FAPESP PROGRAMA BIOTA/MICRO-ORGANISMOS LISTA COMENTADA DOS VÍRUS DE PLANTAS DESCRITOS NO BRASIL ( ) Coordenação: E. W.

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FAPESP

PROGRAMA BIOTA/MICRO-ORGANISMOS

LISTA COMENTADA DOS VÍRUS DE PLANTAS DESCRITOS NO BRASIL (1911-2013)

Coordenação: E. W. KITAJIMA

Dept. Fitopatologia e Nematologia, Escola Superior de Agricultura Luiz de Queiroz, Universidade de São Paulo

INTRODUÇÃO

Esta listagem tenta arrolar todos os vírus e viróides detectados e descritos no país, em plantas cultivadas e/ou da vegetação espontânea, e foi baseada nas publicações disponíveis sobre o assunto, em periódicos ou relatos feitos em congressos, no país e no exterior, por pesquisadores nacionais ou estrangeiros. Ela não é permanente e deverá sofrer contínuas alterações (adições, deleções, edições, etc.), quando necessárias, contando com informações fornecidas pelos especialistas do país. Estará à disposição da comunidade científica on line no site do Programa Biota. A listagem básica foi feita em ordem alfabética da espécie ou gênero das plantas, nas quais os vírus foram encontrados naturalmente infetando-as. Em cada caso, faz-se um pequeno comentário sobre sintomas, local de ocorrência e outras informações que foram julgadas pertinentes, além de referências de onde os dados foram extraídos. Para viroses das espécies cultivadas mais importantes, contou-se com apoio de especialistas para sua edição. Não são consideradas plantas experimentalmente infectadas. Acham-se à disposição dos interessados também listagens auxiliares: (a) Sobre a ocorrência destes vírus por unidades da federação; (b) Por vírus, seguindo a mais recente taxonomia dos vírus, de acôrdo com o International Committee of Taxonomy of Viruses (ICTV); (c) Listagem dos virologistas brasileiros e suas instituições, incluindo os aposentados e falecidos; (d) E last but not least, uma listagem das publicações sobre vírus de plantas, ano por ano, a partir de 1911 até 2013. Obviamente estas listagens não são perfeitas e devem haver omissões e equívocos, que este coordenador espera sejam reparados, contando com a ajuda da comunidade para indicar as correções necessárias, que serão introduzidas na medida que forem sendo recebidas. Deve-se mencionar que muitas destas informações foram revisadas por colegas virologistas especializados em determinadas culturas.

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1. LISTAGEM POR ESPÉCIE DA PLANTA HOSPEDEIRA

As plantas acham-se dispostas em ordem alfabética por espécies ou gêneros. Incluem-se o nome científico completo com autoridades, nome vulgar (quando disponível) e família botânica. Para a correta menção dos nomes científicos, aqueles indicados nas publicações foram confrontados com os nomes do site “International Plant Name Index” e outros índices. Dentro de cada espécie citada, os vírus acham-se listados pelo gênero, em ordem alfabética, e dentro do gênero pelo nome da espécie em inglês (nomeclatura oficial- grafado em itálico, quando o vírus acha-se incluído na lista oficial do International Committee on Taxonomy of Viruses- ICTV, e grafia normal, quando ainda aguarda este fato). A sequência dos gêneros/espécies de vírus dentro de cada espécie botânica segue a da listagem dos vírus feita pelo ICTV em 2011. Os nomes dos vírus, sempre que factível, encontram-se seguidos da sua tradução para o portugês, visando à divulgação das viroses pelos extensionistas aos produtores. Há também muitos casos em que o vírus não se acha identificado, sendo considerado possível integrante de um gênero (p.ex. Potyvirus, Tospovirus, etc.), e neste caso encontram-se listados como “sem identificação”. Incluem-se casos mais antigos, em que há suspeitas de viroses, sem trabalhos complementares para confirmação, e que se acham incluídos, como “possível virose” para fins de registro histórico, aguardando novos registros e identificações.

A

Abelmoschus esculentus Moench (quiabo) Malvaceae Begomovirus

Abutilon mosaic Brazil virus (AbMBV); vírus do mosaico do abutilon

Sintomas de mosaico amarelo em folhas de quiabeiro, foram identificados como causados pelo AbMBV. Esta virose está comumente presente nesta cultura, mas em baixa incidência em SP (1). A cv. Chifre de Veado, seleção Sta. Cruz 47 desenvolvida na UFRRJ mostrou alta resistência a AbMV (2). Constatado em Manaus, AM (3).

Ref.: (1) Costa, A.S. Phytopathol.Zeit. 24: 97. 1955; (2) Sudo, S. et al. Fitopatologia 9: 72; 1974; (3) Kitajima, E.W. et al. Acta Amazonica 9: 633. 1979

Sida micrantha mosaic virus (SimMV); vírus do mosaico de Sida micrantha

Detectado em GO e DF em quiabeiros com sintomas de mosaico em quiabeiro. Agente causal caracterizado como SimMV (1)

Ref.: (1) Aranha, A.S. et al. Trop.Plant Pathol. 36: 14. 2011.

Abutilon striatum Dicks (Lanterninha-japonesa, sininho, campainha) Malvaceae

(revisado por Maria Amelia V. Alexandre)

Begomovirus

Abutilon mosaic Brazil virus (AbMBV) vírus do mosaico do abutilon

A primeira descrição da clorose infecciosa foi feita em S.Paulo, SP, por Silberschmidt (1), mas acha-se disseminada praticamente em todo país. O agente causal foi referido como vírus do mosaico do abutilon. Verificou sua não-transmissibilidade por sementes e obteve-se transmissão por enxertia (de Abutilon para Abutilon e para Sida spp.) concluindo que os vírus que infetam estes gêneros seriam essencialmente os mesmos. Demonstrou-se experimentalmente que a mosca branca Bemisia tabaci

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transmite este vírus (2, 3). AbMBV tem sido encontrado infetando naturalmente várias outras espécies de malváceas e de outras famílias, incluindo plantas de interesse econômico como feijoeiro, e soja e tomateiro. Foi transmitido mecanicamente com dificuldade. O sequenciamento completo do genoma mostrou que o isolado brasileiro (da BA) é diferente do isolado das Índias Ocidentais, tendo sido designado mosaico do abutilon do Brasil (Abution mosaic Brazil virus- AbMBV) (4).

Ref.: (1) Silberschmidt, K. Arq.Inst.Biol. 14: 105. 1943; (2) Orlando, A. & Silberschmidt, K. Arq.Inst.Biol. 16: 1. 1946; (3) Flores, E. & Silberschmidt, K. Phytopath.Z. 60:181-195.1967; (4) Paprotka, T. et al. Arch.Virol. 155:813. 2010.

Obs.: há muitas viroses em várias plantas, descritas como sendo causadas pelo AbMBV. Muitos destes casos devem ser revistos, se possível, pois podem ser causadas por outros begomovirus. As descrições foram feitas quando não existiam ferramentas que permitiam a detecção e discriminação molecular, baseando-se principalmente em sintomatologia e transmissão pela mosca branca Bemisia tabaci. Contudo, para fins de registro foram respeitadas as identificações originais.

Acanthospermum hispidum DC (Carrapicho-de-carneiro) Asteraceae Curtovirus, possível

Brazilian tomato curly top virus (BrCTV); vírus do broto crespo do tomateiro

Plantas de carrapicho-de-carneiro infectadas mostram enfezamento, clorose, clareamento das nervuras. Serve como reservatório natural do vírus que pode infectar culturas como tomateiro e fumo (1, 2). Descrito em SP.

Ref.: (1) Bennett, C.W. & Costa, A.S. J. Agric. Res. 78: 675. 1949; (2) Costa, A.S. III Sem.Bras.Herbicidas e Ervas Daninhas p. 69. 1960

Obs.: Este é um caso que para uma identificação precisa deste vírus, uma revisão a nível molecular é necessária. É possível que BrCTV represente um isolado do Beet curly top virus (BrTCTV), Curtovirus, descrito nos EUA.

Aeschynanthus pulmer (Blume) G. Don. (Flor batom) Gesneriaceae

Cucumovirus

Cucumber mosaic virus (CMV); vírus do mosaico do pepino

O CMV foi encontrdo em SP induzindo em flor batom, manchas cloróticas foliares. Não há informações sobre danos (1).

Ref.: (1) Alexandre, M.A.V. et al (ed). Plantas Ornamentais: Doenças e Pragas. 319pp. 2008.

Allamanda cathartica Schott. (Alamanda) Apocynaceae

Dichorhavirus

Dichorhavirus não identificado

Plantas de alamanda foram encontradas em jardim residencial de Manaus, AM,

exibindo sintomas de manchas cloróticas. Exames ao microscópio eletrônico mostraram efeitos citopáticos do tipo nuclear, dos vírus transmitidos por Brevipalpus (1).

Ref.: (1) Rodrigues, J.C.V. et al. Trop. Plant Pathol 33: 12. 2008. Cucumovirus

Manchas anulares locais e sistêmicas causadas por um isolado do CMV, em folhas de alamanda. Plantas afetadas tendem a derrubar as flores prematuramente. Experimentalmente, ocorre transmissão mecânica e por afídeos. Não há informações sobre eventuais prejuízos. Descrito em SP (1, 2) e no DF (3).

Ref.: (1) Silberschmidt, K. & Herbas, R. Zentralbl. Bakt. Parasit.Infektionskrank.Hygiene 123: 330-335. 1969; (2) Alexandre, M.A.V. et al (ed). Plantas Ornamentais: Doenças e Pragas. 319pp. 2008.(3) Rodrigues, M.G.R. et al. Fitopatol.Bras. 9: 151-155. 1984.

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Allium ascalonicum Baker (Cebolinha) Liliaceae Carlavirus e Potyvirus

Carlavirus e Potyvirus não identificados

Carlavírus e potyvírusforam detectados em cebolinha, em SP com sintomas de faixas cloróticas, sem identificação dos vírus (1).

Ref.: (1) Colariccio, A. et al. Virus Rev.& Res. (Res. VII ENV p. 281). 1996

Allium cepa L. (Cebola) Liliaceae Tospovirus

Iris yellow spot virus (IYSV); vírus da mancha amarela da Iris

A primeira constatação foi feita em amostra de plantas de cebola, cv. ‘Pêra Baia’ procedente de Rio Grande, RS, em amostras com sintomas de lesões elípticas e centro clorótico e bordos necróticos deprimidos, referido como “sapeca” pelos produtores. O agente causal foi identificado como um tospovirus (1). Condição similar foi constatada em cebolais em Petrolina, PE, localmente conhecida como “sapeca”. Estudos detalhados mostraram que este tospovirus era distinto dos demais conhecidos no Brasil e idêntico a uma nova espécie descrita em Iris, referida como IYSV (2, 3), tendo o vetor identificado como o trips Thrips tabaci (4).

Ref.: (1) de Ávila, A.C. et al. Fitopatol.Bras. 535. 1981; (2) Pozzer, L. et al. Fitopatol. Bras. 19: 321, 1994; (3) Plant Dis.83: 345. 1999; (4) Nagata, T. et al. Plant Dis. 83: 399. 1999.

Potyvirus

Onion yellow dwarf virus (OYDV); vírus do nanismo amarelo da cebola

Sintomas de mosaico em faixas amarelas ao longo da folha e redução de porte, em plantas de cebola. Referido pelos produtores como crespeira. Primeiras constataçoes em cebolais, na região de Piedade e Sta.Cruz do Rio Pardo, SP e B.Horizonte, MG (1). O agente causal é o OYDV disseminado por pulgões, mas não pelas sementes. Tem sido rara sua ocorrência e em baixa incidência. Além da cultura da cebola o OYDV, foi constatado em cebolinha-de-cheiro e deve fazer também parte do complexo de vírus do alho. Tem sido detectado por métodos sorológicos e moleculares (3, 4). Há relatos de comportameno varietal distinto face à infecção pelo OYDV, em cebola (2).

Ref.: (1) Costa, A.S. et al. Rev.Olericult. 3: 67. 1966; (2) Assis, M.I.T. et al. Fitopatol. Bras. 18: 287. 1993 ;(3) Fitopatol.Bras. 20: 469.1995; (4) Muller,N.T.G. & Daniels, J. Fitopatol.Bras. 25: 445. 2000.

Allium fistulosum L. (Cebolinha-de-cheiro) Liliaceae Potyvirus

Onion yellow dwarf virus (OYDV); vírus do nanismo amarelo da cebola Mosaico em faixa em cebolinha-de-cheiro, menos severo que em cebola

ficando as plantas mais cloróticas e menos vigorosas. As folhas podem se curvar para baixo. Em ataques severos a touceira pode morrer. Constatado inicialmente em amostras colhidas em Campinas, SP, o vírus foi identificado como isolado do OYDV. Transmissão por afideos e perpetuação por mudas infectadas. Pode servir como fonte de inóculo do OYDV para cebola (1).

Ref.: (1) Costa, A.S. et al. O Biológico 37: 158. 1971.

Allium sativum L. (Alho) Liliaceae

(revisado por Renate Krause-Sakate e Thor V.M. Fajardo)

Allexivirus

Garlic virus A (GarV-A); vírus A do alho Garlic virus B (GarV-B); vírus B do alho Garlic virus C (GarV-C); vírus C do alho

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Garlic virus D (GarV-D); vírus D do alho Garlic virus X (GarV-X); vírus X do alho

Garlic mite-borne filamentous virus (GarMbFV); Vírus filamentoso transmitido pelo ácaro do alho

Parte do complexo de vírus encontrado em alho, no DF (1), e em GO, BA, MG e RS (2,3).

Ref.: (1) Melo Fo, PA et al. Fitopatol.Bras. 26: 535. 2001; (2) Fayad-André, MS. et al. Trop.Plant Pathol. 36: 341. 2011; (3) Oliveira, M.L. et al. Trop.Plt.Pathol. 38supl 532-1. 2013.

Carlavirus

Garlic common latent virus (GarCLV); virus latente comum do alho

Dusi et al. (1) relatam no DF a ocorrência de um carlavirus em cerca de 60% em levantamentos feitos por sorologia em várias cultivares de alho assintomático. Este vírus seria GarCLV, que é sorologicamente relacionado ao GarV-C e que foi confirmado molecularmente (2). É parte dos virus que formam o complexo viral do alho e detectado no DF (3). Sua ocorrência foi verificada nos estados de BA e MG (4), PR e SP (5)..

Ref.: (1) (1) Dusi, A.N. et al. Fitopatol.Bras. 19:298. 1994; (2) Fajardo, T.V.M. et al. Virus Rev. & Res. 2: 191. 1997 ; (3) Fitopatol.Bras. 26: 619. 2001; (4) Fayad-André, MS. et al. Trop.Plant Pathol. 36: 341. 2011; (5) Mituti, T. Diss.Mestrado, IAC. 2009.

Shallot latent virus (SLV); vírus latente da chalota

Registro de sua primeira detecção no Brasil foi feita em amostras de alho coletadas nos estados de SP e PR, por ensaios de RT-PCR (1).

Ref.: (1) Mituti, T et al. Plant Dis. 95: 227. 2011.. Potyvirus

Onion yellow dwarf virus (OYDV); virus do nanismo amarelo da cebola Leek yellow stripe virus (LYSV); virus da faixa amarela do alho porró

Sintomas de faixa amarela em folhas de cebola causados pelo OYDV e/ou LYDV, transmitidos por afídeos. Sintomas de faixa amarelas nas folhas de plantas de alho. Ocorre usualmente como parte de um complexo (potyvirus, carlavirus, allexyvirus) que reduzem drasticamente a produtrividade. Detectado no RS (1). Cultura de meristemas produziram plantas livres de vírus de produtividade significativamente melhor qualitativa e quantitivamente. Detectado em MG (2). Sua identificação tem sido feita por métodos imunológicos (3, 4) ou moleculares no DF (5). O isolado do OYDV de alho aparentemente não se transmite para cebola e vice-versa. LYSV foi detectado em amostras coletadas em diferentes regiões do país (6). OYDV e LYSV foram constatados na BA e GO (7), PR, MG e SP (8).

Ref.: (1) Daniels, J. et al. Fitopatol.Bras. 2: 82. 1978; (2) Carvalho, M.G. Inf. Agropec. 12: 41. 1986; (3) Assis, M.I.T. et al. Fitopatol.Bras. 18: 288. 1993; (4) Dusi, A.N. et al. Fitopatol.Bras. 29: 298. 1994; (5) Fajardo, T.V.B. et al. Fitopatol.Bras. 26: 619.2001; (6) Fayad-André,MS et al. Virus Rev&Res 14(supl):60. 2009; (7) Fayad-André, MS. et al. Trop.Plant Pathol. 36: 341. 2011; (8) Mituti, T. Diss.Mestrado, IAC. 2009.

Alocasia sp. (Taioba, Taioba verde), Alocasia macrorhiza (L.) Schott. (Taioba

gigante) Araceae

Potyvirus

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Levantamentos feitos no DF mostraram que plantas de taioba, taioba verde e taioba gigante com sintomas de mosaico estavam infectadas pelo DsMV. Identificação feita por ensaios biológicos e microscopia eletrônica (1).

Ref.: (1) Rodrigues, M.G.R. et al. Fitopatol.Bras. 9: 291. 1984.

Alstroemeria sp. (Alstroeméria) Alstroemeriaceae

Carlavirus

Carlavirus não identificado

Folhas de alstroemeria com faixas cloróticas foram associadas à infecção por Carlavirus, em SP (1)

Ref.: (1) Seabra , P.V. et al. Arq. Inst. Biol. (supl.) 64: 61. 1997. Cucumovirus

Infecção natural de alstroeméria pelo CMV causando sintomas de mosaico, manchas e faixas cloróticas e afilamento foliar, em SP (1, 2, 3).

Ref.: (1) Costa, A.S. Summa Phytopathol. 9: 39. 1983; (2) Duarte, L.M.L. et al. Rev. Bras. Hort. Orn. 5: 24-33.1999; (3) Tombolato, A.F.C. et al. Cultivo comercial de plantas ornamentais, 1-22. 2004. Ilarvirus

Tobacco streak virus (TSV); vírus da necrose branca do fumo

Plantas com clorose, manchas e riscas necróticas foram associadas ao TSV em SP, por meio de testes sorológicos (1).

Ref.: (1) Duarte L.M.L. et al. Rev. Bras. Hort. Orn. 5: 24-33.1999. Tospovirus

Chrysantemum stem necrosis virus (CSNV); vírus da necrose da haste do crisântemo Tomato spotted wilt virus (TSWV)

Infecções detectadas em SP, em plantas de alstroméria com linhas e anéis necróticos (1, 2).

Ref.: (1) Duarte, L.M.L. et al. Rev. Bras. Hort. Orn. 5: 24-33.1999; (2) Duarte, L.M.L. Virus Rev. Res. 6: 50. 2001.

Potyvirus

Alstroemelia mosaic vírus (AlsMV); vírus do mosaico de Alstroemeria

Amostras de plantios comerciais de alstroeméria com sintomas de possível virose foram analisadas para presença de vírus. Ensaios de RT-PCR detectaram potyvirus que foi identificado como AlsMV (1).

Ref.: (1) Rivas,E.B. et al. Summa Phytopathol. 39 supl. CDRom. 2013. Potyvirus não identificado

Espécie não identificada de Potyvirus foi detectada em plantas apresentando afilamento foliar, faixa de nervuras e color breaking nas flores, em SP (1, 2).

Ref.: (1) Alexandre, M.A.V. et al. Res. X Cong. Bras. Floric. Plant. Ornam. 69. 1995; (2) Duarte, L.M.L. et al. Rev. Bras. Hort. Orn. 5: 24-33. 1999.

Althaea rosea Cav. (Malva rosa) Malvaceae

Begomovirus

Abutilon mosaic Brazil virus (AbMBV); vírus do mosaico do abutilon

Mosaico amarelo em malva rosa, causado pelo AbMBV, transmitido por mosca branca Bemisia tabaci. Relatado em SP (1, 2).

Ref.: (1) Costa, A.S. Phytopathol. Zeit. 24: 97. 1955; (2) Silberschmidt, K. & Tommasi, L.R. Ann. Acad. Bras. Cien. 27: 195-214. 1955.

Alternanthera tenella Colla (Apaga-fogo) Amaranthaceae Potyvirus

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Potyvirus não identificado

Sintomas de mosaico em apaga-fogo, no Est. Paraná,foram observados associados a um potyvirus não caracterizado que causa lesões locais em Chenopodium amaranticolor e C. quinoa (1). Tem relação sorológica com PVY mas difere na seqüência da CP com PVY e outros poytvirus (2)

Ref.: (1) Fukushigue, C.Y. et al., Fitopatol.Bras. 17: 209. 1992; (2) Fitopatol.Bras. 25: 441. 2000.

Amaranthus sp. (Caruru) Amaranthaceae Tospovirus

Tospovirus não identificado

Arqueamento, rugosidade, palidez das nervuras, pintas cloróticas e grandes áreas amarelas e anéis necróticos nas folhas e curvatura de topoeme caruru associado à infecção por um tospovirus não identificado (1). Possivelmente serve como reservatório natural de Tospovirus para plantas cultivadas. Relatado em SP.

Ref.: (1) Costa, A.S. & Forster, R. Bragantia 2: 83. 1942. Potyvirus

Potato virus Y (PVY); vírus Y da batata

Infecção natural de caruru pelo PVY, sem menção da sintomatologia, constatada no Est.M. Gerais (1).

Ref.: (1) Oliveira, C.D. et al. Fitopatol.Bras. 21: 427. 1996.

Ambrosia elatior L. (Losna-selvagem) Asteraceae Polerovirus

Potato leaf roll virus (PLRV); Vírus do enrolamento das folhas da batata

Infecção natural de losna-selvagem pelo PLRV, sem menção da sintomatologia, constatada no Est.M. Gerais (1).

Ref.: (1) Oliveira, C.D. et al. Fitopatol.Bras. 21: 427. 1996

Ambrosia polystachya DC (Cavorana) Asteraceae Ilarvirus

Tobacco streak virus (TSV) isolado brasileiro; vírus da necrose branca do fumo

Infecção natural de cavorana pelo TSV causando mosaico nas folhas de cavorana, em SP. Foi com esta planta que se registrou o único caso de transmissão do TSV no Brasil, com o tripes Frankliniella sp., coletado da inflorescência de cavorana infetada, que experimentalmente transmitiu TSV para fumo e soja (1, 2).

Ref.: (1) Costa, A.S. & Lima No., V.C. Fitopatologia 11: 11. 1976; (2) Lima No., V.C. et al. Rev. Setor Cien.Agr.UFPr 4:1. 1982.

Amorphophallus konjac K. Koch (Konjac) Araceae Potyvirus

Dasheen mosaic virus (DsMV); vírus do mosaico do taro

Mosaico, amarelecimento e reduzido desenvolvimento das raízes foi constatado em A.konjac em SP. A enfermidade foi atribuída à infecção pelo DsMV por sorologia e microscopia eletrônica (1).

Ref.: (1) Chagas, C.M. et al. Fitopatol.Bras. 18: 551. 1993.

Ananas comosus (L.) Merr. (Abacaxi-gigante) Bromeliaceae Nucleorhabdovirus

Nucleorhabdovirus não identificado

Faixas clorotricas em folhas de abacaxi-gigante foram associadas a um Nucleorhabdovirus não caracterizado, por microscopia eletrônica. A enfermidade foi

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observada em Tarauacá, Estado do Acre, sem informações adicionais sobre incidência e perdas. Não houve experimentos de transmissão mecânica. Vetor desconhecido (1). Ref. (1) Kitajima, E.W. et al. Phytopahtol. Zeit. 82: 83. 1975.

Ananas sativus Schult. (Abacaxi) Bromeliaceae (revisado por P.E.Meissner Fo.)

Ampelovirus

Pineapple mealybug associated wilt virus (PMWaV 1, 2, 3); vírus associado com a murcha do abacaxi 1, 2, 3

A infecção de abacaxizeiro pelo PMWaV 1 e 2 causa sintomas avermelhamento das folhas, margens das folhas ficam amareladas, ocorrendo enrolamento dos bordos das folhas para baixo, com secamento das pontas. As plantas apresentam poucas raízes e são arrancadas com facilidade. Ocorre a murcha e eventualmente a morte das plantas (3). PMWaV é transmitido por cochonilhas, mas não é transmissível mecanicamente ou pelas sementes, sendo o abacaxizeiro seu único hospedeiro. Identificação baseada em sintomatologia e microscopia eletrônica na BA (1). Ocorrência generalizada onde se cultiva abacaxi. O combate às cochonilhas e das formigas associadas às cochonilhas e a seleção e produção de mudas sadias constituem-se nas medidas de controle da enfermidade. Detecção do PMWaV-1 e 2 no ES (2), PB, PR (5) PMWaV-2 e 3 no RS (5) PMWaV-1, 2, 3 na BA, MG, MS e PA (5). Este vírus foi inicialmente classificado como Closerovirus, mas foi recentemente transferido para o gênero Ampelovirus (4). Ref.: (1) Nickel, O. et al. Fitopat’ol.Bras. 25: 200. 2000 (2) Peron, FN et al. Trop Plat Pathol 34(supl): S267. 2009; (3) Sanches et al. Murcha associada a cochonilha. In Reinhard, D.H. et al. (Ed.) Abacaxi produção- aspectos técicos. Embrapa Mandioca e Fruticultura. Comumicação para transferência de ecnologia. Pp.62-65. 2000; (4) Mayo, M.A. Arch. Virol. 147. 2002; (5) Santos, K.C. Diss.MS Univ.Fed.Rec.Bahiano 60p. 2013.

Angelonia sp. (Angelônia) Plantaginaceae

Potexvirus

Althernanthera mosaic virus (AltMV); vírus do mosaico de Althernanthera Detectado em São José do Rio Preto, SP, em plantas de angelônia com mosaico (1). Ref.: (1) Alexandre, M.A.V. et al. Trop.Plant Pathol. 33 (supl): S291. 2008.

Anonna muricata L. (Graviola) Anonnacea Cytorhabdovirus

Cytorhabdovirus, não caracterizado

Soursop yellow blotch virus (SYBV); vírus da mancha amarela da gravioleira

Gravioleiras com sintomas de manchas amarelas nas folhas foram encontradas no município de Pacajus, CE. Demonstrou-se ser causado por um Cytorhabdovirus transmissível mecanicamente a várias outras anonáceas (1), que foi purificado tendo sido parcialmente caracterizado do ponto de vista molecular (2). Tem havido estudos sobre alterações fisiológicas e perdas de produtividade (3).

Ref.: (1) Kitajima, E.W. et al. Plant Dis. 72: 276. 1993; (2) Martins, C.R.F. et al. Fitopatol. Bras. 24: 410. 1999; (3) Santos, A.A. et al. Fitopatol. Bras. 28 (supl.): S252. 2003.

Dichorhavirus

Clerodendrum chlorotic spot virus (ClCSV); vírus da mancha clorótica do Clerodendrum

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Folhas de gravioleira, exibindo manchas anelares foram encontradas em um pomar em Catanduva, SP, associadas à infestação com ácaros Brevipalpus. Exames ao microscópio eletrônico revelaram efeitos citopáticos do tipo nuclear, de vírus transmitido por Brevipalpus (2). Bitancourt, em 1955, já mencionava sintomas semelhantes a leprose dos citros em gravioleira (1). Estes sintomas foram reproduzidos pela infecção natural e experimental pelo vírus da mancha clorótica do Clerodendrum (Clerodendrum chlorotic spot virus), um vírus transmitido por Brevipalpus, do tipo nuclear (3).

Ref.: (1) Bitancourt, A.A. Arq.Inst.Biol. 22: 161. 1955; (2) Kitajima, E.W. et al. Exp.Appl.Acarol. 30: 135. 2003; (3) Kitajima, E.W. et al. Scientia Agricola 63: 36. 2008

Anthurium sp., A. andreanum Lind., A. scherzerianum Schott. (Antúrio) Araceae

Cucumovirus

CMV detectado associado a sintomas de mosaico em folhas de antúrios procedentes de Mogi das Cruzes, SP (1).

Ref: (1) Miura, NS et al. Summa Phytopathol 35:(supl) res. 043 CDRom 2009. Potyvirus

DsMV foi constatado em antúrios procedentes de plantios comerciais em SP, por ELISA, em material com sintomas de deformação foliar, manchas cloróticas, manchas anelares, riscas necróticas (1, 2, 3, 4).

Ref.: (1) Rivas, E.B. et al. Virus Rev.Res. 2: 192. 1997. (2) Lima et al. Fitopatol.Bras. 29: 105. 2004; (3) Tombolato, A.F.C. et al. Boletim Técnico, 194,2002. 47pp. (4) Tombolato, A.F.C. et al. (Ed.) Cultivo comercial de plantas ornamentais. 61-94. 2004.

Cilevirus

Cilevirus não identificado

Amostras de antúrios, procedentes de Cruz das Almas, BA, com manchas anulares nas folhas, examinadas ao microscópio eletrônico mostraram estar infectadas com vírus do tipo citoplasmático, transmitidos por ácaros tenuipalpídeos Brevipalpus. Nas amostras examinadas, não se constatou a presença do ácaro (1).

Ref.: (1) Ferreira, P.T.O. et al. Virus Rev. Res. 9: 249. 2004.

Apium graveolens L. (Aipo, salsão) Apiaceae Ilarvirus

Tobacco streak virus (TSV); vírus da necrose branca do fumo

Plantas de salsão cv. ‘Americano Dourado’, com sintomas de amarelecimento generalizado e pintas amarelas nas folhas foram encontradas em Mogi das Cruzes, SP. O amarelecimento aparentemente era característica varietal, mas as pintas amarelas foram atribuídas à infecção pelo TSV. Em ensaios comparativos houve variação na suscetibilidade ao vírus dentre os diferentes cultivares analisados (1).

Ref.: (1) Costa, A.S. Summa Phytopathol. 14: 57. 1988 Potyvirus

Celery mosaic virus (CeMV); vírus do mosaico do salsão

Sintomas de mosaico amarelo, redução de porte em salsão cultivado. Relatado em SP. Exames ao microscópio eletrônico detectaram partículas do tipo potyvirus e uma

(10)

inclusão intranuclear fibrosa característica, além das inclusões lamelares típicas de potyvirus, tendo sido designado de vírus do mosaico amarelo do salsão (1). Disseminado por afídeos; infecta experimentalmente algumas outras umbelíferas (2,3). Foi constatado também no DF e RJ (4) e no PR (5). É sorologicamente relacionado ao CeMV descrito na Europa do qual seria um isolado (6). Estudos de comparação dos genomas com outros vírus de apiáceas mostraram similaridade deste vírus com um vírus de Daucus silvestre da Austrália, referido como mosaico do salsão (Celery mosaic vírus) que também induz inclusão fibrosa intranuclear (8). Encontrado também infetando naturalmente a salsa (7).

Ref.: (1) Kitajima, E.W. & Costa, A.S. Bragantia 27: VII; IX. 1968; (2) Oliveira, M.L. & Kitajima, E.W. Fitopatol. Bras. 6: 35. 1981; (3) Oliveira, M.L. et al. Fitopatol.Bras. 6: 57. 1981; (4) 6: 105. 1981; (5) Lima, M.L.R.Z.C. et al. Fitopatol.Bras. 9: 403. 1984; (7) Novaes, Q.S. et al. Summa Phytopathol. 26: 250- 252. 2000; (8) Moran, J. et al. Arch. Virology 147: 1855-1867 2002.

Arachis hypogea L. (Amendoim) Fabaceae Tospovirus

Tomato spotted wilt virus (TSWV)

Sintomas de necrose de topo, formação de roseta na extremidade das hastes, porte reduzido das plantas,mosaico e manchas anulares nas folhas de plantas de amendoim. Primeira constatação em um plantio experimental em Campinas, SP. e demonstrado ser causado por um Tospovirus (1). Posteriormente este vírus foi identificado como Tomato spotted wilt tospovirus (TSWV) (2).

Ref.: (1) Costa, A.S. O Biológico 7: 248. 1941; Bragantia 10: 67. 1950: (2) Andrade, G.P. et al. Fitopatol. Bras. 21: 421. 1996

Potyvirus

Bean yellow mosaic virus (BYMV); vírus do mosaico amarelo do feijoeiro

De amendoim com sintomas de mosaico fraco foram recuperados isolados de BYMV, severos em feijoeiro, em SP.

Ref.: Costa, A.S. et al. Anais I Simp.Bras.Feijão (Campinas). P. 305. 1972;

Cowpea aphid borne mosaic virus (CABMV);vírus do mosaico do caupi transmitido por afídeo

Sintomas de mosaico foram descritos na PB em amendoim. Inicialmente tida como sendo causada por Peanut stripe virus (estirpe do Bean common mosaic vírus) (1), mas o vírus causal foi identificado como CABMV (2).

Ref.: (1) Pio Ribeiro, G.P. et al. Fitopatol.Bras. 19: 329. 1994; (2) Andrade, G.P. et al. Fitopatol.Bras. 24: 261. 1999.

Peanut mottle virus (PeMoV); vírus do mosqueado do amendoim

Sintomas de mosaico/mosqueado em folhas de amendoim. Potyvirus transmssível por afídeos e mecanicamente. Descrição nos estados de SP (1, 3) e PB (2). Provavelmente um isolado do PeMoV.

Ref.: (1) Costa, A.S. & Kitajima, E.W. Fitopatologia 9: 48. 1974; (2) Pio Ribeiro, G.P. et al.

Fitopatol.brás. 19: 329. 1994; (3) Andrade, G.P. et al. Fitopatol. Bras. 21: 421. 1996

Arachis piontoi Krapov &Gregory (Amendoim forrageiro)- Fabaceae Potyvirus

(11)

Plantas de amendoim forrageiro do campo experimental da Embrapa Cerrados (DF) mostraram sintomas de manchas anelares cloróticas. Ensaios biológicos, sorológicos, moleculares e de microscopia eletrônica identificaram o agente causal como um isolado do PeMoV (1).

Ref.: (1) Anjos, J.R.N. et al. Fitopatol.Bras. 23: 71. 1998

Arachis repens Handro (Amendoim rasteiro) Fabaceae

Cucumovirus

Cucumber mosaic virus (CMV); vírus do mosiaco do pepino

Plantas de amendoim ornamental com sintomas de mosaico/manchas anulares foram encontradas no DF. CMV foi identificado como agente causal através de ensaios biológicos, sorológicos, moleculares e microscopia eletrônica (1).

Ref.: (1) Kitajima, E.W. et al. Summa Phytopathol. 29. 2003.

Arachis sp. - Fabaceae

Tospovirus

Groundnut ringspot virus (GRSV); virus da mancha anular do amendoim

GRSV foi detectado sorologicamente em acessos de Arachis sp., usado em cobertura verde, na Estação Experimental da UFRPe (Carpina, PE) (1).

Ref.: (1) Andrade, G.P. et al. Fitopatol.Bras. 28: S246. 2003.

Armoracia rusticana G. Gaertn., B. Mey.& Scherb. (Raiz forte) Brassicaceae Carlavirus

Cole latent virus-(CoLV); vírus latente da couve

CoLV detectado em raiz forte com sintomas de mosaico de Divinolândia, SP, juntamente com TuMV (1).

Ref.:(1) Eiras,M. et al. Trop.Plant Pahol. 33(supl): S250. 2008. Potyvirus

Turnip mosaic virus (TuMV); vírus do mosaico do nabo

Encontrada em Divinolândia, SP em plantas de raiz forte com sintomas de mosaico (1).

Ref.: (1) Eiras, M. et al. Summa Phytopathol. 33 (supl): S45. 2007.

Arracacia xanthorhiza Bancoft (Mandioquinha salsa) Apiaceae Potyvirus

Arracacha mottle virus (ArMoV); vírus do mosqueado da mandioquinha salsa Mosaico em plantas de mandioquinha-salsa econtrado em campo experimental da Embrapa Hortaliças, DF, causado por um novo potyvirus (1). Genoma completo conhecido (2).

Ref. (1) Orílio, AF et al. Fitopatol.Bras. 32 (supl): S194. 2007. Olíerio, AF et al. Arch.Virol. 158:291. 2013.

Bidens mosaic virus- BiMV; vírus do mosaico do picão

Infecção natural da mandioquinha salsa pelo BiMV no DF, causando sintomas de mosaico (1).

Ref.: (1) Orílio, A.F. et al. Trop Plt Pathol 33(supl):S297. 2008.

Asclepias curassavica L. (Oficial-de-sala, erva-de-rato) Apocynaceae Cucumovirus

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Sintomas de manchas e bandas cloróticas nas folhas de oficial-de-sala. Primeira descrição em material coletado em Itaquera, SP. Agente causal identificado como CMV (1).

Ref.: (1) Silberschmidt, K. Plant Dis.Reptr. 39: 555. 1955.

Avena sativa L. (Aveia) Poaceae Luteovirus

Turnip yellows vírus (TuYV) (=Barley yellow dwarf virus- BYDV); vírus do nanismo amarelo da cevada

Sintomas de clorose e nanismo em aveia causados pelo BYDV, transmitido por afídeos. Ocorrência em aveia no PR (3) e RS (1,2). Há estudos sobre perdas no RS (4).. Ref.: (1) Deslandes, J. Agros 2(2): 88. 1949; (2) Caetano, V.R. Rev.Soc.Bras.Fitopatol. 2: 53. 1968; Tese Doutorado, ESALQ/USP, 75p. 1972; (3) Barbosa, C.J. et al. Fitopatol.Bras. 18: 292. 1993; (4) Nicolini, F. et al. Fitopatol.Bras.27: S210.2002.

B

Bambusa vulgaris Schrad. (Bambu) Poaceae Potexvirus

Bamboo mosaic virus (BaMV); vírus do mosaico do bambu

Sintomas de manchas cloróticas/mosaico em folhas de bambu, sem aparente danos à planta, em campo experimental da Univ.Brasília, no DF. BaMV transmite-se mecanicamente a indicadoras como Chenopodium quinoa, C. amaranticolor e Gomphrena globosa nas quais causa lesões locais e foi identificado como um Potexvirus (1). Foi purificado, tendo-se produzido um anti-soro (2). Foi posteriormente encontrado e caracterizado molecularmente, em Taiwan onde causa problemas na produção de brotos.

Ref.: (1) Kitajima, E.W. et al. Phytopathol.Zeit. 90: 180. 1977; (2) Lin, M.T. et al. Phytopathology 67: 1439. 1977.

Beaucarnea recurvata Lem. (Pata-de-elefante) Dracenaceae

Vírus isométrico não identificado

Vírus não identificado

Observação ao microscópio eletrônico de vírus isométrico, em SP, associado a sintomas de mosaico em pata-de-elefante (1).

Ref.: (1) Alexandre, M.A.V. et al. Rev.Bras.Hort.Ornam. 16: 95. 2010.

Beaumontia grandifolia Wall. (Trombeta-de-arauto) Apocynaceae

Cilevirus

Manchas verdes em folhas senescentes de trombeteira-d-arauto, associadas à presença de vírus transmitido por ácaros Brevipalpus (VTB), tipo citoplasmático. Encontradas nos jardins do campus da ESALQ, Piracicaba, SP (1)

Ref. Kitajima, E.W. et al. Summa Phytopathol. 32 (supl): 11. 2006.

Benincasia híspida Cogn. (abóbora d’agua), Cucurbitaceae Potyvirus

(13)

Zucchini yellow mosaic virus (ZYMV), vírus do mosaico da abobrinha zucchni ZYMV detectado em plantas de abóbora d’agua no campo experimental da UFMG, com sintomas de mosaico, bolhosidade foliar. Identificação feita através de ensaios de transmissão e sorologia (1).

Ref.: (1) Ref.: (1) Rocha, F.D.S. et al. Trop.PltPathol. 38 supl.376-1. 2013.

Beta vulgaris L. var. cicla (Acelga) Chenopodiaceae Cytorhabdovirus

Cytohabdovirus não identificado Caulimovirus

Caulimovirus não identificado

Acelgas com sintomas de nanismo, clareamento das nervuras, folhas encrespadas com áreas necróticas foram notadas em plantio comercial em Piedade, SP. Microscopia eletrônica revelou dupla infecção por um caulimovirus e cytorhabdovirus, os quais não foram identificados (1).

Ref. : (1) Chagas, C.M. et al. Fitopatol.Bras. 24: 466. 1999

Bidens pilosa L. (Picão) Asteraceae Nucleorhabdovirus

Sowthistle yellow vein virus (SYVV); possível

No DF, foi recuperado de picão com nanismo e folhas largas, um vírus transmissível mecanicamente a varias plantas-teste, inclusive alface, com um círculo de hospedeiros e sintomatologia similar ao do SYVV (1). Sorologia e imunomicroscopia eletrônica demonsstraram reação com anti-soro contra SYVV (2).

Ref.: (1) Kitajima, E.W. et al. Fitopatol.Bras. 16: 141. 1991; (2) Res. 13o Coloq. Soc. Bras. Mic.Elet. p.59. 1991.

Dichorhavirus

Dichorhavirus não identificado

Efeitos citopáticos típicos daqueles causados por vírus transmitido por ácaros Brevipalpus, do tipo citoplasmático foram observados em plantas de picão com manchas cloróticas encontradas em Manaus,AM (1).

Ref.: (1) Rodrigues, J.C.V. et al., Trop.Plant Pathol. 33: 12. 2008.

Tospovirus

Tospovirus não identificado

Relato de infecção natural de picão por Tospovirus, sem descrição da sintomatologia, em SP (1).

Ref.: (1) Costa, A.S. & Forster, R. Bragantia 2: 83. 1942.

Polerovirus

Potato leaf roll virus- PLRV; vírus do enrolamento das folhas da batata

Infecção natural de plantas de picão pelo PLRV, sem menção da sintomatologia, constatada no Est.M. Gerais (1).

Ref.: (1) Oliveira, C.D. et al. Fitopatol.Bras. 21: 427. 1996. Potyvirus

Bidens mosaic virus (BiMV); vírus do mosaico do picão

Plantas de picão crescendo espontaneamente frequentemente ostentam sintomas de mosaico, causado pelo potyvirus BiMV (1), que seria distinto de um similar descrito na Flórida (Bidens mottle potyvirus- BiMoV) com o qual não compartilha antígenos. Pode eventualmente infectar plantas cultivadas e ornamentais. Relatado em SP. É disseminado por pulgões e experimentalmente, por vias mecânicas. Encontrado no DF (3). Estudos da seqüência da CP de um isolado de ervilha indicam que BiMV seria um isolado do PVY (4).

(14)

Ref.: (1) Kitajima, E.W. et al. Bragantia 20: 503. 1961; (2) Kuhn, G.B. et al. Fitopatol.Bras. 5: 39. 1980; (3) 7: 185. 1982; (4) Dutra, S.L. et al. Vírus Rev.& Res. 9: 252. 2004.

Potato virus Y- PVY; vírus Y da batata

Infecção natural pelo PVY, sem menção da sintomatologia, constatada no Est.M. Gerais (1).

Ref.: (1) Oliveira, C.D. et al. Fitipatol.Bras. 21: 427. 1996. Necrovirus

Tobacco necrosis virus (TNV); vírus da necrose do fumo

TNV recuperado de raízes de plantas de picão assintomáticas, mantidas na estufa do IAC, SP (1).

Ref.: (1) Costa, A.S. & Carvalho, A.M.B. Bragantia 19: CXLVII. 1960.

Blainvillea rhomoboidea Cass. (Erva palha) Asteraceae Begomovirus

Begomovirus não identificado

Mosaico dourado em folhas e redução de porte em planas de erva palha, causado por um provável begomovirus, não identificado (1). Constatado em PE (2).

Ref.: (1) Costa, A.S. Summa Phytopathol. 4: 13. 1978; (2) Lima, G.S.A. et al. Virus Rev.& Res. 6: 158. 2001

Blainvillea yellow spot virus (BlYSV); vírus da mancha amarela de Blainvillea

Um begomovíus, tentativamente identificado como o da mancha amarela, foi isolado de B. rhomboidea em Coimbra, MG (1), e que seria distinto de outros begomovírus descritos.

Ref.: (1) Castillo Urquiza, GP et al. Arch.Virol. 153: 1985. 2008.

Boerhavia coccinea Mill. (Pega-pinto) Nyctaginaceae Tospovirus

Groundnut ringspot virus- GRSV; vírus da mancha anular do amenodoim

Amostras da invasora pega-pinto, nas proximidades de campo de amendoim em Campina Grande, PB, foram encontradas com sintomas de clareamento de nervuras, mosaico e deformação foliar. Ensaios sorológicos indicaram estar infectadas pelo GRSV, podendo assim servir como reservatório deste vírus (1).

Ref.: (1) Andrade, G.P. et al. Fitopatol.Bras. 24: 358. 1999.

Bougainvillea glabra Choisy; B. spectabilis Willd. (Primavera) Nyctaginaceae

Badnavirus

Bougainvillea spectabilis chlorotic vein banding virus (BsCVBV); vírus da faixa clorótica das nervures da primavera

Partículas do tipo badnavirus foram detectadas em amostras procedentes de Campinas, SP, por microscopia eletrônica (1). A partir de DNA total extraído da planta infectada amplificou-se fragmento com 465 nt usando primers para badnavirus, cuja análise indicou tratar-se de um novo vírus deste gênero e designado de BCVBV (2, 3). Vírus similar foi detectado em Piracicaba, SP (4) tendo sido transmitido pela cochonilha Planococcus citri (5). Estudos moleculares feitos com isolados de SP (Campinas e S.Paulo) são distintas de isolados de Andradas e Uberlândia,MG e Brasília, DF (6). Há relato de sua presença em Seropédica, RJ e Ourinhos, SP (7).

Ref.: (1) Chagas, C.M. et al. Virus Rev. Res. 6: 153. 2001; (2) Alexandre, M.A.V. et al. Fitopatol.Bras. 29 (supl.): S150. 2004. (3) Rivas, E.B. et al. J. Gen.Plant Pathol 71: 438.2005; (4) Yamashita, S. et al. Summa Phytopathol. 30: 68. 2004; (5) Kuniyuki, H. et al. Summa Phytopathol. 32 (supl.): S20. 2006; (6) Alexandre et al. Summa Phytopathol 38 (supl.) CDRom 2012; (7) Brioso, PST Vírus Rev.&Res. 17 (supl.).2012.

(15)

Bouvardia sp. (Bouvardia) Rubiaceae

Tospovirus

Chrysantemum stem necrosis virus (CSNV); vírus da necrose da haste de cristântemo Tomato chlorotic spot virus (TCSV); vírus da mancha clorótica do tomateiro

Em plantas de bouvardia com mosaico clorótico foi identificada infecção mista por dois tospovírus: TSWV e CSNV. A identificação foi feita por testes biológicos, sorológicos e microscopia eletrônica (1). O TCSV foi encontrado em plantas com mosaico suave, em SP (2).

Ref.: (1) Seabra, P.V. et al. Virus Rev. Res. 5: 197. 2000.; (2) Rivas, E.B. et al. Virus Rev.& Res. 7: 22- 30. 2002 .

Brassica carinata A.Br. (Couve-da-Etiópia) Brassicaceae Potyvirus

Algumas plantas de couve-da-Etiópia em ensaios para sua introdução na Univ.Fed. Uberlândia, MG, pelo seu alto teor em vitamina A, exibiram sintomas de mosaico. Ensaios de transmissão e microscopia eletrônica indicaram que os sintomas foram causados por um isolado do TuMV (1).

Ref.: (1) Rodrigues, F.A. et al. Fitopatol. Bras. 20: 338. 1995

Brassica rapa L. (Canola) Brassicaceae Cucumovirus

Cucumber mosaico virus (CMV); vírus do mosaico do pepino Caulimovirus

Cauliflower mosaic virus (CaMV); vírus do mosaico da couve flor Potyvirus

Estes três vírus (CMV, TuMV e CaMV) foram constatados infetando naturalmente culturas de canola no PR, associads a sintomas de mosaico..

Ref.: (1) Barbosa, C.J. et al. Fitopatol. Bras. 20: 286. 1995.

Brassica oleracea L. var. botrytis L. (couve flor); var. italica Plenck (brocolo);

var. gemmifera DC (couve); B. rapa L. (nabo); var. pekinense (couve chinesa) Brassicaceae

Carlavirus

Cole latent virus (CoLV); vírus latente da couve

Vírus alongado 13 nm x 650 nm, transmitido por afídeos. Causa infecção latente, e sua primeira descrição foi feita em plantas de couve, no Est. S. Paulo, após sua detecção por microscopia eletrônica (1, 2). Foi detectado em MG (2) e DF (3, 4) Sua posição taxonômica como Carlavirus foi comprovada por ensaios moleculares (4). Ref.: (1) Kitajima, E.W. et al. Bragantia 29:181. 1970; (2) Costa, A.S. et al. Rev.Oleric. 12: 82.1972; (3) Costa, C.L. et al. Fitopatologia 9: 49. 1974; (4) Mello, S.C.M. et al. Fitopatol.Bras. 12: 352. 1987; (4) Belintani, P. et al. J. Phytopathology 150: 330. 2002.

Caulimovirus

Cauliflower mosaic virus (CaMV); vírus do mosaico da couve flor

Vírus isométrico com ca. 50 nm em diâmetro, transmitido por afídeos. Seu genoma é dsDNA circular. Induz inclusão citoplasmática (viroplasma) característico. Descrito inicialmente como faixa-das-nervuras em couve, no Est.S.Paulo (2). Há um relato de 1963, da ocorrência do CaMV em diversas crucíferas cultivadas, mas baseado apenas em sintomatologia (1). Identificado também nos Est. do PR (4), ES (6) e DF (5).

(16)

Em outras Brassica spp. e no RS, na ornamental goivo (Matthiola incana) (3). Ocorrência comum em Brassica spp. cultivadas, mas usualmente causa perdas limitadas. Um isolado obtido de couve-flor, procedente de Venda Nova, ES foi caracterizado molecularmente (7). Sua transmissão por afídeos (Myzus persicae e Brevicoryne brassicae) foi demonstrada (8).

Ref.: (1) Tokeshi, H. et al. Rev.Olericultura 3: 175; 1963; (2) Kitajima, E.W. et al. Bragantia 24: 219. 1965; (3) Siqueira, O. & Dionelo, S.B. Fitopatologia (Lima): 8: 19. 1973; (4) Lima, M.L.R.Z.C. et al. Rev.Setor Cien.Agr., UFPR, 2: 12. 1980; (5) Cupertino, F.P. et al. Fitopatol.Bras. 11:394. 1986; (6) Costa, H. et al. Fitopatol.Bras. 16: XXVIII. 1991; (7) Zerbini, F.M. et al. Fitopatol.Bras. 17:326. 1992; (8) Ambrozibivus, L.P. Fitopatol.Bras.22: 330. 1997.

Potyvirus

Os primeiros relatos foram feitos em amostras de repolho colhidos em S.Paulo, SP e em couve chinesa, procedente de Viçosa, MG e mais tarde em várias Brassica spp. de outras regiões do Brasil (DF, PR) (1-5). É um potyvirus transmitido por afídeos e mecanicamente. Uma hospedeira diferencial adequada é o fumo, no qual inoculação mecânica induz lesões necróticas. Foi constatada infecção natural em B. carinata (6) Foram encontrados no Est.S.Paulo os tipos I e II do TuMV (7).

Ref.: (1) Silberschmidt, K. & Roston, E. Cien.Cult. 5: 211. 1953; (2) Tokeshi, H. et al. Rev.Olericult. 3: 175. 1963; (3) Costa, A.S. et al. Rev.Oleric. 12: 82. 1972; (4) Lima, M.L.R.Z.C. et al. Rev.Setor Cien.Agr.,UFPR 2: 12.1980; (5) de Ávila, A.C. et al. Fitopatol.Bras. 5:311. 1980; (6) Rodríguez, F.A. et al. Fitopatol. Bras. 20: 376. 1995; (7) Colariccio, A. et al. Summa Phytopathol. 25: 35. 1999.

Necrovirus

Tobacco necrosis virus (TNV); vírus da necrose do fumo

Recuperado de raízes de plantas de couve assintomáticas, mantidas em estufa, no IAC, SP (1).

Ref.: Costa, A.S. & Carvalho, A.M.B. Bragantia 19: CXLVII. 1960.

Brugmansia suaveolens (Willd.) Bercht. & J. Presl. (Saia-branca, zabumba-branca)

Solanaceae

Potyviru

Brugmansia suaveolens mottle virus (BsMoV); vírus do mosqueado de Brugmansia suaveolens

Constatado em plantas de saia-branca, da coleção de plantas medicinais do Inst.Agron.Campinas, SP. Transmissível mecanicamente e por afideos a varias outras solanáceas. Microscopia eletrônica indicou ser um potyvirus que mostrou-se distantemente relacionado com PVY (1). Seu genoma foi sequenciado constatando ser um novo potyvirus (2).

Ref.: (1) Habe, M.H. et al. Fitopatol.Bras. 18: 286. 1993; (2) Lucinda, N et al. Arch.Virol. 153: 1971. 2008.

Brunfelsia uniflora D.Don. (Manacá) Solanaceae

Cilevirus

Plantas de um jardim em Águas de S. Pedro, SP, exibiam manchas e anéis verdes em folhas senescentes associadas a infestação por ácaros tenuipalídeos Brevipalpus. Exames ao microscópio eletrônico revelaram efeito citopático do tipo citoplasmático, dos vírus transmitidos por Brevipalpus (1). Transmissão por B. phoenicis comprovada (2).

Ref.: (1) Nogueira, N.L. et al. Summa Phytopathol. 29: 278. 2003; (2) Ferreira, P.T.O. et al. Fitopatol.Bras. 28: S250. 2003.

(17)

C

Cactus bahiensis Rose & Russell; Cereus triangularis Haw; C. hexagonus (L.)

Miller; C. triangularis Haw; Hylocereus undatus (Haworth) Button & Rose;

Nopalea cochenillifera (L.) Salm.Dick.; Mamillaria sp.; Opuntia vulgaris Miller; O. leucotricha De Candolle; O. tuna Mill., Echinocereus sp.; Lobivia sp.; Pereskia

aculeata (L.) Kaarsten; P. bleo (HBK) De Candolle (Cactus) Cactaceae Cactaceae

Potexvirus

Cactus virus X (CVX); vírus X do cactus

Infecção assintomática pelo CVX, identificado através de ensaios de transmissão para plantas-teste (Gomphrena globosa, Chenopodium amaranticolor e C. quinoa), sorologia e microscopia eletrônica em SP e DF, em várias espécies de cactus analisadas. O vírus foi purificado usando uma metodologia inédita tendo-se produzido um anti-soro (1). Foram realizados diversos estudos com o potexvirus isolado em H. undatus com manchas cloróticas, necróticas e mosaico, coletada em S. Paulo (2), incluindo aspectos moleculares (3,4).

Ref.: (1) Aragão, F.J.L. et al. Fitopatol.Bras. 18: 112. 1993. (2) Tozetto, A.R.P. et al. Arq.Inst.Biol 72 (supl): 77. 2005; (3) Duarte, L.M.L. et al. Fitopatol.Bras. 27(supl.): S203. 2002. (4) Duarte, L.M.L. et al. Journal Plant Pathol. 90: 545. 2008.

Tobamovirus

Tobamovirus não identificado

Espécie de tobamovírus não identificada, detectada em SP sem descrição dos sintomas associados(1)

Ref. (1) Alexandre, M.A.V. et al. Rev.Bras.Hort.Ornam. 16: 95. 2010.

Caladium bicolor Vent. (caládio, tinhorão) Araceae

Potexvirus

Caladium vírus X(CalVX); vírus X de Caladium Potyvirus

Plantas de caládio, com manchas cloróticas e necróticas nas folhas, estavam duplamente infectadas pelo potyvirus DsMV e um potexvirus em SP (1). O potexvirus foi transmitido mecanicamente para algumas aráceas e Nicotiana benthamiana que se infectaram sistemicamente. Gomphrena globosa reagiu com lesões locais. Não reagiu com anti-soro contra outros potexvirus. Fragmento de 740 nt amplificado por RT-PCR tinha menos de 75% de similaridade com outros potexvirus, devendo assim representar ele uma nova espécie de potexvírus (2). Inclusões cilíndricas induzidas pelo DsMV, bem como partículas dispersas no citoplasma ou formando massas induzidas pelo CalVX foram observadas ao microscópio eletrônico. Inclusões também foram visualizadas ao microscópio de luz (3).

Ref.: (1) Rivas, E.B. et al. Fitopatol.Bras. 29:150-151. 2004 (2) Rivas, E.B. et al. Plant Pathol. 87:109-114. 2005 (3) Rivas, E.B. et al. Arq. Inst. Biol. 7: 457.2004.

Calibrachoa sp. (Calibrachoa) - Solanaceae

Tobamovirus

Tobamovirus não identificado

Detectacção de um tobamovírus em calibrachoa, sem descrição de sintomas, em SP (1).

(18)

Ref (1) Alexandre, MAV et al. Rev.Bras.Hort.Ornam. 16: 95.2010.

Callistephus chinensis L. (Rainha margarida) Asteraceae

Cytorhabdovirus

Cytorhabdovirus não identificado

Plantas de rainha margarida, com clorose generalizada e distorção foliar, foram encontradas no campo experimental do IAC, Campinas, SP. Exames ao microscópio eletrônico revelaram a presença de um Cytorhabdovirus (1).

Ref.: (1) Kitajima, E.W. & Costa, A.S. Fitopatol.Bras. 4: 55. 1979 Tospovirus

Chrysantemum stem necrosis virus (CSNV); vírus da necrose da haste do crisântemo Plantas de rainha margarida, apresentando folhas com áreas cloróticas, foram positivas para o CSNV, detectado por sorologia, em SP (1).

Ref.: (1) Rivas, E.B. et al. Res. 13º Cong. Bras. Floricultura e Plantas Ornamentais. 138. 2001. Groundnut ringspot virus (GRSV); vírus da mancha anular do amendoim

Chrysantemum stem necrosis virus (CSNV); vírus da necrose da haste do crisântemo Plantas de rainha margarida com sintomas de mosaico e bolhosidades nas folhas foram encontradas em Holambra, SP. Ensaios biológicos e sorológicos mostraram que as amostras estavam infectadas pelo GRSV e CSNV (1).

Ref.: (1) Rivas, E.B. et al. Fitopatol.Bras. 21: 428.1996.

Tomato chlorotic spot virus (TCSV); vírus da mancha clorótica do tomateiro

Chrysantemum stem necrosis virus (CSNV); vírus da necrose da haste do crisântemo Infecção natural simultânea, de Callistephus sp., pelo TCSV e CSNV em Holambra, SP, resultando em sintomas de mosaico, deformação e bronzeamento nas folhas e necrose nas hastes (1).

Ref.: (1) Alexandre, M.A.V. et al. Summa Phytopathol. 25: 353. 1999

Calopogonium mucunoides Desvaux (Calopogônio) Fabaceae Comovirus

Cowpea severe mosaic virus (CPSMV); vírus do mosaico severo do caupi

Foi constatada ocorrência natural do CPSMV sorotipo I em calopogônio, causando sintomas de mosaico no Brasil Central-DF (1).

Ref.: (1) Lin, M.T. & Anjos, J.R.N. Plant Dis. 66: 67. 1982. Cucumovirus

Cucumber mosaic virus (CMV); virus do mosaico do pepino

Foi constatada no PR a ocorrência de plantas de C. mucunoides com sintomas de mosaico. O agente causal foi identificado como um isolado do CMV (1).

Ref.: (1) Almeida, A.M.R. et al. Virus Rev. & Res. 2: 194. 1997. Begomovirus

Macroptilium yellow spot virus (MaYSV), virus da mancha amarela de Macroptilium Detectado em AL (1).

Ref.: (1) Silva, J.C.V. et al. Plant Pathol. 61: 457. 2012.

Campanula medium L. (Campânula) Campanulaceae

Tospovirus

Verificou-se a ocorrência de mosaico, necrose, manchas anelares nas folhas e flores manchadas em campânulas, em um plantio comercial em Atibaia, SP. O agente causal foi identificado como TSWV (1).

(19)

Canavalia ensiformes D.C. (Feijão-de-porco) Fabaceae Comovirus

Cowpea severe mosaic virus (CPSMV); vírus do mosaico severo do caupi

Mosaico severo e bolhosidades, causados por um isolado do CPSMV, no CE (1). Ref.: (1) Lima, J.A.A. & Souza, C.A.V. Fitopatol.Bras. 5: 417. 1980.

Potyvirus

Canavalia mosaic virus (CanMV); vírus do mosaico da Canavalia

Mosaico associado a um Potyvirus não identificado no DF, transmissível por afídeos; infecta experimentalmente outras leguminosas. Foi também constatado no RJ (2), tendo sido caracterizado biologicamente. Infeta sistemicamente (mecanicamente e por afídeos) algumas leguminosas causando lesões locais em Chenopodium amaranticolor. Foi purificado tendo sido produzido anti-soro. Tem relações sorológicas com CABMV, PWV, BCMV e SMV (3). Possivelmente representa um isolado do CABMV.

Ref.: (1) Costa, C.L. et al. Fitopatol.Bras.9: 400. 1984; (2) Santos, O.R. et al. Fitopatol.Bras. 15: 132.1990; Santos, O.R. Diss.Mest.,UnB, 78 p. 1991.

Potyvirus não identificado

Mosaico de presumível etiologia viral descrita no Est.S.Paulo. Transmitido mecanicamente para Canavalia ensiformes, Glycine max, Lathyrus odoratus e Pisum sativum, mas não a feijoeiro e caupi, entre outros (1). Outro potyvirus não identificado foi encontrado em feijoeiro-de-porco procedente de PE (2, 3).

Ref.: (1) Silberschmidt, K. & Nobrega, N.R. O Biológico 8: 129. 1943; (2) Costa, C.L. et al. Fitopatol.Bras. 14: 115. 1989; (3) Santos, O.R. et al. Fitopatol.Bras. 16: XXVII. 1991.

Canavalia rosea (Sw.) DC (C. MARITIMA Thouars) (Feijão-de-praia) Fabaceae Potyvirus

Cowpea aphid borne mosaic virus (CABMV); vírus do mosaico do caupi transmitido por afídeo

Plantas exibindo mosaico e manchas cloróticas nas folhas foram encontradas em algumas praias de Caraguatatuba, SP, associadas à infecção por um potyvírus com características similares ao Canavalia maritima mosaic virus (CaMMV), descritoem Porto Rico (1). Estudos subsequentes indicaram que se tratava de um isolado co CABMV (2).

Ref.: (1) Kitajima, E.W. et al.Virus Rev&Res9: 252. 2004; (2) Madureira, P.M. et al. Arch. Virol. 153: 743. 2008.

Canavalia sp. Begomovirus

Macroptilium yellow spot virus (MaYSV), virus da mancha amarela de Macroptilium Detectado em AL (1).

Ref..: (1) Silva, J.C.V. et al. Plant Pathol. 61: 457. 2012.

Capsicum annuum L. (Pimentão) Solanaceae (Viroses de Capsicum foram editadas por L.S. Boiteux e Mirtes F. Lima) Cucumovirus

Primeira descrição em material procedente de Embú, SP. Sintomas de mosaico nas folhas do pimentão (1). RNA satélite foi detectado em amostras infectadas pelo CMV em MG (2). Amostras procedentes de várias regiões do Est. S. Paulo estavam infectadas com CMV subgrupo I (3).

Ref.: (1) Mallozzi, P. Rev.Soc.Bras.Fitopat. 4: 101. 1971; (2) Boari, A.J. et al. Fitopatol.Bras. 25: 143. 2000; (3) Frangioni, D.S.S. et al. Summa Phytopathol. 29: 19. 2003

(20)

Tospovirus

Groundnut ringspot virus (GRSV); vírus da mancha anular do amendoim Tomato chlorotic spot virus (TCSV); vírus da mancha clorótica do tomateiro Tomato spotted wilt virus (TSWV)

Tospovírus não identificado

Plantas de pimentão com mosaico e deformação foliar foram encontradas em Manaus, AM, e identificadas como estando infectadas por um Tospovirus (1). Foi também constatado no DF (2). Diversidade dos tospovirus havia sido observada em infecções em pimentão, verificando-se que há isolados em SP que induzem lesões cloróticas e outras, necróticas em feijoeiro manteiga (3). No DF foi constatada a infecção natural de pimentão pelo TSWV e no Est. Sta. Catarina, pelo TCSV (4). Há relato da presença do GRSV em Janaúba, MG (5). No Est. S. Paulo foi constatada infecção de pimentão pelo TCSV (6) e GRSV (8). Em um levantamento feito no vale do S. Francisco (PE) constatou-se alto nível de infecção pelo GRSV (7).

Ref.: (1) Kitajima, E.W. et al. Acta Amazonica 9: 633. 1979; (2) Cupertino, F.P. et al. Fitopatol. Bras. 5: 395. 1980; (3) Costa, A.S. & Gaspar, J.O. Summa Phytopathol. 7: 5. 1981; (4) Boiteux, L.S. et al. Capsicum and Eggplant Newsletter 12: 75. 1993; (5) Fitopatol. Bras. 19: 285. 1994; (6) Colariccio, A. et al. Fitopatol.Bras. 20: 347. 1995; (7) de Avila, A.C. et al. Fitopatol. Bras. 21: 503. 1996; (8) Colariccio, A. et al. Summa Phytopathol. 27: 323. 2001.

Crinivirus

Tomato chlorosis virus – ToCV; vírus da clorose do tomateiro

ToCV detectado em pimentão em S. Miguel Arcanjo, SP, causando sintomas de clorose internerval e epinastia (1).

Ref. (1) Barbosa, J.C. et al. Plant Dis. 94: 374. 2010. Begomovirus

Tomato rugose mosaic virus (ToRMV); vírus do mosaico rugoso do tomateiro

Amostras de pimentão cultivado em estufa mostrando sintomas de encarquilhamento foliar e nanismo, procedentes de Marília, SP, estariam infectadas com ToRMV, segundo ensaios moleculares, mas não há evidências biológicas para comprovar que o vírus é o agente causal (1).

Ref.: (1) Cotrim, M.A.A. et al. Summa Phytopathol. 30: 100. 2004.

Tomato golden vein virus (ToGVV); vírus da nervura dourada do tomateiro

Tomato severe rugose virus (ToSRV); vírus do encrespamento severo do tomate

Amostras de pimentão oriundas de várias regiões de SP estavam naturalmente infectadas com os begomovírus: Encrespameto severo do tomate (Tomato severe rugose- ToSRV) (1,2) e nervura dourada do tomate (Tomato golden vein- ToGVV).(1). Encrespamento severo do tomate (ToSRV) detectado em pimentão, em MG (3)

Ref: (1) Nozaki, D.N. et al. Fitopatol.Bras.31:321.2006; (2) Paula, D.F. et al. Vírus Ver&Res 11(supl): 189. 2006. (3) Nozaki, D.N. et al. Virus Rev&Res 15(supl) 114.2010.

Curtovirus, possível

Brazilian tomato curly top virus (BrCTV)

Sintomas de amarelecimento das folhas, porte reduzido com redução dos entrenós, achatamento dos frutos do pimentão. Relato inicial em SP. A causa foi identificada como sendo o mesmo que causa broto crespo em tomateiro, transmitido por cigarrinhas. Carrapicho-de-carneiro deve servir como fonte-de-inóculo (1). Também constatado em Manaus, AM, baseado em sintomas (2).

Ref.: (1) Costa, A.S. & Nagai, H. Rev.Oleric. 6: 83. 1966; (2) Kitajima, E.W. et al. Acta Amazonica 9: 633. 1979.

Polerovirus

(21)

Isolado do PLRV, em SP, que causa topo amar)elo em tomateiro foi recuperado de plantas de pimentão com sintomas de clorose. Pode servir como fonte de inóculo para tomateiro (1).

Ref.: (1) Costa, A.S. & Carvalho, A.M.B. Coopercotia fev.62,p.34. Potyvirus

Pepper yellow mosaic virus (PepYMV); vírus do mosaico amarelo do pimentão

Dois isolados de potyvirus obtidos de pimentão com sintomas de mosaico em Bragança Paulista, SP e Brasília, DF foram identificados por ensaios biológicos, serológicos e moleculares com uma nova espécies, designada de PepYMV, infetando cultivares resistentes aos isolados de PVY (1). Em pimentão acha-se registrado nos estados de AM, PE, BA, MG, ES e SP (2). Seu genoma foi inteiramente sequenciado (3).

Ref.: (1) Inoue-Nagata, A.K. et al. Arch. Virol. 147: 840. 2002; (2) Virus Rev. & Res. 8: 186. 2003; (3) Lucinda, N et al. Arch.Virol. 157.: 1397.2012.

Potato virus Y ( PVY); vírus Y da batata

Sintomas de redução acentuada de porte, mosaico em folhas do tipo faixa das nervuras; encrespamento das folhas e mosaico em bolhas, malformação dos frutos em pimentão relatados em SP. Agente causal identificado como isolado do PVY transmitido por pulgões (1). Foram criadas variedades resistentes (2). Ocorre em outras regiões produtoras de pimentão: RJ (3, 4), MG, DF e ES (5).

Ref.: (1) Costa, A.S. & Alves, S. Bragantia 10: 95. 1950; (2) Nagai, H. Braglantia 27: 311. 1968; (3) Robbs, C.F. & Viegas, E.C. Guia de Controle às pragas e doenças das Cult.Econo. do Estado, Sec.Agric.Abast., RJ. 84p. 1978; (4) Brioso, P (.S.T. et al. Fitopatol. Bras. 18: 274. 1993; (5) Truta, A.A.C. Vírus Rev.& Res. 5: 193. 2000.

Tobamovirus

Pepper mild mottle virus (PMMoV); vírus do mosqueado suave do pimentão Tomato mosaic tobamovirus – ToMV; vírus do mosaico do fumo

Detectados em amostras de pimentão com sintomas de mosaico procedentes de Salto e Bragança Paulista, SP. Identificação por ensaios biológicos (1,2). Foi posteriormente identificada por RT-PCR (3).

Ref.: (1) Kobori, R.F. et al. Fitopatol. Bras. 26: 516. 2001; (2) Cezar, M.A. et al. Summa Phytopathol. 29: 359. 2003.(3) Cezar, MA et al. Summa Phytopathol. 32 (supl): S37.2006. Tobacco mosaic virus (TMV); vírus do mosaico do fumo

Tomato mosaic virus (ToMV); vírus do mosaico do tomateiro

Detectados em amostras de pimentão com sintomas de mosaico procedentes de Salto e Bragança Paulista, SP. Identificação por ensaios biológicos (1,2). Foi posteriormente identificada por RT-PCR (3).

Ref.: (1) Kobori, R.F. et al. Fitopatol. Bras. 26: 516. 2001; (2) Cezar, M.A. et al. Summa Phytopathol. 29: 359. 2003.(3) Cezar, MA et al. Summa Phytopathol. 32 (supl): S37. 2006. Tobravirus

Pepper ringspot virus (PepRSV); vírus do anel do pimentão

Plantas de pimentão com sintomas de linhas e anéis cloróticos nas folhas foi encontrada em S. Carlos, SP, e sua natureza viral comprovada, tendo sido designada vírus do anel do pimentão (3). Estudos posteriores indicaram ter similaridades com o Tobacco rattle tobravirus, mas considerado distinto (6). Os virions associam-se caracteristicamente com mitocôndria (5). A faixa-das-nervuras do tomateiro (1,2) seria causado pelo mesmo vírus. Pode ser transmitido mecanicamente a um grande número de espécies de plantas. É transmissível por sementes (3) e foi constatada a presença do vírus em pólen (4). Demonstrou-se a transmissão pelo solo (7) provavelmente por nematóides do gênero Trichodorus e/ou Paratrichodorus. Foi constatado em pimentão no PR (8).

Ref.: (1) Silberschmidt, K. Phytopathol.Zeit. 46: 209. 1962; (2) Silberschmidt, K. Phytopathol.Zeit. 46: 209. 1962; (3) Costa, A.S. & Kitajima, E.W. Rev Soc.Bras. Fitopatol. 2: 25. 1968; (4) Camargo, I.J.B. et al. Phytopathol.Zeit. 64: 282. 1969; (5) Kitajima, E.W. & Costa, A.S. J. Gen.Virol. 4: 177. 1969; (6)

(22)

Kitajima, E.W. et al. Bragantia 28: 1. 1969; (7) Salomão, T.A. et al. Arq. Inst. Biol.. 42: 133. 1975; (8) Lima, M.L.R.Z.C. et al. Rev.Setor Cien.Agr.UFPR 5:91. 1983.

Capsicum baccatum L (Pimenteira Chili), C. baccatum var. praetermissum

(Pimenteira Cumari) Solanaceae

Tospovirus

Groundnut ringspot virus(GRSV); vírus da mancha anular do amendoim Tomato chlorotic spot virus (TCSV); Vírus da mancha clorótica do tomateiro Tomato spotted wilt virus (TSWV)

Detecção destes vírus em um levantamento no banco de germoplasma de C. baccatum da Embrapa Hortaliças, DF (1-5)

Ref.: (1) Boiteux, L.S. et al. Euphytica 67: 89. 1993; (2) Nagata, T. et al. Fitopatol.Bras. 18: 425. 1993;(3) Lima, M.F. et al. Acta Hort. (ISHS) 917: 285. 2010; (4) Lima, M.F. et al Trop Plt Pathol 35(supl) S175. 2010; (5) Lima, M.F. et. Journal of Plant Pathology 92:122. 2010.

Begomovirus

Tomato rugose mosaic virus (ToRMV); vírus do mosaico rugoso do tomateiro

Amostras de pimenteira Chili procedentes de Petrolina de Goiás, GO, com sintomas de mosaico e deformação foilar estariam infectadas por um isolado do ToRMV, segundo ensaios moleculares, mas não havia provas de que o vírus seja o agente causal da doença (1). A comprovação foi feita posteriormente via biobalistica (2). Plantas de C. annuum também foram experimentalmente infectadas.

Ref.: (1) Ferreira, G.B. et al. Fitopatol.Bras. 29: S202. 2004; (2) Bezerra-Agasie et al. Plant Disease 90: 114, 2006.

Potyvirus

Pepper yellow mosaic iírus (PepYMV); vírus do mosaico amarelo do pimentão Potato virus Y (PVY); Vírus Y da batata

Tobamovirus

Pepper mild mottle virus (PMMoV); vírus do mosqueado suave do pimentão Capsicum chinense Jacq. (pimenta cumari) Solanaceae

Tospovirus

Sintomas de lesões locais seguidas de sintomas sistêmicos, anéis cloróticos, mosaico, nanismo observados em C. chinense em casa de vegetação (1, 2) e em campo em Brasilia, DF (3). Fonte de resistência ao TSWV de C. chinense foi quebrada por isolados de GRSV e TCSV (4).

Ref.: (1)Nagata T. et al. Fitopatol. Bras. 18: 425-430, 1993. (2) Boiteux, L.S. & Nagata, T. Plant Dis 77: 210. 1993; (3) Boiteux, L.S. et al. Euphytica 67: 89. 1993.

Begomovirus

Sida micrantha mosaic virus (SmMV); vírus do mosaico de Sida micrantha Detectado de SmMV em pimenteira coletada em Campo Florido, MG (1). Ref.: (1) Teixeira, E.C. et al. Trop.Plt Pathol. 33(supl): S289. 2008.

Capsicum frutescens L. (Pimenteira) Solanaceae Cucumovirus

Cucumber mosaic vírus (CMV); vírus do mosaico do pepino

Foram observadas plantas de pimenta com sintomas de mosaico e deformação foliar, no PA. Associação de partículas isométricas em extratos purificados e a amplificação de vDNA por RT-PCR usando primers específicos, indicam que os sintomas seriam causados por um isolado do CMV (1).

Ref.: (1) Carvalho, T.P. et al. Trop.Plt.Pathol. 38 (supl.) 286-1.2013. Tospovirus