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Aislamiento e identificación de hongos de la región del Parque Nacional de Iguazú - Paraná

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Academic year: 2021

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AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN DE HONGOS DE LA REGIÓN

DEL PARQUE NACIONAL DE IGUAZÚ – PARANÁ

NARANJO, Samantha Beatríz E. Estudiante de Ciencias Biológicas – Ecología y Biodiversidad – ILACVN –UNILA; E-mail: samantha.naranjo@aluno.unila.edu.br; BONUGLI-SANTOS, Rafaella C. Docente de Ciencias Biológicas – Ecología y Biodiversidad – ILACVN – UNILA; E-mail: rafaella.santos@unila.edu.br;

1 Introducción

A pesar que los hongos desempeñan un rol esencial en el reciclaje de materia orgánica, dentro de los procesos ecosistémicos, según estimativas mundiales de cada 15 especies fúngicas apenas una ha sido descrita (Rodrígues et al., 2010). Consecuentemente, existe una gran necesidad de estudiar la diversidad fúngica en ambientes naturales (Rodrígues et al., 2010); aún más en los ambientes mínimamente impactados como el Parque Nacional de Iguazú (PNI), la mayor área remanente del Bosque Atlántico Estacional Semidecíduo del sur de Brasil, donde la microbiota es prácticamente desconocida.

En ese sentido, el objetivo del presente proyecto es evaluar la diversidad de hongos del PNI – Paraná e identificar el impacto del estado de conservación del ambiente frente a diversidad microbiana. El foco de esta investigación son los hongos de suelo, mineralizadores de las macromoléculas provenientes de residuos orgánicos. Su actividad se ve afectada por innumerables factores bióticos y abióticos, tal como la gran proporción de hierro del suelo del PNI. Dicha variable, al funcionar como recurso o condición, podría ser clave para albergar una diversidad fúngica diferenciada en este ambiente, al afectar la producción de metabolitos secundarios esenciales en su sobrevivencia, una situación poco evaluada hasta ahora. Los resultados obtenidos abrirán espacios para futuras investigaciones en diferentes áreas microbiológicas, biotecnológicas y ecológicas.

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2.1 Local de estudio, colecta y aislamiento

En dos puntos del PNI –de un área en recuperación ambiental hace más de 10 años (25°36’21” S 54°24’43” O) y de un área impactada antropológicamente (25°37’17” S 54°26’46” O) se delimitaron parcelas de 10x10 cm, con 10 cm de profundidad desde la superficie del suelo, para recolectar las muestras. Éstas fueron acondicionadas en bolsas plásticas, identificadas y transportadas bajo refrigeración al laboratorio.

Los medios de cultivo Extracto de Malta (MA2: 0,02 g∕mL de extracto de malte y 0,02

g∕mL de agar) y Papa Dextrosa Agar (Himedia®) fueron usados en el aislamiento, para estimular el crecimiento de hongos micorrízicos, principalmente de los filos Ascomycota y Basidiomycota. Se acrecentó 0,001 mL∕mL del antibiótico Cloranfenicol 500 mg disuelto en 5 mL del agua. Además, los medios contenían el reactivo guaiacol (G: 4,4x10-4 mL/mL), una

estructura química que estimula la producción de enzimas lignolíticas.

Inicialmente, un gramo de suelo, en ambos casos y separadamente, fue sometido a una dilución en serie hasta la 10-8. De todas las diluciones, excepto la 10-1 de ambos suelos, fueron

inoculados 100 uL en los medios de cultivo em tríplicas. Las placas fueron mantenidas en incubadora máximo por 21 días a 28°C.

2.2 Purificación

No obstante, el crecimiento fue verificado cada dos días para transferir las nuevas colonias visibles a otras placas. Al obtener las culturas puras, se las preservó por el método en agua estéril y glicerol al 20%; mantenidas en refrigeración a 4°C y a -15°C, respectivamente, siendo parte de la Colección de Cultura del laboratorio de microbiología de la Unila.

2.3 Caracterización morfológica de las comunidades fúngicas

La morfología macroscópica de la colonia fúngica fue observada por el estereoscopio y la microscópica al preparar láminas coloreadas con lactofenol (azul de algodón). Las imágenes fueron documentadas resultando en un acervo informatizado de los aislados. La caracterización de los grupos taxonómicos se basó en los criterios morfológicos, determinados en la literatura (Menezes et al. 2010).

3 Fundamentación teórica

La filogenia de los hongos no está completamente esclarecida y su ecología es pobremente entendida. Os principais grupos encontrados no ambiente terrestre pertenecer aos filos Ascomycota, Basidiomycota, Gloreomycota e Zygomicota.

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Los Ascomycota son el grupo más diverso y más diverso de hongos. Los Basidiomycota se alimentan de materia orgánica en descomposición y se asocian con las raízes de plantas vasculares, conocidos como ectomicorrízicos. Los Gloreomycota son endomicorrizos (micorrizos arbusculares intracelulares) que viven en mutualismo con la mayoría de plantas herbáceas y árboles tropicales (Redecker, 2008), aunque también están en simbiosis con algas, cianobacterias y plantas no vasculares. Los Zygomicota son más comunes descomponen las frutas con alta cantidad de azúcar (Menezes et al., 2010).

El suelo constituye un hábitat complejo, heterogéneo y dinámico, que alberga una diversidad de microorganismos sumamente amplia. Los terrenos del PNI son parte de los extensos derrames volcánicos –constituidos por rocas basálticas–, que ocupan aproximadamente 2/3 la porción del estado del Paraná (Salamuni, 1969). La alta concentración de argilominerales, óxidos e hidróxidos de aluminio el suelo del PNI resulta de un estado avanzado de intemperización de los minerales primarios/secundarios menos resistentes, consecuentemente los nutrientes y el agua se encuentran próximos al horizonte superficial del suelo. En este tipo de suelo predominan los hongos micorrízicos arbusculares (AMF), quienes potencializan la capacidad de absorción de nutrientes por las plantas, influyen en la composición de las comunidades de plantas , aportan a la sustentabilidad y estabilidad del suelo , además del reciclaje de nutrientes (Potapov y Tiunov, 2016).

4 Resultados

En total 26 hongos fueron aislados, siendo que el 42,3% de las colonias crecieron a partir de la dilución 10-2 y apenas dos hongos fueron provenientes de la dilución 10-8. No

obstante, 5 fueron inviables a la preservación y descartados del estudio. Dos 21 isolados, 10 fueron provenientes del primer local y 11 del segundo. En relación a los medios de cultura, también no hubo diferencia en relación a la cantidad de aislados, 10 fueron cultivados de MA2

y 11 de BDA.

Hasta el momento se identificaron tres hongos del género Penicilum (1CM3, 1CB5 y 1BB4) provenientes apenas del local en recuperación ambiental advance. O género

Penicilium está ampliamente distribuido en la naturaleza y es de grande importancia en la

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En el local más impactado se identificó un aislado de Aspergillus (2CB4) y uno característicos del género Fusarium (2AM9). Como el Penicilium, el Aspergillus y el

Fusarium son cosmopolitas y participan en la degradación de la materia orgánica. Sin

embargo, los Fusarium son frecuentemente fitopatógenos facultativos. En ambos locales, algunos hongos presentaron estructuras reproductivas del tipo clamideosconidio (1BB1, 1BB3 y 2BM5), que pueden estar relacionados con la resistencia frente a las condiciones ambientales, en este caso, probablemente por la presencia del reactivo guaiacol en el medio de cultivo. En total 13 aislados no presentaron estructuras que permitieran la caracterización morfológica y serán cultivados por el método de microcultivo. Además, los datos serán sometidos a caracterización molecular y después de la finalización del identificación presentado a análisis estadísticos.

5 Conclusiones

Independientemente del local, la cantidad de aislados viables fue prácticamente la misma, sin embargo existió géneros específicos para cada punto. Los géneros especificados son comunes en el suelo y se espera una diversidad característica del suelo de cada sitio al identificar todas las especies. La identificación y los análisis estadísticos permitirán evaluar el impacto de las condiciones ambientales frente a la diversidad. Sobre todo, los 21 aislados representan uno de los primeros trabajos con respecto a la diversidad microbiana del PNI. 6 Principales referencias bibliográfica

MENEZES C. B. A. et al. Microbial diversity associated with algae, ascidians and sponges from the north coast of Sao Paulo state, Brazil. Microbiol. Res. 165 466–482, 2010.

POTAPOV, A. M.; TIUNOV, A. V. Stable isotope composition of mycophagous collembolans versus mycotrophic plants: Do soil invertebrates feed on mycorrhizal fungi?. Soil Biology and Biochemistry. 93 115–118, 2016.

REDECKER, D. Glomeromycota. Arbuscular mycorrhizal fungi and their relative(s). Mycologia (98) 6, 2006.

RODRIGUES, L. M. et al. Levantamento de Fungos Agaricales Clements (Cogumelos) no Parque Nacional do Iguaçu – Pr, Brasil: Primeiros Registros. En: 61º Congresso Nacional de Botânica, sep, 2010, Manaus. Disponible en: <http://www.botanica.org.br/trabalhos-cientificos/61CNBot/ResumoS01_CNBot_2010_322.pdf>. Accedido el: 6 feb, 2015.

SALAMUNI, R. 1969. Fundamentos geológicos do Paraná: in História do Paraná. Ed. Grafi-par. Curitiba, v.II, p. 13-128.

Referências

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