dissertação (Mestrado em Ecologia e Recursos Naturais). Departamento de Ecologia e Biologia Evolutiva, Universidade Federal de São Carlos, São Carlos, 1997.
ALMEIDA, M.E.C. Estrutura de comunidade de aves em áreas de cerrado da região nordeste do Estado de São Paulo. 134 p. Tese (Doutorado em Ecologia) – CCBS, Universidade Federal de São Carlos, São Carlos. 2002.
ALMEIDA, M. E. C., VIELLIARD, J. M. E., DIAS, M. M. Composição da avifauna em duas matas ciliares do rio Jacaré-Pepira, São Paulo, Brasil. Revista Brasileira de Zoologia, v. 16, n. 4, p.1087-1098. 1999.
ANDRÉN, H. Effects of habitat on birds and mammals in landscapes with different proportions of suitable habitat: a review. Oikos, v.71, p.335-366. 1994.
ANJOS, L. Bird species sensitivity in a fragmented landscape of the Atlantic forest in southern Brazil. Biotropica, v.38, n. 2, p.229-234. 2006.
ANJOS, L., BOÇON, R. Bird communities in natural forest patches in southern Brazil.
Wilson Bulletin, v.111, n. 3, p.397-414. 1999.
BIERREGAARD, R.O., LOVEJOY, T.E., KAPOS, V. SANTOS, A.A., HUTCHINGS, R.W. The biological dynamics of tropical rainforest fragments: a prospective comparison of fragments and continuous forest. BioScience, v. 42, n. 11, p.859-866. 1992.
BLONDEL, J., FERRY, C., FROCHOT, B. La method des indices ponctuels d’abondance (I.P.A.) ou des relevés d’avifaune par “stations d’écoute”. Alauda, v.38, p.55-71. 1970.
ϯϴ
CBRO (Comitê Brasileiro de Registros Ornitológicos) Listas das aves do Brasil.
Disponível em <http://www.cbro.org.br> [20.04.2011]. 2011.
CIIAGRO (Centro Integrado de Informações Agrometeorológicas) Monitoramento agrometeorológico e climático. <http://www.ciiagro.sp.gov.br> [20.04.2011]. 2011. COMPANHIA ENERGÉTICA DE SÃO PAULO, SECRETARIA DE ESTADO DO MEIO AMBIENTE. Atlas das Unidades de Conservação Ambiental do Estado de São Paulo: parte II - interior. São Paulo: Metalivros. 1998.
CULLEN, L. JR.; SCHMINK, M.; VALLADARES-PADUA, C. e RODRIGUEZ MORATO, M. I. Agroforestry benefit zones: a tool for the conservation and management of Atlantic Forest fragments, Sao Paulo, Brazil. Natural Areas Journal, v.21, p.346-356. 2001.
DEAN, W. A Ferro e Fogo. São Paulo: Companhia das Letras. 484p. 1995.
DONATELLI, R.J., COSTA, T.V.V., FERREIRA, C.D. Dinâmica da avifauna em fragmento de mata na Fazenda Rio Claro, Lençóis Paulista, São Paulo, Brasil.
Revista Brasileira de Zoologia, v. 21, n. 1, p.97-114. 2004.
DONATELLI, R.J., FERREIRA, C.D., DALBETO, A.C., POSSO, S.R. Análise comparativa da assembléia de aves em dois remanescentes florestais no interior do Estado de São Paulo, Brasil. Revista Brasileira de Zoologia, v. 24, n. 2, p.362-375. 2007.
DURIGAN, G., FRANCO, G.A.D.C., SIQUEIRA, M.F. A vegetação dos remanescentes de cerrado no estado de São Paulo. Em: BITENCOURT, M.D., MENDONÇA, R.R. (orgs.) Viabilidade de conservação dos remanescentes de cerrado no estado de São Paulo. São Paulo: Annablume/FAPESP. 2004.
EITEN, G. Delimitação do conceito de Cerrado. Arquivos do Jardim Botânico, v.21, p.125-134. 1977.
FIGUEIREDO, L. F. A. (org.) Lista de aves do estado de São Paulo. Versão:5/2/2011. Disponível em: www.ceo.org.br [20.04.2011]. 2002.
FUNDAÇÃO SOS MATA ATLÂNTICA, INPE (Instituto Nacional de Pesquisas Espaciais). Atlas dos remanescentes florestais da Mata Atlântica: período 1995-2000. São Paulo: Fundação SOS Mata Atlântica e INPE. 2002.
ϯϵ
GALETTI, M., LAPS, R., PIZO, M. A. Frugivory by toucans (Ramphastidae) in two altitudes in the Atlantic forest of Brazil. Biotropica, v.32(4), p.842-850. 2000.
GIMENES, M.R., ANJOS, L. Efeitos da fragmentação florestal sobre as comunidades de aves. Acta Scientiarium, Biological Sciences, v. 25, n. 2, p.391-402. 2003.
IBGE (Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística) Mapa de biomas do Brasil – escala 1:5.000.000. Disponível em:<http://www.ibge.gov.br > [20.04.2011]. 2004. IBGE (Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística) Mapa de relevos do Brasil -
escala 1:5.000.000. Disponível em:<http://www.ibge.gov.br> [20.04.2011]. 2006. INVRNIZZI, A. L. Caracterização hidrogeoquímica do aquífero botucatu, no setor médio da bacia hidrográfica mogi-pardo. Dissertação (mestrado em geoquímica e geotectônica) Instituto de Geociências Univesidade de São Paulo. 103p. 2001.
KLINK, C.A., MACHADO, R.B. A conservação do Cerrado brasileiro.
Megadiversidade, v.1, n. 1, p.147-155. 2005.
KREBS, C.J. Ecological Methodology. Los Angeles: Benjamins Cammings. 1999. LEWINSOHN, T.M., PRADO, P.I. Quantas espécies há no Brasil? Megadiversidade,
v. 1, n. 1, p.36-42. 2005.
LOISELLE, B. A. E J. G. BLAKE. Temporal variation in birds and fruits along an elevational gradient in Costa Rica. Ecology, v.72, p.180-193. 1991.
MACHADO, R.B. Padrão de fragmentação da Mata Atlântica em três municípios da bacia do rio Doce (Minas Gerais) e suas consequencias para avifauna. Dissertação de Mestrado em Ecologia, Conservação e manejo de Vida Silvestre. Universidade Federal de Minas Gerais, Instituto de Ciências Biológicas. Belo Horizonte. 1995. MACHADO, R.B., RAMOS NETO, M.B., PEREIRA, P., CALDAS, E., GONÇALVES, D., SANTOS, N. TABOR, K., STEININGER, M. Estimativas de perda da área do Cerrado brasileiro. Brasília: Conservation International do Brasil. 2004.
MACIEL, F. G. Estrutura da comunidade de aves em um fragmento florestal no interior do estado de São Paulo, Brasil. Dissertação (mestrado em Ciências Biológicas A/C Zoologia) – Universidade Estadual Paulista, Instituto de Biociências, Botucatu. 49p. 2011.
ϰϬ
MITTERMEIER, R.A., MYERS, N., GIL, P.R., MITTERMEIER, C.G. Hotspots: Earth’s biologically richest and most endangered terrestrial ecoregions. Mexico: CEMEX. 1999.
MITTERMEIER, R. A., FONSECA, G. A.B., RYLANDS, A. B., BRANDON, K. A brief history of biodiversity conservation in Brazil. Conservation Biology, v.19, n. 3, p.601-607. 2005.
MORELATTO, L.P.C., HADDAD, C.F.B. Introduction: The Brazilian Atlantic Forest.
Biotropica, v. 32, n. 4b, p.786-792. 2000.
MOTTA-JÚNIOR, J.C. Estrutura trófica e composição das avifaunas de três habitats terrestres na região central do estado de São Paulo. Ararajuba, v.1, p.65-71. 1990. MOTTA-JÚNIOR, J.C., GRANZINOLLI, M.A.M., DEVELEY, P.F. Aves da Estação Ecológica de Itirapina, estado de São Paulo, Brasil. Biota Neotropica, v. 8, n. 3, p.207-227.
<http://biotaneotropica.org.br/v8n3/pt/abstract?inventory+bn00308032008> [20.04.2011]. 2008.
MYERS, N., MITTERMEIER, R.A., MITTERMEIER, C. G., FONSECA, G. A. B., KENT, J. Biodiversity hotspots for conservation priorities. Nature, v.403, p.853-858. 2000.
MURCIA, C. Forest fragmentation and the pollination of neotropical plants. Em: SCHELHAS, J., GREENBERG, R. S. (eds.). Forest Patches in Tropical Landscapes.
Washington: Island Press, p. 19-36. 1996.
OLIVEIRA-FILHO, A. T., FONTES, M. A. L. Patterns of Floristic Differentiation among Atlantic Forests in Southeastern Brazil and the Influence of Climate. Biotropica, Washington, V.32, n.4b, p. 793-810. 2000.
PEÑA, M.R., RUMBOLL, M. Birds of southern South America and Antarctica. New Jersey: Princeton University Press. 1998.
PIRES, J. S. R. Análise Ambiental voltada ao planejamento e gerenciamento do ambiente rural: Abordagem metodológica aplicada ao município de Luiz Antônio. Tese (Doutorado em Ecologia) – CCBS, Universidade Federal de São Carlos, São Carlos. 194p. 1995.
PIZO, M. A. A conservação das aves frugívoras. In: Albuquerque, J. L., J. F. CândidoJunior, F. C.Straube, A. Roos (eds.). Ornitologia e conservação: da ciência às estratégias. Tubarão: Editora Unisul. p. 49-59. 2001.
ϰϭ
Ecologia e Biologia Evolutiva, Universidade Federal de São Carlos, São Carlos. 89p. 2002.
POZZA, D.D., PIRES, J.S.R. Bird communities in two fragments of semideciduous forest in rural São Paulo state. Brazilian Journal of Biology, v.63, n.2, p.307-319. 2003.
RIBEIRO, J.F., S.M. SANO E J.A. DA SILVA. Chave preliminar de identificação dos tipos fisionômicos da vegetação do Cerrado. In: Anais do XXXII Congresso Nacional de Botânica. Sociedade Botânica do Brasil, Teresina, Brasil. p 124-133. 1981.
RIDGELY, R. S., TUDOR, G. The birds of South America, passerines. Christopher Helm, London. 2009.
RODRIGUES, M.; CARRARA, L.A.; FARIA, L.P.; GOMES, H.B. Aves do Parque Nacional da Serra do Cipó: o Vale do Rio Cipó, Minas Gerais, Brasil. Revista Brasileira de Zoologia. Curitiba, v. 22, n. 1, p. 326-333. 2005.
SÃO PAULO Conhecer para conservar: as unidades de conservação do Estado de São Paulo. São Paulo: Secretaria de Estado do Meio Ambiente. 1999.
SEMA (Secretaria de Estado do Meio Ambiente) Espécies de mamíferos, aves, répteis, anfíbios e peixes de água doce ameaçados de extinção no Estado de São Paulo. São Paulo: Secretaria Estadual do Meio Ambiente. <www.ambiente.sp.gov.br/listas_fauna.zip> [20.04.2011] 2008.
SICK, H. Ornitologia brasileira. Rio de Janeiro: Nova Fronteira. 1997.
SILVA, W.R., SILVEIRA, L.F. (coord.) Relatório do Grupo Temático Aves. Em: PAESE, A., PAGLIA, A., MARINO, A., ANTUNES, A.Z., SUGIEDA, A.M., JOLY, C.A., HOLVORCEM, C., COUTINHO, D.M., LUSTOSA, E., BAITELLO, J.B., MARTINELLI, L., OLIVEIRA, L.R.N., ROSSI, M., NALON, M.A., BRITO, M.C.W., IVANAUSKAS, N.M., RODRIGUES, R.R., BOLZANI, V.S. (orgs.) Workshop de Áreas Continentais Prioritárias para Conservação e Restauração da Biodiversidade no Estado de São Paulo. São Paulo: Biota/FAPESP. 2006.
SILVA, W.R., VIELLIARD, J.M.E. Avifauna de mata ciliar. Em: RODRIGUES, R.R., LEITÃO-FILHO, H.F. (eds.) Matas Ciliares: Conservação e Recuperação. São Paulo: Editora da Universidade de São Paulo. 2000.
STOTZ, D.F., FITZPATRICK, J.W., PARKER III, T.A., MOSKOVITS, D.K.
ϰϮ
TABARELLI, M., GASCON, C. Lessons from fragmentation research: improving management and police guidelines for biodiversity conservation. Conservation Biology, v. 19,n. 3, p.734-739. 2005.
TÓFOLI, C. F. Frugivoria e dispersão de sementes por Tapirus terrestris (Linnaeus, 1758) na paisagem fragmentada do Pontal do Paranapanema, São Paulo. Dissertação (Mestrado em Ecologia) Instituto de Biociências da Universidade de São Paulo. 89p. 2006.
UBAID, F. K. Dinâmica da avifauna em dois remanescentes florestais no interior do Estado de São Paulo, Brasil. Dissertação (mestrado) – Universidade Estadual Paulista, Instituto de Biociências, Botucatu. 143p. 2009.
VALENTIN, J. L. Ecologia numérica, uma introdução à análise multivariada de dados ecológicos. Rio de Janeiro: Interciência, 117p. 2000.
VIANA, V. M., TABANEZ, A. A. J. Biology and conservation of forest fragments in the Brazilian Atlantic Moist Forest. Pp. 151-167. In: J. Schelhas e R. Greenberg (Eds.). Forest patches in tropical landscapes. Island Press, Washington. 1996.
VIANA, V. M., TABANEZ, A. A. J., BATISTA, J. L. F. Dynamics and restoration of forest fragments in the Brazilian Atlantic Moist forest. In:W. F. Laurance e R. O. Bierregaard (eds.), Tropical forest remnants: ecology, management and conservation of fragmented communities, University of Chicago Press, Chicago, p. 351-365. 1997.
VIELLIARD, J.E.M., SILVA, W.R. Nova metodologia de levantamento quantitativo de avifauna e primeiros resultados no interior do Estado de São Paulo, Brasil. Em: MENDES, S. (ed.) Anais do IV Encontro Nacional de Anilhadores de Aves. Recife: Editora da Universidade Federal Rural de Pernambuco. 1990.
WILLIS, E.O. The composition of avian communities in remanescent woodlots on southern Brazil. Papéis Avulsos de Zoologia, v. 33, n. 1, p.1-25. 1979.
WILLIS, E. O., ONIKI, Y. New and reconfirmed birds from the state of São Paulo, Brazil, with notes on disappearing species. Bull. B. O. C., v.113, p.23-34. 1993.
ϰϯ
ϰϰ
Anexo 1. Exemplo de planilha utilizada no levantamento quantitativo.
Ficha de campo para o levantamento quantitativo
Local:
Data: Ponto: Horário inicial:
Observador (es):
Vento: 0 [fraco] 1 [mod.] Chuva: 0 [-] 1 [fina] Ruído: 0 [fraco] 1 [mod.] 2 [forte] Nebul:0–25–50-75–100% Obs. Gerais:
ϰϱ
Anexo 2. Relação das espécies de aves registradas nos fragmentos MM e MIZ e áreas adjacentes. Classificação taxonômica segundo o CBRO (2011). (FO) frequência de ocorrência: (R) raras – frequência de ocorrência até 25%; (E) escassas - frequência de ocorrência entre 25,1 e 50%; (C) comuns - com frequência de ocorrência entre 50,1% e 75%; (A) abundantes - espécies registradas entre 75,1% e 100% das visitas; (A*) espécies presentes em todas as visitas. (IPA) índice pontual de abundancia. (CA) Categoria de ameaça segundo o SEMA (2008): (CR) criticamente em perigo, (EM) em perigo, (VU) vulnerável, (QA) quase ameaçado
FAMÍLIAS E ESPÉCIES MIZ MM CA FO IPA FO IPA
Tinamidae Gray, 1840
Crypturellus parvirostris (Wagler, 1827) C A
Crypturellus tataupa (Temminck, 1815) E 2,50 C 10,91
Anatidae Leach, 1820
Dendrocygna viduata (Linnaeus, 1766) E E
Dendrocygna autumnalis (Linnaeus, 1758) R
Cairina moschata (Linnaeus, 1758) E R
Amazonetta brasiliensis (Gmelin, 1789) E E
Cracidae Rafinesque, 1815
Penelope superciliaris Temminck, 1815 C 5,91 QA
Podicipedidae Bonaparte, 1831
Tachybaptus dominicus (Linnaeus, 1766) R
Ciconiidae Sundevall, 1836
Jabiru mycteria (Lichtenstein, 1819) R EN.
Mycteria americana Linnaeus, 1758 R E QA
Phalacrocoracidae Reichenbach, 1849
Phalacrocorax brasilianus (Gmelin, 1789) R
Anhingidae Reichenbach, 1849
Anhinga anhinga (Linnaeus, 1766) R
Ardeidae Leach, 1820
Tigrisoma lineatum (Boddaert, 1783) C
Nycticorax nycticorax (Linnaeus, 1758) E
Butorides striata (Linnaeus, 1758) C E
Bubulcus ibis (Linnaeus, 1758) A 8,75 A
Ardea cocoi Linnaeus, 1766 R C
Ardea alba Linnaeus, 1758 E C
Syrigma sibilatrix (Temminck, 1824) A 0,83 A
Pilherodius pileatus (Boddaert, 1783) R R VU
Egretta thula (Molina, 1782) R R
Threskiornithidae Poche, 1904
Mesembrinibis cayennensis (Gmelin, 1789) C R
Theristicus caudatus (Boddaert, 1783) A 1,25 E
Platalea ajaja Linnaeus, 1758 R
Cathartidae Lafresnaye, 1839
Coragyps atratus (Bechstein, 1793) A* 37,08 A* 25,91
Accipitridae Vigors, 1824
Gampsonyx swainsonii Vigors, 1825 R
Elanus leucurus (Vieillot, 1818) R
ϰϲ
Anexo 2. Continuação.
Busarellus nigricollis (Latham, 1790) R CR
Rostrhamus sociabilis (Vieillot, 1817) E
Geranospiza caerulescens (Vieillot, 1817) R
Heterospizias meridionalis (Latham, 1790) R E
Rupornis magnirostris (Gmelin, 1788) A* 6,67 A 5,91
Geranoaetus albicaudatus (Vieillot, 1816) R
Falconidae Leach, 1820
Caracara plancus (Miller, 1777) A* 4,58 A* 8,18
Milvago chimango (Vieillot, 1816) C 2,92 A 1,36
Herpetotheres cachinnans (Linnaeus, 1758) R R
Micrastur semitorquatus (Vieillot, 1817) R 0,45
Falco sparverius Linnaeus, 1758 C A
Falco femoralis Temminck, 1822 R E
Aramidae Bonaparte, 1852
Aramus guarauna (Linnaeus, 1766) C
Rallidae Rafinesque, 1815
Aramides cajanea (Statius Muller, 1776) E R
Porzana albicollis (Vieillot, 1819) R E
Gallinula galeata (Lichtenstein,1818) R E
Porphyrio martinica (Linnaeus, 1766) R
Cariamidae Bonaparte, 1850
Cariama cristata (Linnaeus, 1766) A A*
Charadriidae Leach, 1820
Vanellus chilensis (Molina, 1782) A* A*
Scolopacidae Rafinesque, 1815
Tringa solitaria Wilson, 1813 R
Jacanidae Chenu & Des Murs, 1854
Jacana jacana (Linnaeus, 1766) C C
Columbidae Leach, 1820
Columbina talpacoti (Temminck, 1811) A A 4,09
Columbina squammata (Lesson, 1831) A 12,50 E 0,45
Claravis pretiosa (Ferrari-Perez, 1886) R 1,36
Columba livia Gmelin, 1789 C
Patagioenas picazuro (Temminck, 1813) A* 149,17 A* 215,45
Patagioenas cayennensis (Bonnaterre, 1792) A 21,25 E 6,82
Zenaida auriculata (Des Murs, 1847) A* 1,25 C 3,64
Leptotila verreauxi Bonaparte, 1855 A* 14,17 A 10,45
Leptotila rufaxilla (Richard & Bernard, 1792) R 0,91
Psittacidae Rafinesque, 1815
Aratinga leucophthalma (Statius Muller, 1776) C 9,17 A 48,18
Aratinga auricapillus (Kuhl, 1820) A 48,75
Aratinga aurea (Gmelin, 1788) E 2,50
Forpus xanthopterygius (Spix, 1824) R 1,67 R 1,82
Brotogeris chiriri (Vieillot, 1818) A* 95,00 A* 56,64
Pionus maximiliani (Kuhl, 1820) R 0,45
Amazona amazonica (Linnaeus, 1766) A* 42,50 VU
Amazona aestiva (Linnaeus, 1758) A 10,91 QA
Cuculidae Leach, 1820
Piaya cayana (Linnaeus, 1766) C 15,42 C 4,55
Coccyzus melacoryphus Vieillot, 1817 R
Crotophaga ani Linnaeus, 1758 A 2,08 C
ϰϳ
Anexo 2. Continuação.
Tytonidae Mathews, 1912
Tyto alba (Scopoli, 1769) R
Strigidae Leach, 1820
Megascops choliba (Vieillot, 1817) R
Glaucidium brasilianum (Gmelin, 1788) R
Athene cunicularia (Molina, 1782) A* A*
Nyctibiidae Chenu & Des Murs, 1851
Nyctibius griseus (Gmelin, 1789) R
Caprimulgidae Vigors, 1825
Hydropsalis albicollis (Gmelin, 1789) R E
Apodidae Olphe-Galliard, 1887
Streptoprocne zonaris (Shaw, 1796) R
Chaetura meridionalis Hellmayr, 1907 E 0,83 R
Tachornis squamata (Cassin, 1853) C 2,92 VU
Trochilidae Vigors, 1825
Phaethornis pretrei (Lesson & Delattre, 1839) E 1,67 C 4,55
Eupetomena macroura (Gmelin, 1788) C R
Florisuga fusca (Vieillot, 1817)
Anthracothorax nigricollis (Vieillot, 1817) E R 0,91
Chlorostilbon lucidus (Shaw, 1812) C 0,83 C 5,45
Hylocharis chrysura (Shaw, 1812) E 2,50 C 11,82
Amazilia fimbriata (Gmelin, 1788) C 1,25 C 2,73
Amazilia lactea (Lesson, 1832) E 0,42
Alcedinidae Rafinesque, 1815
Megaceryle torquata (Linnaeus, 1766) C R
Chloroceryle amazona (Latham, 1790) E E
Chloroceryle americana (Gmelin, 1788) R
Galbulidae Vigors, 1825
Galbula ruficauda Cuvier, 1816 R E 0,91
Ramphastidae Vigors, 1825
Ramphastos toco Statius Muller, 1776 A* 7,08 R 1,36
Picidae Leach, 1820
Picumnus albosquamatus d'Orbigny, 1840 A* 14,58 A* 22,73
Melanerpes candidus (Otto, 1796) A 5,42 A 5,00
Veniliornis passerinus (Linnaeus, 1766) R 0,42 E
Colaptes melanochloros (Gmelin, 1788) R 0,42 R
Colaptes campestris (Vieillot, 1818) A* A
Celeus flavescens (Gmelin, 1788) R
Dryocopus lineatus (Linnaeus, 1766) E 0,45
Campephilus melanoleucos (Gmelin, 1788) E 1,67 E 1,82 VU
Thamnophilidae Swainson, 1824
Herpsilochmus atricapillus Pelzeln, 1868 C 33,75 A* 39,55
Thamnophilus doliatus (Linnaeus, 1764) A 9,17 E 2,73
Thamnophilus pelzelni Hellmayr, 1924 A* 97,50 A* 150,00
Taraba major (Vieillot, 1816) A* 49,58 E 1,36
Dendrocolaptidae Gray, 1840
Lepidocolaptes angustirostris (Vieillot, 1818) E 1,25 E
Furnariidae Gray, 1840
Furnarius rufus (Gmelin, 1788) A* A*
Certhiaxis cinnamomeus (Gmelin, 1788) C R
Synallaxis frontalis Pelzeln, 1859 A* 42,08 R 1,82
ϰϴ
Anexo 2. Continuação.
Synallaxis spixi Sclater, 1856 R
Cranioleuca vulpina (Pelzeln, 1856) R
Pipridae Rafinesque, 1815
Antilophia galeata (Lichtenstein, 1823) C 5,45 QA
Tityridae Gray, 1840
Pachyramphus polychopterus (Vieillot, 1818) E 3,18
Rhynchocyclidae Berlepsch, 1907
Todirostrum cinereum (Linnaeus, 1766) A* 6,25 C 3,18
Poecilotriccus plumbeiceps (Lafresnaye, 1846) R 1,25
Hemitriccus margaritaceiventer (d'Orbigny &
Lafresnaye, 1837) A* 29,55
Tyrannidae Vigors, 1825
Camptostoma obsoletum (Temminck, 1824) C 5,83 E 2,27
Elaenia flavogaster (Thunberg, 1822) C 9,58 E 1,36
Myiopagis viridicata (Vieillot, 1817) E 6,36
Serpophaga subcristata (Vieillot, 1817) R R 0,45
Myiarchus swainsoni Cabanis & Heine, 1859 R 0,45
Myiarchus ferox (Gmelin, 1789) C 7,08 A 19,55
Myiarchus tyrannulus (Statius Muller, 1776) E 7,50 C 6,82
Casiornis rufus (Vieillot, 1816) E 5,42 A 25,91 QA
Pitangus sulphuratus (Linnaeus, 1766) A* 37,92 A* 23,64
Philohydor lictor (Lichtenstein, 1823) R
Machetornis rixosa (Vieillot, 1819) A C
Myiodynastes maculatus (Statius Muller, 1776) E 2,92 C 10,00
Megarynchus pitangua (Linnaeus, 1766) C 13,75 A* 17,73
Myiozetetes similis (Spix, 1825) C 4,58 R 0,45
Tyrannus melancholicus Vieillot, 1819 A 13,33 C 1,82
Tyrannus savana Vieillot, 1808 E 5,42 E 0,91
Griseotyrannus aurantioatrocristatus (d'Orbigny &
Lafresnaye, 1837) R
Empidonomus varius (Vieillot, 1818) R R
Myiophobus fasciatus (Statius Muller, 1776) R
Pyrocephalus rubinus (Boddaert, 1783) R R
Fluvicola nengeta (Linnaeus, 1766) C R
Arundinicola leucocephala (Linnaeus, 1764) C R
Gubernetes yetapa (Vieillot, 1818) E
Cnemotriccus fuscatus (Wied, 1831) E 9,55
Lathrotriccus euleri (Cabanis, 1868) E 5,00 A 23,64
Xolmis velatus (Lichtenstein, 1823) C A*
Vireonidae Swainson, 1837
Cyclarhis gujanensis (Gmelin, 1789) A 12,92 A 13,64
Vireo olivaceus (Linnaeus, 1766) R 3,33 C 10,45
Corvidae Leach, 1820
Cyanocorax cristatellus (Temminck, 1823) R
Cyanocorax chrysops (Vieillot, 1818) A* 22,27
Hirundinidae Rafinesque, 1815
Pygochelidon cyanoleuca (Vieillot, 1817) C 0,83 C 1,36
Stelgidopteryx ruficollis (Vieillot, 1817) A 1,67 C 3,64
Progne tapera (Vieillot, 1817) A 1,25 C 1,36
Progne chalybea (Gmelin, 1789) E 0,42 R
Tachycineta albiventer (Boddaert, 1783) R
Troglodytidae Swainson, 1831
ϰϵ
Anexo 2. Continuação.
Donacobiidae Aleixo & Pacheco, 2006
Donacobius atricapilla (Linnaeus, 1766) E E
Polioptilidae Baird, 1858
Polioptila dumicola (Vieillot, 1817) E 0,42
Turdidae Rafinesque, 1815
Turdus leucomelas Vieillot, 1818 A* 24,58 A* 35,45
Turdus amaurochalinus Cabanis, 1850 A R
Mimidae Bonaparte, 1853
Mimus saturninus (Lichtenstein, 1823) A 2,92 A*
Coerebidae d'Orbigny & Lafresnaye, 1838
Coereba flaveola (Linnaeus, 1758) C 2,50 R 0,91
Thraupidae Cabanis, 1847
Saltator similis d'Orbigny & Lafresnaye, 1837 R 5,00 E 4,55
Nemosia pileata (Boddaert, 1783) R 0,42
Thlypopsis sordida (d'Orbigny & Lafresnaye, 1837) R
Ramphocelus carbo (Pallas, 1764) A 2,92
Lanio cucullatus (Statius Muller, 1776) C 2,08 R 2,27
Tangara sayaca (Linnaeus, 1766) A* 36,25 C 5,45
Tangara cayana (Linnaeus, 1766) A 5,00 E 2,73
Tersina viridis (Illiger, 1811) R R
Dacnis cayana (Linnaeus, 1766) R C 14,09
Hemithraupis guira (Linnaeus, 1766) E 6,36
Conirostrum speciosum (Temminck, 1824) A* 25,83 A 9,09
Emberizidae Vigors, 1825
Zonotrichia capensis (Statius Muller, 1776) R
Ammodramus humeralis (Bosc, 1792) A C
Sicalis flaveola (Linnaeus, 1766) C
Sicalis luteola (Sparrman, 1789) R R
Volatinia jacarina (Linnaeus, 1766) A E
Sporophila lineola (Linnaeus, 1758) C R
Sporophila nigricollis (Vieillot, 1823) R
Sporophila caerulescens (Vieillot, 1823) A R
Arremon flavirostris Swainson, 1838 A* 27,92 C 13,18
Parulidae Wetmore, Friedmann, Lincoln, Miller, Peters, van Rossem, Van Tyne & Zimmer 1947
Parula pitiayumi (Vieillot, 1817) C 3,18
Geothlypis aequinoctialis (Gmelin, 1789) R
Basileuterus culicivorus (Deppe, 1830) A* 37,27
Basileuterus flaveolus (Baird, 1865) C 11,25 A* 65,91
Icteridae Vigors, 1825
Icterus pyrrhopterus (Vieillot, 1819) E 0,42 R
Gnorimopsar chopi (Vieillot, 1819) R R QA
Chrysomus ruficapillus (Vieillot, 1819) C E
Pseudoleistes guirahuro (Vieillot, 1819) C E
Molothrus bonariensis (Gmelin, 1789) C R
Sturnella superciliaris (Bonaparte, 1850) A E
Fringillidae Leach, 1820
Sporagra magellanica (Vieillot, 1805) R
Euphonia chlorotica (Linnaeus, 1766) A* 24,17 A 12,73
Passeridae Rafinesque, 1815
