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Rev. Soc. Bras. Med. Trop. vol.20 número1

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Academic year: 2018

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R e v ista d a S o cied a d e B ra sileira d e M e d ic in a T ropical 20(1): 45-46, Ja n -M a r, 1987.

TENTATIVA DE DESENVOLVIMENTO DE FORMAS ERITROCITÁRIAS DE

P L A SM O D IU M B R A S IL IA N U M

IN VITRO

Salma G. Oliveira1, Álvaro A. Couto1, Marco António V. Santos1 e Virgilio E. do Rosário2

Sabe-se que nem todas as espécies de plasmó- dios se adaptam às condições de cultivo contínuo in vitro. Na malária humana, por exemplo, o P lasm o-d i u m f a l c i p a r u m é a única espécie que apresenta

excelente adaptação. Em primatas, resultados satisfa­ tórios foram obtidos em macacos do Velho Mundo, com a adaptação do-P. inui, P. cynom olgi e P .fragile

ao cultivo in vitro2 4 5.

Recentemente, durante a operação de resgate e salvamento da Usina Hidrelétrica de Tucuruí-PA, várias espécies de macacos do Novo Mundo, perten­ centes aos gêneros Alouatta, Callicebus, Sai-miri, e Saguinus, foram encontrados com in­

fecção natural causada por P. brasilianum. Em Saguinus, não havia sido anteriormente detectada

infecção natural na América do Sul1.

Devido à suscetibilidade do homem aos plasmó- dios de macacos, demonstrada por meio de infecções experimentais ou, mais raramente, através de in­ fecções naturais3, nos propusemos a adaptar o P. brasilianum ao cultivo contínuo in vitro, objetivando

sua posterior caracterização através da análise enzi- mática, assim como pela diversidade antigênica utili­ zando-se anticorpos monoclonais, em face da seme­ lhança morfológica e antigênica deste plasmódio com o P. m alariae, que é uma das espécies causadoras da

malária humana.

Três animais da espécie A louatta belzebul com

infecção comprovada através de esfregaço e gota espessa, corados pelo método de Giemsa, foram selecionados no Centro de Triagem instalado na área de enchimento do reservatório da Usina Hidrelétrica de Tucuruí, PA, e transferidos para o laboratório do Programa Malária do Instituto Evandro Chagas, em Belém.

Os espécimes foram esplenectomizados a fim de que fosse mantida e conseqüentemente aumentada a parasitemia original.

1. F S E S P - Instituto Evandro Chagas, Av. Almirante Bar­ roso 492 - 66000 Belém, PA.

2. Atualmente fixado no Biomedical Research Institute - Maryland - USA.

Apoio F inanceiro: FIN EP - F inanciadora de Estudos e Pro­ jetos e SU C A M - Superintendência de Campanhas de Saúde

Pública.

Recebido para publicação em 16/12/85

As amostras utilizadas para a adaptação ao cultivo continuo foram isoladas no 39? dia após a esplectomia, momento em que apresentavam pa­ rasitemia em tomo de 1%, com parasitas nos estágios de trofozoitas, esquizontes e gametócitos, observando- se predominância das formas de trofozoitos jovens.

O sangue infectado foi obtido por punção endo­ venosa, com seringa heparinizada, posteriormente lavado duas vezes com meio RPMI 1640 (Gibco) sem soro. Às hemácias lavadas foi adicionado o meio completo, RPMI 1640, tamponado com HEPES 25 mM (Sigma) + NaHCC>3 a 5% (Sigma),

suplementado com soro humano a 10% ou com plasma de macaco A. belzebul a 10%, enriquecido

com insulina 80 U em uma proporção de 0,2 U/ml, obtendo-se uma suspensão final com hematócrito de 5%. Em seguida, essa suspensão foi distribuída em placas de Petri (15 mm) e incubadas a 37pC, de acordo com o método clássico descrito por Trager & Jensen6, utilizando-se o sistema de dessecador com vela para obtenção da tensão de CO2 adequada.

O meio de cultivo foi substituído duas vezes por dia e em intervalos de 8 horas, esfregaços foram feitos para a observação do desenvolvimento dos parasitos nas condições de cultivo.

Os parasitos cultivados em meio RPMI 1640 suplementado com plasma de A. belzebul mostraram

melhor aspecto morfológico que os submetidos às mesmas condições, porém, com meio suplementado com soro humano.

Os resultados observados após 96 horas de cultivo contínuo, permitiram acompanhar a evolução dos parasitas do estágio de trofozoito à esquizontes. Contudo, não ocorreu a rotura das hemácias parasita­ das com esquizontes maduros, conseqüentemente não houve liberação dos merozoitos para a reinvasão de novos eritrócitos.

Em função do retardamento da rotura das hemácias parasitadas, observou-se crescimento dos merozoitos no interior dos eritrócitos, seguido da interrupção do desenvolvimento dos parasitos.

Os esquizontes nas condições de cultivo, apre­ sentavam-se com 4 a 6 núcleos, enquanto que in vivo

apresentavam-se em média com 8 núcleos.

Nossos resultados demonstraram um evidente desenvolvimento dos parasitas da fase de trofozoitos até esquizontes. Entretanto, por razões ainda não esclarecidas não houve a rotura desses esquizontes, conseqüentemente impedindo a continuidade do ciclo,

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C om unicação. O liveira SG , C o u to A A , S a n to s M A V, R o sá rio V E . T en ta tiva de d esenvolvim ento de fo r m a s eritrocitárias d e Plasmodium brasilianum in vitro. R evista da S o cied a d e B ra sileira d e M e d ic in a T ropical 20: 45-46, Ja n -M a r, 1987.

uma vez que não se deu a reinvasão de novas hemácias pela não liberação de merozoitos.

Acreditamos que, com a continuidade desse trabalho, possivelmente introduzindo-se algumas mo­ dificações na metodologia, seja possível a adaptação do P. brasilianum em cultivo contínuo.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

1. Arruda ME. Presença do P la sm o d iu m b ra silia n u m em macacos capturados na área de enchimento do

reservatório da usina hidrelétrica de Tucuruí, Pará.

Memórias do Instituto Oswaldo Cruz 80: 367-369, 1985.

2. C ollins W E C h in W, S kinner JC . P lasm odium

fragile and M a ca ca m ulata monkeys, of a model

system for the study of malaria vaccines. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene 28:948-954,

1979.

3. Deane LM, Neto JA F, Okumura M, Ferreira MO. Malaria parasites of Brazilian monkeys. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo 11: 71-

8 6, 1969.

4. Nguyen-Dinh P, Campbell CC, Collins W E . Cul­ tivation in vitro of the quartan malaria P. innui. Scien ce 209:1249-1251, 1980.

5. Nguyen-Dinh P, Gardner AL, Campbell CC, Skinner JC, Collins W E . Cultivation in vitro of the vivax - type malaria parasite P. cynom olgi. Science 212:1146-1148, 1981.

6. Träger W , Jensen JB. Human malaria parasites in con­ tinuous culture. Science 193:673-675, 1976.

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