Câmara hiperbárica de acrílico para animais de pequeno porte

Services on Demand Article Article in xml format Article references How to cite this article Curriculum ScienTI Automatic translation Send this article by e­mail Indicators Cited by SciELO Access statistics Related links Share More More Permalink

Acta Cirurgica Brasileira

On­line version ISSN 1678­2674

Acta Cir. Bras. vol.16 no.4 São Paulo Oct./Nov./Dec. 2001 http://dx.doi.org/10.1590/S0102­86502001000400014 

14 ­ INFORME TÉCNICO

CÂMARA HIPERBÁRICA DE ACRÍLICO PARA

ANIMAIS DE PEQUENO PORTE

Trabalhos experimentais e clínicos confirmaram a eficácia do método, no tratamento de infecções por anaeróbios e aeróbios, Gram positivos e negativos , mediante ação mais bacteriostática do que bactericida4,5,6. Outros efeitos benéficos do hiperbarismo foram testados na doença

isquêmica dos membros inferiores e na melhoria da função miocárdica7, na osteomielite crônica8, e na conservação de órgãos transplantados9 .

Observou­se a diminuição do tempo de consolidação de fraturas por aumento de produção de DNA e RNA em ratos submetidos a oxigenoterapia hiperbárica10. Meltzer comprovou o aumento da angiogênese, com melhora da cicatrização tecidual quando ratos eram submetidos ao

hiperbarismo11. Os resultados positivos do hiperbarismo também foram demonstrados nas endarterites pós radioterapia12, na lesão por isquemia­reperfusão13 e na doença de Crohn14,15.

Tais fatos motivaram o interesse pela oxigenoterapia hiperbárica em diferentes situações clínicas. Como é preciso compreender melhor os efeitos da câmara hiperbárica através de estudos

experimentais, foi construído um protótipo de câmara hiperbárica portátil, apropriada para animais de pequeno porte, já que não é possível, devido ao alto custo, o acesso às existentes.  

MÉTODOS

Foi construída em acrílico cristal transparente, com 560 kg/cm2 (quilograma por centímetro quadrado) de tensão de ruptura, e, massa específica a 200 (graus) igual a 1,19 g/cm3 (gramas por centímetro cúbico), permitindo a observação dos animais no seu interior durante o

experimento. Ela tem forma de um cilindro vazado com diâmetro interno de 40cm (centímetros) por 30 cm de altura e paredes de 1 cm de espessura. No sentido das extremidades para o centro, na superfície externa do cilindro, foi fixado através de cola polímero de acrílico₁, um flange do mesmo material com 42 cm de diâmetro interno por 2,54 cm de comprimento e 5,08 cm de espessura, justo e alinhado com as extremidades do cilindro. Nestes flanges foram feitos 8 furos transpassando o seu comprimento, igualmente espaçados para traspasse de parafusos

sextavados de 1,27cm de diâmetro de aço inoxidável, para fixação de tampas removíveis. As tampas têm formato de disco, também em acrílico cristal, com 52,16 cm de diâmetro por 2,56 cm de espessura com a mesma distribuição de furos descrita nos flanges. Com o rosqueamento destes parafusos, acrescido de um "O’ring" de 0,3 cm de espessura, na superfície de contato entre os flanges e as tampas, obteve­se a vedação do conjunto (figura 1).

A câmara pesa cerca de 8 kg (oito quilograma) e foram utilizados profissionais existentes no mercado para sua construção.

No interior do cilindro de acrílico, foi colocado um recipiente plástico multiperfurado a fim de conter cal sodada para absorção do gás carbônico expirado pelos animais (figura 2).

Em uma das tampas foi realizado pertuito onde foi fixado uma conexão reta de 0,64cm de diâmetro₂, para saída de um tubo de polietileno do mesmo tamanho, conectado a um filtro com regulador de pressão₃ com capacidade de 0 a 10 quilograma força por centímetro quadrado (kgf/cm2), que contém conexões de 0,64cm de diâmetro (figura 3).

Na saída do filtro regulador usou­se um tubo com as mesmas características descritas acima para conexão _com

DISCUSSÃO

Câmara hiperbárica seria aquela capaz de manter em boas condições um ser vivo acima de 1 atm de pressão, por um período variável de tempo, e conseguir fazê­lo retornar condições

normobáricas16 .

O controle da pressão no interior de uma câmara é feito através da utilização de ar comprimido ou de oxigênio puro. A oxigenoterapia hiperbárica, desde o século passado, vem sendo utilizada em pesquisas clínicas e experimentais, sendo que o oxigênio pode ser fornecido através de máscaras, quando o paciente encontra­se em câmaras de ar comprimido, ou pelo próprio ambiente de pressurização1.

Inicialmente a utilização do hiperbarismo estava principalmente ligada a profissionais de mergulho para prevenção da doença descompressiva e da embolia traumática. Para tanto as primeiras câmaras foram projetadas para comportar vários trabalhadores e a pressurização era feita através de ar comprimido sendo o oxigênio administrado por máscara. Em 1961, Boerema 2 relata a construção de uma sala de operações sob alta pressão atmosférica. Baffes 7 refere a utilização de uma câmara de metal para uso de apenas um paciente por sessão, utilizando oxigênio puro para a pressurização. Uma câmara portátil flexível feita de fibras aramadas para uso individual foi feita na África do Sul para tentar diminuir os custos, pois a mesma poderia ser utilizada por vários

centros17.

Esta câmara hiperbárica de acrílico tem como vantagem permitir a vizibilização do animal durante todo experimento, e acompanhar sua variação de comportamento. É de fácil higienização e

portátil. Suporta pressões até 3 atm sem alterar a vedação em sessões de 30, 60 e 90 minutos. Em nossos testes apresentou deformação na superfície de uma das tampas a partir de 3,5 atm. As indicações de utilização na prática clínica de oxigenoterapia hiperbárica preconizam a utilização de até 3 atm na maior parte dos protocolos. Deve­se destacar que só somente após 4 anos de uso intermitente verificou­se rachaduras em uma das tampas.

higienização.

REFERÊNCIAS

1. Bellucci G. Breve storia della terapia iperbarica. Minerva Anestesiol 1991;57:183­5.         [ Links ]

2. Boerema I. An operating room with high atmospheric pressure. Surgery 1961;49:291­ 8.        [ Links ]

3. Boerema I, Meyne NG, Brummelkamp WK, Bouma S, Mensch M H, Kamermans F, Half M S, Aaldaren W V. Life without blood. J Cardiovasc Surg 1960;1:133­46.        [ Links ]

4. Mcallister TA, Stark JM, Norman JN, Ross R M. Inhybitory effects of hyperbaric oxygen on bacteria and fungi. Lancet 1963;2:1040­2.        [ Links ]

5. Nuckols J, Osterhout S. The effect of hyperbaric oxygen on anaerobic bacteria. Clin Res 1964;12:244.        [ Links ]

6. Van Unnik AJM. Inhibition of production in Clostridium perfringes in vitro by hyperbaric oxygen. Antonie Van Leeuwenhoek 1965;31:181­6.         [ Links ]

7. Baffes TG, Agustsson MH, Ketola FH, Baffes CG, Parker D. Administration of hyperbaric oxygen in an individual high pressure chamber. Surgery 1966;60:319­28.        [ Links ]

8. Hamblen DL Hyperbaric oxygenation. Its effect on experimental staphylococcal osteomyelitis in rats. J Bone Joint Surg 1968;50:1129­41.        [ Links ]

9. Rudolf LE, Mandel S. Supercooling, intermitent perfusion, and high pressure oxygen in whole organ preservation. Transplantation 1967;4:1159­73.        [ Links ]

10. Pettinen R, Niinikoski J, Rantanen J, Kulonen E. Effects of hyperbaric oxygenation and reduced barometric pressure on the nucleic acid contents of healing fractures. Acta Chir Scand 1972e;138:269­74.        [ Links ]

11. Meltzer T, Myers B. The effect of hyperbaric oxygen on the bursting strength and rate of vascularization of skin wounds in the rat. Am Surg 1986;12:659­62.        [ Links ]

12. Farrell H. Applications of hyperbaric oxygen. Br J Hosp Med 1992;47:803­4.        [ Links ] 13. Yamada T, Taguchi T, Toyohara T, Hirose R, Suita S, Yagi H. The effect of hyperbaric

oxygenation on ischemia­reperfusion injury of the small intestine. Transplant Proc 1994;26:1506­ 7.         [ Links ]

14. Lavy A, Weisz G, Adir Y, Ramon Y, Melamed Y, Eidelman S. Hyperbaric oxygen foy perianal Crohn’s disease. J Clin Gastroenterol 1994;19:202­5.        [ Links ]

15. Colombel JF, Mathieu D, Bouault JM, Lesage X, Zavadil P, Quandale P, Cortot A. Hyperbaric oxygenation in severe perineal Crohn’s disease. Colon Rectum 1995;38:609­14.        [ Links ] 16. Romanello E, Caione R, Colonna S, Gismondi A. Tecnologia hiperbárica. Minerva Anestesiol 1991;57:289­300.        [ Links ]

17. Murray WB. Portable flexible hyperbaric chamber. South Am Med J 1991;80:62.        [ Links ]  

Lyra Pereira ML, Teles AP, Pereira Neto J. Hyperbaric chamber of acrylic to small animals. Acta Cir Bras [serial online] 2001 Oct­Dez;16(4). Available from: URL: http://www.scielo.br/acb ABSTRACT: The aim of this work was develop an hyperbaric chamber for experimental research in small animals. Acrylic was chosen because its transparency, capacity to support pressure over 1 atm (1 atmosphere) and its light weight which makes the transport easy.

KEY WORDS: Hyperbaric oxygenation.  

Conflito de interesses: nenhum  Fontes de financiamento: nenhuma Endereço para correspondência: 

Dra. Maria Ligia Lyra Pereira  Av. Ana Costa, 259 cj. 32  Santos ­ SP 

11060­001 

Tel/Fax: (13)­3233­5425  e­mail: ligialyra@lbm.com.br

Data do recebimento: 20/06/2001  Data da revisão: 15/07/2001  Data da aprovação: 10/08/2001      

1. Trabalho desenvolvido na Faculdade de Ciências Médicas de Santos, Universidade Lusíadas e na Universidade Santa Cecília. 

2. Mestre em Técnica Operatória e Cirurgia Experimental pela Universidade Federal de São Paulo, Escola Paulista de Medicina e Professora Adjunta do Departamento de Cirurgia da Faculdade de Ciências Médicas de Santos, Universidade Lusíadas. 

3. Físico e Analista de Sistemas da Universidade São Paulo. 

4. Engenheiro Civil e Professor Adjunto da Universidade Santa Cecília.

1 Cola ICI, códigoMP33  2 Conexões FESTOâ 

3 Filtro regulador de pressão PARKER­HANNIFIN, divisão SCHRADER, referência A1592BL, com conexões DETROIT 

4 Alavanca trava PAKER­HANNIFIN, referência 103L, com conexões DETROIT

Al. Rio Claro, 179/141 01332­010 São Paulo SP Brazil

Tel./Fax: +55 11 3287­8814