Instrução de Uso_XG-CVG-MB_Rv.01_OUT_2017
Instruções de Uso
Kit XGEN CHIKUNGUNYA IgG (XG-CVG-MB)
Kit de Sorologia para Detecção de Anticorpos IgG para vírus Chikungunya
1. USO PRETENDIDO
O kit XGEN CHIKUNGUNYA IgG é destinado para a detecção qualitativa de anticorpos IgG para o vírus Chikungunya (CHIKV) em amostras de soro e plasma humano, através de imunoensaios - ELISA.
O kit pode ser utilizado em combinação com os seguintes equipamentos: lavadora, leitora e incubadora de microplacas para imunoensaios - ELISA. Também pode ser utilizado em estações de trabalho automatizadas.
PRODUTO PARA DIAGNÓSTICO DE USO IN VITRO. 2. INTRODUÇÃO
A Chikungunya (CHIKV) é uma doença viral transmitida por mosquitos infectados e foi descrita pela primeira vez durante uma epidemia no sul da Tanzânia em 1952. É um vírus RNA pertencente ao gênero Alphavirus, da família Togaviridae. O nome Chikungunya deriva-se de uma palavra da linguagem Kimakonde, com o significado de “tornar-se contorcido”, descrevendo assim a aparência encurvada de pacientes que sofrem com dores nas articulações (artralgia) quando são infectados pelo vírus.
É caracterizada pelo começo abrupto de febre, frequentemente acompanhado de dores fortes nas articulações. Outros sinais e sintomas comuns incluem dores musculares, dor de cabeça, náuseas, fadiga e erupções cutâneas. A dor nas articulações geralmente é muito debilitante, podendo durar poucos dias ou prolongar-se durante meses. Assim, o vírus pode causar doença aguda, subaguda e crônica.
A maioria dos pacientes se recupera completamente, mas em alguns casos a dor nas articulações pode prolongar-se por meses ou até anos. Alguns casos de complicações nos olhos, neurológicos, gastrointestinais e cardíacos foram relatados. Complicações sérias não são comuns, mas em pessoas idosas a doença pode levar a morte. Geralmente os sintomas são moderados nos
indivíduos infectados e a infecção pode passar despercebida ou ser mal diagnosticada em áreas que também possuem incidência do vírus da Dengue.
O CHIKV foi identificado em mais de 60 países da Ásia, África, Europa e Américas. O vírus é transmitido através das picadas de mosquitos fêmeas infectadas. Após a picada de um mosquito infectado, o início da doença geralmente ocorre entre 4 e 8 dias, mas pode variar de 2 a 12 dias. Testes sorológicos como o ensaio de ELISA podem confirmar a presença de anticorpos IgG e IgM anti-Chikungunya.
3. PRINCÍPIO DO TESTE
O kit XGEN CHIKUNGUNYA IgG se baseia em reações antígeno-anticorpo detectáveis através de reações enzimáticas. As microplacas são revestidas com antígeno sintético imunodominante derivado da região ENV do CHIKV. Na primeira incubação, a fase sólida é tratada com amostras diluídas diretamente nos poços e se houver anticorpos no soro em teste ocorrerá a ligação antígeno-anticorpo. Após a lavagem, todos os componentes presentes nos poços são descartados, mantendo apenas a ligação antígeno-anticorpo. Na segunda incubação, a ligação antígeno-anticorpo é detectada através da adição de anticorpos dirigido contra imunoglobulinas da espécie (anti hIgG) marcados com peroxidase (HRP). A enzima capturada na fase sólida reage ao substrato/cromógeno e gera sinal óptico proporcional à quantidade de anticorpos anti-CHIK IgG presente na amostra.
4. COMPONENTES
O formato padrão do kit contém reagentes para 96 testes.
COMPONENTES CONTEÚDO QUANTIDADE
MICROPLACA CHIKV IgG Microplaca para Reação 12 strips x 8 poços CONTROLE NEGATIVO CHIKV
IgG Controle Negativo 1 frasco x 2,0 mL
CONTROLE POSITIVO ALTO CHIKV IgG
Controle Positivo Alto para anticorpos IgG para o vírus Chikungunya (100 arbU/mL)
Instrução de Uso_XG-CVG-MB_Rv.01_OUT_2017 CONTROLE POSITIVO MÉDIO
CHIKV IgG
Controle Positivo Médio para anticorpos IgG para o vírus Chikungunya (20 arbU/mL)
1 frasco x 2,0 mL TAMPÃO DE LAVAGEM
CONCENTRADO 20x Mistura de Tampão 1 frasco x 60 mL CONJUGADO ENZIMÁTICO
CHIKV IgG
Anticorpo policlonal humano conjugado com peroxidase de
rábano (HRP)
1 frasco x 16 mL CROMÓGENO/SUBSTRATO Substância Cromógena 1 frasco x 16 mL SOLUÇÃO STOP Solução de Parada de Reação 1 frasco x 15 mL DILUENTE DE AMOSTRAS Solução para Diluição das
Amostras 2 frascos x 60 mL FILME SELADOR Filme Selador Adesivo 2 unidades 5. ARMAZENAMENTO E ESTABILIDADE
O kit XGEN CHIKUNGUNYA IgG deve ser armazenado e transportado em sua embalagem original em temperatura controlada entre 2°C e 8°C e é estável até a data de vencimento indicada no rótulo.
6. MATERIAIS NECESSÁRIOS, MAS NÃO FORNECIDOS Micropipetas calibradas (10 μL < volume < 1.000 μL);
Água grau EIA Reagente (bidestilada ou deionizada, tratada com carvão vegetal);
Timer com 60 minutos ou mais; Papéis absorventes;
Tubos de ensaio 12 x 75 mm ou microtubos de 1,5 mL para realizar a diluição das amostras;
Incubador Termostático de Microplacas ELISA calibrado (banho seco ou banho-maria) configurado a +37°C (± 0,5°C de tolerância);
Leitor de Micropoços ELISA calibrado com filtros de 450 nm (leitura) e com 620-630 nm (branco);
Lavadora calibrada de microplacas ELISA; Agitador tipo Vortex ou similar;
Ponteiras estéreis descartáveis com filtro;
Luvas descartáveis sem talco. 7. AVISOS E PRECAUÇÕES
1. O kit deve ser utilizado somente por pessoal técnico qualificado e devidamente treinado.
2. Todo o pessoal envolvido na execução do teste deve utilizar equipamentos de proteção individual. O uso de objetos perfuro-cortantes deve ser evitado. Todo o pessoal envolvido deve ser treinado em procedimentos de biossegurança, como recomendado pela legislação em vigor.
3. Os responsáveis pelo manuseio de amostras devem ser vacinados contra tétano, difteria, hepatite B e os estabelecidos no PCMSO, de acordo com a Norma Regulamentadora 32.
4. O ambiente do laboratório deve ser controlado, a fim de evitar contaminantes como poeira ou agentes microbianos transportados pelo ar.
5. Proteger o Cromógeno/Substrato da iluminação forte e evitar vibração na superfície da bancada onde o teste é realizado.
6. Após o recebimento, armazenar o kit entre 2°C e 8°C, em uma geladeira com temperatura controlada.
7. Não trocar os componentes entre diferentes lotes dos kits. Recomenda-se que os componentes entre dois kits do mesmo lote também não sejam trocados.
8. Verificar se os reagentes estão limpos e não contém partículas visíveis pesadas ou grumos. Caso contrário, comunicar o supervisor do laboratório para iniciar os procedimentos necessários para reposição do kit.
9. Evitar contaminação cruzada das amostras utilizando ponteiras descartáveis e trocando-as após cada amostra.
10. Evitar contaminação cruzada entre os reagentes do kit utilizando ponteiras descartáveis e trocando-as entre o uso de cada uma.
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12. Tratar todas as amostras como potencialmente infectantes. Todas as amostras de soro humano, sangue, plasma devem ser manuseadas em Nível de Biossegurança 2, como recomendado pela legislação em vigor. 13. O uso de plásticos descartáveis é recomendado na preparação dos componentes líquidos ou na transferência dos componentes para sistemas automatizados, a fim de evitar contaminação cruzada.
14. Os resíduos gerados durante a utilização do kit devem ser descartados, de acordo com as diretrizes e regras de descarte de resíduos químicos e substâncias biológicas do laboratório, conforme legislação em vigor. Em particular, os resíduos líquidos gerados no processo de lavagem a partir reagentes e das amostras devem ser tratados como potencialmente infectantes e inativados antes do descarte.
15. Os respingos provocados acidentalmente durante o manuseio das amostras devem ser absorvidos por lenços de papel umedecidos com hipoclorito, e em seguida, com água. Os lenços devem ser descartados em recipientes específicos para resíduos laboratoriais.
16. A Solução STOP é uma substância irritante (H315, H319; P280, P302 + P352, P332 + P313, P305 + P351 + P338, P337 + P313, P362 + P363). Em caso de respingo, lavar a superfície repetidas vezes com água.
17. Outros resíduos gerados devem ser manuseados como potencialmente infectantes e descartados, de acordo com as diretrizes e regras relativas a resíduos laboratoriais.
8. AMOSTRAS: PREPARAÇÃO E RECOMENDAÇÕES
O ensaio é para uso com anticorpos IgG de amostras de soro e plasma humano.
1. O sangue deve ser colhido assepticamente por punção venosa. O plasma e o soro devem ser preparados utilizando as técnicas padrão de preparação de amostras para análises clínicas. Nenhuma interferência foi observada em amostras com citrato, heparina e EDTA.
2. Evitar a adição de qualquer conservante nas amostras, especialmente azida de sódio, pois este reagente pode afetar a atividade enzimática do conjugado, gerando resultados falso-negativos.
3. As amostras devem estar claramente identificadas com nomes ou códigos para evitar a interpretação errada dos resultados.
4. Amostras hemolisadas e visivelmente lipêmicas devem ser descartadas, pois podem gerar resultados errados. Amostras contendo resíduos de fibrina, partículas pesadas, corpos ou filamentos devem ser descartadas, pois podem gerar falsos resultados.
5. As amostras de soro ou plasma podem ser armazenados entre 2°C e 8°C por até 7 dias após a coleta. Para períodos mais longos, as amostras podem ser congeladas a -20°C por vários meses. As amostras não devem ser congeladas e descongeladas mais de uma vez, pois esta prática pode gerar partículas que podem afetar os resultados.
6. Se alguma partícula estiver presente, centrifugar a 2.000 rpm por 20 minutos ou utilizar um filtro de 0,2 – 0,8 (µm) para limpar a amostra.
9. PREPARAÇÃO DOS COMPONENTES E AVISOS MICROPLACA CHIKV IgG
12 strips x 8 poços revestidos com antígenos sintéticos CHIK ENV.
Deixar a microplaca atingir a temperatura ambiente antes de abrir o pacote por, pelo menos, 30 minutos. Verificar se o dessecante não está verde escuro, indicando um defeito de fabricação. Neste caso, contatar o Serviço de Atendimento ao Cliente.
As tiras não utilizadas devem ser guardadas novamente na embalagem de alumínio, junto com dessecante fornecido, firmemente fechada e armazenada entre 2°C a 8°C.
Após a abertura da embalagem, as tiras são estáveis até o indicador de umidade, localizado dentro da embalagem do dessecante, passar de amarelo para verde.
CONTROLE NEGATIVO CHIKV IgG
Contém 1% de proteína de soro de cabra, 10 mM de tampão citrato de sódio pH 6,0 ± 0,1, 0,5% de Tween 20, 0,09% de azida de sódio e 0,1% de Kathon GC.
Instrução de Uso_XG-CVG-MB_Rv.01_OUT_2017 CONTROLE POSITIVO ALTO CHIKV IgG
Contém 1% de proteína de soro de cabra, anti CHIKV IgG humano inativado, 10 mM de tampão citrato de sódio pH 6,0 ± 0,1, 0,5% de Tween 20, 0,09% de azida de sódio e 0,1% de Kathon GC.
Solução pronta para uso. Homogeneizar em agitador tipo vortex. CONTROLE POSITIVO MÉDIO CHIKV IgG
Contém 1% de proteína de soro de cabra, anti CHIKV IgG humano inativado, 10 mM de tampão citrato de sódio pH 6,0 ± 0,1, 0,5% de Tween 20, 0,09% de azida de sódio e 0,1% de Kathon GC.
Solução pronta para uso. Homogeneizar em agitador tipo vortex. TAMPÃO DE LAVAGEM CONCENTRADO 20x
Contém 10 mM de tampão fosfato pH 7,0 ± 0,2, 0,05% de Tween 20 e 0,05% de Kathon GC.
Diluir o tampão de lavagem para uma solução 1x de acordo com a quantidade de amostras a ser testada (por exemplo: 60 mL da solução 20x concentrada em 1.200 mL de água grau EIA). Misturar gentilmente antes da utilização. Alguns cristais de sal podem ficar no fundo do frasco, atente-se para dissolver todo o conteúdo ao preparar a solução.
Evitar a formação de bolhas no preparo do tampão, pois podem diminuir a eficiência da solução.
Nota: Uma vez diluída, a solução de lavagem é estável durante 4 dias armazenada entre 2°C a 8°C.
CONJUGADO ENZIMÁTICO CHIKV IgG
Contém anticorpos policlonais conjugados com peroxidase de rábano para IgG humano, 5% de BSA, 10 mM tampão Tris pH 6,8 ± 0,1. 0,1% de Katon GC e 0,02% de sulfato de gentamicina.
Solução pronta para uso. Homogeneizar em agitador tipo vortex.
Cuidado para não contaminar o líquido com substâncias oxidantes, pó ou micróbios. Se for necessária a transferência deste componente, utilizar frascos estéreis.
CROMÓGENO/SUBSTRATO
Contém 50 mM de tampão citrato-fosfato pH 3,5 a 3,8, 4% de dimetilsulfóxido. 0,03% de tetra-metil-benzidina (TMB) e 0,02% de peróxido de hidrogênio (H2O2).
Solução pronta para uso. Homogeneizar em agitador tipo vortex.
Não expor o componente a luz forte, agente oxidante e superfícies metálicas. Cuidado para não contaminar o líquido com substâncias oxidantes, pó ou microrganismos. Se for necessária a transferência deste componente, utilizar frascos estéreis.
DILUENTE DE AMOSTRA
Contém 2% de caseína, 10 mM de tampão citrato de sódio pH 6,0 ± 0,1, 0,2% de Tween 20, 0,09% de azida de sódio e 0,1% de Kathon GC.
Solução pronta para uso. Homogeneizar em agitador tipo vortex. SOLUÇÃO STOP
Contém 0,3 M de solução H2SO4.
Solução pronta para uso. Homogeneizar em agitador tipo vortex.
Atenção: Irritante (H315, H319; P280, P302 + P352, P332 + P313, P305 + P351 + P338, P337 + P313, P362 + P363).
LEGENDA:
AVISO – Declaração H
H315 – Provoca irritação cutânea. H319 – Provoca irritação ocular grave. PRECAUÇÃO – Declaração P
P280 – Usar luvas e vestuário de proteção e proteção ocular e facial. P302 + P352 – Se na pele, lavar com água abundante e sabão.
P332 + P313 – Em caso de irritação cutânea, procurar assistência médica.
P305 + P351 + P338 – Se nos olhos, lavar cuidadosamente com água durante vários minutos. Se estiver com lentes de contato fáceis de retirar, removê-las e continuar a lavar com água. P337 + P313 – Caso a irritação ocular persista, procurar assistência médica.
P362 + P363 – Retirar a roupa contaminada e lavá-la antes de reutilizar.
10. EQUIPAMENTOS E FERRAMENTAS USADOS EM COMBINAÇÃO COM O KIT 1. Micropipetas
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micropipetas devem ser certificadas e devem estar com seus certificados válidos a fim de mostrar precisão de 1% e exatidão de ± 5%.
2. Incubadora para Imunoensaios – ELISA
A incubadora para Imunoensaios - ELISA deve ser configurada a +37°C (tolerância de ± 0,5°C) e ser regularmente verificada para assegurar a manutenção da temperatura correta. Tanto o banho-seco quanto o banho-maria são adequados para as incubações, desde que os equipamentos sejam validados para a incubação de testes de ELISA. O tempo de incubação possui tolerância de ± 5%.
3. Lavadora para Imunoensaios - ELISA
A lavadora de ELISA é extremamente importante para o desempenho geral do ensaio. A lavadora deve ser cuidadosamente validada e corretamente otimizada usando os controles do kit e painéis de referência. Normalmente 5 ciclos de lavagem (aspiração + dispensação de 350 µL/ poço de solução de lavagem = 1 ciclo) são suficientes para assegurar que o ensaio tenha o desempenho esperado. É sugerido um intervalo de 20 - 30 segundos entre ciclos. A fim de configurar corretamente os números, é recomendado realizar um ensaio com os controles do kit e amostras de referência negativas e positivas bem caracterizadas e verificar os resultados, de acordo com os valores reportados no Item 14. A calibração periódica dos volumes dispensados e manutenção da lavadora devem ser realizadas de acordo com as instruções do fabricante.
4. Leitora de Imunoensaios - ELISA
O leitor de microplacas imunoensaios - ELISA deve conter um filtro de leitura de 450 nm e um filtro de 620 - 630 nm para fins de supressão. O desempenho padrão deve apresentar (a) largura de banda ≤ 10 nm; (b) faixa de absorção de 0 a ≥ 2,0; (c) linearidade ≥ 2,0; (d) repetibilidade ≥ 1%. O sistema óptico do leitor deve ser calibrado regularmente para garantir que a densidade óptica seja medida corretamente. Deve ser mantido regularmente de acordo com as instruções do fabricante.
5. Estação de Trabalho Automatizada
Quando uma estação de trabalho automatizada for utilizada, todos os passos críticos (dispensação, incubação, lavagem, leitura e manuseio de dados) devem ser cuidadosamente configurados, calibrados, controlados e regularmente inspecionados para que os valores estejam conforme o reportado no Item 14. O protocolo do ensaio deve ser instalado no sistema operacional da unidade e validado para a lavagem e leitura. Além disso, a estação de trabalho que faz o manuseio de líquidos (aspiração, dispensação e lavagem) deve ser validada e configurada corretamente. Deve-se ter uma atenção particular para evitar o extravasamento de líquido (carry over) das agulhas utilizadas na dispensação e lavagem. Isso deve ser estudado e controlado para minimizar a possibilidade de contaminação de poços adjacentes. O uso das estações de trabalho automatizadas é recomendado para triagem de sangue quando o número de amostras testadas excederem 20 - 30 unidades por corrida.
Nota 1: Ao utilizar equipamentos automáticos, no caso de o suporte de frasco do instrumento não encaixar com os frascos disponibilizados no kit, transferir a solução para frascos apropriados e identificar com a mesma etiqueta do frasco original. Essa operação é importante, pois pode evitar troca de conteúdo dentro dos frascos. Quando o teste acabar, retornar os frascos com etiquetas para temperatura 2 a 8°C, firmemente fechados.
Nota 2: O Serviço de Atendimento ao Cliente oferece suporte para o usuário na configuração e checagem de instrumentos usados concomitantemente com o kit, para assegurar que os requerimentos descritos sejam cumpridos. O suporte também é oferecido para a instalação de novos instrumentos a serem utilizados com o kit.
11. CONTROLE PRÉ-ENSAIO E OPERAÇÕES
1. Verificar a data de validade do kit impressa na etiqueta externa da caixa. 2. Verificar se os componentes líquidos não estão contaminados por
partículas visíveis a olho nu ou grumos.
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4. Diluir o conteúdo do Tampão de Lavagem Concentrado 20x conforme descrito no item 9.
5. Deixar os outros componentes atingirem a temperatura ambiente. 6. Configurar a incubadora ELISA a 37°C e preparar a lavadora de ELISA por
meio de priming com a solução de lavagem diluída de acordo com as instruções do fabricante. Configurar o número certo de ciclos de lavagem. 7. Verificar se o leitor de ELISA foi ligado por, pelo menos, 20 minutos antes
da leitura.
8. Ao utilizar uma estação de trabalho automatizada, ligar a estação, verificar a configuração e checar se o protocolo de ensaio correto está sendo utilizado.
9. Verificar se as micropipetas estão configuradas para o volume necessário. 10. Verificar se todos os outros equipamentos estão prontos para uso. 11. Em caso de problemas não continuar o teste e comunicar ao supervisor do
laboratório. 12. PROTOCOLO
O ensaio deve ser realizado de acordo com as instruções abaixo. Manter o mesmo tempo de incubação para todas as amostras em teste.
1. Diluir as amostras 1: 101 em um microtubo/placa de diluição (exemplo: 1.000 µL de Diluente de Amostra + 10 µL de amostra). Os Controles já estão prontos para uso. Misturar cuidadosamente todos os componentes líquidos no vortex.
2. Colocar o número necessário de strips no suporte de micropoços. Deixar o poço A1 vazio para o branco.
3. Dispensar 100 µL de Controle Negativo em triplicata e 100 µL de Controle Positivo Médio e Controle Positivo Alto em duplicata. A seguir, dispensar 100 µL das amostras diluídas em cada poço de acordo com o mapa de trabalho.
4. Incubar a microplaca por 60 minutos a +37°C.
Nota: as tiras devem ser seladas com o filme selador fornecido somente quando o teste for realizado manualmente. Não selar as tiras quando forem utilizados sistemas automatizados.
5. Lavar os micropoços 4-5 vezes: aspiração + dispensação de 350 µL/ poço de solução de lavagem.
6. Pipetar 100 µL do Conjugado Enzimático em cada poço, exceto no poço A1, e selar com o filme selador.
Nota: cuidado para não tocar a superfície interior de cada poço com a ponteira preenchida com a Enzima Conjugada. Pode ocorrer contaminação. 7. Incubar a microplaca por 60 minutos a +37°C.
8. Lavar os micropoços conforme o passo 5.
9. Pipetar 100 µL do Cromogênio/Substrato em cada poço, incluindo o A1. Incubar a placa em temperatura ambiente (+18°C a +24°C) por 20 minutos no escuro.
Nota: não expor diretamente a luz forte. Pode ser gerada uma alta interferência de fundo (background).
10. Pipetar 100 µL da Solução STOP em todos os poços. A adição da solução irá mudar a cor do controle positivo e amostras positivas de azul para amarelo.
11. Medir a intensidade da cor da solução em cada poço na leitora em filtro de 450 nm (leitura) e de 620 – 630 nm e o branco no poço A1.
Notas Gerais Importantes:
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2. A leitura deve ser realizada logo após a adição da Solução STOP e de não mais do que 20 minutos após a sua adição. Há chances de oxidação do cromógeno podendo levar a um elevado background.
13. ESQUEMA DE ENSAIO Método Operações Controles Amostras diluídas 1:101 100 µL 100 µL 1ª Incubação 60 minutos Temperatura +37°C
Passo de lavagem 4-5 ciclos Conjugado Enzimático 100 µL
2ª Incubação 60 minutos
Temperatura +37°C
Passo de lavagem 4-5 ciclos Cromógeno/Substrato 100 µL
3ª Incubação 20 minutos
Temperatura Ambiente
Solução STOP 100 µL
Leitura OD 450 nm
Um exemplo de esquema de dispensação para análise segue abaixo: Microplaca 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 A BCO A1 B CN A2 C CN A3 D CN A4 E CPM A5 F CPM A6 G CPA A7 H CPA A8
LEGENDA: BCO: Branco; CN = Controle Negativo; CPM = Controle Positivo Médio, CPA= Controle
Positivo Alto e A = Amostras.
14. CONTROLE DE QUALIDADE INTERNO
Uma verificação é realizada nos controles sempre que o kit for utilizado a fim de verificar se os valores OD450 nm estão como esperados e informados na tabela abaixo:
Verificação Requisitos
Poço em branco < 0,100 OD450 nm
Controle Negativo (CN) < 0,100 OD450 nm após blanking Controle Positivo Alto (CPA) OD450 nm > 1,200 Controle Positivo Médio (CPM) OD450 nm > 0,400
15. CÁLCULO DO VALOR DE CORTE (Cut-off)
Se o teste for validado conforme Item 14, os resultados das amostras são calculados por meio de cut-off determinado pela média de valor OD450 nm do controle positivo médio (CPM), utilizando a seguinte fórmula:
O valor de cut-off encontrado para o teste é usado para a interpretação dos resultados que serão descritos abaixo.
Nota: Quando o cálculo dos resultados for feito pelo sistema operacional de uma estação de trabalho automatizada, tenha certeza de que a formulação adequada está sendo utilizada para calcular o valor de corte e assim gerar uma interpretação correta de resultados.
16. INTERPRETAÇÃO DOS RESULTADOS
Os resultados dos testes são interpretados como proporção da amostra OD450 nm (S) e o valor de corte (Co), ou S/Co, de acordo com a tabela a seguir:
Instrução de Uso_XG-CVG-MB_Rv.01_OUT_2017 ≥ 1,1 Positivo
Um resultado negativo indica que o paciente não foi infectado pelo vírus Chikungunya. O resultado positivo é indicativo de infecção em curso por CHIKV. Qualquer paciente que tiver um resultado indeterminado deve ser testado novamente. A segunda amostra deve ser coletada do paciente cerca de 1-2 semanas depois e examinada.
17. ESPECIFICIDADE, SENSIBILIDADE E PRECISÃO
A especificidade é definida como a probabilidade de os testes darem resultados negativos na ausência do analito específico. Um total de 470 amostras negativas de pacientes não infectados por CHIK foram testados. Um valor de especificidade de 98% foi encontrado.
Foram examinadas 20 mulheres grávidas saudáveis e amostras potencialmente interferentes (hemolizadas, lipêmicas, etc.). Nenhuma interferência foi observada.
Não foi observada falsa reatividade devido ao método de preparação das amostras. O plasma, derivado de diferentes técnicas padrão de preparação como citrato, EDTA e heparina, e soros foram utilizados para determinar o valor da especificidade.
As amostras congeladas foram testadas, também, para verificar se há interferências devido à coleta e armazenamento. Não foi observada interferência.
Foi testado um painel de amostras positivas para anticorpos contra flavivírus (em particular vírus da dengue, vírus Zika e vírus do vírus do Nilo Ocidental). Foi observado um grau de reação cruzada.
Sensibilidade >98% Especificidade >98%
A sensibilidade é definida como a probabilidade de o teste dar resultados positivos na presença de analito específico.
A sensibilidade diagnóstica foi avaliada internamente em um painel de pacientes com CHIK. Foi encontrada uma sensibilidade diagnóstica de 100%.
A precisão foi calculada em amostras examinadas em repetições e em diferentes corridas. O CV% variou de 2 a 16% dependendo dos valores de OD450 nm.
18. SOLUÇÃO DE PROBLEMAS
Problema Verificar
Poço Branco (branco) > 0,100 OD450 nm
1. Verificar se a solução de Substrato/Cromógeno não foi contaminada durante o ensaio.
Controle Negativo (NC) > 0,100 após branco
1. Verificar se o procedimento de lavagem e as configurações da lavadora estão validados como no
estudo de pré-qualificação.
2. Verificar se a solução de lavagem apropriada foi utilizada e se a lavadora foi preparada com a solução
antes do uso.
3. Verificar se nenhum erro foi cometido no procedimento de ensaio (dispensação de um calibrador
positivo ao invés do negativo);
4. Verificar se nenhuma contaminação do calibrador negativo ou dos seus poços ocorreu devido a amostras
positivas, por via de respingos ou do conjugado enzimático.
5. Verificar se as micropipetas não foram contaminadas com amostras positivas ou com o conjugado enzimático.
6. Verificar se as agulhas da lavadora não estão bloqueadas ou parcialmente obstruídas. Controle Positivo Alto
< 1,200 OD450nm
1. Verificar se o procedimento foi executado corretamente.
2. Verificar se nenhum erro foi cometido na distribuição (dispensação de calibrador negativo ao invés do
calibrador positivo alto).
3. Verificar se o procedimento de lavagem e se as configurações da lavadora estão validadas conforme o
estudo de pré-qualificação.
4. Verificar se nenhuma contaminação externa do calibrador positivo ocorreu.
Controle Positivo Médio
< 0,400 OD450nm
1. Verificar se o procedimento foi executado corretamente.
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calibrador positivo médio).
3. Verificar se o procedimento de lavagem e se as configurações da lavadora estão validadas conforme o
estudo de pré-qualificação.
4. Verificar se nenhuma contaminação externa do calibrador positivo ocorreu.
Se um ou mais dos problemas descritos na tabela acima acontecer, depois da investigação, informe qualquer problema residual ao supervisor para futuras ações.
19.
LIMITAÇÕESDevido à conhecida alta homologia genética do CHIKV com os outros flavivírus como o vírus Zika e Dengue, observaram-se reações cruzadas nas populações afetadas por essas infecções (principalmente pacientes de regiões endêmicas). O ensaio deve, em princípio, ser utilizado apenas para testar indivíduos que satisfaçam os critérios clínicos (por exemplo: sinais e sintomas clínicos associados à infecção pelo CHIKV) e/ou critérios epidemiológicos (por exemplo: histórico de residência ou viagem a uma zona geográfica com transmissão ativa do CHIKV no momento da viagem, ou outros critérios epidemiológicos). Os resultados do ensaio são então úteis para a identificação presuntiva de anticorpos IgG para o vírus Chikungunya. Resultados positivos e indeterminados somente não são definitivos para diagnóstico de infecção pelo vírus Chikungunya.
Resultados falso-positivos repetitivos, não confirmados por outro ELISA, foram avaliados como menos de 2% de flavivírus normais e da população livre do vírus Chikungunya, devido a substâncias interferentes não identificadas.
Foi observado que amostras congeladas contendo partículas de fibrina e grumos após o descongelamento geram alguns resultados falsos. Essas amostras devem ser testadas somente após clarificação por filtração ou centrifugação.
20.
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