SANEAMENTO AMBIENTAL
EXPERIMENTAL - TH 758
Profª Heloise G. Knapik
Programa de Pós Graduação em Engenharia de Recursos Hídricos e Ambiental Departamento de Hidráulica e Saneamento Universidade Federal do Paraná
Trabalho de Campo
Objetivos
Amostragem Laboratório Analises
Medições in situ Processamento dos Dados e da Informação Informação Local Metas e Objetivos do Projeto
Objetivos
Preparar ao aluno para o trabalho de campo e a análise
laboratorial
Trabalho de Campo
• Que informação desejo coletar?
• Tipo de amostras preciso: sedimento, água, biológica?
• Tamanho de amostra: representatividade • Preservação da amostra • Tipo de medições: F, Q • Planejamento: frequência, época • Recursos e logística
• Segurança dos dados e amostras
Análise Laboratorial
• Preservação da amostra
• Tamanho de amostra
• Analise: F, Q, B, Tx
• Analise: direto, pre-tratamento?
• Analise: padronizado, “in-house
method”?
• Quality Assurance, Quality
Control, and Quality Assessment Measures
• Planejamento
• Recursos e logística
IG01IG02AIG03 IG04 IG05 IG06 0 10 20 30 40 DOC TOC POC Con cen tr at ion ( m g/ L)
Ementa
1.
Introdução à coleta, preservação e análise de
amostras,
delineamento
e
planejamento
experimental, procedimentos básicos e normas de uso
de laboratório;
2.
Determinação analítica (matriz água e sedimento) de
características químicas, físicas e bacteriológicas;
3.
Tratamento e análise dos dados, curvas de calibração,
propagação de incertezas, critérios de rejeição.
Metodologia de ensino
• Aulas práticas no laboratório - Labeam
• Aula prática no campo – Reservatório do Passaúna
Data Local Atividade
22/09/2017 Labeam Aula introdutória: Laboratório, segurança, materiais e planejamento
29/09/2017 Labeam Métodos Gravimétricos em matrizes aquosas
06/10/2017 Labeam Métodos Titulométricos
20/10/2017 Labeam Métodos Biológicos
27/10/2017 Labeam Métodos Colorimétricos
10/11/2017 Labeam Métodos de Espectroscopia
17/11/2017 Labeam Métodos de Cromatografia
24/11/2017 Labeam Técnicas aplicadas à análise de sedimentos
08/12/2017 A definir Seminário final e encerramento da disciplina
Início de novembro
Reservatório do Passaúna
Planejamento experimental e organização da coleta, medições de qualidade de água em campo, técnicas de amostragem de água e de sedimento, medição de vazão.
Sistema de Avaliação
•
Avaliação da participação nas atividades práticas
(laboratório e campo)
•
Relatório das atividades desenvolvidas (quando
solicitado)
Bibliografia de apoio
• “Fichas dos módulos”
• Bibliografia específica indicada em cada módulo
• Artigos indicados em cada módulo (acessado via computador na UFPR)
• Manual do Labeam (versão em atualização)
• Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater
• Fundamentos de Química Analítica – Skoog, West, Holler e Crouch
(qualquer edição)
Consultar sempre o site da disciplina!
Todo ambiente de trabalho tem riscos
Risco
•
Probabilidade de ocorrência de um acidente ou evento
adverso.
•
Os riscos não desaparecem, só são controlados,
manejados e diminuídos.
Risco Pessoal
•
Todo agente capaz de diminuir a saúde e integridade
física (
emocional?
) do analista no laboratório
Químico
Físico
Biológico
•
Óculos de segurança
•
Jaleco (preferencialmente de algodão)
•
Calçado fechado e roupas compridas
•
Luvas para realização de procedimentos
No laboratório:
Como é a
segurança do
nosso
•
Não utilizar o celular!!!
[risco nas análises, risco de contaminação no celular e risco de reprovar na disciplina]•
Respeitar o espaço de uso comum
[evitar o desperdício e quebra de materiais, materiais de outras pesquisas, retornar equipamentos e utensílios aos seus devidos locais]•
Agir com responsabilidade e atenção!!!
[o laboratório é um ambiente de risco]
•
Manter o ambiente limpo e organizado
[verificar as normas específicas para limpeza de cada material, bancada, descarte apropriado de soluções e amostras]•
Estudar e se programar com antecedência durante as
análises
[leitura dos procedimentos, verificação dos materiais necessários e custos envolvidos, bem como regras de uso do laboratório]•
Ser responsável na pesquisa e com os dados
[conduzir a pesquisa com ética e honestidade]
• Não se alimentar e não ingerir líquidos no laboratório
•
Esteja familiarizado com os equipamentos de segurança
(lava-olhos, chuveiro, extintores) e rota de fuga do
laboratório que irá utilizar
•
Não trabalhar sozinho no laboratório
•
Em caso de contato com ácidos ou bases fortes: lavar
imediatamente com água em abundância, solicitar ajuda,
retirar as roupas imediatamente caso tenha derramado
nelas.
•
Usar sempre luvas para manusear materiais quentes e
tomar cuidado ao manuseá-los
•
Utilizar sempre a capela de exaustão quando há liberação
de vapores tóxicos ou gases envolvidos
•
Descartar soluções e produtos químicos de acordo com as
regras específicas
[neutralizar, encaminhar para descarte específico, diluir, consultar o manual]Campanha de
2014
no
Campanha de
2015
no
Campanha de
2016
no
Reservatório do Passaúna
Reservatório do Passaúna
Atividade de campo:
Medição de Vazão (rio afluente) Medições na coluna d’água (sensores e procedimento de coleta de amostras) Medições no sedimento (procedimento de coleta)PROCEDIMENTOS DE COLETA E
ANÁLISE
Coleta, armazenamento, filtragem e preservação
Escolha do método
Número de amostras
Obtenção da amostra
Processamento da amostra
Eliminação de interferências
Calibração e medida da concentração
Cálculo dos resultados
Avaliação dos resultados
Incertezas associadas Garantirrepresentatividade
Conservação da amostra Definição das réplicas
Preparo de soluções Complexidade da
amostra
Nível de exatidão, tempo e $$
Escolha do método
Número de amostras
Obtenção da amostra
Processamento da amostra
Eliminação de interferências
Calibração e medida da concentração
Cálculo dos resultados
Avaliação dos resultados
“Um resultado
analítico sem
uma estimativa
da confiabilidade
não vale nada”
Campo e laboratório
o Preparação e revisão do itinerário
o Mapa, coordenadas dos pontos a serem monitorados
o Calibração e teste dos sensores a serem utilizados em campo
o Verificar procedimentos de limpeza dos frascos para coleta de amostras, tipo de frascos, tipo de preservação, limpeza no local o Amostradores de sedimento (dragas) e água (garrafas coletoras) o Planilha para anotações
o Verificar a disponibilidade de recepção e processamento de amostras pelo laboratório
Campo e laboratório
o Verificação prévia das vidrarias, reagentes, e disponibilidade de uso dos equipamentos;
o Cuidado no transporte e armazenamento;
o Conhecimento dos procedimentos a serem realizados (preparação, coleta, procedimento analítico e descarte);
o Conhecimento das normas de utilização e de segurança do laboratório;
o Cuidado e responsabilidade nos procedimentos; o Manutenção da ordem e da limpeza do local;
Procedimentos para coleta e
armazenagem de amostras líquidas
o Tipo de frasco (1- PEAD, 2- PP, 3 – vidro, 4 – vidro âmbar, 5 - Winkler)
o Necessidade de refrigeração
o Filtração em campo/laboratório o Preservação com ácido
o Volume mínimo necessário de amostra o Tempo para processamento das análises
o Garrafa de Van-dorn
Procedimentos para coleta e
o Sensores (OD, condutividade, turbidez, profundidade, temperatura, pH)
Procedimentos para coleta e
o Titulação em campo (alcalinidade e fixação de OD)
Procedimentos para coleta e
o Transporte e armazenamento das amostras
Procedimentos para coleta e
PARÂMETRO COLETA (FRASCO)
PERÍODO MÁXIMO PARA ANÁLISE / CONSERVAÇÃO FRAÇÃO DA AMOSTRA VOLUME (ml) OD Frasco Winkler Fixação em campo do OD Winkler e quantificação no laboratório (12h) TOTAL 300
DBO5* PEAD, PP ou garrafa
âmbar 24h TOTAL Calculado segundo as diluições necessárias*.
DQO PEAD, PP ou garrafa
âmbar
1 semana (4ºC), acidificar
com 1ml H2SO4 / L amostra TOTAL
10 (digestão fechada)# e
50 (digestão aberta)
COD Garrafa de vidro
24h para filtração (4ºC), acidificar com 0,5% do
volume de H2SO4
DISSOLVIDA** 50
Alcalinidade PEAD, PP ou garrafa
âmbar
24h (4ºC), s/ preservação ou
in situ TOTAL 100
Clorofila-a Garrafa âmbar
24h (4ºC), filtrar, no máximo, no dia posterior a coleta de
campo
DISSOLVIDA 1000
N-NO2- PEAD, PP ou garrafa
âmbar 24h (4ºC), s/ preservação DISSOLVIDA 30#
N-NH3 PEAD, PP ou garrafa
âmbar 48h (4ºC), s/ preservação DISSOLVIDA 6#
N-NO3- PEAD, PP ou garrafa
âmbar 7 dias (4ºC), s/ preservação DISSOLVIDA 50#
NT PEAD, PP ou garrafa
PARÂMETRO
COLETA (FRASCO)
PERÍODO MÁXIMO PARA ANÁLISE / CONSERVAÇÃO FRAÇÃO DA AMOSTRA VOLUME (ml) NOrgT*** / NINORG**** - - - - PO43- PEAD, PP ou garrafa
âmbar 24h (4ºC), s/ preservação DISSOLVIDA 30#
PT, PTD PEAD, PP ou garrafa
âmbar
7 dias (4ºC), acidificar com
0,1ml H2SO4 / 50ml amostra TOTAL E DISSOLVIDA
15# cada
fração
PTP***** - - - -
SDT, SST### PEAD, PP ou garrafa
âmbar 7 dias (4ºC), s/ preservação TOTAL E DISSOLVIDA 300#
SS PEAD, PP ou garrafa
âmbar
7 dias (temperatura
ambiente), s/ preservação TOTAL 1000
IF & UV-Vis PEAD, PP ou garrafa
âmbar 24h para filtração (4ºC) Dissolvida 25
Metais traço (Cd, Cr,
Cu, Ni, Zn e Pb) PEAD, PP
48h para filtração (4ºC), acidificar com 2ml HNO3 / L
amostra
DISSOLVIDA 100##
Metais traço (Cd, Cr,
Cu, Ni, Zn e Pb) PEAD, PP
48h para filtração (4ºC),
s/preservação PARTICULADA 300##
Coliformes totais e
fecais#### Frascos de vidro (100ml)
24h, s/ preservação ou com
tiosulfato (kits) TOTAL
100 (ou diluições)
*Verificar o volume de amostra necessária.
**Amostra filtrada por membrana de acetato de celulose Ø 0,45µm. *** NOrgT é quantificado da seguinte forma: NORG = NT - ∑NINORG.
****NINORGé quantificado da seguinte forma: NINORG = (N-NO2 + N-NO3- + N-NH 3).
*****PTP é quantificado da seguinte forma: PTP = PT - PTD.
#Volume para análise do parâmetro em triplicata. ##Volume para análise do parâmetro em duplicata.
###Considera a análise de sólidos fixos e voláteis de cada fração (suspensos e dissolvidos). ####Manter 1/5 do frasco livre de amostra.
o Coleta com draga
o Coleta tubular (testemunho)
Procedimentos para coleta e
o Leitura de Nível
Procedimento para determinação da
vazão ou perfil da seção transversal
o Batimetria com ADCP
Procedimento para determinação da
vazão ou perfil da seção transversal
Próxima semana:
• Determinação da massa de um analito
• Objetivos de aprendizado: separação entre as frações particulada e dissolvida, fixa e volátil, propagação de erros, cuidados gerais com o
método, pesagem, utilização do banho-maria, mufla, estufa e dessecador.
Prática no laboratório:
Determinação da concentração de Sólidos Totais, Suspensos e Dissolvidos
Determinação da turbidez e relação com a análise de sólidos
Próxima semana:
• Atividades preparatórias para a próxima semana:
– Leitura do artigo:
“Using total suspended solids (TSS) and turbidity as proxies for evaluation of
metal transport in river water”, de autoria de Nasrabadi, T. et al., Applied
Geochemistry 68, p. 1- 9, 2016.
– Leitura dos procedimentos:
Método 2540 do Standard Methods (versão digital ou cópia do Labeam) POP 05 – Série de Sólidos do Manual do Labeam (versão digital)
Error limits
o
Despite best efforts, no sample is completely
representative of the environment from which it was
collected.
o
Every environmental measurement has some level of error
associated with it.
o
Every chemical analysis has some level of error associated
with it.
How much error is too much to preclude
some management decisions??
Quality Assurance/ Quality Control
o
Quality control samples are a requisite for any sampling
and analysis program because without quality control
information, data quality can not be evaluated
o
Quality control information permits the assessment of
data precision, bias, and comparability.
o
If data quality is unknown, then the data can not be
intelligently interpreted because the user has no means of
knowing what errors are associated with it.
Resources
o
Despite the best of intentions, resources always represent
a limiting factor in the design and implementation of a
water quality monitoring program.
o
Resources refers to both money and trained personnel.
o
There is no point in designing a “Rolls Royce” program if
the available resources only can procure a “Volkswagon”.
2014
Programa de Pós Graduação em Engenharia de Recursos Hídricos e Ambiental Departamento de Hidráulica e Saneamento Universidade Federal do Paraná