Com respeito a análise estatística, considerando-se o teor de fenóis, tem-se os dados mostrados na Tabela 12. Os dados brutos encontram-se no Anexo H.
Tabela 12 Quantidade de fenóis (g/100g) em função da parte da planta e método de extração, independente da origem da planta.
Fenóis Folha (FL) Folha Po (PFL) Caule (CL)
Média DP Tukey Média DP Tukey Média DP Tukey Etanol 2,0374 0,3940 Ab 2,8122 0,5095 Aa 1,4147 0,5994 Bc Solução 50:50 2,3164 0,4635 Aa 1,9325 0,2137 Bab 1,6984 0,4128 ABb Água 2,1222 0,3971 Aa 1,8749 0,2398 Ba 2,0955 0,2410 Aa
Letras distintas maiúsculas em coluna e minúsculas em linha apresentam diferença significativa de acordo com teste de Tukey, com nível de significância de 5%. DP: Desvio Padrão.
Fonte: Arquivo pessoal.
Com relação a quantidade de fenóis extraídos: não há diferença entre os meios de extração para as folhas (FL), para as folhas em pó (PFL), o meio de extração mais eficiente é etanol. Com relação aos caules (CL), o meio de extração menos eficiente é etanol e o mais eficiente é a água. Quando se faz a extração por etanol, obtém-se mais fenóis da PFL e menos do CL. Quando se faz a extração por solução 50:50, obtém-se mais fenóis de FL e menos de PFL.
Para a extração por água, obtém-se mais fenóis de FL e CL e menos de PFL.
73 Considerando-se a extração por etanol (Tabela 13), há maior quantidade de fenóis na folha (FL) de MG quando comparado a amostra da Moringa Mais Vida (MMV), com diferença significativa entre FL e PFL. Há maior quantidade de fenóis no caule (CL) da Moringa Mais Vida quando comparado a MG. Em ambas as plantas (MMV e MG), há quantidade significativamente superior de fenóis nas folhas em pó (PFL) quando comparado a folha (FL) e ao o caule (CL). Entretanto existe diferença significativa entre CL e FL apenas para a plante de MG, que apresenta mais fenóis em FL que CL.
Tabela 13 Quantidade de fenóis (g/100g) extraídos por etanol em função da parte da planta e da origem da planta.
Fenóis
SP MG
Media DP Tukey Media DP Tukey
Folha (FL) 1,7487 0,1487 Bb 2,4706 0,1556 Ba
Folha Pó (PFL) 2,2288 0,2888 Ab 3,1770 0,0476 Aa
Caule (CL) 1,9229 0,0391 Ba 0,7614 0,1046 Cb
Letras distintas maiúsculas em coluna e minúsculas em linha apresentam diferença significativa de acordo com teste de Tukey, com nível de significância de 5%. DP: Desvio Padrão.
Fonte: Arquivo pessoal.
Considerando-se a extração por solução 50:50: há maior quantidade de fenóis na folha (FL) de MG quando comparado a MMV. Para o PFL, não há diferença entre a MMV e a de MG. Há maior quantidade de fenóis no caule (CL) da MMV quando comparado a de MG. Na planta proveniente da MMV, não há diferença entre FL. PFL e CL. Na planta de MG, há quantidade significativamente superior de fenóis nas folhas (FL) quando comparado a folha pó (PFL) e ao o caule (CL). Havendo ainda diferença significativa entre CL e PFL, sendo que o PFL apresenta mais fenóis que CL (Tabela 14).
74 Tabela 14 Quantidade de fenóis (g/100g) extraídos por solução etanol/água 50:50 em função da parte da planta e da origem da planta.
Fenóis SP MG
Media DP Tukey Media DP Tukey
Folha (FL) 1,8076 0,1839 Ab 2,6726 0,1306 Aa
Folha Pó (PFL) 1,9724 0,3095 Aa 1,8928 0,0294 Ba
Caule (CL) 2,0673 0,0147 Aa 1,3296 0,2324 Cb
Letras distintas maiúsculas em coluna e minúsculas em linha apresentam diferença significativa de acordo com teste de Tukey, com nível de significância de 5%. DP: Desvio Padrão.
Fonte: Arquivo pessoal.
Com respeito a extração com água (Tabela 15): há maior quantidade de fenóis na folha (FL) e no caule (CL) de MG quando comparado a MMV. Para a PFL, não há diferença entre a amostra da MMV e a de MG. Na planta da MMV, não há diferença entre FL. PFL e CL. Na planta de MG, há quantidade significativamente superior de fenóis nas folhas (FL) e no caule (CL) quando comparado a folha pó (PFL).
Tabela 15 Quantidade de fenóis (g/100g) extraídos por ÁGUA em função da parte da planta e da origem da planta.
Fenóis
SP MG
Media DP Tukey Media DP Tukey
Folha (FL) 1,6769 0,1937 Ab 2,4191 0,0907 Aa
Folha Pó (PFL) 1,8208 0,3326 Aa 1,9290 0,0577 Ba
Caule (CL) 1,8744 0,0497 Ab 2,3166 0,0970 Aa
Letras distintas maiúsculas em coluna e minúsculas em linha apresentam diferença significativa de acordo com teste de Tukey, com nível de significância de 5%. DP: Desvio Padrão
Fonte: Arquivo pessoal.
Com relação a quantidade de flavonoides extraídos: não há diferença entre os métodos de extração para FL e PFL. Para CL, o meio de extração mais eficiente é solução 50:50. Quando se faz a extração por etanol, obtém-se mais flavonoides da PFL e menos do CL. Para extração por água ou solução 50:50, não há diferença na quantidade de flavonoides entre FL, PFL e CL (Tabela 16).
75 Tabela 16 Quantidade de flavonoides (g/100g) em função da parte da planta e método de extração.
Flavonoides
Folha (FL) Folha Po (PFL) Caule (CL) Média DP Tukey Média DP Tukey Média DP Tukey Etanol 0,7295 0,6741 Aab 1,2580 0,7758 Aa 0,5283 0,1674 Bb Solução 50:50 1,1647 0,8846 Aa 1,0544 0,8418 Aa 1,2523 0,1829 Aa Água 1,0429 0,6354 Aa 0,7125 0,5275 Aa 0,8165 0,2372 ABa
Letras distintas maiúsculas em coluna e minúsculas em linha apresentam diferença significativa de acordo com teste de Tukey, com nível de significância de 5%. DP: Desvio Padrão.
Fonte: Arquivo pessoal.
Considerando-se a extração por etanol (Tabela 17): há maior quantidade de flavonoides na folha de MG quando comparado a da MMV, com diferença significativa entre FL e PFL. Há maior quantidade de flavonoides no caule da MMV quando comparado a de MG. Na planta de SP, há quantidade significativamente superior de flavonoides no caule (CL) quando comparado às folhas (FL e PFL). Na planta de MG, há quantidade significativamente superior de flavonoides nas folhas (FL e PFL) quando comparado ao caule (CL).
Tabela 17 Quantidade de flavonoides (g/100g) extraídos por etanol em função da parte da planta e da origem da planta.
Flavonoides SP MG
Media DP Tukey Media DP Tukey
Folha (FL) 0,1986 0,0072 Cb 1,5259 0,0626 Ba
Folha Pó (PFL) 0,3166 0,0029 Bb 1,8464 0,0557 Aa
Caule (CL) 0,6566 0,0982 Aa 0,3633 0,0276 Cb
Letras distintas maiúsculas em coluna e minúsculas em linha apresentam diferença significativa de acordo com teste de Tukey, com nível de significância de 5%. DP: Desvio Padrão.
Fonte: Arquivo pessoal.
Com respeito a extração por solução 50:50: há maior quantidade de flavonoides na folha de MG quando comparado a da MMV, sem diferença significativa entre FL e PFL. Há maior quantidade de flavonoides no caule da MMV quando comparado a MG. Na planta da MMV, há quantidade significativamente superior de flavonoides no caule (CL) quando comparado às folhas (FL e PFL). Na planta de MG, há quantidade significativamente superior
76 de flavonoides nas folhas (FL e PFL) quando comparado ao caule (CL) (Tabela 18).
Tabela 18 Quantidade de flavonoides (g/100g) extraídos por solução etanol/água 50:50 em função da parte da planta e da origem da planta.
Flavonoides SP MG
Media DP Tukey Media DP Tukey
Folha (FL) 0,1415 0,0068 Bb 1,8810 0,0828 Aa
Folha Pó (PFL) 0,2486 0,0143 Bb 1,8601 0,0232 Aa
Caule (CL) 1,3296 0,2324 Aa 1,1751 0,0634 Ba
Letras distintas maiúsculas em coluna e minúsculas em linha apresentam diferença significativa de acordo com teste de Tukey, com nível de significância de 5%. DP: Desvio Padrão.
Fonte: Arquivo pessoal.
Considerando-se a extração por água: há maior quantidade de flavonoides na folha de MG quando comparado a da MMV, com diferença significativa entre FL e PFL. Há maior quantidade de flavonoides no caule da MMV quando comparado a MG. Na planta da MMV, há quantidade significativamente superior de flavonoides no caule (CL) quando comparado às folhas (FL e PFL). Na planta de MG, há quantidade significativamente superior de flavonoides nas folhas (FL e PFL) quando comparado ao caule (CL) (Tabela 19).
Tabela 19 Quantidade de flavonoides (g/100g) extraídos por ÁGUA em função da parte da planta e da origem da planta.
Flavonoides
SP MG
Media DP Tukey Media DP Tukey
Folha 0,2854 0,0102 Bb 1,5480 0,0402 Aa
Folha Pó 0,1995 0,0155 Cb 1,2256 0,0850 Ba
Caule 1,0442 0,0294 Aa 0,5888 0,0080 Cb
Letras distintas maiúsculas em coluna e minúsculas em linha apresentam diferença significativa de acordo com teste de Tukey, com nível de significância de 5%. DP: Desvio Padrão.
Fonte: Arquivo pessoal.
Foi realizada uma análise multivariada, levando-se em consideração todas as condições de extração versus o teor de fenóis e flavonoides. A análise dos scores é mostrada na Figura 25.
77 Figura 25 Análise em PC-1 x PC-2 dos scores (processos de extração de diferentes partes da planta.
Fonte: Arquivo pessoal.
A Figura 25 mostra que não houve uma separação nítida. Portanto, optou-se por analisar as folhas e caules optou-separadamente. Ao optou-se analisar somente as folhas em diferentes processos de extração e de diferentes locais, obteve-se uma boa separação, mostrada na Figura 26.
78 Figura 26 Análise em PC-1 x PC-2 dos scores (processos de extração da folha) (A) e os loadings (B).
Fonte: Arquivo pessoal.
No caso da Figura 26, a separação dos dois grupos (Moringa Mais Vida, SP) e de MG. O grupo de MG apresentou maior conteúdo de fenóis com correlação de 88%. Esse dado pode ser explicado pelo fato de ser uma planta nova, onde o metabolismo está acelerado para a produção de metabólitos secundários, fato que ainda não pode ser confirmado.
-1 -0,8 -0,6 -0,4 -0,2 0 0,2 0,4 0,6 0,8
-1,2 -1 -0,8 -0,6 -0,4 -0,2 0 0,2 0,4 0,6 0,8 1 1,2 1,4
PC-2(12%)
PC-1 (88%)
Folha EtOH Folha 50:50 Etanol:Água
Folha água Folha em pó EtOH
Folha em pó 50:50 Etanol:Água Folha em pó água
Folha EtOH MG Folha 50:50 Etanol:Água MG
Folha água MG Folha em pó EtOH MG
Folha em pó 50:50 Etanol:Água MG Folha em pó água MG -1
-0,5 0 0,5 1
0 0,2 0,4 0,6 0,8 1
PC2 (12%)
PC1 (88%)
A
B
79 A Figura 27 mostra a mesma análise para o caule.
Figura 27 Análise em PC-1 x PC-2 dos scores (processos de extração do caule) (A) e os loadings (B).
Fonte: Arquivo pessoal.
Com respeito a Figura 27, a maior influência nesse grupo é dos flavonoides, excetuando-se o caule extraído com etanol, das amostras de MG.
Referente a atividade antioxidante (Tabela 11) e o conteúdo de fenóis e flavonoides, não se econtrou nenhuma correlação, exceto para o grupo da Moringa Mais Vida, mostrada na Figura 28 (R = 0,97).
-0,8
Caule EtOH Caule 50:50 Etanol:Água
Caule água Caule EtOH MG
Caule 50:50 Etanol:Água MG Caule água MG -1,2
80 Figura 28 Correlação entre o conteúdo de flavonoides (g/100g) e a atividade antioxidante (CE50) para o grupo de amostras da Moringa Mais Vida.
Fonte: Arquivo pessoal.
Os resultados mostram que o extrato etanólico das folhas da moringa apresenta um alto conteúdo de fenólicos totais e flavonoides totais. Além disso, o extrato etanólico também apresentou uma atividade antioxidante considerável, sugerindo que este é uma fonte potencial de substâncias antioxidantes para uso medicinal.
Muitos questionamentos podem ser levantados no presente trabalho, o fato é que foi possível quantificar o teor de fenóis, flavonoides e atividade antioxidante, entre outros parâmetros para amostras de moringa que crescem em duas regiões diferentes. Sendo a moringa, portanto, uma planta que tem um potencial biológico muito importante e que nunca foi estudada a espécie no Brasil sob o ponto de vista de controle de qualidade como foi feito no presente trabalho, estabelecimento de condições de extração, entre outros fatores.
y = 23,031x + 6,5682 R² = 0,9493
0,00 5,00 10,00 15,00 20,00 25,00 30,00 35,00 40,00
0 0,2 0,4 0,6 0,8 1 1,2 1,4
CE50 (ug/mL)
Flavonoides totais (g/100g)
81 6 CONCLUSÕES
Diante dos resultados obtidos neste estudo foi possível verificar que moringa possui potencial para ser utilizada como fonte de compostos antioxidantes com potencial biológico, principalmente devido à presença de compostos fenólicos e entre estes, os flavonóides.
O extrato etanólico das folhas da moringa apresentaram um alto conteúdo de fenólicos totais e flavonoides totais. O extrato etanólico também apresentou uma atividade antioxidante in vitro considerável, e os resultados mostraram que os extratos etanólicos são potentes fontes de substâncias sequestradoras de radicais livres sugerindo que estes extratos são capazes de prevenir os danos oxidativos do organismo humano.
PERSPECTIVAS FUTURAS
As análises fitoquímicas forneceram informações complacentes a respeito da presença de metabólitos secundários nas plantas, podendo de tal modo chegar ao isolamento de princípios ativos importantes para potencial uso medicinal dessa planta. Além disso, os resultados obtidos direcionam para novas investigações para este extrato e contribuem para o conhecimento fitoquímico da respectiva espécie, permitindo assim a discussão entre o conhecimento científico e uso medicinal popular da Moringa oleifera Lam.
82 REFERÊNCIAS
ABDULKARIM, S.M.; LONG, K.; LAI, O.M.; MUHAMMAD, S.K.S.; GHAZALI, H.M. (2004). Some physico-chemical properties of Moringa oleifera seed oil extracted using solvent and aqueous enzymatic methods. Journal of Food Chemistry, 93:253-256.
ADEDAPO, A.A.; MOGBOJURI, O.M.; EMIKPE, B.O. (2009). Safety evaluations of the aqueous extract of the leaves of Moringa oleifera in rats. Journal of Medicinal Plants, 3: 586–591.
AL-ASMARI, A.K.; ALBALAWI, S.M.; ATHAR, M.T.; KHAN, A.Q.; AL-SHAHRANI, H.; ISLAM, M. (2017). Moringa oleifera as an anti-cancer agent against breast and colorectal cancer cell lines. Plos One. Disponível em:
https://doi.org/10.1371/journal.pone.0135814. Acesso em 24/08/18.
AL-JUHAIMI, F.; GHAFOOR, K.; HAWASHIN, M.D.; ALSAWMAHI, O.N.;
BABIKER, E.E. (2016). Effects of different levels of moringa (Moringa oleifera) seed flour on quality attributes of beef burgers. CyTA – Journal of Food, 14 (1):
1–9.
AMBI, A.A.; ABDURAHMAN, E.M.; KATSAYA, U.A.; SULE, M.I.; PATEH, U.U.;
IBRAHIM, N.D.G. (2011). Toxicity evaluation of Moringa oleifera leaves.
International Journal of Pharmaceutical Research and Innovation, 4: 22–24.
ANWAR, F.; BHANGER, M.I. (2003) Analytical characterization of moringa oleifera seed oil grown in temperate regions of Pakistan. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 51: 6558−6563.
ANWAR, F.; RASHID, U. (2007). Physico-chemical characteristics of Moringa oleifera seeds and seed oil from a wild provenance of Pakistan. Pakistan Journal of Botany, 39(5): 1443-1453.
ANWAR, F. S.; LATIF, S.; ASHRAF, M.; GILANI, A. H. (2007). Moringa oleifera:
A food plant with multiple bio-chemical and medicinal uses, a review.
Phytotherapy Research, 21:17-25.
ARUNA, M., SRILATHA, N. (2012). Water clarification using Moringa oleifera Lam. seed as a natural coagulant. Current Biotica, 5: 472-486.
ASARE, G.A.; GYAN, B.; BUGYEI, K., ADJEI, S.; MAHAMA, R.; ADDO, P.; OUT-NYARKO, L.; WIREDU, E.K.; OUT-NYARKO, A. (2012). Toxicity potentials of the nutraceutical Moringa oleifera at supra-supplementation levels. Journal of Ethnopharmacology, 139: 265–272.
ASIEDU-GYEKYE, I.J.; FRIMPONG-MANSO, S.; AWORTWE, C.; ANTWI, D.A.;
NYARKO, A.K. (2014). Micro- and macroelemental composition and safety evaluation of the nutraceutical Moringa oleifera leaves. Journal of Toxicology, Article ID 786979, 13 pages.
83 AWODELE, O.; OREAGBE, I.A.; ODOMA, S.; DA SILVA, J.A.T.; OSUNKALU, V.O. (2012). Toxicological evaluation of the aqueous leaf extract of Moringa oleifera Lam.(Moringaceae). Journal of Ethnopharmacology, 139: 300–306.
AZAD, A.K., RASUL, M.G., KHAN, M.M.K., SHARMA, S.C., ISLAM, R. (2015).
6th BSME International Conference on Thermal Engineering (ICTE 2014).
Prospect of Moringa seed oil as a sustainable biodiesel fuel in Australia: A review.
Procedia Engineering 105: 601 – 606.
BANSKOTA, A. H.; TEZUKA, T; ADYANA, I. K; MIDORIKAWA, K;
MATSUSHIGE, K; MESSAGE, D; HUERTAS, A. G. A; KADOTA, S. (2000).
Cytotoxic, hepatoprotective and free radical scavenging effects of propolis from Brazil, Peru, the Netherlands and China. Journal of Ethnopharmacology, 72: 239-246.
BENNETT, R.N.; MELLON, F.A.; FOIDL, N.; PRATT, J.H.; DUPONT, M.S.;
PERKINS, L.; KROON, P.A. (2004). Profiling glucosinolates and phenolics in vegetative and reproductive tissues of the multi-purpose trees Moringa oleifera L. (Horseradish Tree)andMoringa stenopetala L. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 51: 3546-3553.
BEZERRA, A. M. E.; MOMENTÉ, V. G.; MEDEIROS FILHO, S. (2004).
Germinação de sementes e desenvolvimento de plântulas de moringa (Moringa oleifera Lam.) em função do peso da semente e do tipo de substrato. Horticultura Brasileira, 22: 295-299.
BHOLAH, K.; RAMFUL-BABOOLALL, D.; NEERGHEEN-BHUJUN, V.S. (2015).
Antioxidant activity of polyphenolic rich Moringa oleifera Lam. extracts in food systems. Journal of Food Biochemistry 39: 733–741.
BRAND-WILLIAMS W, CUVELIER ME, BERSET CL. 1995. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. Wiss Technology, 28: 25–30.
BRILHANTE, R.S.N.; SALES, J.A.; SAMPAIO, C.M.S.; BARBOSA, F.G.; NETO PAIVA, M.A.; GUEDES, G.M.M.; DE ALENCAR, L.P.; DE PONTE, Y.B.;
BANDEIRA, T.J.P.G.; MOREIRA, J.L.B.; CASTELO-BRANCO, D.C.M.;
PEREIRA-NETO, W.A.; CORDEIRO, R.A.; SIDRIM, J.J.C.; ROCHA, M.F.G.(2015). Vibrio spp. from Macrobrachium amazonicum prawn farming are inhibited by Moringa oleifera extracts. Asian Pacific Journal of Tropical Medicine, 8(11): 919–922.
CÁCERES, A.; SARAIVA, A.; RIZZO, S.; ZABALA, L.; DE LEON, E.; NAVE, F.
(1992). Pharmacological properties of Moringa oleifera. 2: Screening for antispasmodic, antiinflammatory and diuretic activity. Journal of Ethnopharmacology, 36: 233-237.
CAMPAS-BAYPOLI, O.N.; SANCHÉZ-MACHADO, D.I.; BUENO-OLANO, C.;
ESCÁRCEGA-GALAZ, A.A.; LÓPEZ-CERVANTES, J. (2014). Biochemical composition and physicochemical properties of Moringa oleifera seed oil, Acta Alimentaria, 43: 538–546.
84 CASTILLO-LÓPEZ, R.I.; LEÓN-FÉLIX, J.; ANGULO-ESCALANTE, M.A.;
GUTIÉRREZ-DORADO, R.; MUY-RANGEL, M.A.; HEREDIA, J.B. Nutritional and phenolic characterization of Moringa oleifera leaves grown in Sinaloa, México (2017). Pakistan Journal of Botany, 49(1): 161-168.
CHUANG, P.H.; LEE, C.W.; CHOU, J.Y.; MURUGAN, M.; SHIEN, B.J.; CHEN, H.M. (2007). Antifungal activity of crude extracts and essential oil of Moringa oleifera Lam. Bioresource Technology, 98: 232-236.
COPPIN, J.P.; XU, Y.; CHEN, H.; PAN, M.H.; HO, C.T.; JULIANI, R.; SIMON, J.E.; WU, Q. (2013). Determination of flavonoids by LC/MS and anti-inflammatory activity in Moringa oleifera. Journal of Functional Foods, 5:1892–1899.
DA SILVA, J.P.V.; SERRA, T.M.; GOSSMANN, M.; WOLF, C.R.; MENEGHETTI, M.R.; MENEGHETTI, S.M.P. (2010). Moringa oleifera oil: Studies of characterization and biodiesel production. Biomass and Bioenergy, 34:1527–
1530.
DEVISETTI, R.; SREERAMA, Y.N.; BHATTACHARYA, S. (2016). Processing effects on bioactive components and functional properties of moringa leaves:
development of a snack and quality evaluation. Journal of Food Science and Technology, 53(1): 649–657.
DJANDE, C.Y.H.; PIATER, L.A.; STEENKAMP, P.A.; MADALA, N.E.; DUBERY, I.A. (2018). Differential extraction of phytochemicals from the multipurpose tree, Moringa oleifera, using green extraction solvents. South African Journal Botany, 115, 81-89.
FAIZI, S.; SIDDIQUI, B.S.; SALEEM, R.; SIDDIQUI, S.; AFTAB, K. (2004).
Isolation and structure elucidation of new nitrile and mustard oil glycosides from Moringa oleifera and their effect on blood pressure. Journal of Natural Products, 57: 1256-1261.
FAO: Tradicional Crop of the month – Moringa. Disponível em:
http://www.fao.org/traditional-crops/moringa/en/. Acesso em 21/08/17.
FARMACOPÉIA BRASILEIRA, Agência Nacional de Vigilância Sanitária / Fundação Oswaldo Cruz, Volume 1, 2010, 545pp.
FERREIRA, R.S.; NAPOLEÃO, T.H.; SANTOS, A.F.S.; SÁ, R.A.; CARNEIRO-DA-CUNHA, M.G.; MORAIS, M.M.C.; SILVA-LUCCA, R.A.; OLIVA, M.L.V.;
COELHO, L.C.B.B.; PAIVA, P.M.G. (2011). Coagulant and antibacterial activities of the water-soluble seed lectin from Moringa oleifera. Letters in Applied Microbiology, 53(2): 186-192.
FOIDL, N. ; MAKKAR, H. P. S. ; BECKER, K. (2001). The potential of Moringa oleifera for agricultural and industrial uses. In: What development potential for Moringa products? October 20th - November 2nd 2001. Dar Es Salaam.
Disponível em:
https://miracletrees.org/moringa-85 doc/the_potential_of_moringa_oleifera_for_agricultural_and_industrial_uses.pdf . Acesso em 21/08/17.
FREIBERGER C.E.; VANDERJAGT, D.J.; PASTUSZYN A.; GLEW R.S.;
MOUNKAILA, G.; MILLSON M.; GLEW R.H. (1998). Nutrient content of the edible leaves of seven wild plants from Niger. Plant Foods for HumanNutrition, 53: 57-69.
FUGLIE, L. J. The miracle tree: Moringa oleifera. Natural nutrition for the tropics.
Church World Service, Dakar, 1999.
GASSENSCHMIDT, U.; JANY, K.D.; TAUSCHER, B.; NIEBERGALL, H. (1995).
Isolation and characterization of a flocculating protein from Moringa oleifera Lam.
Biochimica Biophysica Acta, 1243: 477-481.
GERDES, G. (1996). Uso das sementes da árvore moringa para tratamento da água bruta. Fortaleza: ESPLAR Centro de Pesquisa e Assessoria. 12p.
GHASI, S.; NWOBODO, E.; OFILI, J.O. (2000). Hypocholesterolemic effects of crude extract of leaf of Moringa oleifera Lam in high-fat diet fed wistar rats.
Journal of Ethnopharmacology, 69: 21-25.
GILANI, A.H.; KHALID, A.; SURIA, A. (1994). Pharmacological studies on hypotensive and spamolytic activies of pure compounds from Moringa oleifera.
Phytotherapy Research, 8: 87-91.
GUEVARA, A. P.; VARGAS, C.; SAKURAI, H.; FUJIWARA, Y.; HASHIMOTO, K.;
MAOKA, T.; KOZUKA, M.; ITO, Y.; HARUKUNI, T.; NISHINO, H. (1999). An antitumor promoter from Moringa oleifera Lam. Mutation Research, 440: 181-188.
HAMMER, Ø., HARPER, D.A.T., RYAN, P.D. 2001. PAST: Paleontological statistics software package for education and data analysis. Palaeontologia Electronica 4(1): 9pp.
http://palaeo-electronica.org/2001_1/past/issue1_01.htm. Acesso em 06/02/19.
ILYAS, M.; ARSHAD, M.U.; SAEED, F.; IQBAL, M. Antioxidant potential and nutritional comparison of moringa leaf and seed powders and their tea infusions.
The Journal of Animal & Plant Sciences, 25(1): 226-233.
IQBAL, S.; BHANGER, M. I. (2006). Effect of season and production location on antioxidant activity of Moringa oleifera leaves grown in Pakistan. Journal of Food Composition and Analysis, 19: 544-551.
JAIN, P.G.; PATIL, S.D.; HASWANI, N.G.; GIRASE, M.V.; SURANA, S.J. (2010).
Hypolipidemic activity of Moringa oleifera Lam., Moringaceae, on high fat diet induced hyperlipidemia in albino rats. Revista Brasileira de Farmacognosia, 20:
969–973.
86 JONGRUNGRUANGCHOK, S.; BUNRATHEP, S.; SONGSAK, T. (2010) Nutrients and minerals content of eleven different samples of moringa oleifera cultivated in Thailand. Journal of Health Research, 24(3): 123-127.
JUNG, I.L. (2014). Soluble Extract from Moringa oleifera leaves with a new anticancer activity. Plos One, 9: e95492.
LAKO, J.; TRENERRY, V. C.; WAHLQVIST, M.; WATTANAPENPAIBOON, N.;
SOTHEESWARAN, S.; PREMIER, R. (2007). Phytochemical flavonols, carotenoids and the antioxidant properties of a wide selection of Fijian fruit, vegetables and other readily available foods. Food Chemistry, 101: 1727-1741.
LEONE, A.; FIORILLO, G.; CRISCUOLI, F.; RAVASENGHI, S.; SANTAGOSTINI, L.; FICO, G.; SPADAFRANCA, A.; BATTEZZATI, A.; SCHIRALDI, A.; POZZI, F.;
DI LELLO, S.; FILIPPINI, S.; BERTOLI, S. (2015a). Nutritional characterization and phenolic profiling of Moringa oleifera leaves grown in Chad, Sahrawi Refugee Camps, and Haiti. International Journal of Molecular Science, 16: 18923-18937.
LEONE, A.; SPADA, A.; BATTEZZATI, A.; SCHIRALDI, A.; ARISTIL, J.;
BERTOLI, S. (2015b). Cultivation, genetic, ethnopharmacology, phytochemistry and pharmacology of Moringa oleifera leaves: An overview. International Journal of Molecular Science, 16: 12791-12835.
MAHMOOD, K.; MUGAL, T.; HAQ, I.U. (2010). Moringa oleifera: A natural gift-A review. Journal of Pharmaceutical Science Research, 2: 775–781.
MAKITA, C.; CHIMUKA, L.; STEENKAMP, P.; CUKROWSKA, E.; MADALA, E.
(2016). Comparative analyses of flavonoid content in Moringa oleifera and Moringa ovalifolia with the aid of UHPLC-qTOF-MS fingerprinting. South African Journal of Botany, 105: 116–122.
MAKKAR, H. P. S.; BECKER, K. (1996). Nutritional value and nutritional components of whole and ethanol extracted Moringa oleifera. Animal Feed Science and Technology, 63: 211-228.
MAKKAR, H. P. S.; BECKER, K. (1997). Nutrients and quality factors in different morphological parts of the Moringa oleifera tree. Journal of Agricultural Science, 128: 331- 322.
MATOS, F.J.A. Farmácias vivas: sistema de utilização de plantas medicinais projetado para pequenas comunidades. 4ª ed, UFPA, 2002.
ONSARE, J.G.; KAUR, H.; ARORA, D.S. (2013). Antimicrobial activity of Moringa oleifera from different locations against some human pathogens. Academia Journal of Medicinal Plants, 1(5): 080-091.
OYAGBEMI, A.A.; OMOBOWALE, T.O.; AZEEZ, I.O.; ABIOLA, J.O.;
ADEDOKUN, R.A.M.; NOTTIDGE, H.O. (2013). Toxicological evaluations of methanolic extract of Moringa oleifera leaves in liver and kidney of male Wistar rats. Journal of Basic Clinical Physiology Pharmacy, 24: 307–312.
87 PALADA, M. C. (1996). Moringa (Moringa oleifera Lam.): a versatile tree crop with horticultural potential in the Subtropical United States. Horticultural Science, 31: 233-234.
PÁRAMO-CALDERÓN, D.E.; APARICIO-SAGUILÁNA, A.; AGUIRRE-CRUZ, A.;
CARRILLO-AHUMADA, J.; HERNÁNDEZ-URIBE, J.P.; ACEVEDO-TELLO, J.;
TORRUCO-UCO, J.D. (2019). Tortilla added with Moringa oleifera flour:
Physicochemical, texture properties and antioxidant capacity LWT - Food
Physicochemical, texture properties and antioxidant capacity LWT - Food